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Biology

동기화를 필요로하지 않고 유동 세포 계측법을 사용하여 세포주기 진행의 시간적 추적

doi: 10.3791/52840 Published: August 16, 2015

Summary

이 프로토콜은 특정 시점에서 S 상에 있었던 셀의 시간 추적을 허용 브로 모데 옥시 우리 딘 (BrdU의) 흡수의 사용을 설명한다. DNA 염료 및 표지 항체의 첨가는 이후 시간에 S 상 세포의 운명의 상세한 분석을 용이하게한다.

Introduction

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세포주기 진행 동안에 세포주기 및 세포 기능에서 발생하는 변화의 평가는 생물, 특히 암 생물학의 여러 측면의 이해에 기초한다. 악성 종양의 치료를 위해 개발에 많은 제제는 세포주기 진행에 지대한 영향을 미칠 또는 세포주기 - 종속 메카니즘을 통해 세포 사멸을 유도한다. 세포주기의 특정 단계에서 세포주기 역학 또는 세포를 연구하기 위해, 세포를 동기화하는 것이 일반적이다. 그러나 동기화 방법은 잠재적 결과 얻어진 교란, 검토되고 세포에 해로운 영향을 가질 수있다. 1 시간에 걸쳐 하나의 세포에서 세포주기 진행의 최근 세포주기의 특정 단계에서만 존재하는 형광 태그 된 단백질의 사용이 허용 된 분석 (2) 그러나,이 세포는 유전자가 읽을 수있는 시스템의 사용을 제한하는, 이들 태그가 단백질을 발현하도록 조작 할 필요가 공부 될ILY 달성했다.

합성 (S) 상, DNA 복제와 유사 분열 (M) 여기서 세포 분열이 발생되어 세포주기는 두 개의 활성 단계로 구성됩니다. 이 단계는 세 갭 단계, G 0, G 1 및 G 2로 구분됩니다. 셀의 크기가 종래 세포 성장은 DNA 복제의 완료 사이하지만 세포 분열 전에 계속 DNA 복제와 G이 증가 여기서 G는 0 또는 정지, 세포주기를 떠난 쉬고 위상이고, G 1이다. 세포주기를 통해 진행이 체크 포인트의 수에 의해 제어된다. 환경 조건이 DNA 합성을지지하지 않으며 S 단계 진입을 방지 할 때 G 1 체크 포인트가 활성화됩니다. 인트라 S 상 검문소 또는 지연 실속 복제 포크 초래할 수 DN​​A 손상에 의해 유발 될 수있다. 손상 후 G 2 검출되면 G 2 중 DNA의 복제 충실도를 확인되고 3 활성화는 일반적으로 세포 인구를 동기화하는 데 사용됩니다. 세포주기 체크 포인트는 다수의 인자에 의해되지만 가​​장 일반적인 DNA 손상의 검출의 암 생물학에서 활성화 될 수있다. DNA 손상 응답 (ATR) 관련 PI3 키나아제 형 키나제의 실조증 모세 혈관과 Rad3 의해 개시 및 운동 실조의 모세 혈관이 (ATM) 각각 하류 효과기 키나아제 CHK1 및 Chk2를 활성화하는 돌연변이. 3 이벤트 범위가 정지 포함 CHK1를 기동 복제 포크 DNA 가교 결합 및 자외선 손상 Chk2는 주로 이중 가닥 바꿈에 의해 활성화된다.

세포주기의 전 길이에 변경된 조건의 효과를 연구하기위한 통상의 방법S는 세포주기의 특정 단계에서 세포를 동기화한다. 이것은 여러 가지 방법을 통해 달성 될 수있다. 세포를 물리적 크기, 밀도, 측면 스 캐터 (입상), 및 세포 표면 마커의 발현에 기초하여 분리 될 수있다. 더 실제적으로, 세포는 화학적 수단에 의해 동기화 될 수있다. 예컨대 티미 딘, 히드 록시 우레아 및 시토신 아라 비노 여러 에이전트는 에이전트가 제거 된 후 순환을 계속 S 단계에서 세포의 축적으로 인한 세포주기의 S 단계에서 DNA 합성을 억제하는데 사용될 수있다. 또는 M 상 DNA 함량 - 세포는 G 2 방추사 형성 체포 방지 nocodazole으로 처리. G 0 단계에서 세포의 축적 배지 결과에서 혈청의 제거. 배양 혈청 내의 영양소의 재 첨가 세포의 정상적인 순환을 재 - 시작한다. 그러나 이러한 동기화 방법은 모든 세포의 정상적인 순환과 성장을 방해 할 수 resul중요한 세포 사멸에 T.

