Noi descriviamo una metodologia rapida per isolare e cultura neuroni dell'ippocampo e corticale da embrioni di roditori. Questo protocollo permette di effettuare esperimenti in cui sono richieste colture neuronali quasi puri.
Stiamo descrivendo un metodo rapido di dissociarsi e di cultura neuroni dell'ippocampo o corticale da E15-17 embrioni di ratto. La procedura può essere applicata con successo per l'isolamento del mouse e neuroni umani primari e progenitori neurali. Neuroni dissociati sono mantenuti in terreno privo di siero fino a diverse settimane. Queste colture possono essere utilizzati per nucleofection, immunocitochimica, acidi nucleici preparazione, nonché elettrofisiologia. Vecchi colture neuronali possono anche essere trasfettate con un tasso di buona efficienza di trasduzione lentivirale e, meno efficiente, con fosfato di calcio o base di lipidi metodi come lipofectamina.
Il metodo di dissezione e cultura di neuroni ippocampali di ratto e corticale qui descritto permette di eseguire esperimenti utilizzando colture neuronali quasi purezza coltivate in un mezzo chimicamente definito (Figura 3). Anche se i protocolli per i neuroni coltura quasi pura nel siero senza supporti sono stati precedentemente descritti 2,3,4, ci sono importanti cambiamenti nel nostro metodo. Diverso da protocolli tradizionali (vale a dire Banker et al.) 5, abbiamo sostituito tr…
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo Jonna Ellis per l'assistenza editoriale. Il progetto descritto è stato sostenuto da Number Award R01MH079751 (PI: F. Peruzzi), dal National Institute of Mental Health. Il contenuto è di esclusiva responsabilità degli autori e non necessariamente rappresentano le opinioni ufficiali dell'Istituto Nazionale di Salute Mentale o il National Institutes of Health.
Reagent | Concentration |
Neurobasal | 98% |
B27 | 2% |
Glutamax | 0.5 mM |
Table I. Neurobasal/B27 complete medium.
Reagent | Concentration |
Glucose | 16 mM |
Sucrose | 22 mM |
HEPES | 10 mM |
NaCl | 160 mM |
KCl | 5 mM |
Na2HPO4 | 1 mM |
KH2PO2 | 0.22 mM |
Gentamicin | 50 μg/ml |
Fungizone | 250 ng/ml |
pH | 7.4 |
Osmolarity | 320-330 mOsm |
Table II. Dissection medium.
Reagent | Volume (μl) |
Neurobasal/B27 complete medium | 240 |
Trypan Blue Stain 0.4% | 250 |
Total | 490 |
Table III. 50x Counting solution.
Reagent | Company | Cat. number |
Hibernate E | Brainbits | 767171 |
Neurobasal | Gibco, Invitrogen | 21103-049 |
B27 | Gibco, Invitrogen | 17504-044 |
Fungizone | Gibco, Invitrogen | 15290-018 |
Gentamicin sulfate | Sigma Aldrich | G1264 |
Glutamax 200 mM | Gibco, Invitrogen | 35050 |
TrypLE Express w/o phenol red | Gibco, Invitrogen | 12604 |
Cytosine-β-D-arabinofuranoside hydrochloride | Sigma Aldrich | C6645 |
Poly-D-Lysine | Sigma Aldrich | P6407 |
Laminin 1 mg/ml | Millipore | CC095 |
HEPES | Sigma Aldrich | H3375 |
Trypan Blue Stain 0.4% | Gibco, Invitrogen | 15250 |
Table IV. Specific reagents.
Equipment | Company | Cat. number |
Stereo Microscope | Olympus | SZ61 |
Large Forceps | FST | 11022-14 |
Fine-tipped forceps | Moria | MC40B |
Micro fine-tipped forceps | Moria | MC31 |
Razor-sharp scissors | Roboz | RS-6820 |
Micro Dissecting scissors | FST | 91460-11 |
Micro Dissecting Curved scissors | FST | 14067-11 |
Glass 2-chamber slides | Lab-Tek | 154461 |
60 mm dishes | BD Falcon | 353002 |
100 mm dishes | Corning | 430167 |
15 ml tubes | BD Falcon | 352099 |
1.5 ml cryo-tube vial | Nunc | 375353 |
Table V. Specific equipment.