Her beskriver vi isolasjon av voksne mus cardiomyoctyes ved hjelp av en Langendorff perfusjon system. De resulterende cellene er Ca2 +-tolerant, elektrisk quiescent og kan dyrkes og transfektert med adeno-eller lentiviruses å manipulere genekspresjon. Deres funksjonalitet kan også bli analysert ved hjelp av MMSYS systemet og patch clamp-teknikker.
Bruken av primær cardiomyocytes (CMS) i kultur har gitt et kraftig supplement til murine modeller av hjertesykdom i å fremme vår forståelse av hjertesykdom. Spesielt har muligheten til å studere ion homeostase, ionekanal funksjon, cellular oppstemthet og eksitasjon-kontraksjon kopling og deres endringer i syke forhold og av sykdomsfremkallende mutasjoner førte til betydelige innsikt i hjertesykdommer. Videre er mangelen på en tilstrekkelig udødeliggjort cellelinje for å etterligne voksen CMs, og begrensningene til neonatal CMs (som mangler mange av de strukturelle og funksjonelle biomechanics karakteristisk for voksen CMs) i kultur hemmet vår forståelse av det komplekse samspill mellom signalveier, ionekanaler og kontraktile egenskaper i den voksne hjertet styrke viktigheten av å studere voksen isolerte cardiomyocytes. Her presenterer vi metoder for isolering, kultur, manipulering av genuttrykk av adenovirus-EXPREssed proteiner og påfølgende funksjonell analyse av cardiomyocytes fra den voksne mus. Anvendelse av disse teknikker vil bidra til å utvikle mekanisk innsikt i signalveier som regulerer cellulær eksitabilitet, Ca 2 +-dynamikk og kontraktilitet, og gir en mye mer fysiologisk relevant karakterisering av kardiovaskulær sykdom.
Murine modeller av hjerte-og karsykdommer har fungert som effektive verktøy for å belyse grunnleggende sykdomsmekanismer 1,2 samt for å identifisere potensielle terapeutiske mål 1,3. Spesielt har bruken av både murine modeller av ervervet hjertesykdom (slik som trykk-overbelastning) 4,5 og transgene musemodeller utvidet vår forståelse av hjertesykdommer 6-8. Bruken av cellekulturteknikker for å undersøke signalkaskader 3,9,10 og forandringer i individuelle proteiner som ligger til grunn cellulære eksitasjon eksitabilitet og-kontraksjon kopling i hjertet 11-13 på nivået av den enkelte celle er supplert med in vivo-musemodeller. Imidlertid har mangelen på egnede cellelinjer som reflekterer voksen CM struktur og funksjon har vært en vesentlig begrensning. Forskere har forsøkt å løse dette ved å studere de enkelte proteiner, slik som ione-kanaler, i heterologe ekspresjonssystemer <sup> 14, og mens disse studiene har gitt oss nyttig informasjon i form av ionekanal biofysikk eller protein trafficking, utilstrekkelig representasjon av den opprinnelige mikromiljøet til CMS er en betydelig begrensning. For det andre, siden de fleste av disse heterologe celler har en moden kontraktile apparat, har det ikke vært mulig å studere kontraktile funksjon, og det komplekse samspill mellom celle eksitabilitet og sammentrekning. Av denne grunn, har forskere slått til primær kardial cellekulturer for mange av deres in vitro-funksjonsstudier. Til slutt, isolerte cardiomyocyte studier tillate vurdering av kontraktil funksjon uten konfunderende faktorer av flercellet forberedelse inkludert effekten av arr eller fibrose og fiber orientering.
Primære neonatal rotte ventrikkel cardiomyocytes (NRVMs) er relativt lett å kultur, kan være infisert med adenovirus og lentiviruses å manipulere genekspresjon 15, ennd har derfor vært brukt med hell 1, men har begrensninger i sin egen. Selv om de gir en fysiologisk mikromiljøet en og har vært arbeidshesten av signalanlegget feltet, betydelige forskjeller mellom morfologi og subcellulære organisering av NRVMs og voksne cardiomyoctyes gjøre dem en utilstrekkelig modell for etterforskningen av ioniske flussmidler og eksitasjon-kontraksjon kopling i den voksne hjertet . Mest spesielt NRVMs mangler en definitiv t-rørformet delsystem fire. Siden Ca 2 + flux og dynamikk er kritisk avhengig av moden t-rør og sarkoplasmatisk retikulum (SR) struktur 6, Ca 2 + dynamikk og funksjonelle studier av hjertets kontraktilitet i NRVMs er ikke en nøyaktig refleksjon av disse kritiske prosesser i voksen cardiomyocytes. Videre, noen komponenter i signalveier varierer mellom neonatal og voksen mus 9, og gir dermed en annen begrensning for å studere sykdomsprosesser og deres jegmPACT på mobilnettet oppstemthet og kontraktilitet i NRVMs. Endelig fordelingen av kontraktile maskiner fører til flerveis-og ikke-uniform celle forkorting begrenser nøyaktigheten av kontraktile målinger.
Bruken av isolerte voksen kardiomyocytter gir derfor en mer nøyaktig in vitro modellsystem. Den ekstraordinære veksten av kunnskap gjort mulig av den genetiske manipulering av mus som understreker betydningen av å skaffe funksjonelle isolerte kardiomyocytter fra mus. Faktisk, har karakterisering av voksne CMs isolert fra musemodeller belyse mange biologiske og patologiske hendelser. Isolerte CMs fra transgene musemodeller har åpnet for studier av gevinst eller tap av funksjon av proteiner på de sammentrekkende egenskapene til enkeltceller 2,16, og levedyktighet i sykdomsmodeller som iskemi / reperfusjon 17,18, og dermed utfyller informasjonen han fikk fra i vivo-studier påSE mus. Bruk av isolert voksen CMs fra murine modeller av ervervet hjertesykdom 3,19,20 (for eksempel tverrgående aortic innsnevring-indusert press overbelastning, som etterligner hypertensjon eller Aortastenose) eller trening 5,21 (for modellering fysiologisk hypertrofi) gir mulighet for undersøkelse av interaksjonen av signalkaskader innblandet i disse prosessene med cellulær eksitabilitet og eksitasjon-kontraksjon kopling på nivået av den enkelte celle. Videre, evnen til å manipulere genekspresjon ved hjelp adenovirus-drevet genuttrykk i voksen CMs gir oss muligheten til å dissekere komponentene i komplekse signalveier.
Fra en elektrofysiologisk perspektiv, har hel-celle spenning og strøm klemme eksperimenter på isolerte voksen CMs vært avgjørende i å belyse innholdet i ioniske flukser ved baseline og i ulike sykdomstilstander. På grunn av den komplekse struktur av cellemembranen, og differensial protei stillaskonstruksjoner mellom voksen CMs og NRVMs eller heterologe cellelinjer, evnen til å lappe voksne celler gir en mye bedre representasjon av effekten av visse membranproteiner, strukturelle proteiner, og ionekanal samvirkende partnere på de elektrofysiologiske komponenter av voksent hjerte.
Til tross for slike fremtredende fordeler i å studere voksen murine cardiomyocytes, isolering og dyrking av voksne mus cardiomyocytes har vært utfordrende, oppfordret behovet for en systematisk og nøyaktig beskrivelse av metoden for å isolere levedyktige mus cardiomyocytes og å opprettholde dem i kultur for å tillate ytterligere genetisk manipulasjon ved hjelp av viral vektorer. Tidligere studier har brukt enten akutt isolert mus voksen CMs eller kultivert rotte voksen CMS. Sistnevnte er lettere å kultur enn voksen mus CMS, og de fleste eksperimenter manipulere genekspresjon in vitro har brukt rotte voksen CMS. Få studier har blitt endret og undersøkt funksjonelleonal genekspresjon i mus voksen CMs, presentere en stor begrensning på omfanget av eksperimenter. Derfor, her presenterer vi i detalj slike metoder, endret fra tidligere undersøkelser, for isolering 7,8,22, kultur 3,10,15,23, adenovirus infeksjon 11-13,15, og funksjonell analyse av voksen mus ventrikulære cardiomyoctyes. Denne isolasjonen protokollresultatene i Ca 2 +-tolerante, hissige cardiomyocytes at vi har lykkes dyrket i opptil 72 timer, og forbigående tilført med adenovirus. Funksjonaliteten til disse isolerte celler kan vurderes ved hjelp av MMSYS imaging system 14,24 og patch clamp, som også vil bli diskutert.
I denne rapporten har vi beskrevet de nødvendige teknikker for vellykket isolasjon og kultur av voksen CMs fra musen hjertet. Vår teknikk som gjør det mulig for etterfølgende undersøkelse av CM funksjon og eksitabilitet ved hjelp av metodene som er beskrevet ovenfor. Den kritiske parameter for å studere funksjonen av voksen CMs er helse-og kvaliteten av det isolerte CMs. Som beskrevet ovenfor, våre teknikker gjør det mulig for et høyt utbytte av funksjonelle celler som er mottagelig for manipulering av genekspr…
The authors have nothing to disclose.
Name of Reagent/Material | Company | Catalog Number | Comments |
Sodium Chloride | Sigma | S7653 | |
Potassium Chloride | Sigma | P9333 | |
Magnesium Chloride | Sigma | M8266 | |
HEPES | Sigma | H3375 | |
Sodium Phosphate Monobasic | Sigma | S8282 | |
D-glucose minimum | Sigma | G8270 | |
Taurine | Sigma | T0625 | |
2,3-Butanedione monoxime | Sigma | B0752 | |
Collagenase B | Roche Applied Science | 11088807001 | |
Collagenase D | Roche Applied Science | 11088858001 | |
Protease XIV from Streptomyces griseus | Sigma | P5147 | |
Albumin from Bovine Serum | Sigma | A2153 | |
Calcium Chloride | Sigma | C8106 | |
Minimum Essential Media | Sigma | 51411C | |
Albumin solution from bovine serum | Sigma | A8412 | |
L-glutamine | Sigma | G3126 | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma | P4333 | |
Insulin-transferrin-sodium selenite media supplement | Sigma | I1884 | |
Cesium Chloride | Sigma | 289329 | |
Glutamate | Sigma | G3291 | |
Adenosine 5′-triphosphate magnesium salt | Sigma | A9187 | |
Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N’,N’-tetraacetic acid | Sigma | E3889 | |
Cesium Hydroxide Solution | Sigma | 232041 | |
Tetraethylammonium hydroxide solution | Sigma | 86643 | |
OptiVisor optical glass binocular visor | Dohegan Optical Company Inc. | N/A | |
Tissue forceps, 5.5″, 1×2 teeth | Roboz Scientific | RS-8164 | |
Moloney forceps – 4.5″ (11.5 cm) long slight curve, serrated | Roboz Scientific | RS-8254 | |
Dumont #3 Forceps, Dumostar, tip size 0.17 x 0.10mm | Roboz Scientific | RS-4966 | |
Packer Mosquito Forceps 5″ Straight Flat | Roboz Scientific | RS-7114 | |
Micro Dissecting Scissors 4.5″ Curved Sharp/Sharp | Roboz Scientific | RS-5917 | |
Micro Dissecting Scissors 3.5″ Straight Sharp/Sharp20mm | Roboz Scientific | RS-5907 |