相关光学和电子显微镜,研究与β淀粉样蛋白斑块的小神经胶质互动

* These authors contributed equally
Neuroscience

Your institution must subscribe to JoVE's Neuroscience section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

本文介绍了使用甲氧基X04,它穿过血 - 脑屏障,并选择性地结合β褶的致密核心斑块Aβ发现张在阿尔茨海默氏症小鼠模型可视化淀粉样蛋白斑块Aβ的协议。它允许的前免疫染色和处理电子显微镜含斑块组织切片预检。

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Bisht, K., El Hajj, H., Savage, J. C., Sánchez, M. G., Tremblay, M. È. Correlative Light and Electron Microscopy to Study Microglial Interactions with β-Amyloid Plaques. J. Vis. Exp. (112), e54060, doi:10.3791/54060 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

详细协议这里提供给前从阿尔茨海默氏病小鼠模型中确定在脑切片的淀粉样蛋白的Aβ斑块的预嵌入免疫染色(特别为离子化的钙结合衔接分子​​1(IBA1),由小胶质细胞中表达的钙结合蛋白)和组织处理电子显微镜(EM)。甲氧基X04是荧光染料跨越血 - 脑屏障和选择性结合在致密核心的Aβ斑块中发现β-打褶纸。用甲氧基X04动物注射前牺牲和脑定影允许预筛分和含斑块的脑切片进行进一步的处理与费时的操作的选择。研究可能含有非常少的斑块,本仅在部分的一小部分的特定的脑区域或层内早期AD病理时,这是特别有帮助。刚果红,硫磺素S和Thiofl组织切片的验尸处理AVIN T(或者甚至与甲氧基X04)可以标记β-折叠片,但需要用乙醇广泛清算去除多余的染料和这些程序与超微结构保存不兼容。它也将是低效率的,以对Aβ(和其它细胞标记诸如IBA1)对感兴趣的区域的所有的脑切片进行标记,只得到含有的Aβ斑块在合适位置的一小部分。重要的是,Aβ斑块仍然可见的EM组织处理后,允许对区域的精确识别(一般下降到几平方毫米),用电子显微镜检查。

Introduction

淀粉样蛋白的Aβ斑块的形成是阿尔茨海默氏病(AD)的主要神经病理学特征。然而越来越多的证据表明,在疾病进展1,2-免疫系统的重要的作用。特别是,从临床前和临床研究的新的数据建立的免疫功能障碍为主要驱动和贡献者AD病理学。有了这些发现,中枢及外周免疫细胞已成为有前途的治疗靶点AD 3。以下方案结合了光学和电子显微镜(EM),以产生新的见解的Aβ斑块沉积和在公元小胶质细胞表型改变之间的关系。该协议允许的Aβ斑块在AD小鼠模型中使用荧光染料甲氧基X04的体内注射的标记。甲氧基X04是,可以很容易穿越血 - 脑屏障进入脑实质并结合以高的β型褶片材的刚果红衍生物ffinity。因为染料是荧光的,它可用于Aβ斑块沉积的体内检测用双光子显微镜4。一旦绑定到Aβ,甲氧基X04不会离解或斑块重新分配了,而且随着时间的推移保留其荧光。它一般给药外周,以允许大脑动力学5的非侵入性成像。荧光也保持以下醛固定,允许相关验尸分析,包括在Aβ斑块6附近的神经元死亡的调查。