급성 림프 구성 백혈병 세포의 동기화는 특히 도전이며,이 세포는 유전자 조작 의무가 없습니다. 여기에 설명 된 방법은 세포주기 역학 평가 전통적인 동기화 또는 유전자 조작없이 세포주기의 특정 단계에서 세포의 연구를 허용한다. 이 방법은 유전자 변형 전통적인 동기화 과정이 용이하게 달성되지 않은 다른 세포 유형에 유용 할 수있다. 방법은 세포의 단기 성장과 증식에 거의 영향을 미치지 브로 모데 옥시 우리 딘 (BrdU의) 혼입의 노포 사용에 기초한다. 4 설립 BrdU의 프로토콜은 S 단계에서 새로 합성 된 DNA 내로 BrdU의 혼입을 활용 . 이것은 영구적 BrdU의 노광 중에 S 단계에서 된 것으로 세포를 표시한다. 이는 인구의 BrdU의 incorpor위한 염색하여 나중 시점에서 식별 될 수있다ATION 이에 따라야하고 세포주기 교통 약물 효과의 연구를 허용하는 시간에 걸쳐 평가 될 수 동기 인구로서 작용한다. BrdU의 보통의 DNase 또는 산 처리 다음 달성 전에 항체 염색에 노출 될 필요가있다. -6,7- BrdU의 도입은 부가적인 마커의 포함을 가능하게 검출하기 위해 유세포 사용. 가장 중요한 연구의 개시시에 S 상에 있던 세포의 세포주기 위상 분포의 평가를 가능하게 DNA 함량을 측정하기 위해 염료를 사용하는 것이다. (8) 또한 추가적인 표면 또는 세포 항원은 또한 조사 할 수있다. (9) 이러한 이러한 사료된다 등의 세포주기 이벤트 관련 또는 절단 카스파 제 -3와 같은 세포 사멸 마커 등으로 관련이 없어 보이는 세포의 기능을 할 수 있습니다. 잠재적 인 응용 프로그램은 연구자의 상상력에 의해 제한됩니다.

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Protocol

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여기에 설명 된 프로토콜은 급성 림프 모구 백혈병 세포주 NALM6를 사용하지만, 다른 유형의 세포에도 적용 할 수있다.

1. 솔루션 및 시약

  1. 전체 RPMI
    1. 56 ml의 소 태아 혈청 (FCS) 및 RPMI-1640 배지 500㎖의 병에 200 ml의 5.5 mm의 L - 글루타민 추가.
  2. BrdU의 원액
    1. 둘 베코 인산염 완충 생리 식염수 (DPBS)에서 32.5 mM의 BrdU의 (10 ㎎ / ㎖)을 준비합니다.
  3. BrdU의 전체 RPMI
    1. 전체 RPMI 10 ㎖에 BrdU의 주식 솔루션의 6.2 μl를 추가합니다.
  4. DNase의 솔루션
    1. 1 밀리그램의 DNase / DPBS에 mL로 준비합니다.
  5. 염색 버퍼
    1. DPBS에서 3 % 열 - 불 활성화 FCS 및 0.09 %의 아 지드 화 나트륨을 준비한다.
  6. 고정 버퍼, 투과성으로 버퍼 및 세척 버퍼의 정의에 대한 자료 목록을 참조하십시오.

2. 세포

아니테 : 세포 6 개월을 초과하는 배양하지 않았다. 이 방법은 셀 밀도 및 배양 배지에 대한 조정과 비 - 부착 세포 라인에 직접 적용 할 것이다. 실험의 개시에 기하 급수적으로 증가하고 세포를 사용합니다.

  1. 전체 RPMI에서 T-75 배양 플라스크에 NALM6 세포를 유지한다. 클래스 II 바이오 안전성 캐비닛을 사용하여 무균 조건 하에서 모든 단계를 수행합니다.
    1. 세 번 주간 문화를 분할하여 ml의 당 6 10 × 1-2 사이의 세포를 NALM6 세포를 유지한다.
    2. 공기에서 이산화탄소 5 %에서 37 ° C에서 품어.

BrdU의와 세포의 3 펄스 라벨링

주의 : 잠재적 돌연변이와 기형은주의하여 BrdU의를 처리합니다.

