Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

Böcekler Tek Sensillum Kayıtlar Drosophila melanogaster Ve Anofel gambiae doi: 10.3791/1725 Published: February 17, 2010

Summary

Koku için koku alma duyu nöronlarının elektrofizyolojik yanıtlar tek sensillum kayıtları kullanarak böcekleri ölçülebilir. Bu video makalede, sirke sineği antenler tek sensillum kayıtları nasıl gerçekleştirileceği gösterecektir (

Abstract

Koku alma duygusu, gıdalar, arkadaşları, predatör ve bulmak için siteler 3 yöntemlerinin koloni böcekler için esastır . Böcek koku alma duyu nöronları (OSNs) koku alma organlarının yüzeyini kaplayan sensilla denilen duyu kılları, içine alınır. Her sensillum yüzey koku üzerinden geçmek ve belirli bir sensillum ev sahipliği OSNs duyusal dendritler banyoları sensillum lenf adı verilen bir sıvı içinde çözülür, küçük gözenekler ile kaplıdır. OSN dendritler odorant reseptör (OR) proteinleri ifade, hangi böceklerin koku-kapılı iyon kanalları 4, 5 olarak fonksiyon. OR ya artırır koku etkileşimi veya OSN bazal atış hızı azalır. Aksiyon potansiyelleri şeklinde Bu nöronal aktivitenin ilk temsili kalitesi, yoğunluğu ve odorant 6, 7 zamansal özellikleri bünyesinde barındırıyor.

Bu duyu kılları kolay erişim göz önüne alındığında, referans elektrot böceğin göz ya da vücudun lenf alınırken, sensillum lenf bir kayıt elektrodu getirerek tek OSNs ekstraselüler kayıtlar yapmak mümkün. Drosophila, bir ile dört OSNs arasında sensilla ev, ama her OSN genellikle karakteristik bir başak genlik görüntüler. Spike sıralama teknikleri, bireysel OSNs spike yanıtları atamak mümkün kılmaktadır. Bu tek sensillum kayıt (SSR) tekniği sensillum lenf ve OSNs 1, 2, 8 reseptör aktivitesi tarafından üretilen elektrik ani olarak referans elektrot arasındaki potansiyel farkı izler. Odorant yanıt ani sayısı değişiklikler, böcekler içinde koku kodlama hücresel temeli temsil eder. Burada, şu anda Drosophila melanogaster ve Anofel gambiae SSR gerçekleştirmek için laboratuarda kullanılan hazırlama yöntemi tarif ve sensillum özel bir şekilde koku ile indüklenen temsilcisi izleri .

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. Koku dilüsyonları

  1. En koku parafin yağı çözünür. Ancak, DMSO veya etanol aynı zamanda özellikle kokuları için alternatif çözücüler olarak kullanılabilir. Cam şişe saf koku:: Uygun dilüsyonları (v v hacmi örneğin 01:10 hacmi) hazırlayın. Çoğu koku dilüsyonları oda sıcaklığında, ancak yüksek uçucu bileşikler için, bir haftalık çalışma dilüsyonları yapmak daha iyidir. Her sensillum farklı bir konsantrasyon aralığında farklı kokular yanıt verir. Drosophila, yararlı bir look-up tablosu için 6, 7, belirli bir sensillum kullanım için uygun konsantrasyonlarda bulunabilir .

    Drosophila ve Anofel için: (parafin yağı v 10 -7 v) ve 1-octen-3-ol: video deneme için, biz bir çözücü kontrolü ve metil asetat gibi parafin yağı kullanın (parafin yağı v 10 -6 v) sırasıyla kayıtları.
  2. Makas kullanarak, Pasteur pipetler içine sığacak x 5 cm şeritler 3 mm kromatografi kağıdı kesti.
  3. Pipet 30 filtre bir kağıt şerit üzerine istenilen koku mcL ve cam pipet içine yerleştirin. Kes ~ 3 cm hava hattı hortumu ve bir bağlayıcı ile kapatarak, pipet açık ucuna takın. Konektörü, deneme sırasında koku sunmak için zamanı geldiğinde, bir hava pompası, hava borusu eklenecektir pipet mühür için kullanılır.

2. Koku teslimat sistemi

  1. Küçük bir matkap kullanarak, 10 ml plastik Serolojik pipet (4 ml işareti) kesilmiş ve kokuları içeren pipetler tutmak için kullanılır olacak iki delik (örneğin -1.5 ml ve -0.5 mL işaretleri) oluşturmak. Dikenli kuplör 200 mcL pipet sokun ve 10 ml pipet künt ucunu bağlayıcı tanıtmak. Pipet koku için dağıtım sisteminin bir parçası olarak kullanılacaktır.
  2. Bir pipet kelepçe ile bir manyetik standı pipet takın ve mikroskop yakın pozisyon.

3. Bileme elektrotlar

  1. Elektrotlar keskinleştirmek için, 0.5 M potasyum hidroksit çözeltisi (KOH) hazırlamak ve ince parçacıklar (örneğin bir 45 mikron filtre kullanarak) kaldırmak için filtre. 20 ml şırınga alın ve duvara yakın bir iğne ucu elektrik teli içine eklenir (ucundan ~ 1 cm), (Şekil 1A). Kullanarak küçük bir delik (~ 2 mm çapında)
  2. 0.5 M KOH ile şırınga doldurun ve uç görüş alanı (Şekil 1B, C) yerleştirilir, böylece mikroskop altında bir stand bu kelepçe. Tel doğrudan şırınga girişinin önünde olmadığından emin olmak için, şırınga duvar (Şekil 1B) üzerinde küçük bir delik içine elektrik teli takın. Bir DC güç kaynağı (örn. Yaban Heerbrugg MTR32 yöntemleri bakınız) ya da bir AC güç kaynağı (örneğin Vahşi Heerbrugg-LEP 990.018) bir kutup katot bu tel bağlayın. Mikroskop sağ tarafında manuel mikromanipülatör üzerine elektrot tutucu mili takın ve bir timsah klibi ile elektrot tutucu milinin üssünde bir elektrik kablosu takmak. DC güç kaynağı veya AC güç kaynağı (Şekil 1A), diğer kutup anot bağlayın.
  3. (~ 5 cm uzunluğunda) tungsten tel elektrot tutucu içine yerleştirin ve manipülatör elektrot tutucu mili ekleyin. 6 V güç kaynağı ayarlayın ve süreci (Şekil 1C) sırasında mikroskop altında ucu izlemek için dikkatli olmak, bilemek için art arda şırıngaya telin ucuna takın. Kayıt için ideal bir elektrot elde etmek için 1 dakika kadar çözüm süresini% 90 yerleştirin ve yavaşça çekin. Daha sonra 30 saniye daha ince ~ sadece% 50 elektrot eklemek ve bilenmiş (~ 10 kez) Telin ucu almak için bu işlemi tekrarlayın.

    Elektrot ucu kadar ince olmayan kayıtları sırasında (adım 6 ve 7) dokunduğu zaman bend sensillum girmek için yeterince ince, ama gerekmektedir. Diseksiyon mikroskobu altında elektrot ucu sivriltilmiş edilirken izlerken sadece kayıt mikroskop altında yüksek büyütmede bakarak, belirli bir elektrot kayıt için uygun olup olmadığı konusunda net bir fikir verecektir kalınlığı iyi bir gösterge olmasına rağmen.

