Een op maat HPLC Zuivering Protocol dat zijn vruchten High-zuiverheid Amyloïd Beta 42 en Amyloid Beta 40 Peptiden, in staat oligomeervorming

Biochemistry

Your institution must subscribe to JoVE's Biochemistry section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Hierin beschrijven we een speciaal HPLC zuiveringsprotocol hoogzuivere amyloïde beta 42 (Aß42) en amyloïde beta 40 (Aβ40) peptiden, kunnen oligomeervorming oplevert. Amyloid beta is een zeer gevoelig aggregatie, hydrofoob peptide betrokken bij de ziekte van Alzheimer. De amyloidogenic aard van het peptide maakt de zuivering ervan een uitdaging.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Warner, C. J., Dutta, S., Foley, A. R., Raskatov, J. A. A Tailored HPLC Purification Protocol That Yields High-purity Amyloid Beta 42 and Amyloid Beta 40 Peptides, Capable of Oligomer Formation. J. Vis. Exp. (121), e55482, doi:10.3791/55482 (2017).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

De ziekte van Alzheimer is een neurodegeneratieve aandoening die wereldwijd gevolgen meer dan 35 miljoen mensen. 1 sterk Betrokken bij het ontstaan en de ontwikkeling van de ziekte, is het zeer gevoelig aggregatie, hydrofoob peptide Amyloid beta (Aß). 2 Aß varieert 36-43 aminozuren lang, echter, wordt gedacht dat de 42-aminozuur variant amyloïde beta 42 (Aß42), is de meest giftige vorm van het eiwit. 3 Dit heeft in hoofdzaak het vermogen van Aß42 gemakkelijk vormen diffundeerbare, oligomere species die geacht worden bijzonder neurotoxische entiteiten. 4 Om ons begrip van het Ap-peptide te bevorderen, is het essentieel om routinematig bekomen hoge zuiverheid materiaal. De aanwezigheid van sporen verontreinigingen is aangetoond dat drastisch veranderen de aggregatie neiging eigenschappen van het peptide. 5

Traditionally, heeft de hoge prestatie vloeistofchromatografie (HPLC) scheiding van hydrofobe peptiden zoals Aß gedaan door het gebruik van een combinatie van C 4 of C-8 silica gebaseerde vaste fasen en een zure mobiele fase. 6 kan evenwel omstandigheden een uitdaging voor de zuivering van het peptide. De lage isoelektrische punt van het Aß peptide (pI ongeveer 5,5) 7 betekent dat onder zure omstandigheden, peptide aggregatie verhoogd en daardoor breed, niet opgeloste HPLC pieken die vaak moeilijk te isoleren zijn geproduceerd (Figuur 2A). Bovendien is een dergelijke brede pieken bevatten vaak verontreinigingen die de aggregatie profiel van het peptide van invloed kunnen zijn, en vaak vereisen daaropvolgende ronden van zuivering die dramatisch kan invloed hebben op de hoeveelheid peptide geproduceerd.

De poly (styreen / divinylbenzeen) stationaire fase PLRP-S, vertegenwoordigt een alternatieve purifying hydrofobe peptiden. De stationaire fase is gebruikt bij de zuivering van een aantal verschillende eiwitten en messenger ribonucleïnezuren (mRNA). 8, 9 De PLRP-S stationaire fase vereist geen extra alkyl ligand voor omgekeerde fasescheiding en vooral chemisch stabiel is bij hoge pH die leidt tot disaggregatie van het peptide. 7 Hierin vermelden wij een op maat gesneden HPLC zuivering protocol dat hoge zuiverheid amyloïde beta 42 (Aß42) en amyloïde beta 40 (Aβ40) peptiden oplevert.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Preparatieve HPLC Zuivering van de Aβ40 of Aß42 Peptide

