Abstract
常规方法实验操作微藻雇用大量培养物（20毫升至5升），以使培养能在整个实验1-7进行二次取样。大容量二次抽样可能会产生问题，原因如下：1）它引起的变化的总体积与表面积：在实验过程中培养的体积比; 2）伪复制（ 即复制从相同的待遇烧瓶8个样本）经常采用而不是真正的复制（ 即从重复治疗抽样）; 3）在实验的持续时间是有限的总体积;和4）纯性培养物或通常的细菌微生物是困难的，因为污染子采样期间通常发生在长期实验来维持。
使用微量滴定板的使1毫升培养体积要用于每个复制，与内多达48个独立的处理一12.65 X 8.5×2.2厘米板，从而降低了实验体积并允许广泛的复制子采样未经任何处理。此外，这种技术可以被修改以适应多种实验格式，包括：细菌藻共培养，藻类的生理测试，以及毒素筛选9-11。各孔用藻类，细菌和/或共培养物可以被采样为众多的实验室程序，包括但不限于：水 - 脉冲幅度调制（WATER-PAM）荧光，显微镜检查，细菌菌落形成单位（cfu）的计数和流式细胞术。微量滴定板格式和水的PAM荧光的组合允许光化学产量与样品中，高再现性之间的低变异性等光化学参数的多个快速测量，并避免了子采样一个大玻璃瓶或锥形瓶中在实验的过程中的许多陷阱。
Introduction
浮游植物生理学历来研究中尺度实验范围从20毫升锥形瓶中，以5升大玻璃瓶中1-7。这个试验规模需要二次抽样实验监测，作为牺牲重复样品对每个时间点创建一个无法控制的实验装置。
的能力，同时使用相同的昼夜培养箱空间通过小型化的实验量为藻类生理学实验将减少或消除二次抽样和伪复制的限制从大量增加的独立实验的数目。微孔板格式已经开发出用1毫升培养体积的实验操作藻可变的条件藻类生物测定。这种小规模的试验体积允许要增加重复的次数，增加实验重复性由于重复样品之间降低的变异性实验中，并且允许真复制，同时保持试验对照（ 即无菌藻类培养物）140天（ 图2）12。
这种微量滴定板形式很容易适应于多种实验问题，如：没有细菌具有与其藻宿主共生，中性或致病相互作用？是另外一种化合物刺激或有毒的藻类？这些和其它问题，可在使用这种新格式9-11快速高通量的方式加以解决。
48孔微量滴定培养皿允许每个1毫升井是一个独立的实验装置所采样的单个时间点。各种参数可以从这个1毫升体积包括被采样，但不限于：使用水-脉冲幅度调制（WATER-PAM）荧光（参见材料和设备表 ）1叶绿素荧光和光化学参数3。WATER-PAM荧光是一种快速，非侵入性的技术，可用于监测与藻类13进行的实验。它允许光合效率和PSII健康从小培养体积测量（150 - 300μl的文化在培养基中稀释到2 - 4毫升体积WATER-PAM）14,15。除了水-PAM荧光，这种设置可以用来测量各种其它参数，包括但不限于：显微镜可视化附着到的藻细胞和变化，藻细胞形态的细菌;细菌菌落形成单位（CFU）计数;和流式细胞仪对藻类细胞计数和识别的亚群。
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Protocol
1.计算实验装置
- 计算藻类和/或所需要的，这将需要为整个实验通过使用等式1控制细菌培养物的体积：
其中，y等于每天和z所需的控制的数目等于的天数。 - 计算是通过使用等式2所需要的共培养物的实验是藻类和/或细菌培养物的体积：
注：这是可能取代“联合培养”实验与任何复合屏幕;只是调整的最终化合物，溶剂和藻类的浓度，以适应实验设计。 - 使用方程1和2来计算早期指数藻培养物的最终体积（通常5天〜10 4个细胞/ ml，但本应由performi确定纳克藻类生长曲线）所需的试验（该体积是需要使用公式3步骤2.3）：
- 使用方程1和2计算为10 4 CFU / ml的细菌培养物（或期望的接种浓度）所需的试验（该体积所需的步骤4.2），使用等式4的最终体积：
注意：使用在步骤1.3和1.4考虑到移液误差的另外10 ml和所执行的任何测试（ 例如，水-PAM，流式细胞术，显微术等 ）对0 D。如果需要，以适应实验设计增加这个数量。
注：举一个例子计算一个8天的实验中看到第10章见补充表媒体食谱。
2.成长的藻类细胞的实验装置
- 隔离或获得积极增长的无菌藻类培养。
- 无菌转移藻类培养物的最终体积至无菌藻类介质（ 例如，L1或类似的海洋藻类介质，参见材料和设备表）的10％，从而确保1:9稀释藻培养物的新鲜培养基中。使用预先确定的生长条件，菌株生长在一个昼夜培养箱稀释藻（ 例如，18℃，16：8小时亮：暗循环常用）。
- 当培养物达到早期指数阶段，重新培养在相同的无菌藻类培养基的藻类（ 例如，L1或类似的海洋藻类介质中），确保了最终浓度为1:9稀释和藻类的最终体积是等于计算的V A（步骤1.3）。
注：为确保这些文化都是无菌是很重要的。由镀有20微升等分到一般的海洋细菌培养基（ 如海洋测试所有藻类媒体和藻类股票瓶污染肉汤2216补充有1.5％琼脂或类似的）。 - 生长藻类培养至早期指数阶段（〜10 4个细胞/ ml）。
注：每个藻菌株具有取决于培养条件独特的生长曲线。早期指数期（〜10 4个细胞/ ml），可以通过基于细胞密度进行藻类生长曲线（即用流式细胞仪或显微镜）测定的。
3.准备细菌细胞接种
- 通过执行一个生长曲线中所选择的细菌培养基和生长条件（预先决定的固定相的细菌的细菌浓度（CFU / ml）和光密度（OD）， 例如，海水肉汤2216在25℃和160转，或类似）。使用这些信息来增加细胞（步骤3.3），后来正确稀释的细胞在步骤3.7。
- 无菌从1.5％琼脂平板上（ 如海水肉汤2216柔顺传输一个孤立的和新鲜的成长菌落mented用1.5％的琼脂或类似的海洋细菌固体培养基）到5ml细菌液体介质（ 如的，海水肉汤2216或类似的海洋细菌培养基）。
- 生长在滚动筒或振动筛的细菌，以固定相（〜12 - 36小时，这取决于细菌）。计划的实验，使得细菌到达固定相（〜8月 10日至9月 10日CFU / ml）的同时，该藻细胞已达到早期指数期（〜10 4个细胞/ ml）。
- 使用移液管，冲洗附着于试管到培养基中的任何生物膜。吸管1毫升充分混合的细菌培养物进入无菌1.5毫升微型管。离心机在14000×g下1分钟。
- 取下并丢弃上清液（细菌性媒体）而不破坏颗粒（细菌细胞）。加入1毫升无菌藻类介质（ 例如，L1或类似）与微管 （带有粒料）。涡管以悬浮颗粒的藻类媒体。
- 二洗：重复步骤3.5。
注意：因为这可能会改变的营养成分，是洗的细菌细胞与藻类媒体以彻底所有的细菌培养基，细胞碎屑，排出体外的蛋白质和小分子从细胞的接种藻类与他们之前删除关键藻类介质或引入生物活性分子到屏幕上。 - 串联稀释洗涤细菌细胞中藻类介质，至最终浓度是100倍，比所期望的最终菌浓度（CFU / ml）的更浓缩。保存包含已清洗和稀释的藻类媒体步4.2细胞微管。
注：计划的基础上具有1的实验：0 d 1的比藻类到细菌。要做到这一点所需的初始细菌浓度为实验为10 4 CFU / ml的，所以在步骤3.7的初始细胞应连续稀释至10 6 CFU /毫升。
用于实验4.准备细菌人安装
- 制备4无菌蒸压玻璃锥形瓶中，并标记它们：1）“藻类控制烧瓶'，B）'稀释细菌库存烧瓶'，C）'细菌对照烧瓶'，以及d）'的共培养烧瓶'。
- 稀释菌悬液从 步骤3.7 1:99用无菌藻类介质至最终体积= V B（步骤1.4）。使稀释烧瓶标记稀释细菌的股票（步骤4.1）。
注意：在前面的例子中（步骤4.2），这1:99稀释给出10 4 CFU / ml的终浓度。旋流烧瓶混合细胞。 - 吸管V 控制从稀释细菌股票（步骤1.1），并把它放在细菌控制烧瓶中。
- 吸管V 控制无菌藻类介质进入细菌对照烧瓶（这是一个1：1稀释）。旋流烧瓶混合细胞和预留步7.3。
- 吸管V 共培养从稀释细菌股票烧瓶于共培养烧瓶中，设置烧瓶静置步骤6.1。
注意：当在相同的藻类进行多次共培养物一次（ 即，两个不同的细菌的共培养与一种对照菌株），有必要重新计算在V 共培养各菌株分别然后重复步骤4.5对于每个共培养分别。它也有必要提高在步骤1.3中计算出的V A为包括在公式5中所示两个共培养：
5.准备藻类的实验装置
- 轻轻混合初指数藻类培养（步骤2.4）与广口的枪头，直到细胞出现充分混合。
- 吸管V 控制从藻类股票瓶藻类控制烧瓶中。轻轻地用移液10毫升吸管。然后返回中日孵化藻类股票瓶。
- 吸管V 续无菌藻类介质向藻类控制烧瓶ROL（这是一个1：1稀释）。摇匀瓶中，发生在白天孵化器，直到需要的步7.4。
6.准备实验共培养
- 轻轻吸取V 共培养从藻库存烧瓶到来自步骤4.5的细菌共培养瓶中。返回共培养烧瓶中，昼夜培养箱直到需要用于步骤7.5。
注：细菌在细菌对照的浓度应等于细菌浓度在实验共培养。同样地，在藻类的藻类控制的浓度应等于藻类的浓度在实验共培养。由具有相同的初始细菌和藻类的浓度，人口密度可以在整个实验进行比较。
7.建立微量滴定盘
- 将一个无菌的48孔微量滴定板按照图1。标号上述含任一无菌稀释剂或非光合样品外井。
注：所述板孔的随机化可以为在同一天拍摄的样品进行。例如，象限1将在1天的实验中进行采样;应随机的井B2 - 4和C 2 - 4.保持板充满无菌溶液的周边， 如图1。
。样品放置在48孔微量滴定板的孔图1的示意图是要填充如下：列1和6中，孔A到F（ 
）填充用1ml的1×PBS（或其它无菌溶液/介质）。行A和F，水井2 - 8（ 
）填充用1ml细菌控制; ROWS B和E井2 - 8（ 
）填充用1ml藻类控制;行C和D，水井2 - 8（ 
）填充用1ml共培养。该板被分成4个象限（A2，A5，D2和D5），这些象限各自特定的抽样天1 - 4，这应该被随机化在整个板和相应标记。在每一天，我们劝随机藻类控制（ 
）和共培养（ 
使用随机数生成器）的孔中。标签盖在1×PBS中和/或细菌的对照孔，以防止藻类培养物的着色。
- 吸管1毫升1X磷酸盐缓冲液（PBS，pH 7.4）中或在如图1所示的适当的孔中其它无菌溶液。执行此缓慢和小心。 PBS陈会GE的藻类和/或共同培养液的离子强度，如果飞溅在其他井小心处理。
- 吸取1毫升细菌控制文化融入井标记细菌控制（ 图1）。吹打每块板，以避免细菌沉淀前晃动细菌瓶。
- 吸管1毫升藻类控制培养的成孔标记用宽口移液管尖（ 图1）控制藻类。作为定期漩涡藻瓶的细菌瓶。如果藻类趋于下沉或浮动，如需要保持一个统一的视觉文化漩涡的定期。
- 使用一个宽口移液管尖，吸管1毫升共培养中的适当的孔（ 图1）。作为定期漩共培养烧瓶中的藻类烧瓶中。
- 密封各板用封口膜和放置在一个昼夜培养箱中在期望的温度和日光照循环（18℃，16：8小时亮：暗循环常用）。离开在昼夜孵化器，直到准备板采取PAM读数（第8）。确保所有板都在相同的方向取向，以允许持续的光曝光。
- 就拿从PBS，藻媒体，藻股票和藻类控制20微升等分拖放到板的适当的非选择性培养基（ 如海水肉汤2216辅以1.5％琼脂）和孵化板在18 - 25℃，72小时测试的污染。如果增长出现在任何不应该含有细菌的溶液，然后将这些数据不应该被使用。
- 使用从藻类控制和共培养瓶中剩余的样品用于实验0 D的PAM荧光读数（见步骤8.1）采取的PAM荧光读数。任何其他0 D测量也应与剩余的藻类控制，细菌对照和共培养的样品进行的。
8.以PAM荧光的股票样本读数
- 零WATER-PAM与服用读数8日前无菌藻媒体在干净的试管。
- 吸移管将300μl来自藻类控制或共培养烧瓶到含有2.7毫升在实验中使用的相同的藻类介质的干净试管中。具有宽口移液管尖混合的样品和稀释液轻轻。
- 擦去从比色杯的用组织以外的所有指纹放置反应杯在水的PAM之前。
- 将试管成水-PAM。覆盖与帽的样品，并允许其暗适应3分钟。暗适应时间取决于藻类的物种，并且必须在实验中使用的特定藻来确定。由藻类昼夜孵化器16,17的黑暗周期的中间过程中采取WATER-PAM读数避免冗长暗适应时间（> 20分钟）。
- 暗适应后，打f 0的按钮。如果荧光读数大于3900，稀释样品1：1在藻类介质。暗适应额外3分钟，德EA新的读数。如果F 0或F 米读数仍高于3900，继续稀释样品1：1的在藻类介质直到在F 0和F 米读数都低于3900。
注意：请确认记录最终荧光时考虑到这些稀释液：例如，如果藻类样品稀释1：9从井的初始传送到稀释管中，然后在500藻类荧光读数应当由逆乘以稀释因子（在这种情况下，10）和该管的实际荧光然后5000。 - 设置F 0后，取饱和脉冲（SAT-PULSE）通过点击按钮SAT拿F M读读书，每90秒。读数之间的时间间隔可以根据藻菌株进行调整。丢弃样本。
- 重复步骤8.1 - 8.6对剩余的样品。
9.以PAM荧光从微量滴定盘读数
- 标签4藻类控制和井C2 - - 4细菌共培养（ 见图1板布局）> 3 ml，此井B2 6无菌样品管。
- 等分2.7毫升无菌藻类培养基到每个管中。
- 将管在白天孵化器，让他们适应新环境，以藻类生长，在30分钟时的温度。
- 之前从培养箱取出微量滴定板确保光穿透到暗适应井通过用铝箔（或类似）覆盖所述板，只取出金属箔，同时积极地从孔中转移培养到稀释管（步骤9.5限于 - 9.7）。
- 无菌通过缓慢上下抽吸混合第一微量滴定板孔（井B2）具有宽口移液管尖端。
- 获得从培养箱并无菌转移从井B2（ 图1）将300μl稀释管到其相应的样品管中具有宽口移液管尖（这是1:9稀释于培养基中的藻类的样品）。
- 重复步骤9.5 - 9.6，其余井（B3,4和C2 - 4）。
- 盖样品管用铝箔，并将其退回到周日孵化器，直到准备WATER-PAM。
- 8.7 - 按照步骤8.1中所述进行WATER-PAM读数。它返回到培养箱之前密封所述微量滴定板用封口膜。
- 在计划的时间间隔为实验的持续时间重复读数。的频率和取样的长度应计划在实验的开始。
10.实验样品
样品的实验是细菌（Phaeobacter gallaeciensis BS107）和微藻（ -贺株（CCMP3266））的为期10天的联合培养。它包括一个控制藻类，细菌控制，以及细菌，藻类试验共培养。
- 计算所需的细菌和藻类的股票数量（步骤1。1 - 1.4）
- 制备藻库存，以40ml为V A，由接种36毫升培养基4毫升藻并孵育直至早期指数增长，实现具有〜10 4个细胞/ ml（步骤2.1 - 2.4）的细胞密度。
- 通过稀释400μl的第3至40毫升藻媒体为V B所得的10 6 CFU / ml的细菌（细菌的最终浓度将是10 4 CFU / ml）的制备细菌库存烧瓶中。
- 细菌库存转移一半（20毫升）中的细菌对照烧瓶中并添加20毫升藻类介质，使细菌的控制。转移一半（20毫升）的藻类股票藻类控制烧瓶中，加入20藻类媒体毫升，以弥补藻类控制（第5）。传输剩余20毫升细菌库存到共培养烧瓶中，并与剩余的20毫升藻股票的混合来建立共培养（第6）。
- 吸管的1×PBS（pH7.4）中，对照和共培养在两个预标记的微量滴定板（ 图1）中，每孔1ml。用3毫升剩余的控制和共培养，使0 D的测量（CFU计数，水-PAM（第8节），显微镜观察的藻细胞形态，和藻类细胞固定于流式细胞仪）。
- 取水-PAM读数藻类控制和共培养，每天一次，10天，并始终在同一时间作为0 D测量是（第8部分）。
利益11.其它参数
- 确定细菌菌落浓度：执行所述细菌对照和共培养在无菌的1×PBS（或类似）的系列稀释，再滴板到海水肉汤2216补充有1.5％琼脂（或类似的），并观察菌落的生长的数量以确定细菌CFU / ml的每个孔18。
- 评估藻细胞浓度：修复藻类控制与合作培养与戊二醛的0.15％的最终浓度。孵育在液氮中黑暗中，然后快速冷冻10分钟，并在-80℃存储。过程上的流式细胞仪（FACS刀魂或类似）的所有样本来计算的藻细胞。
- 观察藻细胞形态：藻类培养，用显微镜（ 即光镜，萤光，或类似）的细菌，藻类共培养。
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Representative Results
WATER-PAM荧光读数。
WATER-脉冲幅度调制（PAM）荧光是一种快速而有效的方法来确定荧光（叶绿素含量代理）和藻类培养光合产量（PSII健康）。在PAM WINCONTROL软件生成原始数据值的表格（下面是对暗适于藻类样品的基本参数）：
f 0的=荧光暗适应的细胞的
F M =最大荧光饱和发光二极管后（LED）的脉冲
暗适应样品19 F的V / F M =（F M -F 0）/ F M =潜在的量子产率
PAM荧光有很多用途，可以给很多信息对人的光系统和健康GAE。此外，也有检测光适于样品时是重要的其它参数。为进一步阅读这些细节在这些评论13,16,20-23讨论。这些数据可以被转移到一个电子表格或制图软件生成的初始藻类荧光的曲线图（F 0），最大藻类荧光（F M），以及潜在的量子产率（F V / F M; 图2和3） 。如何藻类荧光和F V / F M是由细菌的影响通过比较单独（对 照）中生长的藻类，以它在图3中描绘的曲线正在生长与在共培养的细菌在整个10天的共培养实验（ 图3C）。在本实施例中，一个两样本t检验用于统计学上每天两个处理之间进行比较的参数。同样，对于实验，其中两个以上的治疗都存在，方差可以被使用。在F 米读（ 图3B）被直接拍摄后的饱和LED脉冲，这意味着在主PSII电子受体的QA充分降低，并且不能接受来自PSII反应中心P680任何更多的电子，因此，所有的反应中心是'封闭的“17。这阻碍了光化学利用光能，使荧光发射到最大。然后，这给出最大荧光（F M）读数。 图3C示出了第5天与10天之间的显着下降，PSII健康时共培养的细菌相比生长单独（对 照）。的标准误差条是来自于一式三份微量滴定孔，它们是从相同亲本细菌和藻类培养独立的实验。一贯小标准误差证实为藻类生物测定微量滴定板格式的鲁棒性和可重复性，因为它允许以用作REPLI独立实验凯茨并省去了二次采样实验装置在实验的持续时间。
的无菌-贺 （CCMP3266）一个140天的生长曲线图2.代表水-PAM荧光图形。（A）的读数为初始藻类荧光（F 0），（B）的最大藻类荧光（F M）和（ C）潜在的量子产率（F V / F M）为E.贺胥被示为黑色圆圈。最适合的适用于F 0和F M线是正常的日志3个参数（SIGMAPLOT）R 2 = 0.94，0.95，分别。潜在的量子产率（F V / F M）是光合作用的健康，其计算公式为一个无量纲式（F 米 - f 0的）/ F M。最适合的为F V / F M曲线线条是一个3系数多项式R 2 = 0.6。误差棒代表一式三份井之间的标准差。 请点击此处查看该图的放大版本。
一个10天共培养实验-贺 （CCMP3266）配Phaeobacter gallaeciensis BS107的图3代表水-PAM荧光图形。（A）中的初始藻类荧光（F 0），（B）的最大藻类荧光（F M）和（C）的潜在量子产量（F V / F M）被绘制为CONTRO升藻（空心圆）和藻共培养的细菌（黑色圆圈）。潜在的量子产率（F V / F M）是光合作用的健康，其计算公式为一个无量纲式（F 米 - f 0的）/ F 米 。误差棒代表一式三份孔之间的标准误差。星号（*）表示在其上的参数控制和共培养处理显著不同天。治疗之间的差异的所有日子除了10天在所有三个参数（10天非显著- f 0的：t检验，DF = 2.5，叔比= -15，p值= 0.0017 *; F M：叔测试中，DF = 2.1，T-比= -16.15，P = 0.003 *;˚FV / F M：t检验，DF = -18.68，t值= 2.0，p = 0.0028 *） 请点击这里查看一个更大的版本这个数字。
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Discussion
藻类生长在一个小型化的格式。
藻培养物在微量滴定板1毫升培养物体积的小型化允许一个实验中的复制增加。以确保藻是在整个实验的健康是非常重要的;执行一个生长曲线（ 图2），使用微量滴定板形式，以评估各种藻类介质，以确保满足所述藻类的营养需求。此外，为了优化昼夜周期（亮和暗期）和温度可能是重要的。适当的优化对于给定的藻类可以允许用于维持健康的藻类培养物在峰值荧光为26 D和后140天（ 图2）检测的潜在的量子产率。
减少蒸发作用。
它最大限度地减少基液体检测的蒸发作用作为一个“边缘效应”，重要的是常用Øbserved那里是在井的微量滴定板比在位于朝向该板的中部的孔的边缘更大的蒸发。而蒸发已经观察到，在板的边缘上，蒸发的速度并没有限制，实验的持续时间为健康藻类培养物，具有峰的荧光，在26 D一直保持在这一格式（ 图2）。为了尽量减少任何潜在的“边缘效应”，1×PBS（pH7.4）中，或其它无菌溶液，被等分到沿所有四个边（列A和H，行1和6， 图1）的孔中。
在一昼夜的孵化器照明。
酶标板都应具有相同的方向，在昼夜的孵化器。例如，纵向微量滴定板在恒温箱的取向是指板被放置沿着短轴。如果此取向时，藻类培养物沿长轴BG（ 图1）的工作经验可EA轻微光线和温度梯度由于来自光源的距离的变化（该灯泡是既轻又热的来源）。这已被观察到的其温度范围的极端影响藻类温度测定。因此，这不会影响大多数藻类在最佳温度下生长。为了尽量减少这种光线和温度梯度的影响，确保了较大的瓶不产生阴影，代替板在距灯一致的距离，使用遮阳布如果有必要，以减少光量，并检查光强度横跨的长轴昼夜培养箱，以确保它行进均匀。
暗适应藻类样品的WATER-PAM荧光。
前进行水-PAM的读数的，重要的是暗适应的藻类样品，以使PSII反应中心是完全打开，而光致transthylakoidal pH梯度完全消退，第我们提供真正的˚FO和F M值从计算˚FV / F M。取样在昼夜周期（ 即在黑暗阶段的中间，从该测定对于水的PAM测量的藻类，对于一个16：8小时亮：暗循环，一个2小时取样会议将在T（暗来执行）= 3 - 5小时），使暗适应时间短- = 7（3与光周期（T（光的中间相比5分钟）） - 9小时）时，暗适应较长（> 20分）17。藻类的暗适应时间也将取决于藻类物种，生长条件和其天然栖息地范围内的光的条件。
灵敏度WATER-PAM荧光读数。
水的PAM被设计为能够检测女，从低叶绿素样品F 0和F 米如海洋表层水16的超灵敏荧光计。因此它非常适合于miniatu授权的生物检测样品在哪里可以稀释。由于这种敏感性，理解的水-PAM机具有荧光读数的上限（ 即，F，F 0和/或F M）如果样品未充分稀释（ 图4）是重要的。内WINCONTROL软件的最大值是第一个显着按压f 0的和读出的f 0（后直接暗适应）之后。因此，该F和F m与在最大值4056（ 图4，编号2286）。的F和F 米的最大值取决于用于校准的水的PAM藻类介质的类型，但高于检测限的样品可以容易地识别，因为重复的读数具有相同的最大值发生直到样品充分稀释。后以1：1稀释于藻类介质中，较低浓度的样品是暗适应再次和F 0重复测量。在F值ppears被正确测量，但F 米仍然读取最大值4056（ 图4，编号2287）。该样品再稀释1：（ 图4中 ，没有2288）1在藻类介质再次与暗适应额外3分钟取另一个f 0的读出之前和获得有效的读数，所以下一次测量（F）的取和在F V / F M计算是有效的。 1的比例用介质，其需要被分解成的F M和F 0的计算：在这个例子中，将样品在1稀释两次。要注意使f V / F 米是很重要的，为F 0和F 米的直接函数，被错误地计算，如果样本被过于集中尽管是光合健康的一个无量纲的表达。
图4. WINCONTROL的藻类样品稀释来实现正确的稀释是连续几个WATER-PAM荧光读数显示，这个数字显示藻类荧光读数达到WATER-PAM机（红色框）的上限和那些一合适的稀释样品的已经实现（绿色方框）。此外，该图描绘了其他一些变量，这种方法计算，但这些都没有在这里详细讨论（见评论13,16,20-22）。 请点击此处查看该图的放大版本。
细菌污染。
在所有的实验中的藻类，藻类控制是必要的，因为藻类健康的基线，所以至关重要的是，它仍然是自由整个实验细菌污染。细菌污染发生容易，因为没有选择（如抗生素）和光合作用不断产生细菌生长新的有机碳。以避免污染的两个最重要的方法之一是，以确保所有的解决方案（ 例如，藻类介质的1×PBS，pH 7.4）中和设备在T = 0 D实验，并保持无菌技术而处理的微量滴定板的无菌。实验应为污染在每个时间点通过从所有藻类对照孔镀有20微升等分试样进行监测。如果污染是由任何藻对照孔的观察则这些水-PAM荧光读数应当指出并排除在数据分析。如果用于建立实验的溶液导致整个实验被污染，则丢弃该实验，所有污染的试剂，并再次启动。细菌对照和细菌藻共培养物也可以成为被污染和用于细菌菌落计数琼脂平板应交替菌落吗啉进行监测奥希斯。油井到井除去微量滴定板盖时，但很容易被不倾斜或晃动板上并且采用无菌技术在层流罩或附近的火焰避免交叉污染可能发生。
未来的应用。
这种小体积的生物测定通过组合一个微量滴定板形式使用水-PAM荧光提供了用于微藻快速筛选方法。的未来的应用实例是多方面的，而且可以包括成像的PAM荧光，它提供了在一个人口洞察PSII健康的细胞-细胞变异，因为它执行对单个电池24的PAM荧光。该生物测定法也可以结合使用显微镜和流式细胞仪如先前讨论的。同的电位，以提供进一步的深入了解彼此组合是细胞染色流式细胞仪和显微镜的藻培养物的亚群内澄清形态变异。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10 cu. ft. Diurnal incubator (6012-1) | Caron Corporate | 112310-6012-1-11 | www.caronproducts.com |
| Nunc EasYFlask 25 cm2, Vent/Close Cap, 7 ml working volume, 200/cs | Thermo Fisher Scientific | N156340 | www.fishersci.ca |
| Multiwell TC Plates – 48-well | BD Biosciences Discovery Labware | 353078 | www.bdbiosciences.com |
| P1000 Gilson The Pipetting Standard—Gilson's Pipetman | Mandel Scientific Company Inc. | GF-F123602 | www.mandel.ca |
| P10mL Gilson The Pipetting Standard—Gilson's Pipetman | Mandel Scientific Company Inc. | GF-F161201 | www.mandel.ca |
| Wide Orifice Tips nonsterile [100–1,250 µl] | VWR International | 89079-468 | www.ca.vwr.com |
| Ultrafine Tips nonsterile [100–1,250 µl] | VWR International | 89079-470 | www.ca.vwr.com |
| Finntip 10 ml [Vol: 1 - 10 ml] | Thermo Fisher Scientific | 9402151 | www.fishersci.ca |
| WATER-Pulse Amplitude Modulation (Water-ED) | Heinz Walz GmbH, Effeltrich, Germany | EDEE0232 | www.walz.com |
| 15 mm diameter quartz glass cuvette (WATER-K) | Caron Corporate | www.caronproducts.com | |
| Sodium chloride (crystalline/certified ACS), Fisher Chemical | Thermo Fisher Scientific | Thermo Fisher Scientific | www.fishersci.ca |
| BD Difco Marine Broth 2216 | BD Biosciences Discovery Labware | BD Biosciences Discovery Labware | www.bdbiosciences.com |
| BD Bacto Agar | BD Biosciences Discovery Labware | BD Biosciences Discovery Labware | www.bdbiosciences.com |
| L1 Medium Kit, 50 L | NCMA [National Center for Marine Algae and Microbiota | NCMA [National Center for Marine Algae and Microbiota | www.ncma.bigelow.org |
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