4. Böcek hazırlık: Drosophila anten

  1. Bir sinek aspiratör oluşturun. (Yaklaşık 90 - 120 cm), boynunuza rahatça asmak için yeterince uzun hava hattı boru bir parça kesin. 200 mcL pipet ucu kesin ve tüpün bir ucunu takın. Diğer ucunu, pozisyon ~ 1.5 cm x fiziksel bir bariyer oluşturur ancak tüp dışarı akan hava engellemez böylece örgü 1,5 cm parçası. Mesh arasında engelleme, tüp açma 1 ml pipet ve konumunu daha geniş bir ipucu kesin. Bu bölümü, pick up ve yetişkin sirke sinekleri (Şekil 2) işlemek için kullanılacaktır.
  2. Bir mikroskop lamı alın ve kabaca uzun kenarı ortasında diş balmumu bir parça yer. Bu positio üstündecam kapak na biraz balmumu doğrudan mikroskop altında sirke sineği görselleştirme önleyecek en üst parçası altında olmadığından emin olmak için, yukarı doğru (~ 30) yatırılabilir. Dikey çektirmesi ile cam elektrot çekin. Ucu ikinci ve üçüncü antennal segment arasına sığacak kadar ince ve esnek, ve kayıtları için anten sabit tutmak gerekir. Mum başka bir parça cam elektrot yerleştirin ve yeteri kadar ipucu alçaltılmış olduğunda kapağı cam (Şekil 3A) köşesine ulaşır, yan kapak cam üzerine yerleştirin.
  3. İstenen genotip erişkin sineklerin bir şişe ya da şişeden çalışarak, yetişkin sirke sineği sinek aspiratör kullanarak bir pick up. Kadınlarda genellikle büyük boyutu nedeniyle kullanılmakla birlikte, erkeklerde de kullanılabilir. Sinek kaçmasını önlemek için, 1 ml ucu üstünde 200 mcL pipet yerleştirin. Sinek 200 mcL pipet ucu sonuna doğru itilir, böylece tüpe üfleyin. Pipet ucu jiletle sinek kendisinden birkaç milimetre uzaklıkta geniş sonunu kesin, daha sonra dışarı destek sinek önlemek için bazı mum yerleştirin. Mikroskop altında, hayvan zarar vermemeye dikkat ederek, sirke sineği başkanı yakınında yine kesti. Küçük bir pipet ile, gözleri yaklaşık yarısı ucu (Şekil 3B) a'ya böylece sinek kafası dışarı atmak için, balmumu itin. Bacaklarının yanı sıra gelmez, ya da kayıtları ile taşımak ve etkileşebilir bu emin olun.
  4. Balmumu bir parça sinek Dağı başını yukarı bakacak ve kapak cam önünde slayt üzerine yerleştirin. Antenler genişletmek ve böylece cam dinlenmek, cam köşe baş hafifçe bastırın. Ikinci ve üçüncü antennal segment (Şekil 3B) arasında kılcal cam ucu indirin.
  5. Anteni farklı bölgelerinde farklı sensilla türlerine erişim verecektir. Özellikle deneysel ihtiyaçlarına bağlı olarak, farklı sensilla türlerine erişimine izin vermek için farklı anten odaklı gerekecektir. Bizim örneğimizde olduğu gibi büyük basiconic sensilla kayıt için arista cam (Şekil 3B) aşağı doğru itilir.

5. Böcek hazırlık: Anofel maksiller palps

  1. Bir elektrikli aspiratör (Şekil 2E) kullanarak, küçük bir plastik kafesi (Şekil 2F) 40 ila 60 3-5 gün eski sivrisinek (karışık erkek ve kadın) toplamak. Sivrisinekler 25-28 bir böcek inkübatör veya insectary, yani normal şartlar altında yetiştirilen olması gerektiğini ° C% 70-80 nem. Soğuk anestezi kadar yaklaşık 15 dakika süreyle buz hayvanları ile küçük plastik kafes yerleştirin. , Hayvanların hareket durdurulduğunda, işlemleri sırasında buz üzerinde hayvanların geri kalanı tutmak, herhangi bir zamanda sahneye mikroskop altında sadece 4-6 hayvan transfer. Kadınlarda genellikle CO 2 duyarlılık nedeniyle kullanılmakla birlikte, erkeklerde de istihdam edilebilirler. Kendi anten yapısı (filament gibi kadın, erkek tüy gibi) tarafından bakarsak, kadın veya erkek sivrisinek seçin ve onları hareketsiz ince forseps ile kendi kanatları ve bacakları kaldırmak. Onları kuruttuktan önlemek için küçük bir plastik bardak, altındaki ıslak bir kağıt ile saklayın.
  2. Merkezinde ve slayt cam kenarındaki çift taraflı bant (~ 1 cm arayla) birbirlerine paralel iki adet (~ 1 cm uzunluğunda), (Şekil 3C) koyun. Diseksiyon mikroskobu altında ince forseps kullanarak, bir sivrisinek merkezi bant yerleştirin ve yanlara doğru açın ve teyp gövdesi ve bir gözü sopa. Hem palps bant (Şekil 3B) paralel uzanan böylece maksiller palps konumunu ayarlayın. Üssünde ve palps (Şekil 3B) ucunda iki ince dizeleri (örneğin insan kılların) koyarak maksiller palps sabitleyin. Merkezi bant, her kayıt (Şekil 3C) sonra değiştirilmesi gerekir iken yan bant, ince dizeleri için bir depo olarak kullanılır.

