Preparación y caracterización de lipofílico Doxorrubicina micelas profármaco

Bioengineering

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Summary

Un protocolo para la preparación y caracterización de doxorrubicina lipofílica profármaco cargado 1,2-sn distearoyl- glicero-3-phosphoethanolamine- N - [amino (polietilenglicol) -2000] se describe (DSPE-PEG) micelas.

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Li, F., Snow-Davis, C., Du, C., Bondarev, M. L., Saulsbury, M. D., Heyliger, S. O. Preparation and Characterization of Lipophilic Doxorubicin Pro-drug Micelles. J. Vis. Exp. (114), e54338, doi:10.3791/54338 (2016).

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Abstract

Introduction

La quimioterapia se utiliza comúnmente para tratar varias formas de cáncer. La mayoría, si no todos, los medicamentos de quimioterapia tienen efectos secundarios tóxicos que pueden variar de leves condiciones manejables, tales como náuseas y diarrea, a las condiciones que amenazan la vida más. Debido a que la mayoría de los medicamentos contra el cáncer son tóxicos, la exposición no selectiva de estos fármacos para el tejido normal inevitablemente causa toxicidad. Por lo tanto, hay una gran necesidad de un enfoque terapéutico que puede ofrecer selectivamente fármacos en células cancerosas. Otro de los desafíos con la administración de medicamentos contra el cáncer es su escasa solubilidad en agua. Por lo general, se necesitan agentes solubilizantes para formular estos fármacos poco solubles. Sin embargo, la mayoría de agentes solubilizantes, tales como sulfóxido de dimetilo (DMSO), Cremophor EL, y polisorbato 80 (Tween 80) puede causar toxicidad hepática y renal, hemólisis, reacciones de hipersensibilidad agudas y neuropatías periféricas. 1 Por lo tanto, se necesitan formulaciones seguras y biocompatibles para el uso clínico de pobremedicamentos contra el cáncer Ly solubles. Nanoportadores son prometedores sistemas de administración de fármacos para hacer frente a los retos anteriores. Estos nanoportadores incluyen liposomas, nanopartículas 2, 3, 4-7 micelas conjugados polímero-fármaco, 8 y materiales inorgánicos. 9 Varios productos de nanomedicina (por ejemplo, Doxil, Abraxane, y Genexol) han sido aprobados por las agencias reguladoras para el tratamiento de pacientes con cáncer. 10

Las micelas poliméricas son prometedores portadores de administración de fármacos a nanoescala, que se han utilizado con éxito para el suministro de fármacos contra el cáncer. 4-7,11,12 micelas poliméricas típicos se preparan a partir de polímeros anfífilos a través de un proceso de autoensamblaje. Las micelas poliméricas estructurados de núcleo-envoltura incluyen una vaina hidrófila y un núcleo hidrofóbico. La envoltura hidrofílica puede estabilizar estéricamente micelas y prolongar su circulación en el torrente sanguíneo. El núcleo hidrofóbico puede resumir eficazmente d hidrófoboalfombras. Debido al pequeño tamaño de las micelas (normalmente menos de 200 nm) y las propiedades de circulación largo, se cree que las micelas poliméricas para lograr tumor de orientación a través de efectos de retención (EPR) (tumor pasiva focalización) aumento de la permeabilidad y.

estabilidad carga de fármaco es crítica para el tumor capacidad de las micelas de orientación. Para lograr la orientación óptima del tumor, micelas deben tener fugas mínimas de drogas antes de llegar al sitio del tumor, sin embargo, la liberación rápida del fármaco después de entrar en las células cancerosas. Además, estabilidad de la formulación es también un requisito esencial para el desarrollo de productos, porque la estabilidad formulación determina la viabilidad de desarrollo de productos, así como la vida útil de los productos desarrollados. Recientemente, se han hecho muchos esfuerzos para mejorar la carga de fármacos en vehículos de entrega. El enfoque de profármaco lipófilo es una estrategia que ha sido explorado para mejorar la carga de fármaco en nanopartículas lipídicas y emulsiones. 13,14 El conjugation de lípidos con fármacos puede mejorar significativamente su lipofilia y mejorar la carga y la retención de los componentes lipófilos de nanoportadores.