  1. Bereid de volgende buffers voor HPLC zuivering.
    1. Bereid buffer A (20 mM NH 4 OH) door toevoeging van 1,3 ml NH4OH (28% oplossing) tot 1000 ml ultrazuiver water.
    2. Bereid buffer B (80% acetonitril met 20 mM NH 4 OH) door toevoeging van 1,3 ml NH4OH (28% oplossing) aan een oplossing van 800 ml HPLC kwaliteit acetonitril en 200 ml ultrazuiver water.
    3. Bereid monster buffer oplossing (0,1% NH4OH) door toevoeging van 100 ul van NH4OH (28% oplossing) tot 100 ml ultrazuiver water.
  2. Stel de HPLC instrument zoals getoond in figuur 1.
    1. Breng het oplosmiddel flessen die bevatten buffer A en buffer B om de inlaten van de HPLC-pomp met behulp van polymeer leidingen. Bevestig het polymeer slang aan de HPLC-pomp met een eendelige fitting. Zorg ervoor dat het polymeer buis vanelke buffer wordt aan de juiste inlaatklep van het instrument. Monteer de HPLC-pomp met een ontgasser.
    2. Stel de HPLC-pomp met de inlaat van de 300 Å 8 urn 25 mm х 300 mm preparatieve kolom (Figuur 1B, kolom aan de linkerkant, zie Materialen List) gebruikt polymeer buis.
      1. Bevestig het polymeer slang aan op de preparatieve kolom met een uit één stuk vinger strak. Zorgen dat het polymeer kolom is georiënteerd op de juiste wijze.
        OPMERKING: De stationaire fase van de preparatieve kolom bestaat uit poly (styreen-divinylbenzeen) deeltjes. De correcte oriëntatie van het polymeer kolom wordt aangegeven op de buitenmantel met een richtingspijl.
    3. Sluit de uitlaat van de kolom aan de dubbele golflengte detector gebruikt polymeer buis en de detectorgolflengte tot 214 nm en 280 nm.
      1. Wijzig de golflengte door verandering van de detectiegolflengte parameters in het setup instrumentmethode keuze van deingebouwde HPLC software.
    4. Bevestig het polymeer slang aan op de inlaat van de golflengte detector met een uit één stuk vinger strak. Hechten polymeer slang aan de uitgang van de klep golflengte detector. Bevestig het polymeer slang aan op de uitlaat klep van de HPLC-detector met een uit één stuk vinger strak. Dit zal de monstername slang zijn.
      Opmerking: Het ontbreken van een sterke chromofoor op het Aß peptide dat dicteert 214 nm worden gebruikt als het voornaamste ultraviolet (UV) golflengte van maximale verzamelen.

Figuur 1
Figuur 1: Experimentele opstelling van de HPLC instrument gebruikt voor de zuivering van de amyloïde beta peptide. (A) De quaternaire HPLC-pomp voorzien van een ontgasser en variabele golflengte detector ingesteld op 214 nm en 280 nm; (B) HPLC-kolommen voor zuivering van de amyloïde beta peptide, uitlinks naar rechts, 25 x 300 mm 2 preparatieve kolom, 7,5 x 300 mm semi preparatieve kolom 2 en 4,6 x 250 mm analytische kolom 2; (C) handmatige injector met 20 pl roestvrijstalen injectieblok gebruikt voor analytische HPLC; (D) Handmatig injector met 10 ml roestvrijstalen injectieblok gebruikt voor preparatieve en semi preparatieve zuivering. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

  1. Programmeer de HPLC software om de zuiveringswerkwijze in werking zoals getoond in tabel 1. Voer de zuiveringswerkwijze door het veranderen van het oplosmiddel tijdschema parameter (in het setup instrument-optie ingebouwd in de software HPLC). Schakel de HPLC-pomp door te klikken op de "aan" knop op de HPLC-software.
    OPMERKING: De pomp begint toevoeren uitgangsverhouding van buffer A en buffer B tot de preparative kolom en HPLC instrument.
    1. Laat het systeem gedurende 30 minuten volledig evenwicht.
Time / min % Buffer A een % Van de buffer B b Flow Rate d / ml min -1
0 80 20 6
45 75.5 24.5 6
45.01 80 20 6
52.01 80 20 6
52.02 73 27 6
85 73 27 6
92 5 95 c 6