6. Kayıt Drosophila melanogaster

  1. (Şekil 4A), düşük büyütme ve kabaca view (FOV) (Şekil 4B) alanın ortasındaki konumu anten mikroskop altında slayt yerleştirin. Yavaşça elektrot, referans elektrot, sinek ve kayıt elektrot anten yakın (Şekil 4C) göz yakınında bulunan böylece düşük. FOV (Şekil 4D) ortasında büyütme ve yeniden pozisyon anten artırın.
  2. Anten işaret ederek, sineğin kafasına koku teslim cihaz yakın yerleştirin.
  3. Düşük büyütme (Şekil 4C), referans elektrot sineğin göz içine yerleştirin. Yüzeyine dokunmadan anten üstüne kayıt elektrodu indirin.
  4. Mikromanipülatör yüksek büyütme geçiş ile kayıt elektrodu kontrolü ve seçilen sensillum (Şekil 4D) yerleştirin. Sensillum uzunluğu boyunca herhangi bir noktada kayıt için iyidir. Sensillum içinde, elektrot daha uzağa itti olabilir (bazen tüm yol ile)daha iyi bir sinyal gürültü oranı elde etmek. Elektrot sensillum sonra, hücrelerin spontan aktivite tespit edilebilir.

7. Kayıt Anofel gambiae

  1. Mikroskop altında düşük büyütme (10x) ve kabaca ortasında FOV ve üst baş pozisyonu maksiller palps cam slayt yerleştirin (Şekil 4E). Palps bir kayıt elektrodu ile bir dik açı kadar sahne döndürün.
  2. Referans elektrot sadece sivrisinek ve kayıt elektrot maksiller palps yakın göz üzerine yerleştirilmiş, böylece elektrotlar yüksekliği ayarlayın.
  3. O kadar yakın palps mümkün böylece koku teslim cihazı yerleştirin.
  4. Alt büyütme (10x) referans elektrot göz içine yerleştirin ve yüksek büyütme (100x) geçiş dokunaç (Şekil 4F) peg sensillum kayıt elektrodu takın. Elektrot sensillum sonra, hücrelerin spontan aktivite tespit edilebilir.

8. Temsilcisi sonuçları

Sensillum ve kayıt kalitesine bağlı olarak, tek bir iz içinde farklı sayıda olfaktör nöronların ayırt edebilir. Drosophila melanogaster büyük basiconic sensilla, örneğin, başak genlik farklı hücreleri 2 ila 4, 9, 10 kayıt sırasında görünmelidir .

Drosophila ab2 sensillum video deneyde, iki hücre, bir hücre (Şekil 5, mavi sivri) ve B hücresi (Şekil 5, yeşil sivri). Ne hücre sadece bir hücre, metil asetat 10 -6 seyreltme (Şekil 5B) yanıt ise, parafin yağı (Şekil 5A) uygulanması sırasında devreye girer .

Anofel gambiae maksiller dokunaç, yivli peg sensillum üç hücreleri içerir, ancak sadece iki kolayca ayrımcılık yapılmaktadır (Şekil 5C, mavi ve yeşil sivri). Video deneyde B hücresi (Şekil 5D) 1-octen-3-ol 10 -7 seyreltme nasıl tepki vereceğini göstermektedir.

Şekil 1
Şekil 1. Elektrot kalemtıraş
Elektrot kalemtıraş aparat (A) genel görünümü (B) (C) şırınga açılış yanındaki elektrot ucu yakın elektrot (sağ) netleştirmek için kullanılan 0.5 M KOH (solda). Içeren şırınga.

Şekil 2
Şekil 2. Nasıl hazırlanacağı, bir sinek aspiratör ve sivrisinek aspiratör
(A) malzeme Başlangıç:... Hava hattı plastik boru, iki kesim pipet uçları, ve örgü (B) sinek aspiratör tamamlandıktan sonra sirke sinekleri yakalamak için kullanılan sonunda Detay (C) (D) Detay sinek aspiratör diğer ucunu (E) elektrik aspiratör sivrisinek toplanması için bir ana gövde ve çıkarılabilir plastik kafes oluşur. sivrisinekler için (F) çıkarılabilir plastik kafes.

Şekil 3
Şekil 3. Kayıt için bir sirke sineği (Drosophila melanogaster) ve sıtma sivrisinek (Anopheles gambiae) hazırlanması
(A) sirke resmi mikroskop altında yerleştirmeden önce slayt monte uçmak (B) (C) cam kapiller yerinde tutulan anten ile sirke sineği kafa kapatın. Sivrisinek resmi üzerine monte edilmiş Slayt (D) Yakın çekim kaset üzerine yapışmasını burnumun ve palps ile sivrisinek kafa.

