Abstract
受伤的中枢神经系统轴突不能再生，经常收回远离损伤部位。轴突从最初幸免受伤以后可能发生二次轴索变性。缺乏生长锥形成，再生，和附加有髓轴突突起损耗脊髓内极大地限制了神经恢复以下损伤。评估脊髓髓鞘轴突如何中央到损伤响应，我们开发了一种体外活脊髓模型利用表达黄色荧光蛋白在轴突和一个联络和高度可再现激光诱导脊髓损伤的转基因小鼠，记录的命运轴突和髓磷脂（亲脂性的荧光染料尼罗红）随时间使用双光子激发时间推移显微镜。如急性弥漫性轴索损伤，轴索回缩，和髓鞘变性动态过程研究的最佳实时。然而，挫伤为主受伤和运动伪影的非焦点自然界中在体内脊髓成像化妆区分使用高分辨率的显微镜具有挑战性的原发性和继发性轴索损伤反应。此处所描述的体外脊髓模型模拟的临床相关挫伤/压缩诱导轴突病理学的几个方面，包括轴索肿胀，球体形成，轴突横断，和周围的轴突溶胀提供了有用的模型来研究在实时这些动态过程。这种模式的主要优点是极好的时空分辨率，可以让初次损伤的直接损伤轴突和继发性损伤机制之间的差异;试剂直接向灌注液沐浴帘线控输注;精确的改变的环境氛围（ 例如，钙，钠离子，已知的贡献者轴突损伤，但几乎不可能在体内操纵）;和小鼠模型也提供了一个优点，因为它们提供了一个机会，以可视化和操纵基因鉴定细胞群和亚细胞结构。在这里，我们将介绍如何隔离和图像从小鼠活脊髓捕捉急性弥漫性轴索损伤的动态。
Introduction
轴突变性是发病的一个显着原因跨越多个神经系统疾病，包括神经外伤，中风，自身免疫和神经退行性疾病。不像外周神经系统（PNS），中枢神经系统（CNS）的轴突具有有限的能力来再生一旦由于内在的和外在的障碍（ 即，抑制分子，以在髓鞘退化期间瘢痕形成产生和释放的轴突生长）1受伤-7。尽管一些这些障碍已被广泛研究，治疗干预的目的是防止中枢神经系统轴突变性，促进强劲的轴突再生，并恢复功能可连接地，仍然有限。
一旦从它们的体细胞中分离的轴突发生退化称为沃勒变性，其特征是轴索肿胀，球体的形成和最终破碎（8综述）的刻板过程。在相反，所述近端残端保留在与横断外围轴突胞体的连续性，形成一个膨胀的端部，模具回郎飞的最近的节点，然后可以开始生长锥的形成，一个重要的先决条件必需的后续轴突再生9-11。与此相反，许多中央轴突的近端轴突末梢形成特性“endbulbs”或回缩灯泡，不能形成生长锥，而是缩回远离损伤位点的地方，他们伤害12-15后保持数月。除了主轴突损伤，附加轴索损害/损失也可能发生于在很大程度上从初始损伤幸免轴突。最初幸免轴突此延迟轴突损失被称为次级轴突变性。 CNS轴突损伤这个固有响应呈现功能轴突再生更加难以实现的目标，在脑和脊髓。
虽然公顷轴突损伤（ 例如，球体的形成，回缩灯泡）的llmarks已良好表征从验尸组织和轴突变性的实验模型中，这些动态过程的分子机制的阐明已受到限制。这些研究大多依赖于静态终结点意见，即天生没有捕捉到随着时间的推移个人轴突响应。虽然外源施加轴索示踪剂是有益的，从静态部分，并在实时成像澄清轴索反应，遗传编码的轴突标记的可用性极大地提高了可视化实时轴突使用荧光显微镜的能力。的确，从Kerschensteiner和同事开创性报告中使用大鼠Thy1-GFP-S小鼠在送他们的预测在脊髓的背神经元列的子集，编码绿色荧光蛋白最初提供的轴索变性和再生的直接证据体内线16。实时成像方法，使用双光子激光扫描显微镜（TPLSM）和兴趣细胞的基因荧光蛋白标记继续提供直接证据和机械洞察到许多不同的动态过程，如轴突变性， 钙离子信号，轴突再生，星形胶质细胞生理学，小胶质细胞生理学和损伤反应17-25。