<strong> Tabel 1: Tijdschema voor de zuivering van het Aß42 en Aβ40 peptiden met de polymeer mm kolom 25 x 300. a Buffer A - H 2 O met 20 mM NH 4 OH; b 80% MeCN / 20% H2O met 20 mM NH 4 OH; c Ran gedurende 15 min op de kolom vóór de volgende injectie van het monster was; d Om een stroomsnelheid van 6 ml / min op HPLC instrumentatie werking, de drukgrens moet worden verlaagd tot 200 bar.

  1. Zuivering van het Aß peptide monster
    Opmerking: Het ruwe peptide werd verkregen door geautomatiseerde vaste-fase peptidesynthese. 10
    1. Los 3 mg ruw Ap peptide in 4 mL van het monster ontbinding buffer. Sonificeer het monster gedurende 30-60 s bij kamertemperatuur en bij een frequentie van 40 kHz tot oplossen te bevorderen.
    2. Injecteer het gehele monster op de HPLC-kolom met een 5 ml plastic spuit uitgerust met een 16-gaugeroestvrijstalen naald. Run de zuiveringsmethode zoals beschreven in deelstap 1,3.
      Opmerking: Het systeem kan monsterinjectie gebeuren door middel van een handmatige injector voorzien van een 10 ml roestvrijstalen injectieblok (figuur 1D). De gewenste AP-peptide zullen elueren tussen 72 en 74 min als een scherpe piek opgelost (figuur 2C).
    3. Verzamel het monster in een 50 ml conische centrifugebuis. Bevestigen de identiteit van het Ap piek door middel van directe injectie massaspectrometrie van de verzamelde eluens. 11 Store het elutiemiddel tot 12 uur bij -20 ° C.
      OPMERKING: Bewaren van de oplossing gedurende een periode langer dan 12 uur wordt afgeraden vanwege de mogelijkheid van oxydatie van het peptide.
    4. Isoleer het gezuiverde peptide door Snelkoeling de verzamelde hoeveelheid / hoeveelheden van het Ap peptide in vloeibare stikstof en Lyophilize. Lyofilisatie uitvoeren door vriesdrogen van het monster bij een temperatuur van -60 ° C en een drukzeker van 20 mTorr gedurende 24 uur.
    5. Voer het analytische HPLC protocol zoals hieronder beschreven om de zuiverheid van het Aß peptide te bepalen. WINKEL peptiden in de gevriesdroogde vorm bij -20 ° C gedurende maximaal 6 maanden.

2. Analytische HPLC analyse van het gezuiverde eiwit Aß

  1. Bereid de HPLC buffers zoals beschreven in paragraaf 1.1. van het bovengenoemde protocol.
  2. Stel de analytische HPLC volgens stap 1.2.1 en zoals in figuur 1 met de 4,6 x 250 mm analytische kolom (Figuur 1B, meest rechtse kolom) en de handmatige injector 20 pl roestvrijstalen injectieblok (figuur 1C) gemonteerd op de instrument.
  3. Programmeer de HPLC software om de analysemethode werking zoals weergegeven in tabel 2 volgende instructies overeen met die in stap 1,3.
Time /min % Buffer A een % Van de buffer B b Debiet / ml min -1
0 95 5 1
30 50 50 1

Tabel 2: Tijdschema voor de HPLC-zuiverheid analyse van het Aß peptide. a Buffer A - H 2 O met 20 mM NH 4 OH; b 80% MeCN / 20% H2O met 20 mM NH 4 OH.