这个协议利用甲氧基X04的性质来选择由APP SWE / PS1A 246E小鼠脑切片(APP-PS1;共表达在APP基因Lys670Asn / Met671Leu一个双突变,和人类早老PS1-A264E变体)表现出Aβ7感兴趣的特定区域(海马CA1,地层radiatum和腔隙,moleculare斑)预嵌入对小胶质细胞标记钙离子结合适配器分子1(IBA1免疫)可视化小胶质细胞机构和EM进程之前。将小鼠通过穿心灌注给定的甲氧基X04溶液,脑定影前24小时腹膜内注射。使用振动得到冠状脑切片。含有海马CA1节为Aβ斑块在地层radiatum和腔隙-moleculare存在下在荧光显微镜下进行筛选。免疫染色IBA1,四氧化锇后固定,塑料树脂包埋在所选脑切片随后进行。在该协议的结束时,部分可以在没有进一步的超微结构降解被存档,准备超薄切片和超微结构检查。重要的是,斑块仍与不同的抗体的免疫染色,例如IBA1如在本协议之后荧光。他们变得更暗Ť汉其周围神经毡以下锇酸后固定,独立地甲氧基X04染色,这有助于准确地识别感兴趣的区域,一般下降到几平方毫米,以用透射电子显微镜进行检查。

这种关联方法提供了一个有效的方式来确定具体的脑切片在超微结构层面来考察。研究早期AD病理学,特定脑区域或层内,可能只包含几个Aβ斑块中,存在于只有组织切片的一小部分时,这是特别有帮助。在这些时候尤其,这将是低效率的用于Aβ免疫染色(和双标记用于其它细胞标记诸如IBA1)在几个脑切片简单地,得到含有的Aβ斑块在合适位置的一小部分。此外,注射活体小鼠与甲氧基X04牺牲和组织处理没有做之前,仲裁协议Ë超微结构保存。替代方法,如刚果红,硫磺素S,硫黄素T或甲氧基X04验染色固定组织切片需要乙醇染色分化,8-11导致渗透压和破坏的超微结构。刚果红也是已知的人类致癌物质12。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

注:所有实验均批准并根据机构的动物伦理委员会的指导方针与加拿大议会关于动物饲养的准则进行的,符合由拉瓦尔大学的动物护理委员会的管理。使用了4至21个月的年龄之间的APP-PS1雄性小鼠。 25℃,免费获得食物和水 - 这些动物在22一12小时明暗周期下安置。

1.甲氧基X04溶液制备

  1. 由甲氧基X04溶解于含有10%二甲基亚砜(DMSO),45%丙二醇和45%磷酸钠缓冲盐水(在100mM磷酸缓冲液的0.9%NaCl溶液制备甲氧基X04 9的5毫克/毫升溶液,pH值7.4)。
    1. 使用微量天平,称量5毫克甲氧基X04化合物。根据通风橱,溶解甲氧基X04 DMSO中,并搅拌,直到获得澄清绿色溶液。依次添加丙二醇和ph值而与每个另外搅拌osphate缓冲盐水。
    2. 搅拌在4℃旋转器上O / N的解决方案。获得黄绿色乳液。可以将溶液储存在4℃下长达两个月没有降解。