在对比轴突，很少是已知的髓鞘反应到损伤的实时性。髓鞘是由中枢神经系统和雪旺氏细胞在PNS少突胶质细胞产生和维持白质的重要组成部分。髓鞘绝缘99％的轴突的表面，并通过这样做提供了支持高效快速的跳跃式脉冲传播，最近由Buttermore 等人 26审查的高电阻，低电容保护覆盖物。捕捉髓鞘的动态响应损伤我们使用溶剂化，亲脂性荧光染料尼罗红27。此活力染色的溶剂化性质允许其发射光谱是依赖于物理化学环境28,29的光谱的移位。这些性质是有用的洞察axomyelinic损伤机制，并且可以使用适当选择分光镜和发射滤光片被可视化，或者使用光谱显微镜27解决。例如，尼罗红的发光光谱是蓝移的极性较小的，富含脂质的环境中，例如在脂肪细胞和正常CNS髓磷脂（峰值发射〜580-590纳米）27中。与此相反，在〜625纳米的形成为轴突endbulbs这种活体染料的发光光谱的峰进行轴突顶梢枯死27。虽然特别是在endbulbs与正常髓鞘这些光谱变化背后的确切机制尚不清楚，这种光谱变化可能揭示潜在的改变蛋白质的积累，或混乱导致暴露的疏水性的结合位点27。
而在体内成像是观察脊髓性轴索损伤动力在他们自然环境的最终指标，它在技术上是具有挑战性的，需要大量的专业知识手术，并经常重复手术暴露背列可能会引入实验工件（ 如炎症和疤痕形成）。此外，昂贵的设备，通常需要以允许悬浮液的显微镜物镜下一个完整的动物和定位。动物需要进行仔细的监测，以及确保它们保持温暖，以确保流体被补充，并保证有缺氧由于长时间麻醉成像会议迹象。后者是非常重要的，因为轴突和髓鞘绝对需要不断的灌注和充足的氧气水平来保持活力。然而，这往往是没有报道或在大多数体内研究监测，以日期。此外，运动伪影由于心脏和呼吸（异氟烷麻醉成年鼠：〜300-450次每分钟（BPM）是最佳的维持97-98％的氧饱和度（正常率〜632 BPM）和〜55-65呼吸每分钟（正常率为〜每分钟163次呼吸），分别）） 在体内脊髓成像化妆过程中遇到的30区分使用高分辨率荧光显微镜挑战，因为即使是最快的激光扫描原发性和继发性轴索损伤反应不可避免地受到这些运动文物。进展超快共振扫描仪结合的可植入椎骨刚性框架窗口可以允许在清醒的动物的鼠脊髓的成像，但更快的扫描时间不可避免地降低了信号噪声比恶化图像质量。作为目前用于脑成像在脊髓的成像技术进一步改进可以克服许多这样的障碍，并限制由INA引入潜在的困惑dequate组织灌注， 如，31-33。
很多东西被知道关于脑白质生理和白质损伤的机制已利用体外或视神经，周围神经和脊髓白质34-41条体外制剂白质决定的。这些准备工作继续推进我们的脑白质损伤机制的知识，因为它们允许控制在变化的环境因素，在活组织控制应用药物和试剂，使用电功能的评估，和轴突的直接荧光显微镜观察和髓鞘。然而，一些以前的方法，观察脊髓背柱条或腹白质条轴突在拆除阶段，可能会影响密切相轴突响应不可避免地伤害面神经轴突。为了充分利用该实验操作上面，避免损坏已经在调查RY纤维，我们使用的体外脊髓型颈椎病的模型，因为它可以防止电源线背方面的直接接触。因此，隔离在软脑膜和邻近浅表背柱轴突的架构仍然是可行的，泰然自若。
在这里，我们描述了一个相对简单的方法，使中央有髓轴突的直接可视化，因为它们对一个病灶性损伤的实时动态响应多达8 - 损伤后10+小时。激光诱导脊髓损伤（Lisci酒店）模型允许保持空间受限随着时间的推移原发性和继发性轴索损伤的机制为主要病变（消融部位）之间的差异。开浴成像室可以访问治疗干预，试剂递送和环境操作。推定axomyelinic保护剂可以通过直接观察与冗长和昂贵的实验涉及的组织的过程可以快速评估实时荷兰国际集团，切片，染色，图像采集和分析，从而提供了一个有用的代理模型测试实验药剂中活的动物时，必须评估急性反应和保护性操作。