A continuación, se describe un protocolo para la preparación de doxorrubicina lipofílica micelas cargadas de profármaco. En primer lugar, se describe el procedimiento para la síntesis de doxorrubicina lipofílica profármaco. A continuación, se introduce un protocolo para generar micelas con un método de película de dispersión. Este método ha sido utilizado con éxito en nuestros estudios anteriores. 5 DSPE-PEG fue seleccionado como el material de soporte para la preparación de micelas, ya que ha sido utilizado con éxito para la administración de fármacos micela. 15,16 Finalmente, se describen varios ensayos in vitro utilizados para caracterizar micela formulaciones y para evaluar la actividad contra el cáncer.

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Protocol

1. Síntesis de DOX-PA

  1. Pesar 390 mg de doxorrubicina y 243 mg de hidrazida de ácido palmítico, y transferir a un matraz de fondo redondo.
  2. Añadir 150 ml de metanol anhidro al matraz con una jeringa de vidrio. Añadir 39 l de ácido trifluoroacético (TFA) con una pipeta. El uso de un agitador magnético, se agita la mezcla de reacción durante 18 horas a RT en la oscuridad.
    NOTA: Las cantidades de materiales de reacción se pueden escalar hacia arriba o hacia abajo para obtener diferentes cantidades de DOX-PA. La relación de los reactivos debe mantenerse en las mismas proporciones. Las reacciones que utilizan cantidades de DOX en el intervalo de 78 mg a 1170 mg se pueden realizar en un laboratorio de química regular.
  3. Purificación de DOX-PA utilizando una columna de gel de sílice. 17
    1. Eliminar el disolvente en la mezcla de reacción con un evaporador rotatorio. Añadir 3 g de gel de sílice después de la volumen de la mezcla se reduce a alrededor de 20 ml. Continuar evaporación giratoria para producir polvos secos y para permitir tque la adsorción de los productos en el gel de sílice. Mantenga la muestra bajo un vacío durante 30 minutos más después de que se formaron los polvos secos.
    2. Paquete de 50 g de gel de sílice en una columna utilizando diclorometano como disolvente. añadir con cuidado la muestra de gel de sílice que contiene el producto adsorbido a la columna.
    3. Eluir la columna con una mezcla de diclorometano y metanol, al tiempo que aumenta gradualmente el porcentaje de metanol, lo que aumenta la polaridad del disolvente (Tabla 1).
    4. Recoger fracciones de eluyente en tubos de ensayo (25 ml / tubo) y controlar el progreso por cromatografía de capa fina (TLC).
    5. Combinar todas las fracciones que contienen puro DOX-PA y eliminar el disolvente utilizando un evaporador rotatorio hasta que se forma de polvo seco. secar aún más el producto bajo un vacío de O / N.
  4. Análisis de DOX-PA por TLC.
    1. Corte una sección cm x 8 cm 4 de la placa de TLC. soluciones de muestras puntuales, 0,5 cm desde la parte inferior de la placa de TLC con capilares manchado utilizando cumplenHanol como disolvente.
    2. Coloque la placa de TLC en una cámara de revelado que contiene una mezcla de diclorometano y metanol (3/1, v / v). La profundidad de disolvente debe ser un poco menos de 0,5 cm.
    3. Retirar la placa de la cámara de revelado cuando el frente del disolvente alcance la parte superior de la placa. Marque la ubicación del frente de disolvente con un lápiz y dejar que la placa se seque. Coloque la placa de TLC en una cámara de tinción que contiene vapor de yodo saturada con el fin de visualizar las muestras.
  5. Análisis de DOX-PA con 1 H-Nuclear Espectroscopía de Resonancia Magnética (1 H-NMR). 18
    1. Disolver 15 mg de DOX-PA en 1 ml de metil sulfóxido-d6 (DMSO) y la transferencia de la muestra en un tubo de RMN.
    2. Insertar el tubo de RMN en el imán del instrumento de RMN. Medir el espectro de protón, la selección de DMSO como disolvente. Retire el tubo de RMN del imán. Analizar el resultado de RMN 18.