2.甲氧基X04注射液

  1. 灌注前24小时,称重小鼠,并给各小鼠甲氧基X04的腹膜内注射,剂量为使用27个半ģ针10毫克/公斤体重。

3.注射的小鼠的穿心灌注

  1. 在灌注前一天,制备磷酸盐缓冲盐水(PBS),3.5%的丙烯醛,和4%低聚甲醛(PFA)的解决方案13的适当体积,并将其存储在4℃CO / N。
    注意:这些解决方案将同时用于灌注和预嵌入免疫。与丙烯​​醛工作时要特别小心,因为它是有腐蚀性和有毒既研究人员和环境。此外,由于丙烯醛具有腐蚀性塑料,一定要使用合适的玻璃器皿准备丙烯醛的解决方案。
  2. 上灌注的当天,通过用25微米的颗粒截留的粗滤纸过滤PFA和丙烯醛。
  3. 在灌注,使用蠕动泵以提供15毫升PBS中,75毫升丙烯醛,和150ml的PFA依次到小鼠循环,以25毫升/分钟的流速。
    谨慎使用。严格执行灌注在通风橱内,以避免PFA和丙烯醛的有害烟雾。
    1. 要设置泵,一端插入PBS液,补油管(持有约15毫升),用PBS和修复将25g翼采血针的另一端。在任何时候,要确保管道是任何截留气泡免费。
    2. 直接放置在管中的丙烯醛瓶设置填充用PBS油管灌注泵后。
  4. 一个在腹膜内用27个半ģ针注射90毫克/公斤体重的剂量戊巴比妥钠的时间aesthetize一个鼠标。评估尾/脚趾捏响应。只有继续当鼠标不响应这样的厌恶,对疼痛刺激。
  5. 用胶带前爪和后爪到工作表面固定在仰卧位(躺在用面向上的背面)的小鼠,并仔细暴露心脏,而不会造成损害其他器官。一定要刺破隔膜后迅速开展工作。
    1. 通过与沿尾开始向胸腔胸中线手术剪皮肤进行切口,并继续喙到锁骨。
    2. 让另外两个侧面切口,沿腹胸腔的基础。轻轻移动和脚皮肤的两片,确保暴露了整个胸腔。
    3. 保持钝钳剑突暴露胸腔和稳固尖剪刀秒。通过隔膜和胸腔切开,小心避免刺穿肺部,并继续切口喙锁骨。一定要刺破隔膜后迅速开展工作。
  6. 轻轻撕钝钳心包囊。按住心脏稳定钝钳,剪开右心房,并开始PBS输液。立即将采血针进入左心室。
  7. 灌注用PBS小鼠(在管道),随后丙烯醛3分钟(相当于75毫升),然后切换到的PFA为6分钟(相当于150ml)中。务必切换解决方案,以防止气泡进入管之前暂停泵的流量。
  8. 斩首鼠标和提取固定脑并直接将其放入含有4%PFA中至少2小时,在4℃的玻璃小瓶中。
    1. 以提取大脑,用剪刀和镊子通过皮肤切割以暴露颅骨。小心打破头骨运烯在眼睛之间,并且削掉小块它以暴露下面的大脑。
    2. 为继续切片vibratome之前,小心地取出大脑暴露和后修复它用4%PFA额外2小时。

4.脑切片使用振动

  1. 用冷PBS洗涤固定大脑的3倍。用锋利的剃刀刀片,取出嗅球(除非该区域是调查中)和横向切脑入2 - 3个大致相等的高度,所有这些可以同时以加速的程序进行切片。
  2. 胶脑组织块垂直固定上放入盘试样板。确保切面光洁坚定奉行样品板和切片过程中不会被抛下。补充足够的PBS液入盘,直到整个大脑表面被完全淹没。重要的是保持个很重要Ë脑片和其后的章节完全沉浸在PBS在整个这一步。
  3. 放置在托盘中的vibratome,调节切片速度为0.5mm /秒,切片频率90赫兹,和进料厚度至50μm,以收率50微米厚的切片。然后将切片转移到使用细画笔含有冷冻保护剂溶液(40%的PBS,30%乙二醇和30%甘油)中加入20毫升玻璃小瓶中。在-20°C,直到进一步使用存放小瓶。可替代地,如在以下步骤中所述保持部分在PBS立即筛选。

5.第筛选甲氧基X04染斑的存在

  1. 用立体鼠脑的援助寰含有感兴趣的区域14中,选择脑切片,例如,如在本实施例中使用的海马CA1区。将每个部分插入一个孔含有足够的冷冻保护剂溶液中的24孔培养板内以便防止从晒出部分。
  2. 检查每个部分依次,以避免干燥的部分中,使用以下步骤:
    1. PBS中的液滴添加到与一次性吸显微镜载玻片,并将其放置在液滴的部分。
    2. 检查在荧光显微镜下的部分以鉴定含有甲氧基X04标记的Aβ斑块的区域。
      注意:甲氧基X04可使用荧光紫外(UV)滤光器(激发340 - 380纳米)容易地可视化。
  3. 捕获荧光模式的明视场兴趣区域(ROI)的图像以及不移动显微镜载物台,由于每个图像必须以直接相关的结构区域中的斑块的存在表明在这两个领域的相同区域组织切片。
  4. 保存并命名根据动物的数量拍摄的图像。也记录在该板的孔数和画面的TA领域肯。例如,例:9978A1B;动物编号:9978;井数:A1;现场:明亮。放置部分放回其指定以及一旦成像完成。
    注意:在结束时,对检查的每个部分中,获得两个图象,一个在明场和另一个在紫外领域。
  5. 根据公号码打开相同的ROI中的Image J两个图像(一个在明场,另一个在紫外域),以及使用该MosaicJ插件,对准两个图像的边缘,并保存对齐并组合图像它来自。
  6. 与特定动物的数量将图片保存在一个单独的文件夹中。结合图像来识别和定位在组织部分中的斑块,并具有在两个不同场(亮和UV)全部的完整视图。
  7. 筛选过程完成后,在-20℃存储检查切片在含有冷冻保护剂24孔培养板,直至免疫染色或进一步加工为Carried出来。

