Summary

A Whole Cell Bioreporter Aanpak Verkeer en biologische beschikbaarheid van organische stoffen te evalueren in Water Onverzadigde Systems

Published: December 24, 2014
doi:

Summary

Een hele cel bioreporter test met Burkholderia sartisoli RP037-mChe is ontwikkeld om fracties van een organische verontreiniging (dwz fluoreen-) beschikbaar voor bacteriële degradatie na actief transport door mycelium overbruggen met lucht gevulde poriën in een water onverzadigd modelsysteem detecteren.

Abstract

Bioavailability of contaminants is a prerequisite for their effective biodegradation in soil. The average bulk concentration of a contaminant, however, is not an appropriate measure for its availability; bioavailability rather depends on the dynamic interplay of potential mass transfer (flux) of a compound to a microbial cell and the capacity of the latter to degrade the compound. In water-unsaturated parts of the soil, mycelia have been shown to overcome bioavailability limitations by actively transporting and mobilizing organic compounds over the range of centimeters. Whereas the extent of mycelia-based transport can be quantified easily by chemical means, verification of the contaminant-bioavailability to bacterial cells requires a biological method. Addressing this constraint, we chose the PAH fluorene (FLU) as a model compound and developed a water unsaturated model microcosm linking a spatially separated FLU point source and the FLU degrading bioreporter bacterium Burkholderia sartisoli RP037-mChe by a mycelial network of Pythium ultimum. Since the bioreporter expresses eGFP in response of the PAH flux to the cell, bacterial FLU exposure and degradation could be monitored directly in the microcosms via confocal laser scanning microscopy (CLSM). CLSM and image analyses revealed a significant increase of the eGFP expression in the presence of P. ultimum compared to controls without mycelia or FLU thus indicating FLU bioavailability to bacteria after mycelia-mediated transport. CLSM results were supported by chemical analyses in identical microcosms. The developed microcosm proved suitable to investigate contaminant bioavailability and to concomitantly visualize the involved bacteria-mycelial interactions.

Introduction

Grond wordt dichtbevolkt door een groot aantal micro-organismen zoals bacteriën 1,2. Echter, omstandigheden in deze habitat zijn uitdagend, vooral in termen van de beschikbaarheid van water 3. Bacteriën permanent te zoeken naar optimale omstandigheden in heterogene omgevingen 4, maar de afwezigheid van continue water films resulteert in beperkte mobiliteit 5 belemmeren hen om vrij te verspreiden. Ook diffusiesnelheden van opgeloste stoffen (bijv nutriënten) verlaagd onder onverzadigde omstandigheden 6. Aldus bacteriën en voedingsstoffen worden vaak fysiek gescheiden en toegankelijkheid nutriënt beperkt 3. Bijgevolg kan een transport vector chemische verbindingen die een continue waterfase niet vereist helpen om deze beperkingen te overwinnen. In feite hebben vele micro- organismen zoals schimmels en Oomycetes een filamenteuze groeivorm waarmee zij groeien door met lucht gevulde poriën waardoor het bereiken mobi ontwikkeldlizing ook fysiek gescheiden voedingsstoffen 7 en 8 koolstofhoudende stoffen over lange afstanden. Ze kunnen zelfs fungeren als biologische vervoer vectoren die suikers en andere energiebronnen om bacteriën 9 leveren. Opname en transport in mycelium organismen is ook aangetoond voor hydrofobe organische verontreinigingen zoals polycyclische aromatische koolwaterstoffen (PAK's) in Pythium ultimum 10 of arbusculaire mycorrhiza 11. Aangezien PAK zijn alomtegenwoordig en slecht in water oplosbare verontreinigingen 12 in de bodem, zou-mycelium gemedieerd transport helpen om verontreiniging biobeschikbaarheid voor potentiële bacteriële afbrekers verhogen. Dat de totale hoeveelheid verontreinigingen transport direct kunnen worden met chemische middelen 10, biobeschikbaarheid van verontreinigingen met mycelia vervoerd afbrekende bacteriën en andere organismen kunnen niet gemakkelijk worden beoordeeld.

Het volgende protocol toont een werkwijze om de invloed van myce evaluerenlia op verontreiniging biobeschikbaarheid om bacteriële afbrekers op een directe manier; staat het verzamelen van informatie over de spatiotemporele invloed van verontreinigingen op de microbiële ecosystemen. We beschrijven hoe het opzetten van een uitgebreid onverzadigd microkosmos systeem nabootsen van lucht-water-interfaces in de bodem door het koppelen van een fysiek gescheiden PAK puntbron met PAK-afbrekende bioreporter bacteriën via mycelial vervoer vectoren. Omdat de lucht vervoer is uitgesloten, kan het effect van mycelium vervoer op basis van PAK biobeschikbaarheid voor bacteriën worden bestudeerd in een geïsoleerde manier. Meer in detail werden drierings PAK fluoreen, het mycelium organisme Pythium ultimum en bioreporter bacterie Burkholderia sartisoli RP037-mChe 13 toegepast in de beschreven microkosmos setups. De bacterie B. sartisoli RP037-mChe werd oorspronkelijk gebouwd om fenantreen stromen naar de cel 14 bestuderen en tot expressie versterkt groen fluorescent proteïne (eGFP) als gevolg van de PAH fluxde cel, terwijl de rode fluorescerende mCherry constitutief wordt uitgedrukt. Gedetailleerde informatie over de verslaggever bouw wordt gegeven door Tecon et al. 13 In voorproeven, de bacterie bleek geen zwemmen en slechts zeer langzaam zwermen vermogen. Het kon langzaam migreren op hyfen van Pythium ultimum wanneer toegepast als een dichte suspensie bovenop de hyfen. Aangezien bacteriën werden ingebed in agarose in het volgende protocol leverde migratie hyfen optreden.

Met behulp van confocale laser scanning microscopie (CLSM), kan de bioreporter bacteriën direct gevisualiseerd in de microkosmossen en expressie van eGFP kan worden gekwantificeerd in verhouding tot het aantal cellen (evenredig met de mCherry signaal) met behulp van de software ImageJ. Dit maakt vergelijking biobeschikbaarheid kwalitatief verschillende scenario (dwz hoger of lager). FLU werd gevonden biologisch beschikbaar na het mycelium vervoer door P. te zijn ultimum (dat wil zeggen, hethoger dan in een negatieve controle). Bovendien is het protocol wordt beschreven hoe u het totale bedrag van-mycelium gemedieerd transport via chemische middelen te kwantificeren en verontreiniging biologische beschikbaarheid controleren met behulp van silicium gecoate glasvezels (SPME vezels) in identieke microkosmos. Resultaten van deze microcosm ingesteld zijn gepubliceerd en besproken voor de combinatie van P. ultimum, fluoreen en B. sartisoli RP037-mChe 15. Hier ligt de focus op een gedetailleerde beschrijving methode en de identificatie van mogelijke valkuilen van het protocol bij deze kennis bieden voor mogelijke verdere toepassingen. Verdere toepassingen kunnen diverse schimmels, bacteriële soorten (bijvoorbeeld van verontreinigde locaties) te betrekken, en andere verontreinigingen (bijvoorbeeld pesticiden) of verontreiniging-aanbod (bv leeftijd bodems).

Protocol

1. Voorbereiding van de gerechten, dia's en Incubation Chambers Bereid het volgende materiaal voor elke microkosmos: één grote plastic petrischaal bodem (d = 10 cm), een gewijzigd (zie stap 1.2) kleine plastic petrischaal bodem (d = 5 cm) met deksels en een telkamer glijbaan met drie gaatjes. Neem het gewenste aantal petrischaal onderste delen (d = 5 cm). Verwijder een deel van de rand met een zaag precies past een dia (26 mm rand lengte). Om het systeem te steriliseren, geniet petrischaal bod…

Representative Results

De hier gepresenteerde resultaten zijn reeds eerder 15 gepubliceerd. Verwijzen wij u naar het artikel voor gedetailleerde mechanistische en milieu-discussie. Na beeldopname via CLSM kan een maximum intensiteitsprojectie worden uitgevoerd met respectieve microscoop software of ImageJ een eerste visuele indruk van het monster en de controles (figuur 2) te verkrijgen. Later kunnen de gegevens anders worden geprojecteerd om betekenisvolle eigenschappen specifieke visu…

Discussion

De gepresenteerde microkosmos setup geschikt gebleken om de biologische beschikbaarheid van ruimtelijk gescheiden chemicaliën studeren aan een vernederende organismen na opname en transport door mycelium. Potentiële gasfase vervoer van gedeeltelijk vluchtige verbindingen wordt voorkomen en bacteriële bioreporter cellen kunnen worden gevisualiseerd zonder uitgebreide monstervoorbereiding en dus met een minimale verstoring van de gevoelige systeem. Tegelijkertijd, kan chemische analyse van het monster gemakkelijk worde…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Funding by the German Environmental Foundation (DBU) is acknowledged. The authors thank Ute Kuhlicke for technical help with CLSM analysis and Birgit Würz, Rita Remer, and Jana Reichenbach for skilled experimental help. The authors would particularly like to thank Prof. Jan Roelof van der Meer and Dr. Robin Tecon for fruitful discussion and providing the bioreporter strain. It contributes to the ‘Chemicals in the Environment’ (CITE) research program of the Helmholtz Association.