2. Preparación de DOX-PA micelas por el Método de Cine de dispersión

  1. Disolver DSPE-PEG (40 mg) y DOX-PA (4 mg) con 2 ml de metanol en un vial de vidrio de 10 ml.
  2. Eliminar el disolvente orgánico bajo vacío usando un evaporador rotatorio hasta que se forme una fina película en el vial.
    NOTA: Como alternativa, se evaporan los disolventes orgánicos bajo gas inerte (por ejemplo, gas argón o nitrógeno) para formar una película y mantener el vial en un desecador de vacío para eliminar adicionalmente el disolvente residual.
  3. Transferencia de 2 ml de solución salina de Dulbecco tamponada con fosfato (pH 7,4, DPBS) al vial de vidrio.
  4. Colocar el vial en un baño de ultrasonidos durante 3 minutos a temperatura ambiente para generar micelas.
    NOTA: La energía ultrasónica varía entre los diferentes modelos de baños de ultrasonidos. Seleccione una unidad que puede generar energía ultrasónica suficiente para dispersar a la película de polímero / fármaco delgada. La potencia de salida del baño de ultrasonidos utilizado en este protocolo es de 110 W.
  5. Mantenga micelas a 4 ° C para el almacenamiento a corto plazo y -20 ° C durante largo-term de almacenamiento.
    NOTA: Como alternativa, las micelas también pueden ser liofilizado y reconstituido con agua antes de su uso. Por lo general, no se necesita ningún crioprotector o lioprotector para esta formulación.

3. Caracterización de DOX-PA micelas

  1. Determinación de la concentración de DOX-PA en micelas y la eficiencia de encapsulación de drogas
    1. Disolver DOX-PA sintetizado en los pasos anteriores en DMSO para preparar soluciones de DOX-PA de cinco concentraciones diferentes: 1 g / ml, 5 mg / ml, 20 mg / ml, 50 mg / ml, y 100 mg / ml. Medir la absorción de las soluciones de DOX-PA con un espectrómetro de UV-VIS a 490 nm. Generar una curva estándar en base a las concentraciones de fármaco DOX-PA y su correspondiente absorción a 490 nm.
    2. Diluir 25 l de micela cargada de fármaco con 500 l de DMSO. Medir la absorción a 490 nm con un espectrómetro UV-VIS. Calcular las concentraciones de fármaco con la curva estándar generada en el punto 3.1.1.
    3. Calcular la eficiencia de encapsulación usando la siguiente ecuación:
      Eficiencia de encapsulación de Drogas (%) = (cantidad de fármacos en micelas) / (cantidad de fármaco añadido) x 100%
  2. Caracterización del tamaño de partícula con dispersión de luz dinámica (DLS)
    1. Diluir micelas con DPBS (pH 7,4) a una concentración final DSPE-PEG de 1 mg / ml. Analizar una muestra de 2 ml con un analizador de tamaño de partícula para obtener el tamaño y la polidispersidad índice promedio Z (PDI).
  3. Evaluación de la actividad contra el cáncer in vitro
    NOTA: Utilice una técnica estéril apropiada y operar dentro de una cabina de bioseguridad.
    1. Retirar el medio de cultivo de células de un matraz de cultivo celular (por ejemplo, T25) que contiene DU-145 células de cáncer de próstata humano y enjuagar las células con 2 ml de DPBS (pH 7,4).
    2. Aspirar DPBS, añadir 1 ml de solución de tripsina (0,25%), y se incuba durante 2 min a 37 ° C para separar las células.
    3. Añadir 10 ml de medio de cultivo celular (RPMI 1640 + 10% de suero fetal bovino + 1% de antibiótico-antimicótico), cuando la mayoría de las células se separaron del matraz. La transferencia de células a un tubo de centrífuga de 15 ml y centrifugar las células a 1.000 xg durante 5 min.
    4. Vuelva a suspender el sedimento celular con 5 ml de medio de cultivo celular y retirar una muestra para contar el número de células con un hemocitómetro. Diluir las células con medio de cultivo celular a una densidad de 50.000 células / ml. Añadir las suspensiones de células se diluyeron en una placa de cultivo celular de 96 pocillos (100 l / pocillo). Se incuban las células en un incubador de cultivo celular (37 ° C, 5% de CO 2) durante 18 horas para permitir la unión celular.
    5. Diluir DOX dimetil sulfóxido solución (DMSO) y solución de DOX-PA DMSO con medio de cultivo celular para obtener las concentraciones finales de fármaco de 0,1 M, 0,5 M, 2 M, 5 M, y 10 mM, respectivamente. Mantener la concentración final de DMSO en todas las muestras anteriores a 0,5%. Diluir micela DOX-PA con medio de cultivo celular para obtener co fármaco finalncentrations de 0,1 M, 0,5 M, 2 M, 5 M, y 10 micras, respectivamente. Utilizar el medio de cultivo celular en blanco un control.
    6. Retire la placa de cultivo celular de 96 pocillos de la incubadora y reemplazar el medio de cultivo celular con 100 l de medio que contienen diferentes agentes de tratamiento preparados en la etapa 3.3.5 (n = 4 para cada grupo). Se incuban las células en la incubadora de cultivo celular (37 ° C, 5% de CO 2) para un 72 hr adicional.
    7. Aspirar el medio y añadir 100 l de medio que contenía 0,5 mg / ml de 3- (4,5-dimetil-tiazol-2-il) -2,5-difenil tetrazolio (MTT).
    8. Se incuban las células en la incubadora de cultivo celular para 2 h adicionales. Retirar con cuidado el medio y añadir 100 l de DMSO para disolver los cristales de formazán.
    9. Medir la absorbancia con el espectrofotómetro de microplacas a una longitud de onda de 570 nm y una longitud de onda de referencia de 670 nm.
    10. Calcular la viabilidad celular usando la siguiente ecuación:
      (A Prueba / A de control) x 100%
      NOTA: Comparación de la viabilidad celular entre diferentes grupos usando un análisis unidireccional de la varianza (ANOVA) prueba estadística. Calcular el IC 50 basado en la viabilidad celular frente a los datos de concentración del fármaco.

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Representative Results

La Figura 1 muestra el esquema de síntesis de DOX-PA. DOX-PA fue sintetizado mediante conjugación de ácido palmítico con doxorubicina a través de un enlace hidrazona sensible al pH. Un ligero exceso de hidrazida de ácido palmítico se utilizó para facilitar la finalización de la reacción. Este método de reacción tiene una eficacia muy alta y sólo una pequeña cantidad de doxorrubicina se mantuvo después de una reacción de 18 h (Figura 2). El rendimiento fue de aproximadamente 88%. Al final de la reacción, DOX-PA se purificó utilizando una columna de gel de sílice y se secó para obtener un producto sólido de color rojo puro. DOX-PA se analizó con TLC, que mostró una única mancha para purificada DOX-PA (Figura 2). La figura 3 muestra el espectro de 1H-RMN de DOX-PA. se observaron picos de RMN característicos tanto de doxorrubicina y ácido palmítico, que confirmó el éxito de la reacción de conjugación.

Figura 4. Blank micelas de DSPE-PEG sin drogas aparecen como un líquido transparente. micelas DOX-PA DSPE-PEG aparecen como un líquido de color rojo; el color rojo es debido a la DOX-PA cargada en las micelas. Los resultados representativos de análisis de tamaño de partícula se muestran en la Figura 5. El tamaño de partícula medio Z de la media para en blanco micelas DSPE-PEG fue 17,0 ± 0,5 nm (PDI = 0,034 ± 0,019). La carga de DOX-PA aumenta ligeramente el tamaño de partícula de micelas; el tamaño medio de partícula promedio Z de micelas DOX-PA DSPE-PEG fue de 25.7 ± 1.6 nm (PDI = 0,407 ± 0,035).