6.预嵌入免疫染色IBA1

注:通过将平板上在室温下缓慢移动摇杆为IBA1执行免疫上选择自由浮动的部分。

  1. 彻底大约1ml的PBS,每次洗涤持续10分钟,洗第3次。
  2. 淬火用10分钟的PBS溶液0.3%的过氧化氢的内源性过氧化物酶。此步骤防止非特异性过氧化物酶活性,以避免背景染色这是重要的。
  3. 洗组织在PBS中3次,每次10分钟。
  4. 孵育在PBS溶液中的0.1%的硼氢化钠的部分30分钟。这个步骤是重要的,以减少从固定步骤中的任何剩余的醛,并且如果丙烯醛在组织固定使用是特别重要的。
  5. 洗PBS 3倍组织,每次10分钟,并确保消除所有的泡沫。
  6. 阻断部分1小时。不同的抗体,可能需要不同的阻挡时间和解决方案。为IBA1,制备阻断含有10%胎牛血清,3%牛血清白蛋白和0.01%的Triton X-100的50mM Tris缓冲盐水缓冲液(TBS; pH7.4)中。
    注意:阻断步骤是为了防止第一抗体的非特异性结合。的Triton X-100的低浓度允许更好染色膜的轻微透,并足够低以保持下的EM组织的最超微结构特征。
  7. 从组织去除封闭缓冲液,并在一次抗体溶液孵育(兔抗IBA1,稀释[1:1000]在封闭缓冲液)于4℃CO / N。
  8. 在TBS中洗3次,每次10分钟。
  9. 孵育在二次抗体(山羊抗兔缀合于生物素)[1:200]在0.05M TBS 90分钟。
  10. 在TBS中洗5次,每次5分钟。
  11. 孵育在抗生物素蛋白 - 生物素复合物溶液(抗生物素蛋白[1:100],生物素[1:100])的TBS解1小时。
  12. 在TBS中洗5次,每次5分钟。
  13. 揭示了用0.05%二氨基联苯胺(DAB)和在TBS中的0.015%的过氧化氢为8分钟的IBA1染色。
    注:DAB发展的时机可能会有所不同的协议,以协议,应该由快速检查光显微镜下染色的切片来确定。
    注意:对于IBA1,应该能够在20X清楚地显现IBA1染色小胶质细胞的细胞体和过程(参见图2为代表例)。请谨慎采用DAB,因为它是一种已知的致癌物质。
  14. 避免由在此步骤中仔细监测部分(如上所述)过显影。通过洗涤段中冷冻PB 5次,每次5分钟,使反应停止。

