阻隔组织破坏与有机电化学晶体管传感

Bioengineering

Your institution must subscribe to JoVE's Bioengineering section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

有机电化学晶体管集成了活细胞,并用于监视整个胃肠道上皮屏障离子流。在本研究中,增加了离子通量,涉及到中断紧密连接的,诱导的钙螯合剂EGTA(乙二醇 - 双(β-氨基乙基醚)-N,N,N',N'-四乙酸的存在下酸),进行测定。

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Tria, S. A., Ramuz, M., Jimison, L. H., Hama, A., Owens, R. M. Sensing of Barrier Tissue Disruption with an Organic Electrochemical Transistor. J. Vis. Exp. (84), e51102, doi:10.3791/51102 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

胃肠道是阻挡薄纸,可提供针对病原体和毒素的条目的物理屏障,同时允许必要的离子和分子的推移的一个例子。在此屏障违反可以通过在细胞外钙离子浓度的降低而引起。这减少了钙的浓度会导致在涉及屏障的密封蛋白的构象变化,从而导致增加的细胞旁通量。模仿这种效果的钙离子螯合剂乙二醇 - 双(β-氨基乙基醚)-N,N,N',N'-四乙酸(EGTA),使用已知的有代表性的胃肠道的细胞单层。不同的方法来检测组织屏障的破坏已经存在,如免疫荧光和透气性测定法。然而,这些方法是耗时且昂贵的,不适合于动态或高通量测量。电子方法测量阻挡薄纸完整性也为跨上皮电阻(TER)的测量存在,但是这些经常是昂贵的和复杂的。快速,便宜,和敏感的方法的发展迫切需要作为屏障组织的完整性是药物发现和病原体/毒素诊断的关键参数。有机电化学晶体管(OECT)集成在一起阻挡薄纸形成细胞已被证明为能够动态监测屏障组织完整性的新设备。该设备能够测量离子通量分钟变化以前所未有时间分辨率和灵敏度,实时,作为屏障组织完整性的指标。这种新方法是基于简单的装置,可以与高通量筛选应用的兼容和制造成本低。

Introduction

胃肠上皮屏障的组织,它控制着身体的不同隔室之间的分子通路的一个例子。上皮细胞是由蛋白质所提供物理屏障1对病原体和毒素复合物结合在一起细长的柱状细胞,同时允许水和维持身体所需的营养物质通过。这种选择性是由于上皮细胞的极化,从而产生两种不同的膜结构域:暴露于管腔和锚定在下层组织2,3的细胞的基底侧的细胞的顶侧。紧密连接(TJ)是存在于上皮细胞的顶端部分的蛋白质复合物,并且是一个更大,更复杂称为心尖接头4的一部分。跨越障碍组织离子流可以或者通过跨细胞(通过细胞)或通过细胞旁路(两个相邻小区之间的)途径去。的总和通过两条途径的传输被称为跨上皮电阻。顶交界负责离子和分子通过一个特定的开启和关闭功能,通过跨越障碍5,6监管。这些蛋白质复合物的功能障碍或破坏往往与疾病7-11。此外,许多肠道病原体/毒素是已知的专门针对这种复杂的,由此进入体内并导致腹泻,最有可能作为离子/水流的跨阻挡层12-14块状失调的结果。阻挡薄纸也可通过改变细胞外微环境的改变。钙粘蛋白是细胞 - 细胞粘附的关键蛋白,并参与根尖结的形成。钙是必需的钙粘蛋白的正确构象的结构,并且在细胞外钙的降低已被证明能导致细胞 - 细胞连接的破坏和随后的开口小区15间旁细胞途径。在这项研究中,EGTA(乙二醇 - 双(β-氨基乙醚)-N,N,N',N'-四乙酸),一个特定的钙离子螯合剂,是用来诱导屏障组织中一个缺口,因为它有已经显示出对细胞旁一个快速和剧烈影响离子流16,17。此钙离子螯合剂被用于对Caco-2细胞线的汇合和分化的单层。中培养细胞培养物的插入,该细胞系是已知的开发在胃肠道的特性而被广泛应用于制药工业,以测试药物18,19的吸收。