  1. Zuiverheidsanalyse van het Aß peptide
    1. Maak een 1 mg / ml oplossing van het gezuiverde peptide door middel van ontbinding van het peptide in het monster bufferoplossing.
      LET OP: De buffer recept is te vinden in paragraaf 1.1. De eiwitconcentratie wordt bepaald door de proteïne absorptie bij 280 nm (280 nm A). 12 m Olar extinctiecoëfficiënt (ε) wordt gebruikt om de concentratie te bepalen is ε = 1.490 dm3 mol -1 cm -1. 13
    2. Injecteer 20 pi van de oplossing 1 mg / ml (222 pM) op de HPLC-kolom en voer de analysemethode die ingesteld in stap 2,3 was.
      OPMERKING: De overblijvende oplossing niet gebruikt voor analyse kunnen worden flash bevroren in vloeibare stikstof en gevriesdroogd om het Ap-peptide te herstellen. Vriesdrogen details zijn te vinden in paragraaf 1.4.4. Het Ap peptide elueren uit de analytische kolom tussen 16 en 18 min (figuur 2D). Gebruik de ingebouwde integratie analysesoftware dat de HPLC instrument om de zuiverheid van het Aß peptide te bepalen begeleidt. Zuiverheid wordt bepaald door integratie van elk van de afzonderlijke pieken in het spectrum en de berekening van peptide-piek percentage area. Gewoonlijk moet een zuivering van> 95% worden vastgesteld.

</ Html"Figuur 2" src = "/ files / ftp_upload / 55482 / 55482fig2.jpg" />
Figuur 2: Representatieve HPLC sporen van AB42. (A) Traditionele C 4 silica zuivering omstandigheden: Buffer A: H2O met 0,1% trifluorazijnzuur (TFA), buffer B: MeCN (acetonitril) met 0,1% TFA, gradiënt: 20-27% buffer B gedurende 40 min gevolgd isocratisch met 27% buffer B; (B) Preparatieve zuivering met gebruik van de 25 x 300 mm 2 polymeer kolom omstandigheden: Buffer A: H 2 O met 20 mM NH 4 OH, buffer B: 80% MeCN / 20% H2O met 20 mM NH 4 OH, gradiënt : 20 tot 27% buffer B gedurende 70 min gevolgd door isocratisch 27% buffer B; (C) Optimized preparatieve zuivering met behulp van de 25 x 300 mm 2 polymeer kolom, worden de voorwaarden beschreven in tabel 1 in paragraaf 1.3 van het protocol beschrijvende tekst; (D) Analytische HPLC gebruikmakend van de 4,6 x 250 mm kolom 2 polymeer, conditions: Buffer A: H 2 O met 20 mM NH 4 OH, buffer B: 80% MeCN / 20% H2O met 20 mM NH 4 OH, gradiënt 5-50% buffer B gedurende 30 min. Voor delen A, B en C de piek AB42 is gemarkeerd met een sterretje. Verzameling van de gemarkeerde Aß42 piek gedeeltelijk C toont een zuiverheid van> 95% zoals getoond in deel D Massaspectrometrie werd gebruikt om de identiteit van de AB42 piek te bepalen. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