7.处理电子显微镜

  1. 准备在玻璃小瓶中在PBS的1%四氧化锇溶液中。四氧化锇是感光;覆盖的G用铝箔小姑娘小瓶,以保护从光的解决方案。
    要谨慎使用四氧化锇,因为它是一个非常危险的化学品。执行此并在通风橱内的以下步骤。
  2. 从部分删除PBS和平板用细的画笔传播他们。在一个时间执行此步骤一个阱,以保持部分干燥。一定立即加入四氧化锇,如在章节任何褶皱将成为永久性的,试图弄平组织交锇固定只会破坏部之前变平的部分。
  3. 沉浸在四氧化锇的部分在RT下30分钟后,在用移液管每次添加四氧化锇一滴,防止部分从折叠。用铝箔覆盖井,以保护部分从光。
    注意:此步骤修复段内的脂类。该组织会出现锇后固定后非常黑暗。
  4. 虽然部分是在锇tetro西德,通过将20 G成分中的A的一次性烧杯制备塑料树脂,将20g的组分B,0.6 G分量℃,和0.4g组分D.的分量组合在一起以上述顺序和用10ml的血清吸管以及它们混​​合直至得到均匀的颜色。
  5. 准备好的混合物转移到铝称重菜肴。它们将接收到的组织切片一旦被脱水。
  6. 脱水在增加的乙醇浓度为2分钟以下顺序的部分:35%,35%,50%,70%,80%,90%,100%,100%,100%。
  7. 对于每次2分钟除去残留的乙醇,在环氧丙烷浸入第3次。除去从24孔培养板中的脱水区段20毫升玻璃小瓶中。与环氧丙烷时,它溶解塑料总是使用的玻璃小瓶,并保持谨慎,因为这是危险的。
  8. 使用热弯玻璃枪头,或罚款的画笔传递由环氧丙烷soluti的章节在进入树脂和离开O / N渗透在室温。要小心,不要稀释环氧丙烷的树脂。
  9. 嵌入与聚氯三氟乙烯(PCTFE)filmsheets树脂中的部分:
    1. 放置装有样品的铝称重菜到50 - 60℃的烘箱中进行10 - 之前嵌入上PCTFE filmsheets切片15分钟。
    2. 当嵌入部分,用一个铝在一次称量皿工作。用细画笔,涂料树脂的薄层到一个PCTFE膜片。
    3. 动组织的一个部分在从铝称重盘的PCTFE膜片的时间。来自各地的组织去除多余的树脂,小心不要去打扰它。
    4. 所有章节从一个移动称重盘到PCTFE薄膜片后,将第二PCTFE板在第一,创造组织的三明治和2片之间树脂英寸
  10. 聚合在培养箱的树脂3天55 - 60℃。
  11. 该材料现在准备超薄切片和超微结构检查,这往往是由EM核设施进行专门的技术。存储在RT安全PCTFE膜片之间的样品没有超微结构降解。
    注意:超薄切片透射电子显微镜检查后续的步骤在单独的协议13进行说明。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

此部分示出了可以在协议的不同的关键步骤得到的结果。特别是,结果显示含有在特定区域甲氧基X04染色斑块和感兴趣的层的脑切片的例子:海马CA1区,地层radiatum和腔隙-moleculare。的斑块和海马区域/层状组织使用UV和亮场滤波器( 图1)的组合依次显示。所选的脑切片随后免疫染色并处理的EM同时跟踪其的Aβ斑块的,考虑到它们仍然荧光以下免疫染色,并在与四氧化锇和嵌入( 图1)治疗变得比周围神经纤维更暗。这允许人们识别区域(通常几平方毫米)的基础上LOCA用电子显微镜检查斑块化。此外,对于与IBA1小胶质细胞的嵌入预免疫染色的改进的协议被说明。该协议产生的小胶质细胞体,大大小小的过程( 图2)的脑切片中的一个特殊的可视化以及抗体的渗透。因此,它有利于小胶质细胞体和过程中的超微结构水平的鉴定,以及它们与Aβ斑块( 图3和4)相互作用的研究。

图1
图1.光镜,继荧光染料甲氧基X04,AB的系统性注射21个月大的APP-PS1小鼠Aβ斑块可视化 ),使用明场和荧光模式之一的海马部分的双重成像。各地区和利益层在明亮的可视化领域380纳米(B) - (A)和Aβ斑块使用UV滤光在一系列340依次本地化。 CD)的另一海马部分的双重成像前(C)和后(D)的预嵌入免疫染色IBA1,接着在四氧化锇,脱水的乙醇后固定,并根据需要进行透射电子显微镜在一个塑料树脂包埋。应当注意,斑块(由虚线包围)是在组织处理用于电子显微镜仍然可见。修整组织块时可视化斑块允许在高空间分辨率的区域的精确选择到的图像。比例尺= 300微米A和B,150微米C和D. 请点击此处查看该图的放大版本。

图2
图2.六在21个月大的APP-PS1小鼠通过IBA1染色在光镜级别的小神经胶质细胞体和精细的工序的sualization。 IBA1染色小胶质细胞的AB)的实例示出当它们与Aβ斑块(用甲氧基X04的相关荧光成像标识相关联的群集分布;如四氧化锇后固定和塑料树脂包埋之前观察到由虚线包围)。四氧化锇后固定和塑料树脂包埋后Aβ斑块相关IBA1染小胶质细胞的CD)的例子。请注意,斑块变得比其下面锇后固定周围神经纤维变深,从而使他们的位置跟踪。比例尺= 250微米。 请点击此处查看该图的放大版本。

060 / 54060fig3.jpg“/>
图3.Aβ斑块和IBA1免疫染色在超微结构水平。A)通过其紧凑的结构纤维公认的致密核心Aβ斑块例6个月大的APP-PS1小鼠 (见插图的双重可视化 ),并与协会轴突营养不良自噬的超微结构特点。乙IBA1染小胶质细胞的过程(米)的例子;在紫色的)附近发现含有淀粉样蛋白沉积的Aβ斑块。线粒体的改变(由星号表示)也可以在小胶质细胞过程中看到。应当指出,这个图象是在组织树脂边界获得(白色,在画面的右边),其中的抗体与染色强度的渗透是最大的。比例尺= 2微米的A,1微米为B. 请点击此处查看该图的放大版本。


图4.附加IBA1 -小胶质细胞的免疫染色在6个月大的APP-PS1小鼠观察到从组织边界的树脂获得更远IBA1染的小神经胶质细胞体和进程(米)的透射电子显微镜,AD)的例子例子 ,显示了抗体的一个极好的渗透和染色强度使用此协议的部分内更深。 BV =血管,D =枝蔓,在列入=,S =树突棘,T =轴突终末。该箭头显示突触间隙。比例尺= 1微米。 请点击此处查看该图的放大版本。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

该协议解释了使用EM针对致密核心Aβ斑块相关办法。甲氧基X04 体内注入允许包含特定区域内的Aβ斑块和感兴趣的层,例如海马CA1区,地层radiatum和腔隙-moleculare脑切片的快速选择。在本例中,甲氧基X04预检用嵌入预免疫染色IBA1研究小神经胶质表型如何不同与在致密核心的Aβ斑块的存在超微结构水平突触相互作用结合。

小胶质细胞是令人难以置信的响应他们的环境和他们的炎症活动已经长期研究中破坏正常的大脑功能,增强AD的进步的情况下。特别是,这些细胞中的神经变性过程中有牵连,由于其广泛的活化和促炎细胞因子的释放,导致CHRONIC神经炎症,和正常脑组织的破坏动态平衡15。近年来,然而,也显示这些驻留的免疫细胞积极改造神经元回路中的健康脑,导致新的致病机制16,17鉴定。他们在突触生理作用可能在公元神经炎症期间成为失调,造成加剧突触的损失,目前的在各种神经退行性疾病18,19认知能力下降的最佳病理相关。

到前预嵌入IBA1染色法13条作出的修改现在允许在超微结构水平穿过脑切片的抗体的更好的渗透,以及小胶质细胞体和精细处理的可视化。总体而言,该协议需要严格从小鼠灌注直至组织切片的塑料树脂包埋进行,考虑到超微结构降解在任何在中间步骤产生的可能损害细胞膜,细胞器,细胞骨架元件的完整性。

无需任何免疫染色可以执行这个协议(通过省略第6节),以完全显现致密核心的Aβ斑块,但它也提供了一个有力的工具来研究AD发病的复杂机制,关系到Aβ沉积,因为不同的抗体可被用来着眼于不同的细胞类型,包括外周源性巨噬细胞,内源性小胶质细胞,星形胶质细胞,少突胶质细胞和它们的前体细胞,以及许多神经元亚型。

考虑甲氧基X04 的体内注射,该协议不能被固定脑切片进行的,这就排除了与验尸人脑样品。另外,反之,以针对Aβ免疫染色哪些标签的Aβ可溶性和不溶性形式,结合于染料的使用β褶小号HEET蛋白质结构,例如甲氧基X04只允许致密核心斑块,这构成另一种限制的可视化。

然而,重要的应用可以包括学习小胶质细胞和其它各种细胞类型,其重叠和增加他们的活动,并有可能对斑块动态平衡和神经元功能超过AD病理​​学的过程中的直接作用的角色。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Methoxy-X04 Tocris Bioscience 4920 10 mg substrate per tablet
Propylene glycol Sigma Aldrich W294004 
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Fisher BioReagents BP231-1 Caution: toxic
Sodium Chloride NaCl Sigma S9625
Sodium phosphate monobasic monohydrate Sigma S9638
Sodium phosphate dibasic Sigma S0876
Tris Hydrochloride Fisher BioReagents BP153500
Acrolein Sigma 110221 Caution: Toxic
Paraformaldehyde Granular Electron Microscopy Sciences 19210 Caution: Toxic
Filter paper Fisher 09-790-14F
Peristaltic Pump with Tubing ColeParmer cp.78023-00
Excel Winged blood Collection Set Needles 25 G Becton Dickinson 367341
Extrafine Forceps F.S.T 11152-10 Tip shape: curved
Scissors F.S.T 14090-09 Tip shape: straight
Hartman Hemostats F.S.T 13003-10 Tip shape: curved
Surgical Scissors F.S.T 14004-16 Tip shape: straight
Micro Dissecting Scissors ROBOZ surgical store 5818
Glass scintillation vials Fisher Scientific 74515-20
Vibrating Blade Microtome Leica VT1000 S Leica Biosystems  14047235612
Vibratome blades Electron microscopy Sciences 71990
Microscope Slides Fisher Scientific 12-550-15
24-well Tissue Culture Plates Fisher Scientific 353047
Ethylene Glycol Fisher BioReagents BP230-4
Glycerol Fisher BioReagents BP229-4
Hydrogen Peroxide, 30% J.T.BAKER cat: 2186-01
Sodium borohydride Sigma 480886
Tris HCl Fisher BP153-500ML
Fetal bovine Serum (FBS) Sigma Aldrich F1051
Bovine serum albumin (BSA), fraction V Thomas Scientific C001H24
Triton X-100 Sigma T8787
Anti IBA1, Rabbit  WAKO 019-19741
Goat Anti-Rabbit IgG Jackson Immunoresearch 111066046
VECTASTAIN Elite ABC Kit (Standard) Vector Labs PK-6100
3.3'-Diaminobenzidine tetra-hydrochloride (DAB) Sigma D5905-50TAB Caution: toxic
Osmium tetroxide, 4% solution Electron Microscopy Sciences 19150 Caution: toxic
Durcupan™ ACM single component A Sigma 44611 Resin Caution: Toxic
Durcupan™ ACM single component B Sigma 44612 Hardener Caution: Toxic
Durcupan™ ACM single component C Sigma 44613 Plasticizer Caution: Toxic
Durcupan™ ACM single component D Sigma 44614 Accelerator Caution: Toxic
Ethanol LesAlcoolsdeComerce 151-01-15N
Propylene oxide Sigma 110205 Caution: corrosive
Aluminum weigh dishes Electron Microscopy Sciences 70048-01
ACLAR®–Fluoropolymer Films Electron Microscopy Sciences 50425
Oven/Incubator VWR

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Heneka, M. T., Carson, M. J., et al. Neuroinflammation in Alzheimer's disease. The Lancet Neurol. 14, (4), 388-405 (2015).
  2. Herrup, K. The case for rejecting the amyloid cascade hypothesis. Nat. Neurosci. 18, (6), 794-799 (2015).
  3. Heppner, F. L., Ransohoff, R. M., Becher, B. Immune attack: the role of inflammation in Alzheimer disease. Nat. Rev. Neurosci. 16, (6), 358-372 (2015).
  4. Klunk, W. E., Bacskai, B. J., et al. Imaging Abeta plaques in living transgenic mice with multiphoton microscopy and methoxy-X04, a systemically administered Congo red derivative. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 61, (9), 797-805 (2002).
  5. Liebscher, S., Meyer-Luehmann, M. A peephole into the brain: Neuropathological features of Alzheimer's disease revealed by in vivo two-photon imaging. Front Psychiatry. 3, 26 (2012).
  6. Fuhrmann, M., Bittner, T., et al. Microglial Cx3cr1 knockout prevents neuron loss in a mouse model of Alzheimer's disease. Nat. Neurosci. 13, (4), 411-413 (2010).
  7. Borchelt, D. R., Ratovitski, T., et al. Accelerated amyloid deposition in the brains of transgenic mice coexpressing mutant presenilin 1 and amyloid precursor proteins. Neuron. 19, (4), 939-945 (1997).
  8. Ly, P. T. T., Cai, F., Song, W. Detection of neuritic plaques in Alzheimer's disease mouse model. J Vis Exp. (53), (2011).
  9. Sadowski, M., Pankiewicz, J., et al. Targeting prion amyloid deposits in vivo. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 63, (7), 775-784 (2004).
  10. Bussière, T., Bard, F., et al. Morphological characterization of Thioflavin-S-positive amyloid plaques in transgenic Alzheimer mice and effect of passive Abeta immunotherapy on their clearance. Am. J. Pathol. 165, (3), 987-995 (2004).
  11. Rajamohamedsait, H. B., Sigurdsson, E. M. Histological staining of amyloid and pre-amyloid peptides and proteins in mouse tissue. Methods Mol. Biol. 849, 411-424 (2012).
  12. Afkhami, A., Moosavi, R. Adsorptive removal of Congo red, a carcinogenic textile dye, from aqueous solutions by maghemite nanoparticles. J. Hazard. Mater. (1-3), 398-403 (2010).
  13. Tremblay, M. -E., Riad, M., Majewska, A. Preparation of mouse brain tissue for immunoelectron microscopy. J Vis Exp. (41), (2010).
  14. Konsman, J. -P. The mouse brain in stereotaxic coordinates. Psychoneuroendocrinology. 28, (6), Academic Press. New York. (2003).
  15. Norden, D. M., Muccigrosso, M. M., Godbout, J. P. Microglial priming and enhanced reactivity to secondary insult in aging, and traumatic CNS injury, and neurodegenerative disease. Neuropharmacology. 96, ((Pt A)), 29-41 (2014).
  16. Tremblay, M. -E., Stevens, B., Sierra, A., Wake, H., Bessis, A., Nimmerjahn, A. The role of microglia in the healthy brain. J. Neurosci. 31, (45), 16064-16069 (2011).
  17. Šišková, Z., Tremblay, M. è Microglia and synapse: Interactions in health and neurodegeneration. Neural Plast. 2013, 425845 (2013).
  18. DeKosky, S. T., Scheff, S. W., Styren, S. D. Structural correlates of cognition in dementia: quantification and assessment of synapse change. Neurodegeneration. 5, (4), 417-421 (1996).
  19. Terry, R. D., Masliah, E., et al. Physical basis of cognitive alterations in Alzheimer's disease: Synapse loss is the major correlate of cognitive impairment. Ann. Neurol. 30, (4), 572-580 (1991).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics