Капсульная серотипирования
1Pneumococcal Research, Murdoch Childrens Research Institute, 2Department of Microbiology and Immunology, Peter Doherty Institute for Infection and Immunity, The University of Melbourne

Immunology and Infection
 

Summary

Латекс тестирование агглютинации является простым, быстрым и недорогим методом для серотипирование Пневмококк, и также широко применяется в диагностической микробиологии. Эта рукопись описывает в собственное производство латексной агглютинации реагентов, процедур контроля качества и применение этого метода к пневмококковой серотипирования.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Porter, B. D., Ortika, B. D., Satzke, C. Capsular Serotyping of Streptococcus pneumoniae by Latex Agglutination. J. Vis. Exp. (91), e51747, doi:10.3791/51747 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

Пневмококк (пневмококк) является одной из основных причин заболеваемости и смертности среди детей в возрасте до пяти лет во всем мире, особенно в условиях ограниченных ресурсов 1,2. Пневмококковые диапазоны болезни от локализованных инфекций, угрожающих жизни заболеваний, таких как пневмония, сепсис и менингит 1,2.

Более 90 серотипов пневмококков были выявлены на основе различий в их капсульного полисахарида 3. Современные вакцины нацелены на капсульный полисахарид и обеспечивают защиту от основных серотипов, вызывающих инвазивное заболевание 4. Серологическое типирование пневмококковых изолятов важно для оценки влияния вакцинации на перевозки и болезней, а также обеспечения более широкого эпидемиологическую информацию 5,6. Способ пневмококковой серотипирования ток «золотым стандартом» является тест Quellung, но это занимает много времени и требует определенных навыков для PERFOгт 7. Латекс агглютинации является альтернативным методом серотипирование рекомендовано Всемирной организацией здравоохранения 7. Латекс агглютинации быстро и просто выполнять, и используется во многих лабораториях по всему миру 8-11. Важно отметить, что латекс-агглютинации показал сопоставимую точность в тесте Quellung для пневмококковой серотипирования 10,12-14. В целом, этот метод идеально подходит для ограниченными ресурсами, а также с высокой пропускной лабораторий.

Латекс агглютинации реагенты ('латексные реагенты ») создаются привязанности антител к латексных частиц 15. В положительной реакции, эти меченые частицы агглютинации в присутствии специфического антигена. Коммерческие латексные реагенты доступны для ограниченного круга серотипов. Латекс реагенты могут быть также получены в доме с использованием коммерчески доступных сывороток 10. Смеси антисыворотками ('бассейны'), а также антисыворотки к пневмококковой сerogroups (например, группа 19), отдельные серотипы (например, серотипа 5), а также специфические антигены (факторы "', например., коэффициент 19C признать серотип 19а) для дальнейшего определения серотипов в группах имеются 16.

Эта рукопись излагаются основные этапы производства латексных реагентов с использованием пассивного вложения имеющихся в продаже антисыворотки латексных частиц. Контроль качества (QC) аспекты этого метода описаны, и протокол для использования латексных реагентов для пневмококковой серотипирования включен.

Protocol

1 Подготовка внутренних латексных реагентов

  1. Приготовление солевого буферного раствора глицина (GBS)
    1. Добавить 1,5 г глицина, 11,7 г хлористого натрия и 100 мл дистиллированной воды в стеклянном стакане 200 мл.
    2. Смешать, чтобы растворить с помощью магнитной мешалки.
    3. Передача смеси до 500 мл мерный цилиндр и добавить дистиллированную воду, чтобы сделать в общей сложности 200 мл.
    4. Перенесите раствор обратно в 200 мл стакан, проверить рН и приспособиться к 8,2 гидроксидом 5 М натрий. ПРИМЕЧАНИЕ: гидроксид натрия вызывает коррозию, средства индивидуальной защиты.
    5. Фильтр стерилизовать решение с использованием 0,22 мкм фильтры и несколько 60 мл шприцев в мл preautoclaved винт ограничен стеклянной бутылке 250.
    6. Храните при комнатной температуре.
  2. Подготовка GBS с 0,2% бычьего сывороточного альбумина
    1. Добавить 0,2 г бычьего сывороточного альбумина (BSA) порошка и 100 мл GBS в стеклянном стакане 200 мл и перемешивают до растворения с использованием магнитной мешалки.
    2. Фильтрстерилизовать раствор через 0,22 мкм фильтры, используя несколько 60 мл шприцев в мл preautoclaved винтовой крышкой стеклянной бутылке 250.
    3. Хранить при 4 ° С.
  3. Подготовка Латекс реагент
    1. Этикетка 2 мл с круглым дном пробирке.
      ПРИМЕЧАНИЕ: круглым дном трубы используются для минимизации оседание частиц, которые могут повлиять на антитела привязанность.
    2. Использование P1000 пипетки с стерильные наконечники добавить 975 мкл GBS в пробирке, затем добавить 25 мкл соответствующей пневмококковой антисыворотки для латекс реагент готовится (т.е., бассейн, группа, тип или фактор). Обратить пять раз перемешать.
    3. Развести полистирольных латексных частиц 1:10 добавлением 120 мкл латексных частиц в 1080 мкл стерильного физиологического солевого раствора.
      Примечание: Это может быть сделано в больших объемах, но должны быть свежим каждый раз, когда латекс реагенты производятся.
    4. Добавить 1000 мкл 1:10 латексной суспензии (полученного на стадии 1.3.3) к 1,000 мкл антисыворотки 1:40 подвеска (полученного на стадии 1.3.2). Обратить пять раз перемешать.
    5. Инкубируют при 37 ° С на медленно вращающемся колесе (например, 4 оборота в минуту в течение колесо диаметром 38,5 см) в течение 2 часов.
    6. Центрифуга течение 15 мин при 1100 х г. Жидкость над осадком сливают и осторожно ресуспендируют осадок в 2 мл стерильного физиологического раствора.
    7. Центрифуга течение 15 мин при 1100 х г. Удалите супернатант и добавить 1 мл GBS и осторожно ресуспендируют осадок.
    8. Внесите латекса суспензии в меченым 5 мл винт закрытой пробирке. Добавить еще 1 мл GBS.
    9. Добавить 2 мл GBS содержащем 0,2% БСА (вес / объем) (рН 8,2) (полученного на стадии 1.2). Добавить 40 мкл 10% (масса / объем) раствора азида натрия в качестве консерванта.
      ПРИМЕЧАНИЕ: натрия азид опасен при вдыхании, и кожа, и раздражение глаз. Желательно приобрести готовую 10% раствор, а не порошкообразной форме, так как это сводит к минимуму риск вдыхания. Средства индивидуальной защиты (в том числе перчаткид Очкидлязащитыотбрызг) следует носить при работе с этим реагентом. Обратитесь к Паспорт безопасности для подробной информации.
    10. Магазин латексные реагенты при температуре 4 ° С.
  4. Подготовка отрицательного контроля латекса реагента
    1. Этикетка 2 мл с круглым дном пробирке.
      ПРИМЕЧАНИЕ: круглым дном трубы используются для минимизации оседание частиц, которые могут повлиять на антитела привязанность.
    2. Использование P1000 пипетки с стерильные наконечники добавить 975 мкл GBS в пробирке, затем добавить 25 мкл нормальной кроличьей антисыворотки. Обратить пять раз перемешать.
    3. Действуйте с шагом 1.3.3 для 1.3.10 выше

2 Контроль качества (QC) из латексных реагентов

  1. Доведите латекс реагент до комнатной температуры. Непосредственно перед использованием, осторожно перемешать латексный реагент путем обращения трубки несколько раз.
  2. Проверьте реагент для autoagglutination с помощью пипетки 15 мкл на предметное стекло микроскопа и действуйте с шагом 4,7 и 4,8 ниже. Там не должно бытьgglutination из латексных частиц. Реагент должен появиться белая и гладкая.
  3. Проверьте реагент против панели низкого прохода пневмококковых изолятов. Используйте недавно выращенные культуры, полученные, как в шаге 3 Панель изолятов должна включать изолятов в "целевой" серотипа (удельная серотип для реагента проходит испытания) и "нецелевые" серотипов (изоляты других серотипов, которые не должны обычно пересекают вступать в реакцию с реагентом). Включите по крайней мере один изолят каждой целевой и нецелевой серотипа для каждого латекса реагента, подвергающегося QC. Если есть только один целевые или нецелевые серотипа, тест две разные изоляты конкретного серотипа.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Тестирование панель должна включать в себя несколько изолятов каждого серотипа, некоторые из которых являются редкостью в инвазивных заболеваний и / или коллекций культур типа. Желательно, чтобы включать в себя некоторые каретки изолирует, так как они часто более требовательный к серотипа (данные не показаны), тем самым дополнительно проверки Выхе реагентов и обеспечение того, чтобы реагенты, скорее всего, способны серотипирование как инвазивные и перевозку изолирует.
  4. Продолжайте тестирования латексных реагентов с являющихся и не являющихся целевой пневмококковой изолирует согласно методу, описанному в пунктах 3 и 4 ниже.
  5. Контроль качества реагентов в момент производства, а затем, по меньшей мере ежегодно.
    Примечание: Если реагент не пройти контроль качества, партия должна быть отброшена и новый препарат производства. В случае отказа повторите QC мы рекомендуем реагенты быть представлено с использованием альтернативных методов, описанных в Ortika и др., 2013 8 и в обсуждении ниже.

3 Получение пневмококковой культур для серотипирования

  1. Использование стерильной петли выбрать один колонию пневмококковой изолировать и серия на это на твердую неселективном кровяной агар так, что основная посевной охватывает примерно треть поверхности пластины. Подряд для отдельных колоний.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Плиты, изготовленные из дефибринированной лошади или овечьей крови подходят; но пластины крови, полученные с человеческой крови или цитратной крови животных нет.
  2. Планшеты инкубируют O / N при 37 ° С в атмосфере 5% CO 2.
  3. Соблюдайте рост на тарелке для чистоты и оценить, что есть достаточный рост для серотипирования.
    ПРИМЕЧАНИЕ: чистая культура пневмококковой изолята требуется для серотипирования. В нашем опыт, сливающиеся, или вблизи сплошной рост, охватывающий примерно одну треть поверхности пластины, как правило, достаточно для завершения серотипирование. Как пневмококковых культуры могут быть склонны к автолиза, культуры, подготовленные для серотипирования должны быть проверены в течение 24 часов субкультуры. Не берите культуры пластину из инкубатора более 15 до 20 мин, после чего серотипирование начинается.

4.Проведение Латекс Агглютинация Серотипирование

  1. Удалите все латексные реагенты из холодильника и дайте им нагреться до комнатной температуры в течение примерномерно 30 мин. Непосредственно перед использованием, осторожно инвертируют трубы для смешивания реагентов.
  2. Этикетка микроскопа.
  3. Поместите 15 мкл отрицательного контроля латекса реагента на предметное стекло.
  4. Используя стерильный одноразовый 1 мкл петлю взять размах пневмококковой культуры так, чтобы петля примерно наполовину.
  5. Аккуратно смазать инокулята на поверхность ползуна, близкой к капле отрицательного контроля латекса реагента. Посевной должны быть видны на стекле.
  6. Быстро и тщательно перемешать посевной в отрицательную контроль латексной реагента с помощью петли. Убедитесь, что падение не распространяется дальше, чем его первоначальный размер.
  7. Возьмите слайд, удерживая ее на обоих концах. Рок скользить назад и вперед в течение 1 мин. Следите, чтобы жидкость медленно, и убедитесь, что размер капли не увеличивается.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Можно также использовать пластины рокер.
  8. Соблюдайте для макроскопического склеивания (т.е., поневооруженным глазом) и очистка суспензии на черном фоне.
  9. Если отрицательный контроль латекс реагент не показывает агглютинацию или очистка продолжить тестирование культуру, заменив тест латексные реагенты для отрицательного контроля латекса реагента с шагом 4,1 до 4,8 выше. Свежий цикл должен быть использован каждый раз. Продолжать с тестированием латексных реагентов, начиная с бассейнами.
  10. Испытание каждого из «пула» латексных реагентов в последовательности, пока не будет получен положительный тест.
    ПРИМЕЧАНИЕ:. Порядок тестирования из бассейнов может быть сделано в 'раундов ", чтобы отразить местную частоты отдельных серотипов (например, путем проверки на трех наиболее вероятных бассейнов на первом слайде Если положительная реакция не получается, то тест Следующие три, скорее всего, из оставшихся бассейнов на втором слайде, и так далее, пока не будет получена положительная реакция). Это гарантирует, что наиболее распространенные серотипы испытания первого, минимизируя время и реагенты, необходимые.
  11. Использование ключа антисыворотки производителя определить, какие конкретные антисыворотки представлены в положительном бассейна.
  12. Тестирование каждой из групп или типов, содержащихся в положительном бассейне по отдельности, чтобы определить "Группа" или "тип", как в шагах 4,1 до 4,8 выше.
  13. Определите результат на ссылкой на ключ Антисыворотка производителя. Если «тип» определяется (например, серотипа 5), то дальнейшие испытания не требуется, и этот результат записывается.
  14. Если «группа» определяется (например, группа 19), то обратитесь к ключу производителей, чтобы определить факторы, которые будут опробованы. Продолжить тестирование с отдельными "фактор" латексных реагентов и определения окончательного серотип (например, серотипа 19В).

Representative Results

Положительная реакция латекс имеет место, когда тип-специфическое антитело прикрепляется к латексной частицы связывается с капсулой пневмококка и агглютинации частиц в антитело, меченное наступает 15. показывает положительную реакцию, которая характеризуется видимой агглютинации и очистки фоне подвеска. Отрицательная реакция характеризуется латекс агглютинации реагента оставшейся гладкой и белой (фиг.1В) суспензии. Реагенты оптимизированы таким образом, что положительная реакция следует соблюдать до конца временного интервала одним мин (обычно обнаруживаемого в приблизительно 20 сек). Мы не рекомендуем читать реакции после временного интервала 1 мин. Очень редко, реакции отображения слабую агглютинацию вокруг края капли, которая не сопровождается, очистив фонового приостановления или появляются "тягучий" без фоновой очистки (данные не представлены). Это самые как LY негативные реакции. В таких случаях мы рекомендуем повторное тестирование и / или дальнейшего расследования, используя другой метод серотипирования (например реакции Quellung 17).

Рисунок 1
Рисунок 1. Положительные и отрицательные реакции латекс агглютинации. Препараты пневмококковой изолировать смешивают с латексом агглютинации реагента, показывая положительную реакцию (А) или отрицательную реакцию (B). Агглютинация сопровождается очистки фоне видится в позитивной реакции (А) .There не видно агглютинации с отрицательным контроль латексной реагента или в негативной реакции теста (B). Фотографии 8 используется с ее разрешения."Целевых =" _blank "> Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Discussion

Латекс агглютинации является простой, быстрый и недорогой метод для пневмококковой серотипирования. Коммерческие пневмококковых латекс агглютинации реагенты доступны, но они в настоящее время не проводится различия все известные пневмококковой серотипы 10,12. Однако, латекс агглютинации реагенты могут быть легко получены в доме с помощью приобрели антитела на конкретных пневмококковых капсульных антигенов. В способе, описанном здесь, антитела пассивно прикреплен к латексных частиц, чтобы сделать набор реагентов латексной агглютинации.

Положительная реакция латекс происходит, когда специфические антитела, связанные с частицами латекса придают антигенов на полисахарид капсулы из пневмококковых изолировать 18,19. Частицы латекса, прикрепленные к антителам позволяют специфическая реакция антиген-антитело, чтобы быть визуализированы без увеличения.

Латекс агглютинации является подходящим методом для высокой пропускной лабораторий апD также для ограниченными ресурсами. Основные преимущества метода латекс агглютинации в том, что никакое специализированное оборудование не требуется для выполнения теста, реагенты имеют срок годности не менее 2 лет при хранении при 4 ° С 8, и что это недорого, просто и быстро выполнить. Серологическое типирование пневмококковой изолят на латексной агглютинации занимает около 10 мин, и до четырех латексные реагенты могут быть проверены параллельно на одном слайде. Кроме того, если распространенность серотипов известен соответствующий эпидемиологического, тестирование может быть выполнено в раундах, начиная с бассейнов, содержащих наиболее распространенных серотипов аналогично испытанию Quellung 17. Такой подход снижает количество тестов, необходимых для определения серотипа. Способ также высокой воспроизводимостью между различными операторами (данные не показаны). Недостатком латекс агглютинации серотипирования в том, что производство реагентов требует больших затрат времени, с приблизительно 4 ч; хотя многократного reageНТС могут быть легко получены параллельно. Кроме того, некоторые антигены, являются общими для различных серотипов пневмококков, в результате чего перекрестных реакций с некоторой антисыворотки (например, серотипа 29, 42 и группа 35). Тем не менее, эти перекрестные реакции хорошо охарактеризованы при использовании коммерческого антисыворотки (который, как правило, предварительно адсорбированный для удаления более проблематичным перекрестно реагирующих антител) и дополнительные таблицы реакции, при условии, производителем для того, чтобы различать, который присутствует серотипа. Латекс реагенты могут также пересекать реагировать, если антитела не выровнены латексных частиц; они определяются как КК неудач. По нашему опыту, строгий контроль качества является залогом успеха этого метода, даже если имеющиеся в продаже антисыворотки используются для производства. КК занимает примерно 15 мин для каждого реагента и зависит от набора соответствующего QC изолятов, как описано выше.

Метод, описанный здесь приводит реагентов, которые дают положительную реакцию также Wiтонкий тестовый период. По нашему опыту, ложных срабатываний редки в практике (данные не представлены). Наблюдаются Иногда ложные негативные реакции; обычно они касаются известных проблем с конкретной антисыворотки (например, серогруппы 6 изоляты не может реагировать с бассейном B антисыворотки), или вниз регуляции экспрессии капсулы по изолята. Использование серотипирования algrorithm, предоставляемая производителем Также важно, как и в большинстве случаев ложный положительный или отрицательный реакция приведет к "слепой конец 'результате. В этих случаях, и когда реакции трудно интерпретировать, мы рекомендуем повторить тестирование и / или тестирование с помощью альтернативного способа, таких как реакции Quellung.

Некоторые устранение неисправностей иногда требуется сделать удовлетворительные латексные реагенты. В способе, описанном здесь, антитело прикрепляется к латексных частиц с помощью пассивной адсорбции 15,19, таким образом, является критической переменной концентрации антител использовали, который определяет, насколько хорошоповерхность латексных частиц покрыта и последующее выравнивание антител активных участков 15,20. Следовательно, если слишком мало или слишком антитело присоединены к латексных частиц, что реакции антиген-антитело не будет оптимальным, и неудовлетворительные реагенты могут быть получены 15,20,21. Как титры антител варьироваться между различными партиями антисыворотки, стандартный набор разведения не могут производить реагенты, которые хорошо 8. В качестве отправной точки использовать разбавление антисыворотки 1:40, и если это не удается, разбавить антисыворотки дальше. По нашему опыту это обычно решает проблему 8. В небольшом количестве случаев реагенты могут показать слабую агглютинацию, что не сопровождается очистки суспензии, при проверке с целевой изолирует. В этих случаях разбавление антисыворотки не улучшает качество реагента, но, как правило, удовлетворительные реагенты могут быть получены путем исключения центрифугирования и промывки шаги 8,22

, Покрытых антителом, частицы латекса обычно используются в диагностической микробиологии для обнаружения, идентификации или серотипирования различных микробов 15,20. Таким образом, способ, описанный здесь, может быть пригоден для получения латекса реагенты для других целей, при условии, пригодны антисыворотки доступен, и соответствующие процедуры КК принимаются.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Microparticles based on polystyrene, 800 nm Sigma 65984-10 ml-F Or other volumes as required
Normal rabbit serum Antibodies Australia  NRS-1ml Or other volumes as required, bring to RT before use
Pneumococcus (Neufeld) antisera SSI Diagnostica Various Bring to RT before use
http://www.ssi.dk/ssidiagnostica
Sterile Bovine Albumin  Sigma A-4503 Bring to rRT before use
Sodium azide 10% (v/v) solution  VWR International ROAC3902/100ml Caution: hazardous if inhaled; skin and eye irritant
Eppendorf Safe-Lock tubes, 2 ml Eppendorf 0030 120.094 Round bottom
Sodium chloride Merck 10241.AP
Calibrated disposable inoculating loops 1 µl Copan CD175SO1
Glass microscope slides 76 mm x 26 mm Thermo Fisher Scientific LBS 2950RC
5 M NaOH BDH 10252 Caution: highly corrosive
Glycine Merck 10119.05
Horse Blood Agar (HBA) plates Thermo Fisher Scientific PP2001 Bring to RT before use
http://www.thermofisher.com.au
Rotating wheel Wyble Engineering Development Corporation
Polystyrene flat bottom screw cap tube, 5 ml Technoplas S5016SU
60 ml syringes without needles Terumo SS-60L
Millex-GP syringe filter unit, 0.22 µm Merck Millipore SLGP033RS
Brochure on Neufeld antisera Statens Serum Institut Key to determining serotypes
http://www.ssi.dk/ssidiagnostica
Key to pneumococcal factor serum Statens Serum Institut 18058 For determining serotype within Groups
http://www.ssi.dk/ssidiagnostica
*alternative sources are available for most materials

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Rudan, I., et al. Epidemiology and etiology of childhood pneumonia in 2010: estimates of incidence, severe morbidity, mortality, underlying risk factors and causative pathogens for 192 countries. J Glob Health. 3, (10401), (2013).
  2. O'Brien, K. L., et al. Burden of disease caused by Streptococcus pneumoniae in children younger than 5 years: global estimates. Lancet. 374, 893-902 (2009).
  3. Henrichsen, J. Six newly recognized types of Streptococcus pneumoniae. J Clin Microbiol. 33, 2759-2762 (1995).
  4. Hausdorff, W. P., Bryant, J., Paradiso, P. R., Siber, G. R. Which pneumococcal serogroups cause the most invasive disease: implications for conjugate vaccine formulation and use, part I. Clin Infect Dis. 30, 100-121 (2000).
  5. Mulholland, K., Satzke, C. Serotype replacement after pneumococcal vaccination. Lancet. 379, 1388-1389 (2012).
  6. Weinberger, D. M., Malley, R., Lipsitch, M. Serotype replacement in disease after pneumococcal vaccination. Lancet. 378, 1962-1973 (2011).
  7. Satzke, C., et al. Standard method for detecting upper respiratory carriage of Streptococcus pneumoniae: Updated recommendations from the World Health Organization Pneumococcal Carriage Working Group. Vaccine. (2013).
  8. Ortika, B. D., Habib, M., Dunne, E. M., Porter, B. D., Satzke, C. Production of latex agglutination reagents for pneumococcal serotyping. BMC Res Notes. 6, (49), (2013).
  9. Adegbola, R. A., et al. Serotype and antimicrobial susceptibility patterns of isolates of Streptococcus pneumoniae causing invasive disease in The Gambia 1996-2003. Trop Med Int Health. 11, 1128-1135 (2006).
  10. Slotved, H. C., Kaltoft, M., Skovsted, I. C., Kerrn, M. B., Espersen, F. Simple, rapid latex agglutination test for serotyping of pneumococci (Pneumotest-Latex). J Clin Microbiol. 42, 2518-2522 (2004).
  11. Turner, P., et al. Improved detection of nasopharyngeal cocolonization by multiple pneumococcal serotypes by use of latex agglutination or molecular serotyping by microarray. J Clin Microbiol. 49, 1784-1789 (2011).
  12. Mudany, M. A., Kikuchi, K., Totsuka, K., Uchiyama, T. Evaluation of a new serotyping kit for Streptococcus pneumoniae. J Med Microbiol. 52, 975-980 (2003).
  13. Lalitha, M. K., et al. Serotyping of Streptococcus pneumoniae by agglutination assays: a cost-effective technique for developing countries. Bull World Health Organ. 74, 387-390 (1996).
  14. Shutt, C. K., Samore, M., Carroll, K. C. Comparison of the Denka Seiken slide agglutination method to the quellung test for serogrouping of Streptococcus pneumoniae isolates. J Clin Microbiol. 42, 1274-1276 (2004).
  15. Gella, F., Serra, J., Gener, J. Latex agglutination procedures in immunodiagnosis. Pure Appl Chem. 63, 1131-1134 (1991).
  16. Pneumococcus Key to S. pneumoniae types and pneumococcal diagnostic antisera. SSI Diagnostica. Available from: http://www.ssi.dk/ssidiagnostica (2013).
  17. Habib, M., Porter, B. D., Satzke, C. Capsular serotyping of Streptococcus pneumoniae using the Quellung reaction. J. Vis. Exp. (84), (2014).
  18. Arai, S., et al. Use of antiserum-coated latex particles for serotyping Streptococcus pneumoniae. Microbiol Immunol. 45, 159-162 (2001).
  19. Lafong, A. C., Crothers, E. Simple latex agglutination method for typing pneumococci. J Clin Pathol. 41, 230-231 (1988).
  20. Ortega-Vinuesa, J. L., Bastos-Gonzalez, D. A review of factors affecting the performances of latex agglutination tests. J Biomater Sci Polym Ed. 12, 379-408 (2001).
  21. Yap, K. L. Development of a slide latex agglutination test for rotavirus antigen detection. Malays J Pathol. 16, 49-56 (1994).
  22. Severin, W. P. Latex agglutination in the diagnosis of meningococcal meningitis. J Clin Pathol. 25, 1079-1082 (1972).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics