Summary

En høy gjennomstrømning MHC II Binding Assay for kvantitativ analyse av peptidepitoper

Published: March 25, 2014
doi:

Summary

Biokjemiske analyser med rekombinant humant MHC II molekyler kan gi raske, kvantitative innsikt i immunogent epitope identifikasjon, sletting, eller design. Her blir et peptid-MHC II-bindingsanalysen skalert til 384-brønners plater som er beskrevet. Denne kostnadseffektive format bør være nyttige innen protein deimmunization og vaksine design og utvikling.

Abstract

Biokjemiske analyser med rekombinant humant MHC II molekyler kan gi raske, kvantitative innsikt i immunogent epitope identifikasjon, sletting, eller design 1,2. Her blir et peptid-MHC II-bindingsanalysen skalert til 384-brønnformat. Den nedskalert protokollen reduserer reagenvolumer kostnadene med 75% og er høyere gjennomstrømning enn tidligere beskrevet 96-brønners protokoller 1,3-5. Nærmere bestemt tillater den eksperimentelle utforming robust og reproduserbar analyse av opp til 15 peptider mot en MHC II allel pr 384-brønners ELISA-plate. Ved hjelp av en enkelt væskehåndtering robot, gir denne metoden en forsker for å analysere omtrent nitti testpeptider i triplikat over et område av åtte konsentrasjoner og fire MHC II-allel typer i mindre enn 48 timer. Andre som jobber innen protein deimmunization eller vaksine design og utvikling kan finne protokollen til å være nyttig i å tilrettelegge eget arbeid. Spesielt de trinnvise instruksjoner og visuelt formatav Jove bør tillate andre brukere å raskt og enkelt skape denne metodikken i sine egne laboratorier.

Introduction

Proteiner er den raskest voksende klassen av terapeutiske midler 6, og den raske utvidelsen av bioterapeutiske rørledninger har fokusert økende oppmerksomhet på utfordringer knyttet til utvikling og bruk av protein narkotika. En unik faktor stammer fra det faktum at, i en sunn og fungerende immunsystem blir alle ekstracellulære proteiner samplet av antigen-presenterende celler (APCer). Når internalisert av APC, er et protein spaltes i små peptid fragmenter, og antatte immunogene segmenter er lastet inn i sporet i klasse II store histocompatibility komplekse proteiner (MHC II). De peptid-MHC II-kompleksene blir deretter vist på APC overflate, og sann immunogene peptider, betegnet T-celle-epitoper, danner ternære II MHC-peptid-T-celle-reseptor-komplekser med beslektede CD4 T-celleoverflatereseptorer 7. Denne kritiske molekylær anerkjennelse hendelsen initierer en kompleks signalering kaskade, noe som resulterer i T-celleaktivering, utgivelsen av cytokins, CD4 T-celle-mediert B-celle modning, og til slutt produksjon av sirkulerende IgG antistoffer som binder seg til og fjerne den fornærmende eksogene protein. Dermed kan immunogene proteiner bli deimmunized ved å identifisere konstituerende T-celle epitoper og mutere viktige rester ansvarlige for MHC II kompleks formasjon. Det bærer bemerker imidlertid at T-celle epitoper kan være mange og bredt fordelt gjennom immunogene proteiner, og de fleste av epitop-sletting mutasjoner vil sannsynligvis føre til en utilsiktet tap av proteinfunksjon eller stabilitet. Derfor, engineering deimmunized biotherapies kan være en kompleks og teknisk utfordrende mål, men det finnes flere eksempler på vellykkede T celle epitop sletting prosjekter 3,5,8-12. I motsetning til pode-baserte "menneskeliggjøring", som i stor grad begrenset til antistoff legemiddel, kan epitope sletting brukes på omtrent alle tenke protein mål uansett rekkefølge, struktur, funksjon, eller tilgjengeligheten av homologooss menneskelige stillaser. Det første skrittet til å implementere en slik tilnærming er identifisering av viktige peptidepitoper innebygd i målet protein sekvens.

Høy gjennomstrømning biokjemiske analyser ved hjelp syntetiske peptider og rekombinante humane MHC II molekyler kan gi raske foreløpige innsikt i epitop identifisere og redusere 1,3-5. Disse ELISA typen analyser kan være et kraftig supplement til andre protein / vaksine design og utviklingsverktøy. For eksempel, en godt etablert eksperimentell tilnærming til epitop kartlegging er avhengig av tid, arbeid og ressurskrevende ex vivo celleproliferasjon analyser 15. I korthet blir den primære sekvens av et målprotein først delt inn i et panel av overlappende peptider, ofte 15-mers med 12 rester overlapping mellom tilstøtende peptider. Peptidet panelet blir kjemisk syntetisert og immunogenisiteten av hvert peptid testes i en av flere forskjellige immunologiske målinger som anvender perifere blood mononukleære celler (PBMC) ble isolert fra humane givere 13,14. For å gi større tillit til resultatene, er peptider vanligvis testet i replikere med PBMC fra 50 eller flere ulike givere. I tilfeller der deimmunization er det ultimate målet, er arbeidet forsterkes ytterligere av behovet for å produsere flere paneler av muterte peptider og teste de nye peptid paneler i PBMC analyser før innføring eventuelle deimmunizing mutasjoner i full lengde protein for påfølgende funksjonsanalyse 10. Selv om disse cellulære analyser forblir gullstandarden for vurdering av immunogene potensial i humane pasienter, kan effektiviteten av en slik metode uttømmende forbedres ved prefiltering putative immunogene epitoper ved hjelp av en hurtig og høy gjennomstrømning II MHC-peptid-bindingsanalyse.

På samme måte kan biokjemiske peptid-MHC II-bindingsanalyser kombineres med prediktiv in silico metoder for å radikalt akselerere epitop identifikasjonsprosessen.Det finnes en rekke dataverktøy for T-celle epitop prediksjon; eksempler inkluderer ProPred 16, MHCPred 17, SVRMHC 18, ARB 19, SMM-align 20, NetMHCIIpan 21 samt proprietære verktøy som EpiMatrix etter EpiVax 22. Likeledes har epitop prediktorer nylig blitt kombinert med andre bioinformatikk og molekylær modelleringsverktøy for å vike integrerte protein deimmunization algoritmer designet for å redusere risikoen for at deimmunizing mutasjoner kan forstyrre protein struktur og funksjon 23-26. Mens flere epitop prediktorer har vist seg å være rimelig nøyaktig 27,28, beregningsresultatene alltid kreve eksperimentell validering. Rapid, høy gjennomstrømning, og kostnadseffektive eksperimentelle metoder som er best egnet som en foreløpig filter for i silikofluorid epitope spådommer.

På samme måte, kan epitop prediktorer kjøre antigen utvalg for omvendt vaccinology 29,30. For eksempel, har fremskritt innen bioinformatikk ga hele genomet skjermer som raskt identifiserer vaksinekandidater i form av hele proteiner eller peptidepitoper hentet fra patogen proteomes. Selv om dette slik teknologi er omforme oppdagelse og utvikling av beskyttende vaksiner, introduserer det en ny utfordring i form av intractably store lister over immunogene vaksinekandidater. Høy gjennomstrømming peptid-MHC II bindingsanalyser kan veilede epitope valg ved å tallfeste peptid bindingsaffiniteten og bindende promiskuitet blant flere MHC II alleler. Som med protein deimmunization, er slike eksperimentelle metoder til slutt nødt til å validere beregnings prediksjon av lovende vaksine fører.

Her blir et peptid-MHC II-bindingsanalysen skalert til 384-brønnformat beskrevet. Protokollen er svært parallelliserte og reduserer reagenvolumer kostnadene med 75% sammenlignet med tidligere beskrevet 96-brønns plate formater 1,3-5. Ved hjelp av et enkelt avviklingd håndtering robot, gir denne metoden en forsker å enkelt analysere omtrent nitti test peptider i tre eksemplarer over et utvalg av åtte konsentrasjoner og fire MHC II allel typer i mindre enn 48 timer. Denne artikkelen beskriver oppsett av en 384-brønnen ELISA-plate for analyse av syv eksperimentelle peptider mot en MHC II allel, men regneark kalkulatorer er gitt som supplerende materiale, slik at det enkelt kan skalere eksperimentet til en rekke ønskede peptider og / eller MHC II molekyler.

Protocol

Fire store aktiviteter omfatter peptid-MHC II bindende analysen: 1-Binding: Test peptider konkurrere med merkede kontroll peptider for løsning fase binding av løselig MHC II proteiner. Binding blir målt over et bredt område av peptid-konsentrasjoner test. 2-Capture: Etter binding reaksjonen nærmer seg likevekt, har peptid-MHC II-komplekser fanget og skilt fra ubundet peptid-og protein ved konformasjon avhengig gjenkjenning med et immobilisert antistoff. 3-Detection: Captured kontroll peptid er kvantitativt oppdaget…

Representative Results

Den modne peptidsekvensen av Enterobacter cloacae P99 beta-lactamase (BLA) (Genbank ID # X07274.1) ble analysert med ProPred 16 for putative peptid bindemidler til MHC II allele DRB1 * 1501 (tabell 4). ProPred identifisert 117 nonamer peptider med en obligatorisk P1 anker residuum (dvs. en M, L, I, V, F, Y, W or i stilling 1, som er nødvendig for MHC II-bindende 31). På en 5% grensen, peptider bare med score større enn eller lik 2,6 er sannsynlige bindemidler. …