方法监测屏障组织的完整性很丰富。这些方法往往光,靠已知的在心尖结20特定蛋白质的免疫荧光染色,或依赖于荧光示踪分子,通常不渗透到阻挡薄纸的定量21,22。然而,无标记的方法( 没有荧光团/色)是优选的,因为使用的标签可以产生伪影,并且通常会增加成本和测定时间。电气,无标记的屏障组织的监控,最近成为一个动态监测方法23。例如在电阻抗谱最近的技术进步已经允许市售扫描装置24,25,可以测量跨上皮电阻(TER),穿过细胞层中的离子电导的测定的发展。

有机电子创造了一个独特的机会,通过使用导电聚合物,可以进行电子和离子载体接口电子和生物26,27 28,29的世界。一种新的技术来检测违规使用OECT 30-32屏障组织在最近推出。该设备对现有的技术,我们进行了验证教育署,以评估使用Cellzscope屏障组织的完整性,包括使用荧光黄免疫荧光,透气性试验和阻抗谱。在所有测试的有毒化合物的情况下,OECT被发现具有相同或更好的灵敏度操作,并且具有增加的时间分辨率相比,上述技术。在该装置中,PEDOT:PSS,已被证明是稳定的和生物相容33,34的导电聚合物,用作晶体管通道的活性材料。该OECT组成上的导电聚合物通道的任一侧的漏极和源极电极。这随后被放置在与电解质,从而形成了装置的一个组成部分的接触。栅电极浸在电解液中( 图1),而当一个正栅极电压施加于栅极,从电解质阳离子被迫进入通道,从而脱掺杂的导电聚合物,并导致在源极-漏极的变化电流。在DEVICE因此,在离子通量由于放大的晶体管微小变化极其敏感。生长在细胞培养插入一个细胞层置于所述栅极电极和所述导电聚合物通道之间。一个完整的细胞层存在下充当屏障的阳离子进入导电聚合物,因此,在一个完整的单层的存在下,漏极电流减小( 图2:从过渡区域a到b)。在一种有毒化合物的存在下,在阻挡薄纸将逐渐失去其完整性,又让阳离子进入到聚合物膜和增加的漏电流( 图2:区域c)所示。用这种技术,违反阻挡薄纸在由漏极电流的调制看出,对应于整个单层的磁通的调制。该设备能够测量与实时前所未有的时间分辨率和灵敏度离子通量的微小变化。这项技术西港岛线L是在毒理学作药物测试,诊断疾病或基础研究作为屏障模型可以很容易适应的领域的兴趣。这种方法也将有助于减少动物实验,因为它允许在体外模型的验证,以取代体内试验。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1。 PEDOT:PSS溶液的制备

  1. 至50ml的PEDOT:PSS,添加乙二醇(增加导电性)以1:4的体积比(乙烯乙二醇对PEDOT:PSS)中,十二烷基苯磺酸(DBSA)0.5微升/毫升作为表面活性剂,和10 mg /毫升3 - 环氧丙氧基丙基(GOPS)作为交联剂,以促进导电性聚合物的玻璃载片的附着性。

2。 OECT制作(图3)

  1. 通过剥离光刻定义热蒸发金源极和漏极接点:
    1. 旋转涂覆光刻胶在一个普通的干净的载玻片上以3000rpm,持续30秒。玻璃尺寸为3英寸×1英寸
    2. 通过光刻定义模式。尺寸可以被改变,但此处列出的尺寸被证明导致最佳的灵敏度。然后使用一个开发者。
    3. 蒸发5nm的铬和金的100nm时,分别。
    4. 剥离光致抗蚀剂中的交流一通浴1小时,使与源极和漏极区仅接触面积的衬底。
  2. 该PEDOT的所需长度:PSS信道是1毫米。这是通过使用聚对二甲苯-C(霸-C)的剥离法来图案实现的:
    1. 加载3.5克霸-C涂层中的设置。均匀地蒸发2微米的聚对二甲苯-C上用Au接触所述基板的顶部。
    2. 状态的通道,通过光刻:
      1. 旋涂光致抗蚀剂以3000rpm进行30秒。
      2. 使用遮罩来照亮通道和紫外线镀金触点20秒,曝光的光刻胶将在开发者变得可溶。
      3. 使用开发者对光刻胶打开通道面积。
    3. 通过15分钟的血浆步骤(O 2(50 SCCM)和瑞士法郎4(3 SCCM)等离子在160瓦),以打开通道和黄金触点腐蚀霸-C在通道区。
  3. 通过旋涂在PSS混合溶液:存入的PEDOT500 rpm离心45秒。烘烤30秒,在110℃下
  4. 剥离霸-C来揭示PEDOT:下面的基板PSS的通道。该通道应略微重叠与金接触,协议1进行。
  5. 烘烤的样品1小时,在140℃的大气条件下。

3。设备组装

  1. 通过在固化在碱性溶液解决方案的比1:10混合两个解决方案(通常一起提供的套件)使PDMS。在120℃下烤1小时
  2. 通过使用打孔设计良好,切口周边所需面积的正方形。
  3. 粘上PDMS以及在所述通道的顶部,以产生大约6 mm 2的信道区域。确保源极和漏极触点不包括在内。
  4. 做一个塑料支撑在它的孔(可以使用支架的细胞培养插入),然后把它粘在PDMS上。待其干燥过夜。
  5. 测试很适合用笏预填漏呃。
  6. 焊上锡源极和漏极接触电线。

4。细胞培养

  1. 准备细胞培养基如下:
    1. 在DMEM培养液中,添加1%谷氨酰胺,10%胎牛血清,0.5%青霉素 - 链霉素,和0.1%庆大霉素。
    2. 使用无菌过滤装置灭菌的细胞培养基。
  2. 在5%CO 2的潮湿气氛保持通道49和68之间的Caco-2细胞在37℃下,在细胞培养介质。
  3. 使用胰蛋白酶和种子以1.5×10 4个细胞/插入分裂的细胞,每星期一次。
  4. 3周以上改变细胞培养基每周两次。

5。测量与OECT

  1. 将Ag / AgCl电极导线连接到源表用作栅电极。沉浸前端在细胞培养基中,这是用来作为电解液, 如图1a中
  2. 连接导线从源极和漏极到t他数字源表(双通道设置)。
  3. 施加矩形脉冲的正电压的栅极和源极之间(V GS)(作为参考电极:接地)。漏极和源极(V DS)之间的负恒定电压被施加和相应电流(I DS)进行测定。
  4. 使用一台PC正在运行的程序的数据收集。在定制的采集程序进入OECT参数应该如下:V DS =-0.2V,V GS = 0.3 V,V GS时间= 2秒,关闭时间= 28秒。
  5. 读出的源极-漏极电流(I DS)和栅电流(I GS)。进行测量几分钟,以确保一个稳定的基线信号。

6。细胞融合与OECT量测

注:在实验之前,使细胞层的完整性可以通过测量TER与阻抗谱装置进行验证。每3周大的Caco-2细胞樱雪的TER室温应高于400Ω。厘米2。

  1. 在OECT测定关断时间:从电解液中取出栅电极,把细胞培养插管,并更换细胞培养插管内的栅电极。
  2. 进行与细胞数分钟的基线测量,以确保一个稳定的信号。此基线将被用作用于对应于一个完整的单层(0)的归一化值的计算。

7。准备和有毒化合物简介

  1. 准备EGTA的1M溶液在去离子水中,先调节溶液至7.4,用Tris碱将pH。
  2. 添加EGTA溶液在适当的体积,得到( 例如在5毫米和100毫米)的所需浓度并考虑到体积。在EGTA应在基底室在关断期间被加入。
  3. 连续90分钟在协议5衡量。如果测量是北纳克进行在室温下,该细胞的稳定性不会在90分钟后保持不变。
  4. 在运行结束时,划伤细胞层导致的势垒层和测量15分钟的完全破坏,这一点可以通过去除过滤器并浸渍在媒体中的栅电极来​​完成。此基线将被用作用于对应于一个被破坏单层的归一化值的计算。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

在测量过程中的第一步骤时,漏电流可能略有不同,但在大多数情况下,它应保持稳定( 图2,部分a)所示。如果该信号是不稳定的时,晶体管应丢弃并更换。这种稳定性检查也确保了设备的电导率任何初始亏损并不会影响后续计量。测量若干分钟后,用细胞形成组织屏障的插入件被放置在通道的顶部。漏极电流应立即降低( 图2,B部分)。如果漏极电流不减小,这可能意味着该细胞还没有正确地形成一个屏障,或操作期间被损坏,并且在过滤器应丢弃并更换。通过加入一种有毒化合物到阻挡薄纸时,漏极电流的调制应逐步增加或紧接,根据所使用的化合物的浓度( 图2中C节)。

使用源表和一个自定义的采集程序收集的数据。从这个程序的不同参数得到,这是在一个数据分析程序运行,以获得对应于每一个栅极​​脉冲中期调制。中期调制对应于该电流的值在峰值的中间( 图4)。在感应一个完整的单层中得到的中间调制值进行归一化到0,而中间的划痕后得到调制为归一化为1。归一化的结果被用来比较来自不同设备上的数据( 图5)。从这个数据随时间的有毒化合物的浓度差的剂量应答中可以看出。

图1
图1。 一种有机电化学晶体管的管脚与从侧视图细胞培养插管一个)信道的。二)顶视图(灰色)和触点(黄色)上为6mm和1毫米沟道宽度的沟道长度载玻片尺寸集成 。这个数字已经被修改Jimison 30。

图2
的漏电流响应方门脉冲随着时间的推移原位测量图2概述测量条件是: V DS =-0.2V,V GS = 0.3 V,V GS时间= 2秒,关闭时间= 28秒。 一个 )对应于OECT与细胞融合之前操作,确保了装置的稳定性。b)相当于该INTEG的阻挡薄纸形成细胞,起有毒的化合物。 三)试验前再次确保稳定的信号配给对应于加入EGTA到阻挡的组织细胞,注意信号随时间的演化。

图3
图3:OECT的制作流程。 点击这里查看大图。

图4
图4。OECT漏电流响应单个正方形栅极脉冲,测量换货条件为: V DS =-0.2V,V GS = 0.3 V,V GS时间= 2秒,关闭时间= 28秒。 )除了阻挡薄纸的前(虚线)和后(蓝线)OECT瞬态响应形成细胞生长在一个过滤器。 二)后的组织屏障(橙色线)的加成化合物的毒性和无阻挡薄纸(虚线)OECT瞬态响应。

图5
图5:典型的归一化结 ​​果从OECT。的OECT对引进设备(空圆)的归一化反应,细胞层(黑色十字),5毫米的EGTA(深蓝色圆圈)和10毫米EGTA(青色圆圈)在介绍t = 0时,分别测定在一段50分钟。om/files/ftp_upload/51102/51102fig5highres.jpg“目标=”_blank“>点击这里查看大图。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

这种技术提供了一种新的方法将有机电化学晶体管集成与活细胞来衡量屏障组织的完整性。该技术的主要优点是快速性和灵敏度,而且该设备对于阻挡薄纸动态监测的成本低。

这种方法是用活细胞,一个关键点就是一定要使用单层,它代表一个完整的隔离层。阻挡层的参数应的细胞系的表征过程中被定义。因此,至关重要的是不破坏细胞层时,栅电极浸在电解液中对细胞层的顶部。

另外重要的一点是该设备的制造,没有泄漏应的PDMS的边缘和塑料保持器之间发生,以避免液体的体积变化。为了实现可再现的结果,应注意也提供给导线的焊接,如燃烧的金电极会导致较差的/没有与导电聚合物通道等滞销/无信号触点。

为了便于分析,并获得更好的效果实验的每个步骤之间的延迟几分钟应该允许设备之间的步骤来稳定。作为信号的变化,从设备到设备观察,结果的归一化是必需的,以便能够比较各实验的结果。然而,在未来更大规模的生产设备将允许更大的设备,装置的再现性。

该技术的主要局限是格式,对于时刻只有一个样本可以被测量。这将很快由multiacquisition传感器的发展,并在将来建立一个96孔板格式来解决。这将这种技术用于阻挡薄纸的高通量筛选的使用开辟了道路。与此同时,平板设备也正在开发吨o允许同时进行光学和电子测量。

总之,一个新颖的设备,它可以以较低的成本来制造,其能够阻挡薄纸的无标记监控已经研制成功。该设备示出了更高的灵敏度,比现有方法更高的时间分辨率。 在体外模型与如OECT设备的集成可以是一个伟大的替代动物试验用于药物发现和毒理学。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

该项目由欧盟第七框架计划 - 人-2009-RG,居里夫人项目编号:256367(CELLTOX)和欧洲研究委员会ERC-2010-STG建议无258966(IONOSENSE),以及联合授予来自行政法院区域去普罗旺斯阿尔卑斯蔚蓝海岸和CDL制药为ST。我们感谢乔治Malliaras的有关OECT设计和功能有益的讨论。

Acknowledgements

本文的作者没有任何竞争经济利益。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Clevios pH 1000 Heraus Clevios
AZ9260 resin Cipec Specialties
Dodecylbenzenesulfonic acid (DBSA) Acros Organic
3-Glycidoxypropyltrimethoxysilane (GOPS) Sigma Aldrich
24-well Suspended cell Culture insert Millicell  PET 0.4 μm Millipore Dominique Dutscher 51705
24-well Cell culture plate BD Falcon Dominique Dutscher 51705
Stericup-GPT PES 0.22 μM Dominique Dutscher 51246
Advanced DMEM Marque GIBCO Fisher Scientific E3434T
FBS Heat Inact. Fisher Scientific E3387M
Penicillin Streptomycin Fisher Scientific E3470C
GlutaMAX Fisher Scientific E3524T
Trypsin 0.05% EDTA Fisher Scientific E3513N
EGTA (Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid) Sigma Aldrich E4378
Ethylene glycol, anhydrous, 99.8%, Sigma Aldrich
Caco-2 cells ATCC
PDMS Dow Corning SYLGARD 184 SILICONE ELASTOMER
Au (99.99%) NEYCO AU3X6
Chromium (99.95%) NEYCO
Parylene C Specialty Coating Systems
Ag/AgCl wire Harvard Apparatus
Photoresist Cipec Specialties

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Farquhar, M. G., Palade, G. E. Junctional complexes in various epithelia. J. Cell Biol. 17, 375-412 (1963).
  2. Gaillard, J. L., Finlay, B. B. Effect of cell polarization and differentiation on entry of Listeria monocytogenes into the enterocyte-like Caco-2 cell line. Infect. Immun. 64, 1299-1308 (1996).
  3. Anderson, J. M., Balda, M. S., Fanning, A. S. The structure and regulation of tight junctions. Curr. Opin. Cell Biol. 5, 772-778 (1993).
  4. Guttman, J. A., Finlay, B. B. Tight junctions as targets of infectious agents. Biochim. Biophys. Acta. 1788, 832-841 (2009).
  5. Anderson, J. M. Molecular structure of tight junctions and their role in epithelial transport. News. Physiol. Sci. 16, 126-130 (2001).
  6. Anderson, J. M., Van Itallie, C. M. Tight junctions: Closing in on the seal. Curr. Biol. 9, (1999).
  7. Ma, T. Y., Boivin, M. A., Ye, D., Pedram, A., Said, H. M. Mechanism of TNF-{alpha} modulation of Caco-2 intestinal epithelial tight junction barrier: role of myosin light-chain kinase protein expression. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 288, 422-430 (2005).
  8. Schulzke, J. D., et al. Epithelial tight junctions in intestinal inflammation. Ann. N.Y. Acad. Sci. 1165, 294-300 (2009).
  9. Fisher, S. J., Swaan, P. W., Eddington, N. D. The ethanol metabolite acetaldehyde increases paracellular drug permeability in vitro and oral bioavailability in vivo. The J. Pharmacol. Exp. Therap. 332, 326-333 (2010).
  10. Ma, T. Y., Nguyen, D., Bui, V., Nguyen, H., Hoa, N. Ethanol modulation of intestinal epithelial tight junction barrier. Am. J. Physiol. 276, 965-974 (1999).
  11. Nemeth, E., Halasz, A., Barath, A., Domokos, M., Galfi, P. Effect of hydrogen peroxide on interleukin-8 synthesis and death of Caco-2 cells. Immunopharmacol. Immunotoxicol. 29, 297-310 (2007).
  12. Vogelmann, R., Amieva, M. R., Falkow, S., Nelson, W. J. Breaking into the epithelial apical-junctional complex--news from pathogen hackers. Curr. Opin. Cell Biol. 16, 86-93 (2004).
  13. Nusrat, A., et al. Clostridium difficile toxins disrupt epithelial barrier function by altering membrane microdomain localization of tight junction proteins. Infect. Immun. 69, 1329-1336 (2001).
  14. Obert, G., Peiffer, I., Servin, A. L. Rotavirus-induced structural and functional alterations in tight junctions of polarized intestinal Caco-2 cell monolayers. J. Virol. 74, 4645-4651 (2000).
  15. Nagar, B., Overduin, M., Ikura, M., Rini, J. M. Structural basis of calcium-induced E-cadherin rigidification and dimerization. Nature. 380, 360-364 (1996).
  16. Boulenc, X., et al. Importance of the paracellular pathway for the transport of a new bisphosphonate using the human Caco-2 monolayers model. Biochem. Pharmacol. 46, 1591-1600 (1993).
  17. Artursson, P., Magnusson, C. Epithelial transport of drugs in cell culture. II: Effect of extracellular calcium concentration on the paracellular transport of drugs of different lipophilicities across monolayers of intestinal epithelial (Caco-2) cells. J. Pharm. Sci. 79, 595-600 (1990).
  18. Artursson, P. Epithelial transport of drugs in cell culture. I: A model for studying the passive diffusion of drugs over intestinal absorptive (Caco-2) cells. J. Pharm. Sci. 79, 476-482 (1990).
  19. Artursson, P., Karlsson, J. Correlation between oral drug absorption in humans and apparent drug permeability coefficients in human intestinal epithelial (Caco-2) cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 175, 880-885 (1991).
  20. Balda, M. S., et al. Functional dissociation of paracellular permeability and transepithelial electrical resistance and disruption of the apical-basolateral intramembrane diffusion barrier by expression of a mutant tight junction membrane protein. J. Cell Biol. 134, 1031-1049 (1996).
  21. Hubatsch, I., Ragnarsson, E. G. E., Artursson, P. Determination of drug permeability and prediction of drug absorption in Caco-2 monolayers. Nat. Protoc. 2, 2111-2119 (2007).
  22. Uchida, M., Fukazawa, T., Yamazaki, Y., Hashimoto, H., Miyamoto, Y. A modified fast (4 day) 96-well plate Caco-2 permeability assay. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 59, 39-43 (2008).
  23. Krug, S. M., Fromm, M., Gunzel, D. Two-Path Impedance Spectroscopy for Measuring Paracellular and Transcellular Epithelial Resistance. Biophys. J. 97, 2202-2211 (2009).
  24. Wegener, J., Abrams, D., Willenbrink, W., Galla, H. J., Janshoff, A. Automated multi-well device to measure transepithelial electrical resistances under physiological conditions. BioTechniques. 37, 592-594 (2004).
  25. Weber, C. R., Shen, L., Wu, L., Wang, Y., Turner, J. R. Occludin is Required for Tumor Necrosis Factor (TNF)-Mediated Regulation of Tight Junction (TJ) Barrier Function. Gastroenterology. 140, (2011).
  26. Owens, R. M., Malliaras, G. G. Organic electronics at the interface with biology. MRS Bull. (2010).
  27. Lin, P., Yan, F., Yu, J. J., Chan, H. L. W., Yang, M. The Application of Organic Electrochemical Transistors in Cell-Based Biosensors. Adv. Mater. 22, 3655-3660 (2010).
  28. White, H. S., Kittlesen, G. P., Wrighton, M. S. Chemical Derivatization of an Array of 3 Gold Microelectrodes with Polypyrrole - Fabrication of a Molecule-Based Transistor. J. Am. Chem. Soc. 106, 5375-5377 (1984).
  29. Bernards, D. A., Malliaras, G. G. Steady-state and transient behavior of organic electrochemical transistors. Adv. Funct. Mater. 17, 3538-3544 (2007).
  30. Jimison, L. H., et al. Measurement of Barrier Tissue Integrity with an Organic Electrochemical Transistor. Adv. Mater. 24, 5919-5923 (2012).
  31. Tria, S., Jimison, L. H., Hama, A., Bongo, M., Owens, R. M. Sensing of EGTA Mediated Barrier Tissue Disruption with an Organic Transistor. Biosensors. 3, 44-57 (2013).
  32. Tria, S. A., Jimison, L. H., Hama, A., Bongo, M., Owens, R. M. Validation of the organic electrochemical transistor for in vitro toxicology. Biochim. Biophys. Acta. 1830, 4381-4390 (2013).
  33. Zhu, Z. T., et al. A simple poly(3,4-ethylene dioxythiophene)/poly(styrene sulfonic acid) transistor for glucose sensing at neutral pH. Chem. Commun. 1556-1557 (2004).
  34. Lin, P., Yan, F., Yu, J., Chan, H. L., Yang, M. The application of organic electrochemical transistors in cell-based biosensors. Adv. Mater. 22, 3655-3660 (2010).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics