Summary

Анализ для нейронных Индукция в куриных эмбрионах

Published: February 13, 2009
doi:

Summary

Нейронные индукции является первым шагом в формировании мозга. Это механизм, посредством которого узел Гензена (организатор), инструктирует соседних тканей принять нейронных судьба, то есть привести к нервной системе. Это видео демонстрирует тест для нейронных индукции в куриных эмбрионах.

Abstract

Куриного эмбриона является ценным инструментом для изучения раннего эмбрионального развития. Его прозрачность, доступность и легкость манипуляций, делают его идеальным инструментом для изучения формирования и начального структурирование нервной системы. Это видео демонстрирует, как привить ткани организатор в хозяина, метод, которым узел Хэнсен с (организатором в куриных эмбрионах) прививают на хост компетентных эктодермы. Организатор трансплантата инструктирует вышележащих наивны ткани принять нейронных судьбу через нервные сигналы вызывающих. Этот механизм называется индукции нервной и представляет собой первый шаг в формировании головного и спинного мозга в амниот. Этот метод в основном используется для характеристики предполагаемых нейронных молекул вызывающих у куриных. Это видео демонстрирует различные этапы анализа нейронных индукции; Во-первых, эмбрион является Donnor эксплантированных и возлагали на блюдо. Затем хозяин эмбрион готов к новой культуре. Трансплантат вырезали и пересаживаются на хост маржа области pellucida. Хост культивировали в течение 18-22 часов. Сборка фиксируется и обрабатывается для дальнейшего применения (например, в гибридизация). Этот метод был первоначально разработан Уоддингтон<sup> 1,2</sup> И Gallera<sup> 3,4</sup>.

Protocol

I. Схема Обзор: Это видео демонстрирует различные этапы анализа нейронных индукции в куриных эмбрионах. Во-первых, хозяин эмбрион эксплантированных в Нью-культуры [NI1]. Затем эмбрион Donnor являет?…

Discussion

Это видео демонстрирует различные этапы в проведении анализа нейронных индукции; Этот анализ в основном используется для характеристики предполагаемых нейронных молекул вызывающих у куриных, и таким образом может быть использован для широкого спектра применений, начиная от эмбриол?…

Acknowledgements

DP является получателем Рут Kirschstein премии 1F32-01A1 DA021977 из Национального института по злоупотреблению наркотиками. Эта работа была поддержана Маргарет М. Alkek Фонда РГНФ.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH3+ (14 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Hybridization Incubator Equipment Robbins Scientific M1000 Use with inverted Pyrex dish and 500 ml ddH2O beaker
Marsh Automatic Incubator Equipment Lyon RX  
Pyrex dish        
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
DiI Reagent Invitrogen D-282  
Aspirator tube assembly Tool Sigma A5177-5EA  
Microelectrode puller Equipment Sutter Instruments Sutter Instruments P-97 Flaming/Brown Micropipette  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Culture chamber Tool Pioneer Plastics 030C  
Microcapillary tube Tool Sigma P1049-1PAK  
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Tool Fine Science Tools 26002-20 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base   Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc)   Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave
16% PFA   Electron Microscopy Sciences 15710  

References

  1. Waddington, C. H. Experiments on the development of chick and duck embryos, cultivated in vitro. Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 221, 179-230 (1932).
  2. Waddington, C. H. Induction by the primitive streak and its derivatives in the chick. J. Exp. Biol. 10, 38-46 (1933).
  3. Gallera, J. Excision et transplantation des diff&eacute;rentes r&eacute;gions de la ligne primitive chez le poulet. C. R. Ass. Anat. 49, 632-639 (1964).
  4. Gallera, J. Primary induction in birds. Adv. Morph. 9. , 149-180 (1971).
  5. Serbedzija, G. N., Fraser, S. E., Bronner-Fraser, M. Pathways of neural crest cell migration in the mouse embryo as revealed by vital dye labeling. Development 108. , 605-612 (1990).
  6. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development 122. , 3263-3273 (1996).
  7. Joubin, K., Stern, C. D. Molecular interactions continuously define the organizer during the cell movements of gastrulation. Cell. 98, 559-571 (1999).
  8. Streit, A., Berliner, A. J., Papanayotou, C., Sirulnik, A., Stern, C. D. Initiation of neural induction by FGF signaling before gastrulation. Nature. , 406-474 (2000).
  9. Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture. JoVE. 20, 10-3791 (2008).

Play Video

Cite This Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Assay for Neural Induction in the Chick Embryo. J. Vis. Exp. (24), e1027, doi:10.3791/1027 (2009).

View Video