De zuivering van de Aß42-peptide met een combinatie van de PLRP-S stationaire fase en een hoge pH mobiele fase resulteert in de vorming van een scherpe, opgelost piek voor het Aß-peptide bij een verblijftijd tussen 72 en 74 min (figuur 2C). Bevestiging van de identiteit van de piek wordt gedaan door middel van directe injectie massaspectrometrie van de verzamelde eluens. Het eluens kan worden opgeslagen bij -20 ° C in oplossing tot 12 uur. Langere opslag kan leiden tot oxidatie van het eiwit. Het gezuiverde peptide te isoleren, het eluens snel bevroren in vloeibare stikstof en gevriesdroogd. Analytische HPLC van het gezuiverde peptide onthult een zuiverheid van> 95% (figuur 2D). Dezelfde procedure kan worden gebruikt om de Aβ40 peptide (figuur 3A) zuiveren zonder wijziging van de methode. Analytische HPLC geeft een zuiverheid van Aβ40 tot meer dan 95% (figuur 3B) zijn. figuur 3
Figuur 3: Vertegenwoordiger HPLC sporen van Aβ40. (A) Optimized voorbereidende zuivering met behulp van het polymeer kolom van 25 x 300 mm 2, worden de voorwaarden beschreven in tabel 1 in paragraaf 1.3 van het protocol beschrijving tekst. De piek die overeenkomt met Aβ40 is gemarkeerd met een sterretje. (B) Analytische HPLC gebruikmakend van de 4,6 x 250 mm 2 polymeer kolom omstandigheden: Buffer A: H 2 O met 20 mM NH 4 OH, buffer B: 80% MeCN / 20% H2O met 20 mM NH 4 OH, gradiënt : 5-50% buffer B gedurende 30 min. Verzameling van de gemarkeerde Aβ40 piek in deel A openbaart een zuiverheid van> 95% zoals getoond in deel B Massaspectrometrie werd gebruikt om de identiteit van de Aβ40 piek te bepalen. Klik op haare voor een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Om te bevestigen dat het gezuiverde peptide oligomere mengsels kunnen vormen, voerden we foto-geïnduceerde verknoping van niet-gemodificeerde proteïnen (PICUP) zoals eerder beschreven 14, 15 en konden waarnemen krachtig oligomeervorming. 10

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

De HPLC zuivering van het Aß peptide hangt sterk af van de keuze van zowel de stationaire fase in de zuivering en de mobiele fase gekozen om het peptide te elueren. De lage isoelektrische punt van het peptide en hoge neiging tot aggregatie render traditionele chromatografische omstandigheden voor de scheiding van hydrofobe eiwitten (C4 en C8 stationaire fase in combinatie met een zuur mobiele eluens) uitdagend, met het Aß peptide geëlueerd als een verlengde breed, niet-opgelost piek (Figuur 2A).

Om dit probleem het PLRP-S stationaire fase chemisch stabiel bij hoge pH omzeilen effectief bleek voor de zuivering van het Ap peptide (figuur 2B en 2C) te zijn. De toepassing van een hoge pH mobiele fase geminimaliseerd de mate van aggregatie en bij geoptimaliseerde, leidde tot een sterke, goed opgelost piek. In de geoptimaliseerde protocol het percentage buffer B was snel switched van 20% tot 27% op 52 minuten tijdstip en daardoor ontstond een goed gedefinieerde piek Aß (figuur 2C). Deze geoptimaliseerde protocol wordt voor alle hydrofobe verontreinigingen worden geëlueerd uit de kolom tijdens de eerste verhoging 20-24,5% in buffer B concentratie. Als verontreinigingen gevonden die vergelijkbaar zijn hydrofobiciteit als het Aß peptide kan vervolgens verdere optimalisatie van de HPLC protocol gerechtvaardigd. De geoptimaliseerde werkwijze was zeer reproduceerbaar tussen afzonderlijke partijen gesynthetiseerd Aß en kon zuiveren zowel 40 en 42 varianten van het peptide zonder veranderingen aan de geoptimaliseerde procedure (figuur 3). Voor beide peptiden, de zuiverheid zoals bepaald door analytische HPLC bleek meer dan 95% bedragen.

Gezien de verslagen van sporenverontreinigingen veranderen van de aggregatie neiging van het Aß peptide, is het raadzaam een ​​orthogonaal biofysische analyse worden toegepast om te bevestigendat het gezuiverde peptide kan oligomerisatie onderworpen. Met behulp van eerder gemeld protocollen we ervoor gekozen om PICUP voeren. 14, 15 PICUP analyse van de gezuiverde eiwitten toont de karakteristieke monomeer met hexameer bevolkingsverdeling voor Aβ40 peptide en het monomeer door middel heptameer verdeling geassocieerd met het peptide Aß42. 10 Deze resultaten bevestigen dat zuivering van de Aß peptiden met de PLRP-S stationaire fase en een hoge pH mobiele elutiemiddel leidt tot Aß eiwitten die in staat aggregatie.

De zuiveringsprocedure gemeld is ontworpen om in staat te zuiveren tot 3 mg van het AP-peptide in een enkele chromatografische run. Voor deze procedure is het essentieel om de stroomsnelheid van de HPLC instrument 6 ml / min ingesteld. Als lagere stroomsnelheden van de HPLC-pomp worden gebruikt, moet de HPLC-run tijd worden uitgebreid tot deze tegemoet te komen. Converdichtbevolkt, kan het gebruik van hogere stroomsnelheden een verlaging van de HPLC-run tijd rechtvaardigen. Echter, verlaging van de looptijd resulteren in de co-elutie van het Ap piek met andere pieken en derhalve de zuiverheid van het Aß peptide verzameld verlagen. Bovendien kan de HPLC instrumentatie en de grootte van de chromatografiekolom toegepast voor zuivering van grote invloed op de hoeveelheid materiaal die kunnen worden gezuiverd in een enkele run. Indien geen piek wordt geproduceerd op het verwachte tijdstip eluent van het Ap-peptide, en een grote piek ontstaat aan het eluens tijd die overeenkomt met het oplosmiddel voorpaneel en teveel materiaal werd initieel geladen op de kolom. Het verminderen van de hoeveelheid materiaal geïnjecteerd op de HPLC kolom voor elke run dit probleem te omzeilen. Zodra het Aß peptide is gezuiverd, wordt het sterk aanbeveling de oplossing zo snel mogelijk worden gevriesdroogd. Langdurige opslag van het peptide in oplossing kan leiden tot oxidatie van Aß en daarmee de vorming van onzuiverheden. de puligheid van het Aß peptide moeten altijd worden bepaald door analytische HPLC. Sporen van verontreinigingen kan de aggregatie neiging van de peptide drastisch veranderen. Als de analytische HPLC spoor toont de aanwezigheid van verontreinigingen, dan moet het monster opnieuw onderworpen aan HPLC zuivering protocol en de zuiverheid opnieuw bepaald door analytische HPLC.

Gehoopt wordt dat dit op maat procedure voor de zuivering van de Aß42 en Aβ40 peptiden ten goede zal komen voor de wetenschappelijke gemeenschap en de gebruikers in staat om hoge zuiverheid AB staat oligomeervorming verkrijgen. Men zou verwachten dat deze procedure kan worden aangepast aan andere amyloïdogene peptiden die moeilijk te isoleren en te zuiveren.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgments

De auteurs willen graag Agilent bedanken voor hun technische bijstand. Kate Markham en Rafael Palomino worden gecrediteerd voor hun eerste hulp bij de synthese en zuivering van het AP-peptide en dr Hsiau-Wei Lee wordt bedankt voor zijn hulp bij de voorbereiding van figuur 1 van het manuscript.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Agilent 1260 Infinity II quarternary pump Agilent G7111B http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-pumps-vacuum-degassers/1260-infinity-ii-quaternary-pump
Agilent 1260 Infinity II Dual variable wavelength detector Agilent G7114A http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-detectors/1260-infinity-ii-variable-wavelength-detector
Agilent 1260 Infinity II Manual Injector fitted with 10 mL stainless steel sample loop Agilent 0101-1232 http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-injection-systems/1260-infinity-ii-manual-injector
Agilent 1260 Infinity II Manual Injector fitted with 20 µL stainless steel sample loop Agilent G1328C http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-injection-systems/1260-infinity-ii-manual-injector
Ring Stand Mounting Bracket Agilent 1400-3166
Agilent PLRP-S 300 Å 5 µm 4.6 x 250 mm (Analytical) Agilent PL1512-5501 http://www.agilent.com/en-us/products/liquid-chromatography/lc-columns/biomolecule-separations/plrp-s-for-biomolecules#features
Aβ42 or Aβ40 peptide Synthesized in-house using a CEM liberty automated peptide synthesizer.
Ammonium Hydroxide (NH4OH, 28% solution) Fisher Scientific A669-500
Acetonitrile Fisher Scientific A998-4
HPLC grade water Fisher Scientific W5-4
Falcon 50 mL conical centrifuge tube Fisher Scientific 14-954-49A
Supelco PEEK Fitting One-piece fingertight, pkg of 5 ea Sigma-Aldrich Z227250
Normject 5 cc sterile syringe Fisher Scientific 1481729
16 Gauge SS Needle Rheodyne 3725-086

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Querfurth, H. W., LaFerla, F. M. Alzheimer's Disease. N. Engl. J. Med. 362, (4), 329-344 (2010).
  2. McGowan, E., et al. Aβ42 Is Essential for Parenchymal and Vascular Amyloid Deposition in Mice. Neuron. 47, (2), 191-199 (2005).
  3. Gong, Y., et al. Alzheimer's disease-affected brain: Presence of oligomeric Aβ ligands (ADDLs) suggests a molecular basis for reversible memory loss. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 100, (18), 10417-10422 (2003).
  4. Selkoe, D. J. Soluble Oligomers of the Amyloid β-Protein Impair Synaptic Plasticity and Behavior. Behav Brain Res. 192, (1), 106-113 (2008).
  5. Zagorski, M. G., Yang, J., Shao, H., Ma, K., Zeng, H., Hong, A. Methodological and Chemical Factors Affecting Amyloid β Peptide Amyloidogenicity. Methods Enzymol. 309, 189-204 (1999).
  6. Kim, W., Hecht, M. H. Mutations Enhance the Aggregation Propensity of the Alzheimer's Aβ Peptide. J Mol Bio. 377, (2), 565-574 (2008).
  7. Fezoui, Y., et al. An improved method of preparing the amyloid beta-protein for fibrillogenesis and neurotoxicity experiments. Amyloid. 7, (3), 166-178 (2000).
  8. Zhelev, N. Z., Barratt, M. J., Mahadevan, L. C. Use of reversed-phase high-performance liquid chromatography on polystyrene-divinylbenzene columns for the rapid separation and purification of acid-soluble nuclear proteins. J Chromatogr A. 763, (1-2), 65-70 (1997).
  9. Thess, A., et al. Sequence-engineered mRNA Without Chemical Nucleoside Modifications Enables an Effective Protein Therapy in Large Animals. Mol Ther. 23, (9), 1456-1464 (2015).
  10. Warner, C. J. A., Dutta, S., Foley, A. R., Raskatov, J. A. Introduction of D-glutamate at a critical residue of Aβ42 stabilizes a pre-fibrillary aggregate with enhanced toxicity. Chem Eur J. 22, (34), 11967-11970 (2016).
  11. Thompson, J. A., Lim, T. K., Barrow, C. J. On-line High-performance Liquid Chromatography/Mass Spectrometric Investigation of Amyloid-β Peptide Variants Found in Alzheimer's Disease. Rapid Commun. Mass Spectrom. 13, (23), 2348-2351 (1999).
  12. Layne, E. Spectrophotometric and turbidimetric methods for measuring proteins. Met. Enzymology. 3, 447-455 (1957).
  13. Ioannou, J. C., Donald, A. M., Tromp, R. H. Characterizing the secondary structure changes occurring in high density systems of BLG dissolved in aqueous pH 3 buffer. Food Hydro. 46, 216-225 (2015).
  14. Rahimi, F., Maiti, P., Bitan, G. Photo-Induced Cross-Linking of Unmodified Proteins (PICUP) Applied to Amyloidogenic Peptides. J. Vis. Exp. (23), e1071 (2009).
  15. Bitan, G., Kirkitadze, M. D., Lomakin, A., Vollers, S. S., Benedek, G. B., Teplow, D. B. Amyloid β-protein (Aβ) assembly: Aβ40 and Aβ42 oligomerize through distinct pathways. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 100, (1), 330-335 (2003).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics