Summary

Dosage de l'induction neurale dans l'embryon de poulet

Published: February 13, 2009
doi:

Summary

L'induction neurale est la première étape dans la formation du cerveau. C'est un mécanisme par lequel le nœud de Hensen (organisateur), instruit les tissus adjacents à adopter un destin neuronal, c'est à dire de donner naissance au système nerveux. Cette vidéo montre un essai pour l'induction neurale dans l'embryon de poulet.

Abstract

L'embryon de poulet est un outil précieux dans l'étude du développement embryonnaire précoce. Sa transparence, l'accessibilité et la facilité de manipulation, en font un outil idéal pour étudier la formation et la structuration initiale du système nerveux. Cette vidéo montre comment tissu organisateur du greffon dans un hôte, une méthode par laquelle le nœud de Hensen s (l'organisateur de l'embryon de poulet) est greffé à un ectoderme compétente d'accueil. La greffe organisateur instruit recouvrant na avez tissus d'adopter un sort via des signaux neuronaux induisant neurones. Ce mécanisme est appelé l'induction neurale, et constitue la première étape dans la formation du cerveau et la moelle épinière chez les amniotes. Cette méthode est essentiellement utilisée pour la caractérisation des molécules induisant putatifs neurale chez le poulet. Cette vidéo montre les différentes étapes de l'essai pour l'induction neurale; d'abord, l'embryon n'est Donnor explantés et épinglé sur un plat. Ensuite, l'embryon d'accueil est préparé pour une nouvelle culture. Le greffon est excisée et transplanté à la marge d'hôte zone pellucide. L'hôte est cultivée pendant 18 à 22 heures. L'ensemble est fixé et traitées pour d'autres applications (par exemple, hybridation in situ). Cette méthode a été initialement conçu par Waddington<sup> 1,2</sup> Et Gallera<sup> 3,4</sup>.

Protocol

I. Schéma Aperçu: Cette vidéo montre les différentes étapes de test pour l'induction neurale dans l'embryon de poulet. Tout d'abord, l'embryon hôte est explanté dans la culture Nouveaux [NI1]. Ensuite, l'embryon n'est Donnor explantés dans une solution saline et le nœud de Hensen (l '«organisateur» dans chiches) est ét…

Discussion

Cette vidéo montre les différentes étapes à effectuer un essai pour l'induction neurale; Ce dosage est essentiellement utilisé pour la caractérisation de molécules induisant putatifs neurale chez le poulet, et peut donc être utilisé pour une large variété d'applications, allant de micromanipulations embryologique 1-4; 6 à démêler nouvelles cascades de signalisation 7,8, toutes visant à la compréhension de l'étape initiale de la formation du cerveau et du reste du systè…

Acknowledgements

DP est récipiendaire du Prix Ruth Kirschstein 1F32-01A1 DA021977 du National Institute on Drug Abuse. Ce travail a été soutenu par la Fondation Margaret M. Alkek au RHF.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH3+ (14 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Hybridization Incubator Equipment Robbins Scientific M1000 Use with inverted Pyrex dish and 500 ml ddH2O beaker
Marsh Automatic Incubator Equipment Lyon RX  
Pyrex dish        
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
DiI Reagent Invitrogen D-282  
Aspirator tube assembly Tool Sigma A5177-5EA  
Microelectrode puller Equipment Sutter Instruments Sutter Instruments P-97 Flaming/Brown Micropipette  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Culture chamber Tool Pioneer Plastics 030C  
Microcapillary tube Tool Sigma P1049-1PAK  
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Tool Fine Science Tools 26002-20 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base   Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc)   Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave
16% PFA   Electron Microscopy Sciences 15710  

References

  1. Waddington, C. H. Experiments on the development of chick and duck embryos, cultivated in vitro. Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 221, 179-230 (1932).
  2. Waddington, C. H. Induction by the primitive streak and its derivatives in the chick. J. Exp. Biol. 10, 38-46 (1933).
  3. Gallera, J. Excision et transplantation des diff&eacute;rentes r&eacute;gions de la ligne primitive chez le poulet. C. R. Ass. Anat. 49, 632-639 (1964).
  4. Gallera, J. Primary induction in birds. Adv. Morph. 9. , 149-180 (1971).
  5. Serbedzija, G. N., Fraser, S. E., Bronner-Fraser, M. Pathways of neural crest cell migration in the mouse embryo as revealed by vital dye labeling. Development 108. , 605-612 (1990).
  6. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development 122. , 3263-3273 (1996).
  7. Joubin, K., Stern, C. D. Molecular interactions continuously define the organizer during the cell movements of gastrulation. Cell. 98, 559-571 (1999).
  8. Streit, A., Berliner, A. J., Papanayotou, C., Sirulnik, A., Stern, C. D. Initiation of neural induction by FGF signaling before gastrulation. Nature. , 406-474 (2000).
  9. Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture. JoVE. 20, 10-3791 (2008).

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Cite This Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Assay for Neural Induction in the Chick Embryo. J. Vis. Exp. (24), e1027, doi:10.3791/1027 (2009).

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