La concentración de DOX-PA en la formulación de micelas se determinó con base en la absorción a 490 nm. DSPE-PEG tiene absorción insignificante en esta longitud de onda, por lo tanto no interfiere en el análisis de la concentración de DOX-PA. La concentración de DOX-PA en la formulación de micelas era1,99 ± 0,11 mg / ml y la eficiencia de carga de fármaco fue de 99,3 ± 5,7%. La alta eficiencia de encapsulación es debido a la característica lipófila de DOX-PA, lo que mejora su retención en el núcleo hidrofóbico de las micelas. La formulación mostró una estabilidad excelente. No hubo precipitación visible cuando se almacena a - 4 ° C durante 3 semanas. No se observó ningún cambio significativo en la concentración del fármaco durante el almacenamiento.

células de cáncer de próstata humano DU-145 se trataron con diferentes concentraciones de doxorrubicina libre, libre de DOX-PA, y micelas DOX-PA DSPE-PEG. La viabilidad celular se determinó al final de un tratamiento de 72 horas usando un ensayo MTT (Figura 6). Una reducción dependiente de la concentración de la viabilidad celular se logró por tratamiento de las células DU145 con doxorubicina libre (IC 50 = 0,10 M), libre de DOX-PA (IC 50 = 0,33 M), o micelas de DOX-PA (IC 50 = 0,25 M). Aunque es doxorubicina libre más eficaz que las micelas de DOX-PA a concentraciones más bajas libre de DOX-PA o (0,1 M y 0,5 M), los grupos de DOX-PA mostraron una mayor reducción de la viabilidad celular de doxorubicina libre en concentraciones más altas (2-10 mM). Además, no parece haber ninguna diferencia significativa entre DOX-PA y micelas DOX-PA tanto en las concentraciones más altas y más bajas. Blanco micelas DSPE-PEG no mostraron toxicidad (datos no presentados), lo que indica una buena biocompatibilidad y seguridad de DSPE-PEG como material de vehículo de administración de fármacos.

Figura 1
Figura 1. Síntesis de lipofílico profármaco de doxorubicina (DOX-PA) Reactivos y condiciones:. Doxorrubicina (DOX), hidrazida de ácido palmítico (PA) y ácido trifluoroacético (TFA) disuelto en metanol se agitaron durante 18 horas a RT en el oscuro. t = "_ blank"> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 2
Figura 2. Cromatografía de capa fina (TLC). TLC de (1) la doxorrubicina, (2) mezcla de reacción cruda, (3) hidrazida de ácido palmítico, y (4) conjugado DOX-PA. Las muestras se desarrollaron con una mezcla de diclorometano y metanol (3/1, v / v) y se tiñeron con yodo. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

figura 3
Figura 3. 1 H-NMR de DOX-PA en DMSO deuterado. La presencia de los picos característicos tanto de DOX y PA demuestra el éxito de la reacción de conjugación.: //www.jove.com/files/ftp_upload/54338/54338fig3large.jpg "Target =" _ blank "> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 4
Figura 4. Aspecto de micelas. (A) micelas de DSPE-PEG y (b) micelas DOX-PA DSPE-PEG. Figuras representativas se presentan para demostrar la aparición de micelas de DSPE-PEG en blanco y micelas DOX-PA DSPE-PEG. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 5
Figura 5. El tamaño de partícula y distribución de tamaño de las micelas. (A) micelas de DSPE-PEG y DOX (B) -PA micelas de DSPE-PEG. El tamaño de las micelas se determinó mediante dispersión de luz dinámica. figuras representativas se presentan para demostrar el tamaño de partícula y distribución de tamaño. Los datos presentados son la media ± SD (n = 3). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 6
Figura 6. Actividad anticancerosa de formulaciones de micelas. DU145 células se trataron durante 72 h y la viabilidad celular se midió usando el ensayo de MTT. Los datos presentados en la figura son Mean SD ± (n = 4). *, P <0,01, en comparación con DOX grupos tratados. No hay diferencia estadística entre DOX-PA y micelas DOX-PA grupos tratados. IC 50 se calculó basándose en la viabilidad celular frente a los datos de concentración del fármaco.p_upload / 54338 / 54338fig6large.jpg "target =" _ blank "> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

tabla 1

Tabla 1. CH 2 Cl 2 / CH 3 OH eluyendo disolventes utilizados en la purificación de DOX-PA.

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Discussion

En este trabajo se describe un método película de dispersión sencilla, rápida para la preparación de las micelas. Este método utiliza las propiedades de autoensamblaje de un polímero anfifílico (por ejemplo, DSPE-PEG) para formar micelas de núcleo-envuelta estructurados en un entorno acuoso. Este método de preparación de micelas tiene varias ventajas. 1. Se trata de un proceso de formulación simple, que evita el uso de pasos de reducción de tamaño complicadas (tales como la extrusión u homogeneización) usados ​​comúnmente en la preparación de liposomas, nanopartículas, y nanoemulsiones. 19 2. Tiene una buena reproducibilidad. Excelente consistencia de lote a lote puede lograrse una vez que la formulación se ha optimizado y establecido. El protocolo es tolerante a las variaciones en las variables del proceso de preparación, tales como resistencia y tiempo de sonicación. Aunque otros métodos (como el enfoque de diálisis o el método de evaporación de disolvente de emulsión) están disponibles para la preparación de micelas, la dispersión de cinemétodo es más conveniente y eficiente. Por lo tanto, tiene un gran potencial para ser adaptado para su uso en la fabricación a gran escala de las micelas en la industria farmacéutica. La limitación de este método es que depende de las propiedades de autoensamblaje de materiales de soporte y por lo tanto se limita a materiales con tales propiedades. La selección apropiada de materiales poliméricos puede conducir a un fallo en la generación de formulaciones de micelas satisfactorios. Además, el método de preparación se basa en la aplicación de ultrasonidos para dispersar la película de polímero / fármaco y para facilitar la formación de micelas. Más comercialmente disponibles baños de ultrasonidos son adecuados debido a que sólo se necesita una potencia de ultrasonidos débil para formar micelas. Sin embargo, podría ser un problema si se utiliza un baño de ultrasonidos con una potencia muy débil.

La mala carga de fármaco y la liberación prematura de drogas son las principales preocupaciones para la administración de fármacos de micelas. En este protocolo, hemos desarrollado una estrategia lipofílica profármaco para mejorar la cargación de la doxorrubicina en micelas de DSPE-PEG. La conjugación de la doxorrubicina con lípidos mejoró significativamente la compatibilidad y la interacción del fármaco con el núcleo lipídico de micelas de DSPE-PEG. El profármaco, DOX-PA, se sintetizó mediante la conjugación de la doxorrubicina con los lípidos a través de un enlazador de hidrazona sensible al pH ácido. Este enlazador es estable a pH neutro y escindible a pH ácido. 20,21 Por lo tanto, DOX se carga de manera estable en micelas DSPE-PEG como un profármaco a pH neutro y tiene fugas fármaco mínima durante el almacenamiento y durante la circulación en la sangre. Una vez micelas DOX-PA entran en las células tumorales a través de endocitosis, DOX-PA profármaco se escinde y se convierte en libre de DOX en respuesta al ambiente endosoma ácido (pH 5-6). Desde DOX es más hidrófilo que DOX-PA, esta conversión se interrumpen las interacciones entre DOX y el núcleo hidrofóbico de las micelas, y de este modo facilitar la rápida liberación de DOX de micelas. Esta innovadora característica de diseño evitará la liberación del fármaco incompleta, lo quees un problema importante asociado con conjugados de fármaco utilizando enlazadores no escindibles o lento de escisión. 22 Este enfoque también se puede aplicar a la entrega de otras drogas. La selección de un enlazador adecuado es crítico para el éxito de este enfoque. Los enlazadores deben ser estables en un ambiente fisiológico con el fin de maximizar la estabilidad de la formulación. Los engarces también deben ser escindidos de manera eficiente en respuesta a los desencadenantes en el microambiente del tumor (por ejemplo, pH, enzimas, etc.) para liberar el fármaco original.