  1. 5 분 150 XG에 원심 분리기 세포. 참고 : 신선한 매체에 세포를 전송하는 것은 결과의 재현성을 향상시킨다.
  2. 2 × 106 (C)에서 완전 RPMI에서 세포 수와 세포를 재현 탁 수행ELL 학생 / ㎖.
  3. BrdU를 완전 RPMI 1 × 106 세포 / ml의 최종 세포 농도를 생산하는 두 셀 1 희석.
  4. 다음 완전한 RPMI 10 셀 1 희석, 45 분 동안 5 % CO 2, 37 ℃에서 인큐베이션. 조심스럽게 (150) 5 분 XG와 원심 분리기 세포 상층 액을 모두 폐기합니다.
  5. 완전한 RPMI의 작은 부피 (~ 100 μL)에 재현 탁 된 세포는 세포 수를 수행하고 1 × 106 세포 / ml로 조정한다.
  6. 피펫 48 웰 플레이트로 세포를 1 ㎖. 모든 빈 우물에 DPBS의 피펫 1 ml를 더 재현 가능한 결과를 얻을 수있다.
  7. (17) 여기에서, 원하는 시점들, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 공기 중 5 %에서 37 ° C에서 CO 2 부화 , 18, 19, 20, 21, 22, 23, 및 24 시간. 참고 : 시간의 길이는 실험 설계 측정하는 것을 목표로 무엇에 따라 달라집니다.
  8. 피펫을 사용하여 외과 튜브로 모든 세포를 전송합니다. 1ml의 volu로 잘 헹구고 순차적5 ㎖의 최종 총 부피의 PBS MES.
  9. 5 분 150 XG에 원심 분리기 조심스럽게 모든 뜨는을 제거합니다. 세포를 염색 할 준비가 즉시 (4 절)을 수행합니다.

4. 세포 얼룩

주 : 세포 표면 염색이 필요한 경우 세포에 걸쳐 4 ℃로 유지되는 것을 보장하기 전에 고정을 수행한다.

  1. 염색 버퍼 100 ㎕에 재현 탁 세포 (옵션 표면 염색은 항원을 표면 및 4 ℃에서 30 분 동안 배양 항체의 권장 볼륨을 추가).
  2. 150 XG에서 5 분 동안 염색 버퍼 1 ㎖, 원심 분리기를 추가하고 상층 액을 버린다.
    참고 : 특정 항체 농도, 배양 시간을 특정 실험 목적에 따라 달라질 수 있습니다.
  3. 고정과 투과성으로
    1. 고정 버퍼 100 ㎕에 세포를 재현 탁하고 실온에서 15 분 동안 배양한다.
    2. 1 ml의 O 추가F 세척 버퍼, 150 XG에서 5 분 동안 원심 분리하고 상층 액을 버린다.
    3. 투과성으로 완충액 100 ㎕에 세포를 재현 탁하고 얼음에 10 분 동안 세포를 배양한다.
    4. 150 XG에서 5 분 동안 세척 버퍼 1 ㎖, 원심 분리기를 추가하고, 상층 액을 버린다.
    5. 튜브 당 고정 버퍼 100 ㎕에 세포를 재현 탁하고 실온에서 5 분 동안 배양한다.
    6. 150 XG에서 5 분 동안 세척 버퍼 1 ㎖, 원심 분리기를 추가하고, 상층 액을 버린다.
      주 : 필요한 경우, 프로토콜은 여기에서 일시 정지 될 수있다. 염색 완충액 경우 고정 된 세포는 4 ° C에서 며칠 동안 안정하다. 진행하기 전에 원심 분리 다음 염색 버퍼를 제거합니다.
  4. DNase의 치료
    1. DNase의 용액 100 ㎕ (30 DNase의 / 10 6 세포의 μg의), 37 ℃에서 1 시간 동안 세포를 배양에 재현 탁 세포.
    2. 5 분 150 XG에 세척 버퍼, 원심 분리기 1 ML을 추가하고 상층 액을 버린다.
    3. 항체 염색
      주 : BrdU의 이외의 세포 마커 염색 BrdU의 염색과 동시에 행할 수있다.
      1. 중요 : 각 하나의 형광 색소로 표지 흠없는 세포와 세포로 구성된 보상 컨트롤을 준비합니다. 이상적으로, 실험 튜브에 사용되는 것과 같은 보상 컨트롤 같은 항체를 사용합니다. 이것이 가능하지 않을 경우, 고도로 발현 항원 항체 대신 동일한 형광 색소에 접합.
      2. 세척 완충액 50 μL에 재현 탁하고 세포를 1 μL / BrdU의 항체 10 6 세포를 추가한다. 참고 : 다른 특정 세포 내 항원에 직접 결합하는 항체도 추가 할 수 있습니다.
        주 :. cdc2에 Ser10 인산화 히스톤 H3에 항체가 G2 및 M에서 세포를 구별하는 데 사용할 수있는, 히스톤 H3 유사 분열 동안 Ser10에 인산화 10 항체는 근래 세포를 검출하는데 사용될 수 Tyr15 인산화전자 유사 분열에 최선을 다하고 있습니다. (11)
      3. 실온에서 20 분 동안 세포를 인큐베이션.
      4. 5 분 동안 150 XG에서 1 세척 버퍼의 ml의 원심 분리기 세포를 추가하고 상층 액을 버린다.
    1. 세포주기 분석을위한 얼룩의 DNA
      1. 펠렛을 풀고 7-AAD 용액 (0.25 μg의) 20 μl를 추가합니다. 주 : 7-AAD / 셀의 일정한 양을 사용하는 것이 중요합니다.
      2. 염색 완충액 1 ml의 세포를 재현 탁.

    유동 세포 계측법 데이터 5. 컬렉션

    참고 : 사용되는 형광 색소의 수와 특성에 따라 달라집니다 필요한 기계.

    1. 다음과 같은 파라미터를 수집 FSC-A, SSC-A, FSC-H 선형 스케일 7- AAD 형광 (FSC-W는 FSC-H 대신에 사용될 수있다). 로그 스케일 APC 채널 모아서. 로그 스케일을 사용하여 표면 또는 내부 라벨의 평가를 위해 필요한 추가 채널을 수집합니다.
    2. COM을 수행시료를 분석하기 전에 다른 형광 색소 사이의 발광 스펙트럼 관찰에 신호를 중첩 보정 :. 참고 : 대부분의 유동 세포 계측기가이 작업을 자동으로 수행합니다.
    3. 각 샘플에 대해 적어도 10,000 이벤트를 수집합니다.

    유동 세포 계측법 데이터의 분석 (6)

    주 : 데이터 해석되지만, 다른 소프트웨어 패키지가 또한 사용될 수있다 계측법 FlowJo 흐름이 연구에 사용 하였다. 게이팅 전략은도 1에 도시되어있다.

    1. FSC-A와 SSC-매개 변수를 사용하여 실행 가능한 세포 인구를 식별합니다.
    2. 이 인구 내에서 이중선과 (도 여기에 사용할 수있는 FSC-W) FSC-A 및 FSC-H를 사용하여 집계를 제외합니다.
    3. 모집단 내의 Y 축의 X 축 및 BrdU의 APC-7-AAD를 사용하여 도트 플롯을 설정한다.

    그림 1
    그림 1 : 게이팅 전략 왼쪽 PA.Nel 보낸 : ungated 세포는 SSC-도트 플롯 대 FCS-에 표시됩니다. 가능한 세포 인구가 도시 게이트로 식별됩니다. 센터 패널 : 왼쪽 패널에서 문이 세포는 FSC-H 도트 플롯 (대신 높이를 사용할 수 있습니다 FSC-W) 대 FSC-에 표시됩니다. 이중선과 집계가 확인하고 그림과 게이트에 의해 제외됩니다. 오른쪽 패널 : 중앙 패널에 이중 배제 날로부터 게이트 세포가 APC-도트 플롯 대 7-AAD에 표시됩니다. BrdU의 항체는 APC는 펄스 라벨 동안 BrdU의를 통합 한 세포의 식별을 가능하게 표시되어 있습니다. 7-AAD는 DNA 콘텐츠에 대한 정보를 제공합니다. 상단 게이트는 BrdU의 펄스, 왼쪽 하단 게이트, 세포 G 0/1 및 G에 그 오른쪽 게이트의 시간에 S 단계에 따라서 BrdU의 양성 세포를 정의 / M 2. 를 보려면 여기를 클릭하십시오 이 그림의 더 큰 버전.

    1. 세포주기 nalysis
      1. 이중 제외 게이트의 셀의 첫 번째 데이터 파일과 문을 엽니 다.
      2. (FloJo 소프트웨어 플랫폼 아래에있는) 세포주기 분포이 인구를 분석하고 딘 - 제트 - 폭스 모델을 사용합니다.
      3. G 0/1 및 G 게이트를 작성하여 2 / M 피크의 위치를 가져옵니다.
      4. BrdU의 양성 세포와 주제에 게이트 같은 세포주기 분석이 인구.
      5. 만들 게이트에서 같은 게이트를 적용하고 G 0/1 및 G 2 / M 피크의 위치에 대한 (생성 된 게이트를 사용하여) 제약 조건을 설정하여 G 0/1 및 G 2 / M 피크의 위치를 제공합니다. 이는도 2의 제 2 패널에 도시되어있다.
        주의 : 다른 소프트웨어는 데이터를 분석하는데 사용될 수 있으며, 설명은 따라서 변할 것이다.

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    그림 2. 세포주기 진행 첫번째 패널 (모든 셀)을 겹 배제 게이트에 의해 정의 세포군에 게이팅된다. 이 인구는 X 축에 7-AAD와 히스토그램 표시했다. G 0/1 피크의 피크 축 아래 화살표로 표시된다. 도 1에 도시 된 바와 같이 후속하는 패널에서의 BrdU 양성 세포상의 게이팅되었다. 이중선 배제 게이트의 게이팅 때 얻어지는 G 0/1 위치에 대한 값은 FlowJo 세포주기 소프트웨어 내에서의 BrdU 양성 게이팅 셀에인가된다. 도 1과 처음 두 패널에 도시 된 바와 같이 전체 모집단을 분석 할 때 얻어진 값에 기초하여 G 0/1 피크의 위치에서와 같이 이후의 각 패널은 BrdU의 양 인구에 게이팅되었다. 동일한 SAMP에서의 BrdU 양성 세포에 대해 G 0/1 인구의 위치를 식별하는 BrdU의 음 부분을 사용하여제작 샘플의 DNA를 얼룩의 강도에 어떤 약간의 차이를 제어합니다. 각각의 패널 상에 표시된 숫자는 BrdU의 펄스가 종료 된 이후의 시간을 나타낸다. 계산 된 세포주기 단계가 음영 녹색으로 표시되어있다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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Representative Results

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이 방법은 다양한 정보를 얻기 위해 사용될 수있다. 일부 응용 프로그램은 여기에 설명되어 있습니다.

세포주기의 지속 기간의 평가

세포주기를 통해 세포로 운송하는데 필요한 시간을 결정하기 위해, 세포를 BrdU의 펄스 아래의 다양한 시점에서 수확한다. 평가의 간격은 분석되는 특정 셀에 적용될 수있다. 조혈 세포주는 표준 배양 조건에서 세포주기 단계의 길이를 결정하는 임의의 약물 치료의 부재하에 24 시간 동안 매 시간마다 측정 하였다. (2)가 24 시간에 걸쳐 NALM6 셀 스냅 분석의 선택을 보여준다. BrdU의 피 후 10 시간을 검출 (즉,도 1에서의 BrdU의 양 게이트 이내) BrdU의 펄스시의 S 단계에서 세포 인 세포주기의 단계에있는 세포의 피크, G (2) / M으로 진행ulse. S 단계에서의 BrdU 표지 된 세포의 비율은 펄스 후에 그 최하점 14 시간에 도달하고 거의 모든 세포는 17 시간 후에 G (1)에 돌아왔다. 24 시간까지의 BrdU 표지 된 세포의 비율은 그러나 대부분 아직 36 공지 부합 복제의 두 번째 라운드를 입력하지 않은 세포는 24 시간 이내에 세포주기를 완료 할 수 있음을 나타내는 그들의 다음 세포주기의 일부로서 S 상을 재 입력했다 이들 세포에 대한 시간을 두배 HR.

세포주기 분포는 추가의 마커를 포함시킴으로써 정제 할 수있다. 예를 들어, Ser10 인산화 히스톤 H3 (분열 세포의 마커)에 대한 항체의 첨가가 G (2)에서와 유사 분열에서 세포의 차별을 허용한다 (도 3의 좌측 패널).

그림 3
그림 3 : 확인세포주기 스테이지의 추가의 마커를 사용한다.도 1에 도시 된 바와 같이, 상부 패널 BrdU의 양 게이트로부터 세포의 세포주기 분석을 보여준다. 세포가 BrdU의 펄스 이후에 18 시간 동안 3 나노 빈 크리스틴의 존재 또는 부재하에 인큐베이션했다 . 그림 2에 기술 된 바와 같이 세포주기 분석을 실시 하였다. 하부 패널은 Ser10 도트 플롯에 인산화 히스톤 H3 대 7-AAD에서 동일한 세포를 보여준다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

세포주기에 약물 효과의 평가

세포 독성 제는 세포주기 진행에 지대한 영향을 미칠 수 있으며, 세포 사멸을 유도 할 수있다. 세포주기 진행에 대한 약물의 효과는 BrdU의 펄스 아래의 관심의 약물을 추가하여 평가 될 수있다. 두 가지 예는 표시됩니다. 첫 번째 상황은 어디 유도 OF 세포 사멸은 세포주기 데이터의 분석 (도 3의 오른쪽 패널) 혼동. NALM6 세포는 BrdU의 펄스 이후에 18 시간 동안 3 나노 빈 크리스틴에 노출되었다. 세포는 빈 크리스틴 대상으로 미세 소관으로 유사 분열에 체포 것으로 예상했다. 그러나 세포주기 분석은 세포가 G 구속하지만 0/1 (도 3 우측 상단 패널)까지 천이 않았다고 제안했다. Ser10 인산화 히스톤 H3에 대한 항체의 첨가는 세포가 감소 된 DNA 함량에도 불구하고, 유사 분열 (도 3 하단 우측 패널)를 종료하지 않은 것으로 나타났다. 이는 DNA 함량이 세포 사멸을 겪는하고 그들의 DNA를 분해하기 시작했기 때문에 감소 된 것으로 보인다. 유사 분열 (4N DNA)와, 그들은 S 상 또는 대신 전형적인 세포 사멸 서브 G 1 피크의 G 셀 0/1로 나타날 때 세포 사멸을 개시하기 때문이다.

그림 4
그림 4 :. 세포주기 단계 특정 살인의 검출은 도트 플롯은 BrdU의 펄스 후 배양 24 시간에 남아있는 BrdU의 양성 세포의 비율을 보여줍니다. 세포를 1.5 또는 16 μM RAD001 BrdU의 펄스의 끝부터 존재 또는 단독으로 자동차의 부재 (대조군)에서 배양되었다. 하단 패널은 24 시간 배양을 통해 BrdU의 양성했다 세포의 비율을 보여줍니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

다른 예에서,도 4는 RAD001 (진행성는 mTOR 억제제) 세포의 낮은 농도의 존재 하에서 세포주기를 완료 할 수 있었다 그런데 G 0/1의 지연이나 구속을 시행하는 방법을 보여준다. RAD001의 높은 농도는 크게 TRA로부터 세포 막을G 0/1까지 nsiting. S 단계에서 중요한 세포 (즉, BrdU의 양) RAD001의 추가시 우선적으로 문화에서 사라질 것으로 나타났다. 이 G 2 / M을 통과하는 세포가이 에이전트에 의해 죽음을 셀에 더 취약했다 제안합니다. (12)

이는 특정 항원에 대한 항체를 이용하여 세포주기의 특정 단계에서 세포의 반응을 조사하는 것도 가능하다. 도 5 크리스틴 치료에 반응하는 단백질 및 CHK1를 제어 Chk2 세포주기 체크 포인트의 활성화에 나타낸다. CHK1과 Chk2은 각각 Ser345 및 Thr68 인산화에 의해 활성화된다. CHK1 및 Chk2의 활성화는 2N의 DNA 함량을 갖도록 나타나는 세포에서 볼 수 있지만,도 5에 도시 한 바와 같이 세포 사멸로 인해 DNA 분해 개통 유사 분열 세포 일 가능성이 높다.

이 후 다양한 시점에서 약물을 추가 할 수있다BrdU의 펄스는 세포주기의 여러 단계에서의 세포에 대한 제제의 효과를 조사한다.

그림 5
그림 5 :. 특정 세포주기 단계에서 세포의 변경의 탐지 상단 패널은 대 인산화 CHK1 (왼쪽) 또는 Chk2 (오른쪽) 도트 플롯 7-AAD 그림 1과 BrdU의 양성 세포에 문 세포를 보여줍니다. 셀이도 3에 관해서는 3 나노 빈 크리스틴의 존재 또는 부재 BrdU의 펄스 다음 18 시간 동안 배양 있었다. 하부 패널은 나타낸 바와 같이 2N 또는 4N 분획 하나에 게이트 된 동일한 세포의 오버레이 히스토그램을 나타낸다. 여기를 클릭하세요 이 그림의 더 큰 버전을 볼 수 있습니다.

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Discussion

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세포주기 분석하는 능력은 암 생물학을 이해하고 세포 증식 및 성장에 영향을 미치는 두 약물 및 유전자의 작용 메카니즘에 중요하다. 전하는 세포 증식을 측정하는 검정법 다수 존재하지만, 대부분은 단지 본 셀 번호를 나타내는 측정 값을 제공한다. 이들은 직접 시각화 및 계산, 신진 대사 활동 또는 ATP 농도로 세포 수를 측정 분석을 포함한다. 이러한 방법의 많은의 주요 장점은 조건 또는 화합물의 큰 숫자를 선별하기에 유용하고, 마이크로 포맷과 자동화에 상대적으로 수행하기 쉽고 의무가 있다는 것입니다. 이러한 방법의 많은 단점은 죽음으로 인해 세포의 손실이 잠재적으로 세포 증식의 과소 평가로 이어지는 고려되지 않는 것입니다. 또한 이러한 방법은 대량 인구를 측정 및 단일 세포의 연구 또는 세포의 교통을 통해 허용하지 않습니다세포주기.

아마도 가장 신뢰할 수 있고 정확한 일반적으로 사용되는 확산 분석, 중 DNA 합성을 측정하는 것들이다. 기존의 세포 증식 분석은 몇 시간 밤새 새로 합성 된 DNA에 통합되어 3 H-티미 딘,와. (13)는이 방법으로 명백한 문제가 방사성 물질의 사용이에 대한 세포를 배양,하지만 또 다른 제한은 결과를 측정 평균이 세포의 인구의 확산. 추가 단계가 요구되지만 BrdU의 마찬가지로, 방사 문제없이 사용될 수 있으며,이 전위 BrdU의 돌연변이이다. 그러나, BrdU의 단일 세포의 분석을 허용, 유세포와 호환되는 장점을 갖는다. 단일 세포 수준에서 세포 증식을 평가하기위한 대응 방법 계측법 14 개 흐름 (세포막 또는 세포 단백질 라벨 염료의 증가를 포함 daught 사이에 분할 CFSE)ER 세포 DNA의 삽입 성 염료와 항체에 의한 세포주기 특이 항원 검출. 세포 표지 염료의 베스트 셀 분할 걸쳐 세포 분열 추적을 허용한다. 15 세포주기 스테이지 또는 분포에 대한 정보가 얻어지지 않지만 그들이 증식의 직접적인 측정을 제공한다. 예컨대 요오드화 프로피 듐 또는 7- AAD 강력한 세포주기 분포 (16)를 제공하지만, 시간적 아니라 데이터로서 DNA의 삽입 성 염료를 사용하여 DNA 함량의 측정. 심지어 여러 시점의 평가로는 세포주기 또는 특정 세포주기 단계의 길이를 평가하는 것이 불가능 남아있다. 세포주기 특이 항원 비동기 세포 집단에서 세포주기의 위상을 평가하기 위해 사용될 수있다. 일반적으로 사용되는 세포주기 특이 항원 S 중에 표현 기 - (67), (17), G (2) 및 세포주기의 M 상 그러나 포함되지 G 0/1, PCNA (증식 세포 핵 항원) (18), 및 (H)의 인산화 동안istone H3. 이러한 동안 19 부족한 세포주기 역학 관련 좋은 세포주기 단계에 관한 데이터 정보를 제공한다.

세포주기 역학에 취득 된 데이터는 전통적 제제 또는 세포주기 진행을 차단하는 배양 조건을 사용하여 세포를 동기화에 의해 검사되었다. 이것은 일단 세포주기를 통해 함께 진행 셀 파 발생 제거 블록 뒤에 세포의 축적을 야기한다. 1 세포주기의 지속 시간과 다양한 세포주기 단계의 길이를 계산 한 다음이 가능하다. 세포는 혈청 결핍에 의해 G 0 입력 활성 셀 자전거를 종료하도록 유도 할 수있다. 이것은 많은 형질 세포 유형을 포함한 특정 유형의 세포, 기타,위한 신뢰할 수있는 방법이지만 혈청의 재 첨가시 세포는 세포주기를 종료하지. 후속 단계로 함께 20 이동할 수 있고, 자주로 세포 사멸을 겪는다 실제로 결과. (21) 우리의 스투이 발견 다이 것은 급성 림프 백혈병 세포의 상황이 될 수 있습니다. 또한, 세포는 종종 충분히 동기화 방식으로 세포주기를 다시 입력 할 수 없게됩니다. 화학적 방법은 세포주기의 특정 단계에서의 세포주기 정지를 유도하는데 사용될 수있다. 예를 들어, 제제는 DNA 합성 (예 과량 티미 딘)을 방지 그 또는 각각 (예 nocodazole) S 및 M 단계에서 정지 세포를 유사 분열 스핀들을 형성을 방지하지만 독성과의 상당한 부분에 사망 성장 장애 및 초래할 수 세포. 모든 셀에서 22이 방법은 많은 시간을 죽이지 않고 세포의 대부분을 체포하는 데 실패했습니다. 목표는 세포주기 파라미터의 전위 항 백혈병 약제의 효과를 평가하는 것을 고려하면, 동기화로 인한 세포 사멸이 용납이었다. 방법 중 다수의 셀을 설명 동기화에도 불구하고, 모든 단점을 가지고있다. 주요 문제는 다음과 같습니다 부족세포주기의 원하는 부분에서 세포 농축, 관찰, 과량 독성 같은 정상 세포주기의 생리학에 교란.

여기에 기재된 방법은 세포가 S 단계에서 세포를 식별 BrdU의 짧은 기간 동안 인큐베이션 한 사용될 펄스 시스템의 단순한 확장이다. 우리는 우리의 시스템에서 최적이지만 충분한 라벨링 얻어지면 짧은 시간주기가 사용될 수있다 것으로 45 분 펄스 알았다. BrdU의 제거 후의 배양 세포에 계속하여 그 다음으로 세포주기 S 상, G 2, 유사 분열, G (1) 및 엔트리의 나머지 부분을 통해 자신의 진행을 추적 할 수있다. 이는 상기 세포를 수행하는 것이 가능할 수있다. 이 시스템의 장점은이 실험의 시간 프레임 내에서 세포 독성의 증거가없고, 미디어 변화 단 몇가 필요로 세포의 성장에 미치는 영향을 최소화가 있다는 것이다. 세포는 그렇지 콘티 유지된다nuous 문화. 상기 방법의 기초 자연 유동 세포 계측법은 추가적인 표면 또는 세포 내 염색 세포 개체군의 식별과 조합 될 수 있다는 것을 의미한다. 우리는 APC 공액 BrdU의 항체를 사용하지만, 다른 패널 항체 접합체의 개발을 용이하게 치환 될 수있다. 7-AAD는 여러 가지 빛깔의 염색에 대한 옵션을 극대화 단일 채널에서 형광 때문에 우리는 요오드화 프로피 듐보다는 7-AAD를 사용했다. 마찬가지로 DAPI 또는 훽스트는 DNA 얼룩으로서 사용하지만 UV 레이저를 필요로 할 수있다. DNA 염색에 대한 엄격한 CVS는 에탄올 고정을 사용하여 얻을 수 있지만이 자주 추가 표면 또는 세포질 얼룩에 대한 옵션을 제한, 항체 염색을 타협. 가장 큰 단점은 그 위상이 약 8 시간, 그래서 표지 세포가 방금 입력 또는 펄스 기간 동안 S 단계를 종료하려고했을 수 있습니다 지속 s입니다. 그 결과, 동기화는 다른 시스템과 같이 꽉 아니다. 그러나, DNA를 나타내는 염료로 BrdU의 라벨을 결합하여특정한 세포주기에 따라 단백질 함량 및 항체는 강한 데이터를 얻을 수있다.

일관성있는 데이터를 획득하기 위해 그 셀들이 정확한 농도에서 모든 조건이 비교되는 셀에 걸쳐 농도가 일관성이 있음을 보장하는 것이 중요하다. 비판적 7-AAD 염색의 밝기는 세포 농도에 매우 민감하다. 자동 셀 카운팅 시스템을 사용하는 것은 그 세포 농도가 프로세스의 각 단계에서의 모든 샘플에서 일관되도록 도울 수있다. 또 다른 중요한 점은 세포가 BrdU에 노출되는 시간의 길이이다. 작은 변화는 상당한 차이로 번역 할 수 있으므로, 모든 샘플들이 정확하게 동일한 시간 BrdU를 배양하는 것이 중요하다. 마지막으로, 최적의 착색을 얻기 위해 항체를 적정하는 것이 중요하고 배치가 변경 될 때마다 반복한다. 모든 단계는 지속적 따른다 세포 농도는 운전 방식이 다음 일정하게 유지하면D 확실 동기화 필요없이 세포주기를 통한 세포의 추적을 가능하게 할 것이다. 특정 세포 유형에 맞게 특정 문제를 해결하기 위해이 방법을 수정할 상당한 범위도 있습니다.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
APC BrdU Flow Kit BD Biosciences 552598 Contains BrdU antibody, 7-AAD and BD Cytofix/Cytoperm
Buffer (referred to as Fixation Buffer)
BD Cytoperm Permeabilization Buffer Plus BD Biosciences 561651 Referred to as Permeabilization buffer
BD Perm/Wash Buffer BD Biosciences 554723 Referred to as Wash buffer
DNase Sigma D-4513
BD Falcon 12 x 75 mm FACS tubes BD Biosciences 352008
BD Pharmingen Stain Buffer BD Biosciences 554656
BD LSR FORTESSA flow cytometer BD Biosciences FORTESSA
Pipetman Gilson P2, P20, P100, P1000
RPMI 1,640 w/o L-Gln 500 ml Lonza 12-167F
DPBS Lonza 17-512F
Fetal Bovine Serum FisherBiotec FBS-7100113
L-Glutamine Sigma G7513-100ML
5-Bromo-2′-deoxyuridine Sigma B5002-1G
Falcon TC 150 cm2 vented Flasks BD Biosciences 355001
Pipettes 25 ml Greiner 760180
Aersol Pipettes 200 µl Interpath 24700
Aersol Pipettes 1 ml Interpath 24800
Centrifuge Spintron GT-175R
CO2 incubator Binder C 150
AF488 anti-Histone H3 Phospho (Ser10) Antibody Cell Signalling 9708S
Phospho-Chk2 (Thr68) (C13C1) Rabbit mAb Cell Signalling 2197S
Phospho-Chk1 (Ser345) (133D3) Rabbit mAb Cell Signalling 2348S
NALM6  DSMZ ACC-128

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References

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동기화를 필요로하지 않고 유동 세포 계측법을 사용하여 세포주기 진행의 시간적 추적
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Welschinger, R., Bendall, L. J. Temporal Tracking of Cell Cycle Progression Using Flow Cytometry without the Need for Synchronization. J. Vis. Exp. (102), e52840, doi:10.3791/52840 (2015).More

Welschinger, R., Bendall, L. J. Temporal Tracking of Cell Cycle Progression Using Flow Cytometry without the Need for Synchronization. J. Vis. Exp. (102), e52840, doi:10.3791/52840 (2015).

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