Imagem Alterar Forma Celular em Viver Drosophila Os embriões
Summary
Desenvolvimento precoce da mosca da fruta, Drosophila melanogaster, é caracterizada por uma série de alterações nas células forma que são adequados para abordagens de imagem. Este artigo irá descrever as ferramentas básicas e métodos necessários para geração de imagens ao vivo confocal de embriões Drosophila, e incidirá sobre uma mudança a forma da célula chamada celularização.
Abstract
O desenvolvimento de Drosophila melanogaster embrião passa por uma série de alterações nas células de forma que são altamente suscetíveis a viver de imagem confocal. Alterações nas células forma no fly são análogas àquelas em organismos superiores, e eles dirigem morfogênese do tecido. Assim, em muitos casos, seu estudo tem implicações diretas para a compreensão de doenças humanas (Tabela 1) 1-5. Na escala sub-celular, essas mudanças forma da célula são o produto de actividades que vão desde a expressão do gene de transdução de sinal, polaridade celular, a remodelação do citoesqueleto e do tráfico de membrana. Portanto, o embrião Drosophila fornece não só o contexto para avaliar mudanças no formato da célula como eles se relacionam com a morfogênese do tecido, mas também oferece um ambiente completamente fisiológica para estudar as atividades sub-celular que as células forma.
O protocolo aqui descrito foi concebido para uma mudança de imagem forma específica de células chamado celularização. Celularização é um processo de crescimento dramático da membrana plasmática, e em última análise, converte o embrião sincicial no blastoderma celular. Ou seja, a interfase do ciclo mitótico 14, a membrana plasmática invagina simultaneamente em torno de cada um dos núcleos ~ 6000 corticalmente ancorado para gerar uma folha de células epiteliais primárias. Contador para sugestões anteriores, celularização não é impulsionado por Miosina-2 contratilidade 6, mas em vez disso é alimentado em grande parte por exocitose da membrana interna das lojas 7. Assim, celularização é um excelente sistema para estudar o tráfico de membrana celular durante as mudanças de forma que necessitam de invaginação da membrana plasmática ou de expansão, tais como citocinese ou transversal dos túbulos (túbulos T) morfogênese no músculo.
Note que este protocolo é facilmente aplicado à imagem de outras alterações de células forma no embrião da mosca, e só requer pequenas adaptações, como mudar o estágio de colheita de embriões, ou usar "cola embrião" para montar o embrião de uma orientação específica (Tabela 1) 19/08. Em todos os casos, o fluxo de trabalho é basicamente o mesmo (Figura 1). Métodos padronizados para a clonagem ea transgenia Drosophila são usados para preparar ações mosca de estábulo que expressam uma proteína de interesse, fundida a proteína verde fluorescente (GFP) ou suas variantes, e estas moscas fornecer uma fonte renovável de embriões. Alternativamente, as proteínas fluorescentes / sondas são introduzidas diretamente em embriões de voar através de injeção direta micro-técnicas 9-10. Então, dependendo do evento de desenvolvimento e mudança de células forma a ser trabalhada, os embriões são recolhidos e encenado pela morfologia em um microscópio de dissecação e, finalmente, posicionados e montados de lapso de tempo imagem em um microscópio confocal.
Protocol
Discussion
O protocolo aqui descrito permitirá a criação de imagens, ao vivo confocal de uma série de mudanças no formato da célula do embrião voar em desenvolvimento. GFP ações para geração de imagens pode ser preparado por um laboratório individual (Tabela 2), mas muitas dessas populações também estão à disposição do público de centros como Bloomington Drosophila stock Centro da Universidade de Indiana ( http://flystocks.bio.indiana.edu ) e Flytrap Centr…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Agradecemos Eric Wieschaus, que forneceu a base sobre a qual este protocolo foi desenvolvido. Nosso trabalho é apoiado por uma Verna & Marrs McLean Departamento de Bioquímica e Biologia Molecular Start-up Award, Baylor College of Medicine.
Materials
| Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| Slides | Fisherbrand/Fisher Scientific | 12-550-343 | ||
| Cover slips 25×25 | Fisher Scientific (Corning #2865-25) | 1 2-524C | ||
| Squirt bottles (H2O) | Fisher Scientific | 02-897-11 | ||
| 50 ml Falcon tubes | Fisher Scientific (BD# 352070) | 14-432-22 | ||
| Bulbs for small pipets, 1 mL | Fisherbrand/Fisher Scientific | 03-448-21 | ||
| Scintillation vials with caps | VWR (Wheaton #986546) | 66021-533 | ||
| Tri-Corn Beakers, 100 mL | Electron Microscopy Sciences | 60970 | ||
| BD Falcon Petri dish 60x15mm | Fisher Scientific (BD# 351007) | 08757 100B | ||
| BD Falcon Cell strainer | Fisher Scientific (BD#352350) | 08-771-2 | ||
| Yellow pipet tips | Ranin | L200 | ||
| Stainless steel mesh, 304, 12×24 | Small Parts | CX-0150-F-01 | ||
| Glass 5¾ inch Pasteur Pipets | Fisherbrand/Fisher Scientific | 13-678-20B | ||
| P4 Filter paper | Fisherbrand/Fisher Scientific | 09-803-6F | ||
| Rubber bands | Office Max | A620645 | ||
| Scotch double-sided tape, ½ inch | Office Max | A8137DM-2 | ||
| Robert Simmons Expression paint brushes E85 round #2 | Jerry’s Artarama | 56460 | ||
| Dumont #5 Forceps High Precision Inox | Electron Microscopy Services | 72701-DZ | ||
| Razor blades | VWR (BD #214010) | 55411-050 | ||
| Halocarbon Oil 27 | Sigma-Aldrich | H 8773 | ||
| Heptane | Fisher Chemical/Fisher Scientific | H360-1 | ||
| BD Bacto Agar | VWR (BD# 214010) | 90000-760 | ||
| Sucrose | Sigma-Aldrich | S7903 | ||
| p-Hydroxybenzoic acid | Sigma-Aldrich | H5501 | ||
| Red Star Active Dry Yeast | LeSaffre | 15700 | ||
| Paper towels, C-fold | Kleenex | |||
| Heavy duty aluminum foil | Reynolds Wrap | |||
| Bleach | Austin’s A-1 Commercial | |||
| 100% Apple juice | Ocean Spray or Tree Top |
References
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