Summary

全基因组基因缺失<em>链球菌血统</em通过高通量PCR

Published: November 23, 2012
doi:

Summary

已经建立一个高效的全基因组单基因突变的方法使用<em>链球菌血统</em作为一种模式生物。通过这种方法已经取得了高通量重组PCR和转换。

Abstract

转座子突变和单基因缺失的两种方法适用于全基因组基因敲除细菌1,2。虽然转座子诱变是耗时更少,成本更低,并且不需要完成的基因组信息,在该方法中有两个缺点:(1)在该混合反选择竞争降低的突变体的突变体库的一个完全不同的突变体的可能性;和(2)的部分的基因失活的可能性,即基因的不完全失去的转座子的插入后,它们的功能。单基因的缺失分析可能补偿相关的缺点与转座子诱变。为了提高效率的全基因组的单基因缺失,我们尝试建立了高通量技术的使用链球菌血统作为模式生物的全基因组单基因缺失。每个基因缺失构建S.血统基因组被设计成包括1-kb的上游的靶基因,APHA-3基因,编码卡那霉素抗性的蛋白质,和1-kb的下游的靶基因。分别三套引物F1/R1 F2/R2和F3/R3,设计并合成用于PCR扩增这三个组成部分的每个删除构建在96孔板中的格式。引物R1和F3包含25-bp的序列的APHA-3基因在它们的5'末端的区域是互补的。执行一次创建所有的单基因缺失构建一个大型的APHA-3基因 PCR扩增。 APHA-3基因的启动子的初步排除卡那霉素磁带,以减少潜在的极性效应。要创建的基因缺失构建,高吞吐量的PCR扩增和纯化是在96孔板中的格式进行。线性每个基因缺失的重组PCR扩增子将通过4采用高保真DNA聚合酶的PCR反应。最初的expon差分生长阶段的S.血统 Todd Hewitt肉汤培养在补充有2.5%灭活的马血清是用来增加PCR的重组构建体的转化能力。在此条件下,高达20%的S.血统细胞可以使用〜50ng的DNA转化。根据此方法,2048个单基因缺失的突变体,最终获得的2270个基因在S.血统不包括4个基因的ORF完全包含在其他的ORF S.血统 SK36和218潜在的必需基因。该技术是高通量基因缺失结构,可以很容易使用任何变形菌的全基因组的单基因缺失。

Protocol

1。引物设计引物的设计采用了内部脚本的基础上的S.血统的 SK36基因组序列。三套引物,F1/R1,F2/R2和F3/R3被设计用于扩增的1-kb的上游序列的靶基因,APHA-3基因编码卡那霉素抗性(公里R)蛋白3和1 -kb的下游序列的靶基因,分别( 图1)。在这些引物中,F1和R 3的设计采用ePrimer3 EMBOSS套件的方案( <a href="http://emboss.sourceforge.net/apps/cvs/emboss/apps/index.html"…

Representative Results

经过PCR扩增用引物F1和R1,和F3和R3,约1 kb的上游和下游的每个S.血统基因中得到的96孔板的形式,分别为( 图2A)。在我们的PCR条件下,使用设计引物,扩增特定产品的S.血统每个PCR反应中的基因组DNA。此结果表明,该引物对具有高度特异性的目标的S.血统 。通过PCR扩增使用F1和R3引物和3扩增子作为DNA模板,线性的重组PCR构造(〜3 kb的)的高通量的96孔板中,组成的…

Discussion

为了尽量减少可能的极性的影响1与外源性抗生素基因对邻近基因的靶基因的更换,采取两个步骤,而最初的引物设计。对于大多数已删除的基因,引物R1和F3被设计用于删除后的6个碱基的30 bp的起始密码子到终止密码子之前的编码区。最后保留了30个碱基对,以保护潜在的使用相邻的下游基因的核糖体结合位点。两个相邻的基因之间的保留区域被扩展到100 bp的,当他们位于相反方向,这两种蛋白的…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作是支持的补助金从美国国立卫生(PX)和R01DE018138部分,弗吉尼亚联邦大学校长科研奖励计划(PRIP)144602-3(PX)。我们感谢博士。雷震,西城区月坛窦和小静王为协助建设的全基因组突变体。我们也感谢的DNA核心设施在弗吉尼亚联邦大学进行DNA测序。

Materials

Names Company Catalog# Comments (optional)
Primer F2 Integrated DNA Technologies TGACTAACTAGGAGGAATAAATG
GCTAAAATGAGAATAT
Primer R2 ibid CATTATTCCCTCCAGGTACTAAAA
CAATTCATCCAGT
Primer F2p ibid GATAAACCCAGCGAACCATTTGA
Primer P1 ibid GCTTATATACCTTAGCAGGAGACA
Primer P2 ibid GTATGACATTGCCTTCTGCGTCC
Primer 5′ end_R1_seq ibid GCCATTTATTCCTCCTAGTTAGTCA
Primer 5′ end_F3_seq ibid GTTTTAGTACCTGGAGGGAATAATG
Primer 5′ end_R1p_seq ibid CCTCAAATGGTTCGCTGGGTTTATC
CSP Synprep Sequence:NH2-DLRGVPNPWGWIFGR-COOH
DNA Polymerase Invitrogen 11304-102 Platinum Taq DNA Polymerase High Fidelity
EcoRI New England Biolabs Inc R0101S Restriction enzyme
Agar American Bioanalytical AB01185
Agarose Promega V3125
BHI BD Biosciences 237500 Brain Heart Infusion
Horse serum Fisher Scientific SH3007403 Horse serum
Km Fisher Scientific BP906-5 Kanamycin
TH broth BD Biosciences 249240 Todd Hewitt broth
PureLink 96 Invitrogen K310096 PureLink 96 PCR purification kit
QIAquick Qiagen 28106 QIAquick PCR purification kit
Filter Corning 431117 0.22 μm polystyrene filter
Anoxomat System Mart Microbiology b.v. Anoxomat Mark II
Benchtop centrifuge Thermo Scientific 75004377 Sorvall Legend RT Plus microplate rotor
Gel Documentation UVP LLC BioDoc-It 210
Incubator Fisher Scientific 11-690-625D Isotemp
Labnet’s Gel XL Labnet E0160 Labnet’s Gel XL
Microcentrifuge Eppendorf 22621408 Microcentrifuge 5415 R
Multichannel pipettes Thermo Scientfic 4661040, 4661020 Finnpipette F1
Thermal Cycler Applied Biosystems Inc. N805-0200 GeneAmp PCR system 9700

References

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Cite This Article
Ge, X., Xu, P. Genome-wide Gene Deletions in Streptococcus sanguinis by High Throughput PCR. J. Vis. Exp. (69), e4356, doi:10.3791/4356 (2012).

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