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Protocol
注：所有动物的程序都在通过在路易斯维尔大学的机构动物护理和使用委员会设定的指导方针进行，秉承联邦法规。
1.准备低钙和2毫米的Ca 2+人工脑脊液（学联）的灌流液
- 制备2倍低的Ca 2+（0.1毫摩尔）库存C缓冲区，2倍正常的Ca 2+（2mM的）股票缓冲剂，和2x库存B缓冲液，如表1所记载的单个储液允许的离子含量修饰（ 例如，低或零的Ca 2+），并且可以储存在4℃下进行长达一个月。
- 解剖时心脏内灌注，加入100 ml 2倍低钙股票C和100毫升2X B股成塑料瓶，使1X低钙学联。混合存储一夜之间在4°C或作出新的。
- 对于先体外后体内脊髓IMAG期间灌注荷兰国际集团，加入500毫升2倍正常的Ca 2+股票A和500毫升的2倍B股为1升的玻璃瓶，产生1个学联。混合存储一夜之间在室温或作出新的。
- 调节pH脑脊液缓冲器至7.4。同时保持脑脊液在室温下，将低的Ca 2+脑脊液在冰上，然后气泡两个缓冲器与卡波金气（95％O 2; 5％CO 2）30分钟前，在灌注期间使用和连续进行。
2.准备离体成像商会
- 换一个加热毯（无自动关闭）各地学联瓶，调整热量低/中设置。
- 插入一个专用的脑脊液灌注线成连接到灌注泵和直列加热器是由一个双极温度控制器和反馈温度探头控制， 如图1A中的瓶子。
- 安装一台显微镜阶段插入（152×102毫米），双光子激发/ conf目录OCAL显微镜阶段配有溢出容器。
- 放置一个大型的开放式浴室灌注腔（宽×长×高12×24毫米x 8毫米）到溢出容器来容纳和提供新鲜的含氧学联连续流向体外脊髓（ 见图1B一个合适的前体内成像室设计）。
- 直列加热器的金属输出端口连接到使用合适的管道的离体成像室。放置一个薄吸收垫的离体成像室下方，以帮助在成像期间保持缓冲器/组织的温度。
- 坚持体外成像室使用可拆卸黏粘性的溢出容器/台插入底部。粘性粘性的延展性将允许根据需要，以确保目标的光路垂直于组织表面的腔室，以进行调整。如有必要，可使用一个靶心级别调整室。
- 安全的邻近该腔室的流体入口直列加热器反馈温度探测器和一个不锈钢吸管连接到在腔室出口处的真空线。磁带和适当的微量持有者在这方面是有用的。打开真空源上。
- 打开灌注泵开始填充成像室与含氧脑脊液。将灌注泵每分钟1.5-2毫升。
- 通过调整真空控制线学联在成像室的容积。有足够的脑脊液中的成像室，以覆盖脊髓节段，并允许水浸渍物镜和组织表面之间有足够的工作距离是很重要的。髓鞘和轴突，可以产生不利影响，如果该组织的部分没有完全新鲜的含氧学联淹没，导致实验者诱发文物。
- 调整直列加热器温度控制器，使灌流液温度在成像室是接近室温。
- 通过注入经腹腔注射麻醉戊巴比妥钠（200毫克/千克）的过量安乐死的成年6-10周龄THY1 -YFP转基因小鼠（用适当的菌株，在背根神经节细胞荧光蛋白的表达）。
- 一旦在麻醉状态下的正常水平（ 例如，没有反应，捏脚趾和损失瞬目反射），仔细刮皮肤上的脊髓和脑外科快船。使用优碘和70％的乙醇垫清洁皮肤。
- 喷用70％乙醇胸部/腹部区域，然后使用冷冻，卡波金鼓泡低钙灌注受试者transcardially 2+脑脊液。 （参见图1C的建议剥离台式成立）。
- 由于肝脏相形见绌，用小夹子固定灌注针插入心脏。把题目交给访问的剃背侧主体和擦拭用70％乙醇的剃的区域。