Discussion

Biotherapeutics har etablert seg som en hjørnestein i moderne medisin, som representerer fire av de fem som selger narkotika i 2012 32. Sektoren Biopharmaceutics har vist vedvarende vekst i flere år 6, og den pågående utviklingen av nye midler, samt fremveksten av biosimilars har utvidet biofarmasøytisk rørledninger. Se fremover, vurdere og dempe immunogenisitet av protein legemiddelselskap vil bli en integrert del av tidlig stadium biotherapeutic utvikling. For å lette denne prosessen, kan …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH tilskudd R01-GM-098 977 og R21-AI-098122 til CBK og KEG. RSS ble støttet delvis av en Luce Foundation Fellowship og delvis av en Thayer Innovation Program Fellowship fra Thayer School of Engineering.

Materials

Sodium Tetraborate Decahydrate Sigma 221732
Citric Acid Sigma C1901
Dibasic Sodium Phosphate Sigma S7907
Trizma HCl OmniPur 9310
Tween-20 Sigma P7949
100% DMSO Sigma D8418
Octyl-β-D-Glucopyranaside Fischer 29836-26-8
Pefa Bloc SCF Roche 1158591600
Dulbecco’s 10X Phosphate Buffered Saline Invitrogen 14200-166
DELFIA Assay Buffer Perkin Elmer 4002-0010
DELFIA Enhancement Buffer Perkin Elmer 4001-0010
Europium Labelled Streptavidin Perkin Elmer 1244-360
L243 anti-HLA-DR antibody Biolegend 307602
Biotinylated tracer peptides 21st Century Biochemicals Custom Order
Test peptides (1-4mg, 85% purity) Genscript Custom Order
Purified HLA-DRB1 monomers (non-biotinylated) Benaroya Research Institute* Custom Order
384-well white EIA/RIA plate Thermo 460372
Polypropylene 384-well plate Costar 3656
Film, AxySeal, 80 µm, ELISA Applicator  Axygen Asicentific PCR-SP
MilliQ Water N/A N/A
Epimotion Liquid Handler (or similar) Eppendorf 5075
Select TS Plate Washer (or similar) BioTek 405
SpectraMax Gemini Microplate Reader (or similar) Molecular Devices N/A
*Recombinant human MHC II molecules can be obtained from the Benaroya Tetramer Core Laboratory. See: https://www.benaroyaresearch.org/our-research/core-resources/tetramer-core-laboratory

References

  1. Steere, A. C., et al. Antibiotic-refractory Lyme arthritis is associated with HLA-DR molecules that bind a Borrelia burgdorferi peptide. J. Exp. Med. 203, 961-971 (2006).
  2. Raddrizzani, L., et al. Different modes of peptide interaction enable HLA-DQ and HLA-DR molecules to bind diverse peptide repertoires. J. Immunol. 159, 703-711 (1997).
  3. Osipovitch, D. C., et al. Design and analysis of immune-evading enzymes for ADEPT therapy. Protein Eng. Design. 25, 613-623 (2012).
  4. Moise, L., et al. In silico-accelerated identification of conserved and immunogenic variola/vaccinia T-cell epitopes. Vaccine. 27, 6471-6479 (2009).
  5. Moise, L., et al. Effect of HLA DR epitope de-immunization of Factor VIII in vitro and in vivo. Clin. Immunol. 142, 320-331 (2012).
  6. Aggarwal, S. R. What’s fueling the biotech engine-2011 to 2012. Nat. Biotechnol. 30, 1191-1197 (2012).
  7. Trombetta, E. S., Mellman, I. Cell biology of antigen processing in vitro and in vivo. Ann. Rev. Immunol. 23, 975-1028 (2005).
  8. Warmerdam, P. A. M., et al. Elimination of a human T-cell region in staphylokinase by T-cell screening and computer modeling. Thrombosis Haemostasis. 87, 666-673 (2002).
  9. Jones, T. D., et al. Identification and removal of a promiscuous CD4+T cell epitope from the C1 domain of factor VIII. J. Thrombosis Haemostasis. 3, 991-1000 (2005).
  10. Harding, F. A., et al. A beta-lactamase with reduced immunogenicity for the targeted delivery of chemotherapeutics using antibody-directed enzyme prodrug therapy. Mol. Cancer. 4, 1791-1800 (2005).
  11. Mazor, R., et al. Identification and elimination of an immunodominant T-cell epitope in recombinant immunotoxins based on Pseudomonas exotoxin A. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, E3597-E3603 (2012).
  12. Cantor, J. R., et al. Therapeutic enzyme deimmunization by combinatorial T-cell epitope removal using neutral drift. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 1272-1277 (2011).
  13. Kern, F., LiPira, G., Gratama, J. W., Manca, F., Roederer, M. Measuring Ag-specific immune responses: understanding immunopathogenesis and improving diagnostics in infectious disease, autoimmunity and cancer. Trends Immunol. 26, 477-484 (2005).
  14. Li Pira, G., Ivaldi, F., Moretti, P., Manca, F. High throughput T epitope mapping and vaccine development. J. Biomed. Biotechnol. 2010, 325720 (2010).
  15. Hoffmeister, B., et al. Mapping T cell epitopes by flow cytometry. Methods. 29, 270-281 (2003).
  16. Singh, H., Raghava, G. P. ProPred: prediction of HLA-DR binding sites. Bioinformatics. 17, 1236-1237 (2001).
  17. Guan, P., Doytchinova, I. A., Zygouri, C., Flower, D. R. MHCPred: bringing a quantitative dimension to the online prediction of MHC binding. Appl. Bioinformatics. 2, 63-66 (2003).
  18. Wan, J., et al. SVRMHC prediction server for MHC-binding peptides. BMC Bioinformatics. 7, 463 (2006).
  19. Bui, H. H., et al. Automated generation and evaluation of specific MHC binding predictive tools: ARB matrix applications. Immunogenetics. 57, 304-314 (2005).
  20. Nielsen, M., Lundegaard, C., Lund, O. Prediction of MHC class II binding affinity using SMM-align, a novel stabilization matrix alignment method. BMC Bioinformatics. 8, 238 (2007).
  21. Nielsen, M., Justesen, S., Lund, O., Lundegaard, C., Buus, S. NetMHCIIpan-2.0 – Improved pan-specific HLA-DR predictions using a novel concurrent alignment and weight optimization training procedure. Immun. Res. 6, 9 (2010).
  22. De Groot, A. S., Knopp, P. M., Martin, W. De-immunization of therapeutic proteins by T-cell epitope modification. Dev. Biol. 122, 171-194 (2005).
  23. Choi, Y., Griswold, K. E., Bailey-Kellogg, C. Structure-based redesign of proteins for minimal T-cell epitope content. J. Comput. Chem. 34, 879-891 (2013).
  24. Parker, A. S., Choi, Y., Griswold, K. E., Bailey-Kellogg, C. Structure-guided deimmunization of therapeutic proteins. J. Comput. Biol. 20, 152-165 (2013).
  25. Parker, A. S., Griswold, K. E., Bailey-Kellogg, C. Optimization of therapeutic proteins to delete T-cell epitopes while maintaining beneficial residue interactions. J. Bioinform. Comput. Biol. 9, 207-229 (2011).
  26. Parker, A. S., Zheng, W., Griswold, K. E., Bailey-Kellogg, C. Optimization algorithms for functional deimmunization of therapeutic proteins. BMC Bioinformatics. 11, 180 (2010).
  27. De Groot, A. S., Martin, W. Reducing risk, improving outcomes: Bioengineering less immunogenic protein therapeutics. Clin. Immunol. 131, 189-201 (2009).
  28. Wang, P., et al. A systematic assessment of MHC class II peptide binding predictions and evaluation of a consensus approach. PLoS Comput. Biol. 4, e1000048 (2008).
  29. Sette, A., Rappuoli, R. Reverse vaccinology: developing vaccines in the era of genomics. Immunity. 33, 530-541 (2010).
  30. Moise, L., Cousens, L., Fueyo, J., De Groot, A. S. Harnessing the power of genomics and immunoinformatics to produce improved vaccines. Expert Opin. Drug Discov. 6, 9-15 (2011).
  31. Sturniolo, T., et al. Generation of tissue-specific and promiscuous HLA ligand databases using DNA microarrays and virtual HLA class II matrices. Nat. Biotechnol. 17, 555-561 (1999).
  32. . Biologic drugs set to top 2012 sales. Nat. Med. 18, 636 (2012).
  33. Seib, K. L., Zhao, X., Rappuoli, R. Developing vaccines in the era of genomics: a decade of reverse vaccinology. Clin. Microbiol. Infect. 18, 109-116 (2012).
  34. Jiang, W., Boder, E. T. High-throughput engineering and analysis of peptide binding to class II MHC. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 13258-13263 (2010).
  35. Justesen, S., Harndahl, M., Lamberth, K., Nielsen, L. -. L. B., Buus, S. Functional recombinant MHC class II molecules and high-throughput peptide-binding assays. Immun. 5, 1-20 (2009).

Play Video

Cite This Article
Salvat, R., Moise, L., Bailey-Kellogg, C., Griswold, K. E. A High Throughput MHC II Binding Assay for Quantitative Analysis of Peptide Epitopes. J. Vis. Exp. (85), e51308, doi:10.3791/51308 (2014).

View Video