Abstract
Hiermee wordt artikel 10.3791/66075 gecorrigeerd
Protocol
Er werd een erratum afgegeven voor: Subclavia-aderbloedafname bij bewuste ratten. De sectie Discussie is bijgewerkt.
De derde alinea in de sectie Discussie is bijgewerkt vanaf:
In deze studie trad het falen van bloedafname voornamelijk op dag 4 op, wat verband kan houden met herhaalde puncties die schade aan de aderen veroorzaken. Tijdens de eerste bloedafname was er een merkbaar gevoel van penetratie toen de naald het bloedvat doorboorde. Naarmate het aantal bloedmonsters toenam, nam dit gevoel af, waardoor de bloedafname werd verlengd en het faalpercentage toenam. Daarom is na elke bloedafname lokale drukhemostase nodig om vasculair herstel te bevorderen en lokale hematoomvorming te voorkomen. Het wordt ook aanbevolen om een fijnere naald te proberen, zoals een insulinenaald, voor bloedafname. Zodra de punctie aan één kant mislukt, moet de punctieplaats met compressie worden aangebracht en moet de rat een paar minuten rusten voordat hij overgaat naar de contralaterale kant voor bloedafname. Voor intensieve bloedafname die nodig is voor farmacokinetische experimenten, is het beter om afwisselend bloed te verzamelen uit de linker en rechter subclavia-aderen. In gevallen waarin het echt niet beschikbaar is, kunnen andere methoden voor bloedafname worden aangevuld.
Aan:
In onze studie was het belangrijkste optreden van mislukte bloedafname op dag 4, wat mogelijk verband houdt met de veneuze schade veroorzaakt door herhaalde puncties. Herhaalde puncties kunnen leiden tot beschadiging van de vaatwand en een ontstekingsreactie uitlokken, waardoor de vaatwand dikker en harder wordt en zelfs vasculaire vernauwing veroorzaakt. Als de hemostase na punctie onvoldoende is, kan het geëxtravaseerde bloed verder weefseloedeem en ontsteking veroorzaken, wat vervolgens leidt tot de vorming van littekenweefsel. Deze littekenweefsels zijn moeilijk te penetreren en kunnen ook trekken en ervoor zorgen dat bloedvaten van positie veranderen, waardoor de bloedvaten moeilijker te lokaliseren en te doorboren zijn. In onze studie werd een spuit van 26 G (0,45 mm) gebruikt voor bloedafname, wat prima is in vergelijking met menselijke aderen, maar nog steeds aanzienlijke schade aan rattenaders veroorzaakt. Dit blijkt uit het duidelijke gevoel van penetratie wanneer de naald door het vat gaat tijdens de eerste bloedafname, die afneemt naarmate het aantal bloedafnames toeneemt, met langere bloedafnametijden en hogere faalpercentages. Daarom raden we aan om een fijnere insulinenaald te gebruiken voor bloedafname, en er moet voldoende druk worden uitgeoefend na bloedafname om hematoomvorming te voorkomen, en er moeten afwisselende bloedafnames worden uitgevoerd om voldoende veneus herstel mogelijk te maken. Onze ervaring is dat een goed opgeleide flebotomist een 26G-naald kan gebruiken om binnen 24 uur afwisselend 8-10 keer bloed af te nemen uit de bilaterale subclavia-aderen van dezelfde rat, met een gemiddeld interval van 2-3 uur tussen elke bloedafname. Het maximale aantal bloedafnames dat een rat kan verdragen, de herstelperiode en de bloedafnamecyclus kunnen echter worden beïnvloed door de gebruikte naaldmeter, de bloedafname-intervallen die nodig zijn voor verschillende experimenten en de vaardigheid van de flebotomist. Deze factoren moeten in toekomstig onderzoek verder worden onderzocht. Voor intensieve bloedafname die nodig is voor farmacokinetische experimenten, is het beter om afwisselend bloed te verzamelen uit de linker en rechter subclavia-aderen. In gevallen waarin het echt niet beschikbaar is, kunnen andere methoden voor bloedafname worden aangevuld.
Disclosures
Geen belangenconflicten gemeld.