- 使背部皮肤切口沿着用解剖剪，以暴露脑和脊柱（ 图2A）从鼻子开始髋中线。通过将销的鼻子和臀部保护的准备。
- 从这点上使用解剖显微镜，牢牢贯穿头骨的背表面处嗅球的水平。插入的剪刀尖端插入切口的侧向边缘之一，并沿着黄芩双边直到小脑的边缘切割。
注意：不要完全切除黄芩，因为它是以后需要从整个解剖脊髓解除覆组织（ 见图 2b）。 - 提起黄芩，露出大脑。轻轻切interparietal骨（位于小脑）的左和右边缘，并将其拉回尾端以暴露脑干/脊髓（ 图2C
- 使用以45°角的表面保持细尖剪刀切椎骨双边只是不如后神经根。
注：避免与明亮的白色背柱接触。这些纤维是那些将被成像（ 图2D），并且可以很容易损坏。 - 解除脊柱的黄芩和背表面用细尖镊子，轻轻拉动上覆组织在一块作为切口以暴露脊髓。继续椎骨切到上胸椎水平隔离颈髓用于后续的成像（ 图2E）的1-2厘米的段。
- 用剪刀剪下平行组织/骨脊柱和清晰的组织柱下方。做出这些削减尽可能水平。这是很重要的，该组织平躺在腔室，使得所述帘线是用于成像的水平。
- 使用＃11手术刀横切脑干（过去终端）和的竹叶纤维束的纤维在胸上段的水平隔离颈脊髓节段（ 见图2F）。用剪刀剪下组织/骨这些相同的两个点。孤立的组织应包含脊柱涵盖尾脑干，颈膨大，和上胸段脊髓（ 图2G）的2/3。
- 把孤立的脊柱成卡波-冒泡，冷冻低钙培养皿2+脑脊液。如果需要的话，修剪脊柱下方的组织，直到它位于平盘。
- 分离的脊柱转移到离体成像室，并逐渐增加灌注液温度用1小时〜36 - 37℃。保持成像在这个温度。
4.放置离体脊髓到成像室和髓鞘标签与尼罗红
- 小心确保脊柱在i-maging室用合适的接头片按住改性与垂直网格平台由细莱卡线程（删除网格平台的中间螺纹以允许脊髓空间;参见图3A）。
- 解冻的尼罗红的等分试样（5mM储备在DMSO和0.22微米的过滤;可在4℃下，或6个月，在-20℃下在黑暗中储存1个月）。刚刚加入尼罗红到成像室之前，降低灌注泵的流量，并调整真空管线，以确保在该室中的流体总是覆盖脊髓。
- 添加5-10微升尼罗红原液到成像室附近的线（ 图3B）的尾端。用1毫升吸管轻轻拌匀尼罗红在整个室。允许尼罗红留在腔室1-2分钟，然后将真空线返回并调节灌注泵以每分钟1.5-2毫升连续灌注脊髓。
- 小心抬起显微镜阶段并对准目标的脊髓节段的中心和内侧上背列，直到水浸泡的目的是从腔室中的脑脊液的表面约10毫米。使用显微镜物镜转换器调焦轮慢慢把目标，直到它轻轻触及学联的表面。使用落射荧光光源向背侧列聚焦成的视图（ 图3C）的字段。
鼠标脊髓TPLSM和激光诱导脊髓损伤5. 离体成像（Lisci酒店）
注：后静脉提供了有用的标记物，以居中的组织作为竹叶纤维束纤维（从背根神经节的细胞体发起和从T6升到并沿着脊髓的中线下方）平行于该血管中。较厚的YFP +颈脊神经后根的预测也提供了一个有用的指标作为纤维升降的横向到Y指纹+竹叶纤维束纤维的直径小。
- 一旦脊髓组织适当排列，切换到激光扫描模式进行升序竹叶纤维束髓纤维基线成像。激发二者的YFP和尼罗红，用调谐到950纳米的波长（〜17毫瓦在25X，1.1 NA物镜的出口测量）和适当的分光镜（DM）和带通滤波器的双光子激光源，以隔离荧光发射荧光团的（我们使用五十零分之五百二十五DM560，60分之600DM640和七十〇分之六百八十五，对YFP和尼罗红分离成黄 - 橙，和扩展红色通道，分别地）。
- 如果轴突的3％以上的显示期间基线成像（30-60分钟）的轴突球状体，丢弃该制剂由于实验者诱发工件。
- 诱发Lisci酒店通过放大来看，以30.3X场（创建〜20微米直径的消融）。调谐激光器至800nm，并且增加激光的功率，以〜110毫瓦样品。允许看激光扫描完成5场，以确保纤维完全切断。
- 确认Lisci酒店通过改变激光设置恢复到成像设置（950纳米，17毫瓦的样品，2.08X）和扫描组织以可视化的消融。验证在消融的直径和该初级烧蚀轴突完全横断（ 见图3D）。使用显微镜及Z的捕获时间推移设置记录轴突和髓磷脂损伤达8-10小时+损伤后的动态响应。
注意：如果消融术是不完整的（ 即纤维横断不全），弃去准备，作为测定原发性和继发损伤的机制将被混淆。此外，分离的脊髓节段可以被成像到24小时后Lisci酒店只有轻度至中度Lisci酒店无关的组织损伤。
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Representative Results
的一个适当的实验室设置隔离，保持生存能力需要，和图像的信息的体外脊髓示于图1的显微镜需要配备一个可调谐脉冲飞秒激光器，适当dicroics和发射滤波器，和一个水浸渍物镜具有高数值孔径（≥1.0）。以确保在解剖脊髓存活，程序应该在冷冻含氧低的Ca 2+脑脊液的存在下，使足够的Ca 2+为隔离轴突膜以密封42来执行。如果不这样做可能会导致axomyelinic损害，包括髓鞘从axolemma分离和轴突的球体形成过程中的基线成像清晰可见。解剖过程和体外脊髓隔离的代表性图像示于图2。下述分离的脊髓的生存能力是米由含氧学联连续灌流其保持在36-37℃，aintained。然后髓鞘污点尼罗红27,43可以被添加到灌注腔，和薄束纤维束的基线记录 有髓鞘的轴突可开始（ 图3）。
竹叶纤维束髓鞘的轴突的代表性图像示于图4中 。在基线条件下缩时TPLSM录音揭示平行对齐的YFP +轴突ensheathed在髓鞘（尼罗红）配有沿轴突的长度基本上恒定的直径。一些轴突球状体或轴突变性等形态的迹象都存在。由于尼罗红的溶致变色特性和髓磷脂的脂肪和蛋白质含量，髓鞘染色橙黄色，而行假定少突胶质细胞体的出现暗橙色（ 图4A）。细节如郎飞的节点，也可以解决（ 例如，箭头 在10分钟以下Lisci酒店，位于吻端和尾鳍的消融部位立即切断轴突（原发性损伤）开始收回远离损伤部位，并形成内肿气球髓鞘S形般的线圈。髓鞘远程鞘轴突到消融出现在这个时间点不变。 40分钟后Lisci酒店最主要的横断轴突和轴突发生继发变性（ 即从最初的侮辱，但后来退化幸免），形成特色endbulbs，因为他们从病灶部位（ 图4B）收回。其中大约横断轴突的三分之一进行泛碎片，其中近段第一膨胀，形成轴突球状体，并最终横断轴突到轴突43几个不规则的长度。从轴突（围轴索肿胀）和髓鞘变性水泡髓磷脂的分离也很明显。随着时间的推移，小学和中学TRAN剪刀剪下轴突继续回缩远离病灶部位，轴突立即侧翼消融部位发生继发变性及周边轴索肿胀变得更加突出，以及髓鞘肿胀，水泡变性（ 图4D-G，也见43）。轴突回缩的程度上明显的差异变得近端轴突树桩（尾病变）及远段（延髓病变），它们注定要经历沃勒变性（ 图4D-G）之间的明显。轴突最初由Lisci酒店幸免经历延迟继发变性（ 图4H）。代表性的对照实验没有Lisci酒店，表明长成像会议（在这个例子帘线分离后长达13小时）是可能的，而不会造成不良影响，以白质完整性 （ 图4I，J）。 代表高RESO的Lisci酒店后axomyelinic变化lution图像示于图5。 通过Lisci酒店后3小时，几个近端（尾部）轴突已经回缩远离病灶部位，他们仍然认为已经分居远离轴突髓鞘肿胀管内。其他轴突endbulbs看似由髓鞘（ 图5A）为上限。相邻的消融部位轴突作二级变性而其他出现不受影响。 YFP低/负假定囊泡（淡蓝色）的轴突内轴突endbulbs也存在。在对比尾端回缩纤维，大部分吻侧缩回轴突endbulbs和球状体在3小时后Lisci酒店的强烈标记用尼罗红（以下蓝移）表示轴突（ 图5B）内的环境变化。尼罗红标记的积极缩回轴突内的地区出现，主要围绕或封顶的轴突的核心。尽管精确的位置和IDE这些帧内轴突尼罗红标记的结构ntity目前未知的，它们可表示经由轴突运输和/或切割的蛋白质暴露它们的疏水核心27密囊泡积累。尼罗红标记的髓鞘仍主要是橙黄色的正常表现髓鞘。在区分，尼罗红探测水泡髓鞘显示为黄色（即蓝移）表示，这些结构中的环境变化。 7小时后Lisci酒店轴突继续回缩远离病灶部位;但是，这是在延髓（ 图5D）与尾部（ 图5C）endbulbs更加明显。其他轴突经历完全或部分崩解留下一个空髓鞘管或细秸秆几微米远离退化段。尼罗红Lisci酒店后延迟应用揭示了类似的轴突标签的预申请尼罗红的暗示是，消融本身和蛋白质变性的潜在热效应不大可能负责尼罗河红色光谱变化的髓鞘和轴突损伤后（ 图5E，F）。 总的来说，这些数据说明了体外 Lisci酒店模型来模仿公知的，但知之甚少急性axomyelinic损伤机制中的实时的效用。因此，该模型可能是我们进一步脑白质损伤的病理生理知识非常有用，并发现关键分子的目标，以保护白质的完整性。 表1：人工脑脊液（ACSF）缓冲器。 
图1：解剖和成像设置概述。 （A）建议设置为脊髓体外成像。所必需的主要设备包括：卡波金（95％O 2/5％CO 2）的气体管线充氧的脑脊液，一个灌注泵递送卡波金-BUB放血脑脊液通过配有一个温度反馈探针直列加热器/温度控制器设备，并配有一个真空源的开放式设计，浴成像室。（B）的成像浴室的较高放大倍数示出。（C）的一个建议建立灌注和体外脊髓解剖。冰鲜低钙学联是含氧与卡波和用于解剖过程中保持脊髓生存能力。 请点击此处查看该图的放大版本。 
图2：脊髓成像的隔离（A）在连续冷冻，含氧低的Ca 2+灌注skulLCAP露出。（B）的一个切口通过头骨在嗅球（虚线）的电平的背表面进行。（℃）双边切口穿过黄芩的横向边界，然后制成直到它可以是平缓提升和拉尾侧（箭头的方向），以暴露脑干。（d）继续双边切口用细尖剪刀剪开椎骨的横向方面和暴露背列（箭头）。（E）的暴露的脑干和整个颈膨大到脊髓上胸段被示出。（F）中的两个切口与若干11手术刀刀片是由在脑干隔离脊髓，超越竹叶纤维束轴突终端和上胸椎水平（虚线）。（G）中的分离的脊髓，然后转移到含有冷冻低钙培养皿2+脑脊液鼓泡卡波气体。颈背根（ 例如，箭头），背根神经节，并且从上胸段脑干（〜15-20毫米）的脊髓则保留。 G中比例尺：2毫米请点击此处查看该图的放大版本。 
图3：成像体外脊髓（A）中一旦放置在该腔室中，脊髓组织，使用经修饰的组织/切片按住装有莱卡螺纹固定（B）中的髓鞘染色尼罗红直接加入。成像室。（c）一种水浸泡目标被浸入脑脊液和定位在薄束纤维束的纤维。 
图4：中央有髓轴突损伤 TPLSM 的Lisci酒店模型被用来捕获的轴突和髓磷脂的反应如下Lisci酒店（*）的动态。代表性的图像被显示为五个1微米厚的光学切片捕获最大强度的预测，在0.24微米/像素用Nikon A1RMP +多光子/共聚焦显微镜配备一个25X; NA：1.1; WD为2mm水浸物镜。标准分光镜和发射滤光片进行分离的YFP +轴突（50分之525DM560，以蓝色示出）和溶剂化亲脂性荧光染料尼罗ř编辑成短（六十〇分之六百DM640，以绿色显示）和更长（七十〇分之六百八十五纳米，显示为红色）的排放通道。后两种滤波器组合是有利的，因为它们捕获尼罗红的已知不同的物理化学环境光谱的变化。（A）在基准条件轴突（YFP +，蓝）和髓鞘（NR，橙黄色）出现通常面向少数球体或其他标志axomyelinic伤害。胶质细胞与白质少突胶质细胞（NR，深橙， 例如箭头）特性形态的行也是可见的（一些标记为清楚起见），和精细结构，例如郎飞的节点也解决（ 例如箭头）。（B）的在10分Lisci酒店后，位于吻端和尾鳍患处横断轴突开始收回远离损伤部位，形成S形般的线圈（箭头）内肿髓鞘。髓鞘从消融鞘轴突远程出现在该时间点不变。（℃）乙ý40分钟后Lisci酒店最初级横断轴突和轴突发生继发变性形式特性endbulbs因为他们从病灶部位（箭头）缩回。一些横断轴突也形成沿它们的轴突（箭头）的长度球体。从轴突（关节周围轴索肿胀）和髓鞘的水泡性变性分离髓鞘也很明显（+）。（DG）。随着时间的推移，主要和次要受伤轴突继续回缩远离病灶部位，并如图YZ突起在Lisci酒店，初步幸免轴突侧翼消融部位经受延迟继发变性（H，Lisci酒店前左侧面板，中间面板后10分钟Lisci酒店，并Lisci酒店后右侧面板7小时;白色圆点标记的初始Lisci酒店，红色圆点表示轴突10分钟和绿点损失表示轴突延迟继发变性的7小时的范围内）。围轴索肿胀成为在稍后的时间点后Lisci酒店更为突出。范围Ø˚F轴突回缩和近端轴突树桩以及它们的远端段之间轴索endbulbs的形态也变得明显（也可参见图5为更高倍率图像）。比例尺：50微米请点击此处查看该图的放大版本。 
图5：对Lisci酒店 TPLSM 后axomyelinic变化代表高清晰度图像用于捕获轴突与髓鞘的错综复杂的细节，在3小时的变化尾部（A，C）和喙（B，D）伤害（A，B）和7小时（C，D）以下Lisci酒店。代表性的图像被显示为三个1微米厚的光学切片的最大强度的预测在0.0832微米/像素用Nikon A1RMP +多光子/共聚焦显微镜捕获。（A）的尾侧到Lisci酒店（*），有几个轴突（蓝色）是从病变部位缩回距离（大箭头）肿髓鞘管内（黄橙色）已经从轴突endbulb分离开。相邻的消融部位一些轴突作二级变性（小箭头），而其它似乎不受影响。 YFP低/负假定囊泡（淡蓝色）的轴突内轴突endbulbs存在（箭头）。郎飞（N）的中心节点也清晰可见使用这种成像和标记技术。（B）相对于尾侧回缩纤维，大部分吻侧回缩轴突endbulbs和球体在3小时后Lisci酒店强烈标有尼罗河红色（粉红色）。在回缩轴突尼罗红标记的地区出现，主要围绕或盖YFP标记轴突（蓝色，大箭头）。虽然这些尼罗红标记的性质编结构目前是未知的，它们可表示经由轴突运输和/或切割的蛋白质暴露它们的疏水核心致密囊泡积累。在区分，尼罗红标记的水泡性髓鞘（箭头）出现相对于正常髓鞘（黄橙色）黄色（即光谱蓝移），指示内前推定的环境变化。围轴索肿胀也很明显（小箭头）。在Lisci酒店7小时后，轴突继续从病变部位缩回距离;但是，这是在延髓（D）相对于尾侧（C）的 endbulbs更加明显。一些轴突经历完全或部分崩解留下一个空髓鞘管（箭头C）或薄的茎数微米远离退化段（在D中的小箭头），分别为。尼罗红推迟应用产生的尾相似的光谱变化对延髓中央髓鞘的轴突（E和 F （C，D）。比例尺：10微米请点击此处查看该图的放大版本。 2个股票A（2毫米的Ca 2+） 试剂 毫米 氯化钠 252 氯化钾 6 氯化钙2•2H 2 O 4 2个B股 的NaH 2 PO 4 2.5 硫酸镁 4 碳酸氢钠 52 葡萄糖（D-葡萄糖） 20 2倍低钙股票C（0.1毫米的Ca 2+） 氯化钠 252 氯化钾 6 氯化镁•6H 2 O 3.8 氯化钙2•2H 2 O 0.2
Name
Company
Catalog Number
Comments
Large bath chamber with slice supports
Warner Instruments
RC-27L
For ex vivo imaging chamber
Standard Slice Supports
Warner Instruments
SS-3
For ex vivo imaging chamber
Plastic Slice hold-down for RC-27L and RC-29 chambers
Warner Instruments
SHD-27LP/10
For ex vivo imaging chamber
Suction Tube, Series 20 Classic Design, left handed
Warner Instruments
ST-1L
For ex vivo imaging chamber
Solution In-line heater/cooler
Warner Instruments
SC-20
To regulate perfusate temperature during imaging
Bipolar temperature controller
Warner Instruments
CL-100
To regulate perfusate temperature during imaging
Liquid Cooling System
Warner Instruments
LCS-1
To regulate perfusate temperature during imaging
Cable assembly for heater controllers
Warner Instruments
CC-28
To regulate perfusate temperature during imaging
Replacement bead thermisitor for CC-28 cable
Warner Instruments
TS-70B
To regulate perfusate temperature during imaging
Magnetic holder with suction tubing
Bioscience Tools
MTH-S
To hold the stainless steel vacuum suction tubing
Adjustable holder
Bioscience Tools
MTH
To hold the temperature probe
clear silicone sealant
For ex vivo imaging chamber
superglue
For ex vivo imaging chamber
thin plexiglass strips
For ex vivo imaging chamber
nile red
Life Technologies
N-1142
For labeling myelin
References
Tags
神经科学，第93，脊髓损伤，轴突，髓鞘，双光子激发显微镜，尼罗红，轴索变性，轴突顶梢枯死，轴突回缩