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Confocal Microscope Leica TCS SP5X, LAS AF – Version 2.6.1; or equivalent CLSM
GC HP 7890 Series GC and Agilent 5975C MSD Agilent an equivalent GC/MS may be used
GC capillary column J&W 121-5522              Agilent
Cork borer Fisher Scientific 12863952 or any other
Cover slips Marienfeld 107222 High performance, No.1.5H
GC/MS insterts WICOM WIC 47080
GC/MS vials 2 ml WICOM WIC 41150
Lids / septa for screw cap vials DIONEX 49463 / 049464 
Lids for GC/MS vials WICOM WIC 43948/B
Objective Slides Menzel ordinary
PDMS coated glass fibers Polymicro Technologies, Inc. V (PDMS) = 13.55 ± 0.02 µL m-1
Petri Dishes small / big Greiner 633-102 / 628-102
Screw cap vials 40 ml DIONEX 48783 other glass vials may be used
Screw cap vials 60 ml DIONEX 48784 other glass vials may be used
Acenaphthylene d08 Dr. Ehrenstorfer C 20510100
Acetone Carl Roth 9372.2
Activated carbon Sigma-Aldrich 242276-1kg
Agarose Carl Roth 2267.4
Fluorene Fluka 46880
Kanamycin sulfate Carl Roth T832.2 50 mg L-1
Methanol Carl Roth P7171
Minimal Medium: 100 mL solution 1 + 25 mL solution 2 + 5 mL solution 3 ad. 1000 mL aqua dest
  Solution 1
    Ammonium sulfate  Carl Roth 3746.1 5 g L-1 
    Magnesium chloride x 6 H2O Carl Roth 2189.1 1 g L-1
    Calcium nitrate x 4 H2O Carl Roth P740.1 0.5 g L-1
  Solution 2
    Disodium phosphate Carl Roth P030.1 55.83 g L-1
    Monopotassium phosphate Carl Roth 3904.1 20 g L-1
  Solution 3 pH 6.0
    Disodium EDTA MERCK 1084180250 0.8 g L-1
    Iron(II) chloride x 4 H2O MERCK 1038610250 0.3 g L-1
    Cobalt(II) chloride x 6 H2O Carl Roth T889.3 4 mg L-1
    Manganese(II) chloride x 1 H2O        Carl Roth   4320.2 10 mg L-1
    Copper(II) sulfate Carl Roth  P023.1 1 mg L-1
    Sodium molybdate x 2 H2O Carl Roth  0274.1 3 mg L-1
    Zinc chloride MERCK 1088160250 2 mg L-1
    Lithium chloride Carl Roth P007.1 0.5 mg L-1
    Tin(II) chloride x 2 H2O Carl Roth 4473.1 0.5 mg L-1
    Boric acid Riedel-de-Haen              11606 1 mg L-1
    Potassium bromide Carl Roth A137.1 2 mg L-1
    Potassium iodide Carl Roth 6750.1 2 mg L-1
    Barium chloride Carl Roth 4453.1 0.5 mg L-1
MMA Minimal medium + agarose 0.2 %
Phenanthrene d10 Dr. Ehrenstorfer C 20920100
Potato Dextrose Agar: 24 g L-1 broth + bacto-agar 1.5 %; pH 6.8
    Potato Dextrose broth Difco/ Beckton Dickinson 254920
    Bacto-agar Difco/ Beckton Dickinson 214040
Sodium acetate x 3 hydr. Carl Roth 6779.1
Sodium sulfate MERCK  1066495000
Toluene MERCK 1083252500
mTY medium: 3 g L-1 yeast extract, 5 g L-1 bacto tryptone and 50 mM NaCl
    Yeast extract Merck 1037530500
    Tryptone Serva 4864702
    Sodium chloride Carl Roth 3957.1
imageJ with logi tool plugin http://rsb.info.nih.gov/ij/download.html and http://downloads.openmicroscopy.org/bio-formats/4.4.10
Pythium ultimum strain 67-1 Obtained from the lab of Dr. Christoph Keel; Department of Fundamental Microbiology, University of Lausanne, Switzerland
Burkholderia sartisoli RP037-mChe Obtained from the lab of Prof. Jan Roelof van der Meer; Department of Fundamental Microbiology, University of Lausanne, Switzerland

References

  1. Holden, P. A., Fierer, N. Microbial processes in the vadose zone. Vadose Zone Journal. 4, 1-21 (2005).
  2. Whitman, W. B., Coleman, D. C., Wiebe, W. J. Prokaryotes: The unseen majority. Proceedings of the National Academy of Sciences. 95, 6578-6583 (1998).
  3. Kieft, T. L., et al. Microbial abundance and activities in relation to water potential in the vadose zones of arid and semiarid sites. Microbial ecology. 26, 59-78 (1993).
  4. Wang, G., Or, D. Aqueous films limit bacterial cell motility and colony expansion on partially saturated rough surfaces. Environ. Microbiol. 12, 1363-1373 (2010).
  5. Griffin, D. M., Parr, J. F., Gardner, W. R., Elliott, L. F. . Water Potential Relations in Soil Microbiology SSSA Special Publication. , 141-151 (1981).
  6. Papendick, R. I., Camprell, G. S., Parr, J. F., Gardner, W. R., Elliott, L. F. . Water Potential Relations in Soil Microbiology SSSA Special Publication. , 1-22 (1981).
  7. Boswell, G. P., Jacobs, H., Davidson, F. A., Gadd, G. M., Ritz, K. Functional consequences of nutrient translocation in mycelial fungi. J. Theor. Biol. 217, 459-477 (2002).
  8. Jennings, D. H. Translocation of solutes in fungi. Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. 62, 215-243 (1987).
  9. Bais, H. P., Weir, T. L., Perry, L. G., Gilroy, S., Vivanco, J. M. The role of root exudates in rhizosphere interactions with plants and other organisms. Annu. Rev. Plant Biol. 57, 233-266 (2006).
  10. Furuno, S., et al. Mycelia promote active transport and spatial dispersion of polycyclic aromatic hydrocarbons. Environ. Sci. Technol. 46, 5463-5470 (2012).
  11. Gao, Y., Cheng, Z., Ling, W., Huang, J. Arbuscular mycorrhizal fungal hyphae contribute to the uptake of polycyclic aromatic hydrocarbons by plant roots. Bioresour. Technol. 101, 6895-6901 (2010).
  12. Semple, K. T., Morriss, A. W. J., Paton, G. I. Bioavailability of hydrophobic organic contaminants in soils: fundamental concepts and techniques for analysis. Eur. J. Soil. Sci. 54, 809-818 (2003).
  13. Tecon, R., Binggeli, O., vander Meer, J. R. Double-tagged fluorescent bacterial bioreporter for the study of polycyclic aromatic hydrocarbon diffusion and bioavailability. Environ. Microbiol. 11, 2271-2283 (2009).
  14. Tecon, R., Wells, M., vander Meer, J. R. A new green fluorescent protein-based bacterial biosensor for analysing phenanthrene fluxes. Environ. Microbiol. 8, 697-708 (2006).
  15. Schamfuss, S., et al. Impact of mycelia on the accessibility of fluorene to PAH-degrading bacteria. Environ. Sci. Technol. 47, 6908-6915 (2013).
  16. Smibert, R. M., Krieg, R. M., Gerhardt, P., Murray, R. G. E., Costilow, R. N., Nester, E. W., Wood, W. A., Krieg, N. R., Phillips, G. B., et al. . Manual of methods for general bacteriology. 19, 409-443 (1981).
  17. Wu, C. H., Warren, H. L. Natural autofluorescence in fungi and its correlation with viability. Mycologia. 76, 1049-1058 (1984).
  18. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat. Methods. 9, 671-675 (2012).
  19. Pedersen, C., Sylvia, D., Mukerji, K. G. Ch. 8 Concepts in Mycorrhizal Research. Handbook of Vegetation Science. Vol. 19, 195-222 (1996).
  20. Furuno, S., et al. Fungal mycelia allow chemotactic dispersal of polycyclic aromatic hydrocarbon-degrading bacteria in water-unsaturated systems. Environ. Microbiol. 12, 1391-1398 (2010).

Play Video

Cite This Article
Schamfuß, S., Neu, T. R., Harms, H., Wick, L. Y. A Whole Cell Bioreporter Approach to Assess Transport and Bioavailability of Organic Contaminants in Water Unsaturated Systems. J. Vis. Exp. (94), e52334, doi:10.3791/52334 (2014).

View Video