En este protocolo, DOX-PA se cargó de manera eficiente en micelas con alta eficiencia de encapsulación (~ 100%). La formulación de micelas también demostró una estabilidad superior y se mantuvo intacta durante al menos tres semanas sin precipitación del fármaco o la reducción en la concentración de fármaco. Esto se debe a la mejora de la interacción entre restos lipídicos en el pro-fármaco y el núcleo lipídico de las micelas de DSPE-PEG. La ingeniería de la compatibidad de moléculas portadoras con fármacos para mejorar su interacción es una estrategia prometedora para mejorar el rendimiento de las micelas y otros nanovehículos. Este enfoque puede mejorar la carga de fármaco y minimizar la liberación del fármaco pre-madura para estos nanoportadores. 23 La selección de un par de fármaco / polímero adecuado es un paso crítico en el diseño de la formulación de micelas. La estructura de las moléculas de la droga puede ser modificado (enfoque pro-fármaco) o el diseño de materiales de soporte puede ser optimizado con el fin de mejorar la compatibilidad y para mejorar las interacciones fármaco / soporte. 23 24 Además, el modelado computacional puede ser una herramienta útil para ayudar en la optimización de nanoportadores y hacer posible la preparación de un nanotransportador medida específica diseñada para un medicamento específico.

En resumen, como se describe aquí un método para sintetizar un profármaco de doxorubicina lipofílica. Los protocolos para la preparación y caracterización de las micelas cargadas con fármaco son también described. El método de película de dispersión es un método simple y prometedor para la preparación de una variedad de sistemas de entrega de autoensamblaje a nanoescala. Los métodos de caracterización descritos aquí se pueden usar como estándar en ensayos in vitro para determinar las propiedades de nanomedicamentos, por lo tanto puede facilitar la optimización de los procesos de formulación y desarrollo de productos.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
DSPE-PEG2K Cordenpharm LP-R4-039 >95%
Doxorubicin LC Laboratories D-4000 >99%
Palmitic Acid Hydrazide TCI AMERICA   P000425G >98.0%
Methanol ACROS Organics 610981000 Anhydrous
Methylene chloride  FISHER  D151-4 99.90%
Methyl sulfoxide-d6 ACROS Organics AC320760075 NMR solvent
Trifluoroacetic Acid  ACROS Organics AC293811000 99.50%
Silica Gel FISHER  L-7446 230-400 mesh
Baker Flex TLC Plates FISHER  NC9990129
DPBS Sigma-Aldrich D8537
DU 145  Prostate Cancer Cells ATCC HTB-81
MTT ACROS Organics 158990050 98%
RPMI 1640 Medium MEDIATECH INC  10041CV
Antibiotic-Antimycotic  LIFE TECHNOLOGIES  15240062 100x stock solution
Fetal Bovine Serum LIFE TECHNOLOGIES  10437077
Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy Varian, Inc 300 NMR 
Büchi R-3 Rotavapor Buchi 1103022V1  Rotary evaporator
Ultrasonic Bath BRANSON ULTRASONICS CORPORATION  CPX952318R
UV-VIS spectrometer Biomate 3 Thermo Spectronic
Zetasizer Nano ZS90  Malvern Instruments Particle Size Analyer
Microplate Spectrophotometer  Rio-Rad Benchmark Plus 
Cell Culture Incubator Napco CO2 6000
Biological Safety Cabinet Nuaire
SigmaPlot  Systat Software, Inc. Analytical Software
96-Well Cell Culture Plate Becton Dickinson 353072
Trypsin  0.25% Corning Cellgro 25-053-CI

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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