Şekil 4
Şekil 4. Bir sirke sineği (Drosophila melanogaster) ve sıtma sivrisinek (Anopheles gambiae) kayıt
(A) elektrofizyoloji kurulum (B) Yakın çekim sinek preparat mikroskop üzerine monte edilmiş. Sinek anten kayıt elektrodu (sol), koku dağıtım sistemi (orta pipet), ve kayıt elektrot (sağ) ilgili olarak durduğuna dikkat edin. (C) 10x hedefi altında sinek Image (D) Görüntü altında 100x amacı; kayıt için monte edilmiş bir sivrisinek-duyumsal olmayan kıllar (ok başları) arasında serpiştirilmiş büyük basiconic sensilla (oklar), (E) 10x görünümü sivrisinek dokunaç ve peg sensillum (ok) (F) Yüksek büyütme . .

Şekil 5
Şekil 5. Örnekler ve Drosophila melanogaster kayıtlarıAnofel gambiae
(A) Drosophila melanogaster ab2 sensillum iki duyusal nöronlar evler;. A hücresi (mavi ani) ve B hücre (yeşil sivri) (B) 10 -6 metil asetat uygulaması sırasında A ve B hücreleri (C) Bir hücre (mavi ani) ve B hücre (yeşil sivri) (D) Uygulama 10 -7 peg sensillum 1-octen-3-ol; Anofel gambiae peg sensillum iki duyusal nöronlar evler.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Olfaktör ipuçları yiyecek kaynakları, potansiyel arkadaşları ve yırtıcılar tanımlamak için organizmalar tarafından kullanılır. Olfaktör duyusal nöronları (OSNs), dış uyaranlara ve beynin bilgi ileri işlenmiş yüksek merkezleri arasındaki ilk aktarma merkezi. Drosophila melanogaster ve Anofel gambiae, OSNs kolayca erişilebilir ve koku ponponları tarafından uyarılır, elektriksel aktivitenin izlendiği olabilir.

Tek sensillum kayıt (SSR) tekniği, yaygın OSNs kayıt ve koku 6, 7, çok sayıda elektrik yanıtları çalışma kullanılan bu video açıkladı . Koku alma reseptörleri (OO) 6, 11 ve Drosophila anten 9, 12, 13 belirli konumlara OR haritalama deorphanization bir ilk olarak, SSR tekniği, in vivo belirli OR elektrofizyolojik özellikleri analiz etmek için güçlü bir araç yaptı dış koku dünya OSNs yoluyla elektrik sinyallerine çevrilir ve sonunda hayvan tarafından algılanan nasıl anlamak için bir adımdır.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Paraffin oil Odors Fluka 76235
High purity odors (>98%) Odors Sigma-Aldrich Methyl acetate
#296996
1-octen-3-ol
#74950
Filter paper strips Odors Fisher Scientific 05-714-1 Chromatography paper
Connectors Odors Cole-Parmer EW-06365-40 1/16x1/8"
Glass vials Odors Agilent Technologies 5182-0556
Air line plastic tubing Odor Delivery Python Products 500PAL
1 serological pipette Odor Delivery Corning 4101 10 mL
Plastic tubing Odor Delivery Cole-Parmer EW-06418-0 0.050"x0.090"OD
Disposable borosilicate glass Pasteur pipettes Odor Delivery Fisher Scientific 13-678-20A 5-3/4 inches
Programmable stimulus controller Odor Delivery Syntech CS-55
Anti-vibration table Electrophysiology Equipment TMC 63533 36”Wx30”Dx29”H
Faraday cage Electrophysiology Equipment TMC MI8133303
Inverted microscope Electrophysiology Equipment Nikon Instruments E600FN ECLIPSE Recording microscope
10x and 100x objectives Electrophysiology Equipment Nikon Instruments 10x Plan Fluor 100x L Plan
Dissecting microscope Electrophysiology Equipment Nikon Instruments EZ645 electrode sharpening/insect prep microscope
Magnetic stands Electrophysiology Equipment Newport Corp. MODEL 150
IDAC Electrophysiology Equipment Syntech IDAC-4
Acquisition software Electrophysiology Equipment Syntech Autospike
1 macromanipulator Electrophysiology Equipment Narishige International MN-151 Joystick manipulator
Used for positioning reference electrode
1 micromanipulator Electrophysiology Equipment EXFO PCS-6000 Used for positioning recording electrode
Crocodile clip Electrophysiology Equipment Pomona AL-B-12-0
Electric cable Electrophysiology Equipment Pomona B-36-0 Test Cable Assembly
2 electrode holders Electrophysiology Equipment Syntech N/A Electrode holders (set of 2) for tungsten wire electrode
AC probe Electrophysiology Equipment Syntech N/A Universal single ended probe (10xAC)
Tungsten electrodes Electrophysiology Equipment Microprobes M210 straight tungsten rods, 0.005x3
Potassium hydroxide Electrophysiology Equipment Sigma-Aldrich 221473
Syringe Electrophysiology Equipment BD Biosciences 301625 20 mL
Power supply Electrophysiology Equipment Wild Heerbrugg e.g MTR32
Vertical puller Insect prep Narishige International PB-7
Razor blade Insect prep VWR international 55411-050
Dental wax Insect prep Patterson 091-1503
Microscope slide Insect prep Fisher Scientific 12-550A
Cover glass Insect prep Fisher Scientific 12-541A 18X18 #1.5
Polypropylene mesh Insect prep Small Parts, Inc. CMP-0500-B
Glass electrode Insect prep Frederick Haer and Co. 27-32-0-075 Capillary tubing borosilicate 1.5mm OD x 1.12mm ID x 75 mm
Double-sided tape (3M) Insect prep 3M MMM6652P3436 Double-sided tape (3M)
Forceps Insect prep Fine Science Tools 021x0053 Dumont #5 Mirror Finish Forceps
Small plastic cup Insect prep VWR international 89009-662 7 x 5.7 (23/4 x 21/4)
Electric aspirator Insect prep Gempler’s RHM200

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Boeckh, J. Elektrophysiologische Untersuchungen an einzelnen Geruchsrezeptoren auf der Antenne des TotengrAbers (Necrophorus Coleoptera). Z. Vergl. Physiol. 46, 212-248 (1962).
  2. Schneider, D., Hecker, E. Zur Elektrophysiologic der Antenne des Seidenspinners Bombyx mori bei Reizung mit angereicherten Extrakten des Sexuallockstoffes. Z. Naturforschg. 11b, 121-124 (1956).
  3. Touhara, K., Vosshall, L. B. Sensing odorants and pheromones with chemosensory receptors. Annu Rev Physiol. 71, 307-332 (2009).
  4. Sato, K. Insect olfactory receptors are heteromeric ligand-gated ion channels. Nature. 452, 1002-1006 (2008).
  5. Wicher, D. Drosophila odorant receptors are both ligand-gated and cyclic-nucleotide-activated cation channels. Nature. 452, 1007-1011 (2008).
  6. Hallem, E. A., Ho, M. G., Carlson, J. R. The molecular basis of odor coding in the Drosophila antenna. Cell. 117, 965-979 (2004).
  7. Hallem, E. A., Carlson, J. R. Coding of odors by a receptor repertoire. Cell. 125, 143-160 (2006).
  8. Boeckh, J., Kaissling, K. E., Schneider, D. Insect olfactory receptors. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 30, 263-280 (1965).
  9. de Bruyne, M., Foster, K., Carlson, J. R. Odor coding in the Drosophila antenna. Neuron. 30, 537-552 (2001).
  10. Lu, T. Odor coding in the maxillary palp of the malaria vector mosquito Anopheles gambiae. Curr Biol. 17, 1533-1544 (2007).
  11. Hallem, E. A., Fox, A. N., Zwiebel, L. J., Carlson, J. R. Olfaction: mosquito receptor for human-sweat odorant. Nature. 427, 212-213 (2004).
  12. Couto, A., Alenius, M., Dickson, B. J. M. olecular anatomical, and functional organization of the Drosophila olfactory system. Curr. Biol. 15, 1535-1547 (2005).
  13. Fishilevich, E., Vosshall, L. B. Genetic and functional subdivision of the Drosophila antennal lobe. Curr Biol. 15, 1548-1553 (2005).
Böcekler Tek Sensillum Kayıtlar<em> Drosophila melanogaster</em> Ve<em> Anofel gambiae</em
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Pellegrino, M., Nakagawa, T., Vosshall, L. B. Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae. J. Vis. Exp. (36), e1725, doi:10.3791/1725 (2010).More

Pellegrino, M., Nakagawa, T., Vosshall, L. B. Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae. J. Vis. Exp. (36), e1725, doi:10.3791/1725 (2010).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video
Waiting X
Simple Hit Counter