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Developmental Biology

양육 먼저 먹이 제브라 피쉬의 전체 및 업데이트 "로티퍼 다종 양식 방법"

Published: January 17, 2016 doi: 10.3791/53629

Introduction

제브라 피쉬 (다니오 레 리오 (rerio)는), 과학 분야의 증가에 이용 탁월한 실험 동물을 포함하지만 발달 유전학, 독성학, 행동 양식, 재생 생물학, 많은 사람의 장애 1의 모델링에 국한되지 - 5. 종 실험실에서 유지하기가 비교적 용이하지만, 그 배양 6와 연관된 관리 문제가 있습니다. 이 중 가장 눈에 띄는 물고기는 제 1 가스 방광 인플레이션 7 이후에 공급하기 시작 특히, 유생 양육이다. 성장 5 일, 특히 중요한 7 인 - 정상, 통제 된 조건에서이 발달 이벤트는 다음과 같은 3가 5 ~에서 일 이후 수정 (DPF)를 발생합니다. 공급 아이템, diges 적절한 크기이어야 -이 단계 동안 중앙 기술적 어려움 적절히 제 1 급전 유충의 영양 요구를 충족하는 것이다배양 탱크에 과도한 폐기물을 만들지 않고 거의 지속적으로 매력적인, 가능한 tible,,. 역사적으로이 일상 물 교환 8,9과 함께 탱크에 물고기 사료의 수많은 작은 양을 제공하여 일반적으로 달성되었다. 이들 방법은 어느 정도 성공하지만, 그들은, 비효율적 높은 노동 입력을 요구하고, 전용 변수 및 성장과 생존 (10)의 제한 속도를 반환한다.

자연에서, 제브라 피쉬 애벌레는 아마도 물 열 (11)이 풍부 작은 동물성 플랑크톤의 존재에 공급. 이러한 이유로, 그러한 짚신, 피퍼 및 아테 라이브 피드를 포함 larviculture 프로토콜은 전형적으로 7 가장 효율적이다. 2010 년, 최고 및 공동 저자는 외생 공급 (12)의 처음 5 일 동안 바닷물 로티퍼와 함께 정적, 소금기있는 물 속에서 애벌레 제브라 피쉬를 성장 가능하다는 것을 보여 주었다. 활용이 접근,ES 로티퍼 배양의 자연 높은 생산성이 낮은 노동 투입 (12, 13)와 유생의 성장과 생존의 수익률이 매우 높은 요금, 물을 오염하지 않고 충분한, 매우 영양가있는 먹이를 제공합니다. 최근 몇 년 동안, 전 세계 실험실의 증가는이 프로토콜의 변형을 채택하고, 많은 사람들이 지금 보육 시스템 (14)을 지원하기 위해 연속적인 방식으로 로티퍼를 배양한다.

지난 몇 년 동안, 로티퍼 / 제브라 피쉬 다종 양식 및 로티퍼 생산 모두를위한 방법은 정제보다 표준화와 쉽게 확장되고 개선되었습니다. 이 기사는 1에 대한 단계별 지침) 지속적이고 강력한 로티퍼 생산과 2) 외생 공급의 처음 5 일 동안 물고기의 강력한 성장을 지원하는 데 사용되는 로티퍼 / 제브라 피쉬 다종 양식 시스템의 구축을 제공합니다.

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Protocol

1. 로티퍼 문화

  1. 100 L 배양 용기를 사용하여 문화 시스템의 기본 구성 요소
    1. 로티퍼 배양 설정을위한 모든 구성 요소를 수집합니다. 로티퍼 배양 설치는 로티퍼 성장하는 배양 용기 (CV)로 구성; 유사한 용기의 피드 아웃 피퍼 (피드 아웃 배양 용기, FCV)을 유지하는 단계; 둥근 바닥 부화 항아리 조류의 공급 혼합물 (AFM)의 저장 (저수지, FR 피드); 공기 공급 (AS)는 CV, FCV와 FR을 공기에 쐬다; CV 및 FCV로 조류 사료의 전달을 제어하기 위해 측정 타이머 (PMT)와 연동 펌프; 및 CV 안에 앉아 치실 입자 필터 (FPF).
      : 공급과 구성 요소의 완전한 목록은 자재 목록에 제공된다.
  2. 구성
    1. 문화를 쉽게 수집 계속으로 피팅의 드레인을 통해 수확 할 수 있도록 스탠드 또는 테이블에 이력서와 FCV 상승ainer (그림 1). 각 배양 용기에 강성 튜브의 길이로 AS를 연결하는가요 성 공기 공급 튜브를 사용한다. 튜브는 CV 또는 FCV의 바닥에 공기를 제공하기에 충분히 긴 있는지 확인합니다.
    2. AFM을 포함하는 FR의 바닥까지 연장 강성 튜브 길이로 연결 AS 소용량 공기 라인을 사용한다. 공기를 조절하기 위해 각각의 공기 라인에 밸브를 설치한다. 공급 배달 튜브와 PMT에 프랑스를 연결하고 상단, CV / FCV의 측면에 드릴 구멍에 PMT에서 튜브를 실행합니다. 그림 1.
  3. 시작
    1. 역삼 투 물 (RO)와 함께 사용할 수있는 볼륨의 90 %를 배양 용기를 채우십시오. RO를 사용할 수없는 경우, 청소, 탈 염소 처리시 물을 사용; 그러나, 생물 보안 위험 평가에는 병원성 유기체 원수에 존재하지 않도록 수행되어야한다. 참고 사항 : 분석이 수행 될 수있다어떤 자격을 갖춘 물 시험 기관에 의해.
    2. 15g / L의 염도 도달 수족관 소금 배양 용기 물 선량. 그것이 "롤링 종기를"유지하도록 용기 내로 공기 흐름을 설정하고 완전히 통기하여 용해 될 때까지 천천히 배양 용기에 측정 된 염의 양을 추가한다. 완전히 산소 될 수 있도록> 1 시간 동안 물을 폭기를 계속합니다.
    3. 조류 공급 혼합물을 확인합니다. 깨끗한 3 L에, 신선한 (0 PPM)는 NaHCO3을 물 100 g 및 암모니아 중화제 (나트륨 hydroxymethylsulfonate) 100 g을 넣고 탈 염소. 이 지난 시약은 문화 장비의 살균에서 수돗물 또는 표백제 잔류 물에서 잔류 염소를 중화의 추가 혜택을 제공한다. 이것은 이들 화합물이 완전히 용해되는 것을 보장하는 것이 중요하다. 그리고 조류 농축액 (바이오 매스 건조 중량 ~ 15 %)의 1 패를 추가합니다. 4 ° C에서 프랑스와 저장소에 공급 혼합물을 추가합니다.
    4. 5-10000000의 스타터 문화 추가
    5. PMT를 켜고 로티퍼 배양 용기에 조류 피드를 펌핑 시작합니다. PMT의 타이머 기능을 이용하여, 그 ~ 조류 사료 혼합물을 1.6 ml의 하루 배양 백만 당 피퍼 전달되도록 조류 사료 혼합물의 전송 속도를 설정한다. 24 시간 기간에 걸쳐 일정한 간격으로 조금씩 수유를 분배; 수유 더 자주, 더 나은.
    6. 수동으로 일정 기간 (예를 들면, 1 분)에 대한 PMT에 돌려 펌프의 전달 속도를 보정하고 눈금 실린더 또는 비이커에이 간격 동안 펌프 조류를 수집합니다. 예를 들어, PMT 투약 조류 5 ㎖를 1 분에 있다면, 선량률 것5 ml의 조류 / 분.
    7. 1.6 ml로, 백만, 본 피퍼의 개수를 곱하여 필요한 일일 급식 속도를 계산한다. 예를 들어, 1 억 로티퍼의 인구 규모와 로티퍼 문화는 ~ 날 (100 × 1.6 ㎖) 당 공급 160 ml의 필요합니다.
    8. 24 시간 기간에 걸쳐 일정한 간격으로 총 일일 사료 요구 선량 PMT를 설정한다. 예를 들면, 160 ml로 하루 총 공급량의 전달이 부분에서 제공 될 수 회 8 회 일일 4 분 동안 5 ㎖ / 분의 정량 펌프 속도 PMT 세트를 사용하여 24 시간의 기간 동안 매 3 시간 (5 ㎖ / 분 × 4 분 = 20 ㎖ × 8 수유 = 160 mL)을 첨가 하였다.
    9. 수확하기 전에, 72 시간 -이 필요한 인구를 생성 할 때까지 문화 (48)에 대해 일반적으로 성장하도록 허용합니다. 24 시간에서 최대 후 시작 배양 용기에 치실 입자 필터를 추가하고 일반 유지 보수를 시작합니다.
  4. 유지
    참고 : 문화는 지속적으로 운영하고 routin 필요이상적으로 다음과 같은 순서로, 매일 같은 시간에 수행되어야 E 유지.
    1. 깨끗하고 가능한 볼륨의 90 %를 FCV를 작성, 10g / L의 수족관 염을 투여 신선한 물, 탈 염소. 물이 잘 혼합되어 있는지 소금의 모든 완전히 용해되어 있는지 확인합니다. 그것은 "롤링 종기"를 유지하도록 용기에 공기 흐름을 설정합니다. 굴절계와 염도를 측정하고 염도가 10g / L 있는지 확인합니다. 그것은을 초과 할이 목표를 달성하지하는 것이 중요하다.
    2. 문화의 다른 부분에서, 3 ㎖ 전송 피펫 또는 autopipettor를 사용하여 각 - 다음 2 3 샘플을 수집, 문화가 잘 혼합되어 있는지 확인 : 이력서에있는 로티퍼 샘플. 튜브에 이러한 샘플을 결합 또는 편리한 크기 (예를 들어, 10 ㎖)의 유리 병.
    3. 전사 1 - 배양 접시 상 결합 시료 2 ml를 이는 해부 현미경 하에서 가시화 될 수 있도록. 문화의 품질을 확인 (의 동작을 수영로티퍼, 분리 된 계란의 존재, 오염 원생 동물).
    4. 샘플 50 % Lugols 요오드 용액 100 ㎕를 첨가함으로써 결합 된 나머지 샘플 피퍼 고정시킨다. 초 이내에 Lugols 첨가 한 후, 수영을 중지 로티퍼를 관찰합니다. 이제 쉽게 로티퍼를 계산합니다.
      주 : 에탄올, 묽은 표백제, 식초 또는 Lugols 대신에 사용될 수있다. 식초 (2 방울 / 10 ㎖)이라는 장점이 무해, 및 피퍼 계약을 할 수 표백제 및 요오드 용액과 같은 저장 영역에 강도를 잃고, 그래서 섬모의 코로나 및 "발"확장 남아 있지 동물은 자연 보인다.
    5. 신속 플라스틱 피펫에서 ~ 2 ML의 표본을, (고정 로티퍼가 빠르게 정착 할 것이다) 시료가 잘 혼합되어 있는지 확인하고 세지-서까래 계산 슬라이드에 1 ml의 분배 (20 × 50 1 mm의 사각형) (그림 2 ). 해부 또는 복합 현미경을 사용하여, 그대로 로티퍼와 T를 계산이 로티퍼에 부착 된 계란의 otal 수 (그림 2). ~ 100 로티퍼를 계산하기 위해 필요에 따라 슬라이드 영역의 정도를 계산합니다. 피퍼 mL의 수를 계산하고, 스프레드 시트 또는이 로그 북에 기록한다.
    6. 수확 ~ CV의 로티퍼의 볼륨의 30 % : 천천히 이력서의 하단에있는 밸브를 열고, 공기 공급 및 치실 필터를 제거하고 물이 53 μm의 메쉬 스크린 플랑크톤 컬렉터로 유입 할 수 있습니다. 버킷 또는 드레인으로 여과 후 집 전체의 저부 유출 물을 수집한다. 피퍼 손상을 방지하기 위해 중간 흐름에 부드러운을 사용합니다. 피퍼가 화면에 건조 허용하지 않습니다.
    7. 일관성 이유로, 피퍼의 표준 번호 매일와 FCV를 확립하는 것이 바람직하다. 따라서, 공지의 CV 로티퍼 밀도 및 수확 부피를 기준으로, 일관된 최종 농도를 달성하기 위해 FCV의 전체 볼륨을 조절 (예., 1500 피퍼 / ㎖). 수확 로티 추가FCV에 FERS는 (- 15 그램 / 리터 10) 조심스럽게 깨끗한 바닷물로 채워진 세척 병을 사용하여 수집 화면에서 로티퍼를 전송합니다. FCV를 통해 화면 전환과 소금물의 부드러운 스트림 FCV에 로티퍼를 씻는다. FCV에 (~ 하루 만 로티퍼 당 1.57 ㎖) 피드를 제공하는 PMT를 시작합니다.
    8. 깨끗하고 부드러운 나일론 브러시 나 스크럽 패드와 CV의 전체 내부를 스크럽.
    9. 물의 양이 수확 손실 대체 5갤런 양동이 깨끗한 RO 물의 측정 된 양의 소금을 적당량 첨가하여 15g / L 물의 새로운 혼합물을 만든다. 양동이에 물에 소금을 추가하고이 완전히 용해 될 때까지 격렬하게 교반 한 후 이력서에 추가 할 수 있습니다.
    10. 싱크대에 고압 스프레이를 사용하여, 그것은 파편 될 때까지 치실 필터를 씻어하고 이력서에 반환.
    11. 피퍼 / ㎖의 일일 횟수에 따라, 각각의 투여 이벤트의 기간을 변경하여 CV로 전달되는 조류의 공급 속도를 조정한다.전달되는 사료의 적절한 양을 결정하기 위해 위의 단계 1.3.8에서 제공 계산을 사용한다.
    12. 약 24 시간 후, 프로세스를 반복합니다. 전술 한 (- 1.4.10 1.4.2 단계)와 동일한 방식으로 (전날에 필요하지 않은)에 잔류 FCV 피퍼를 수확하여 시작. 신선하고 깨끗한 물 탈 염소 (5g / L의 염)의 2 L에서 그들을 집중. 이러한 백업 전원으로 4 ℃에서 저장되거나이 프로토콜에서 설명하는 것 이상의, 물고기의 후기 단계를 공급하는데 사용될 수있다.
      참고 :이 프로토콜은 2 개까지 허용 - 이력서에있는 로티퍼가 심각한 결과없이 수확의 생략을 허용 할 수 있기 때문에, (일반 자동 급지) 감소 문화의 유지 보수의 3 일.

2. 다종 양식

  1. 설정
    1. 부드럽게 멸균 FIS와 린스 후 차 여과기를 통해 만들어지는 배아를 주입에 의해 산란 이벤트에서 제브라 피쉬 배아를 수집시간 물 (또는 적절하게 조절 솔루션의 다른 비 오염 소스, 예를 들어, 배아 매체, E3 등) 배양 접시에 세척 병.
    2. 5 일간 접시 당 50 배아 - (40)의 밀도로 배양 접시에 28 ° C를 - 25 배아를 품어.
    3. 5 일 후 수정, 또는 부화 유충의 90 % 이상이 적극적으로 물 칼럼에서 수영의 다종 양식 단계를 시작합니다.
  2. 접종
    1. 직접 3.5 L 보육 탱크로 FCV에서 로티퍼 문화의 500 ML을 추가; 로티퍼 배양 물을 포함은 다종 양식 동안 로티퍼의 영양 성분을 유지 조류 피드를 제공합니다.
    2. 조심스럽게 보육 탱크에 하나의 배양 접시에서 애벌레를 붓는다. 더 애벌레 접시에 남아 있는지 확인합니다.
    3. 1 L의 최종 부피 및 마지막 S 도달하는 탱크로 재순환 시스템 또는 전용의 급수 원으로부터 깨끗한 조건 물고기 물 500㎖를 추가5g / L의 alinity.
      참고 :이 염분은 제브라 피쉬 애벌레의 생존에 부정적인 염분에 부정적인 영향을받을 것입니다> 7g / L 및 로티퍼 생존 경우 영향을받을 수 있기 때문에 중요하다 염분 <2g / L 경우.
  3. 다종 양식 단계
    참고 : 다종 양식의 단계 (5-9 일 후 수정에 해당하는 5 일 총)까지 4 일 후 접종 지속해야한다.
    1. 로티퍼와 물고기가 있고 성장하고 있는지 확인하기 위해이 기간 동안 적어도 하루에 한 번 다종 양식 탱크를 관찰합니다. 피퍼가 물 열을 통해 볼 수 있습니다 있는지 확인합니다. fishs가 로티퍼 중 수영, 물 열 내에 볼 수 있는지 확인합니다.
    2. 탱크를 통해 정상적인 물 흐름을 시작합니다. 화면을 놓거나 탱크에서 플러시되지 않은 유충을 보장하기 위해 드레인 포트를 통해 배플.
      주 :이 단계의 끝에서, 물고기는 아테 같은 큰 먹이 아이템을 소비 할 수 있도록 충분히 커야 할 것이다125 μm의 - (75)의 크기 범위 유생 또는 가공 공급 아이템.
      주 : 대표 다종 탱크 내의 로티퍼 인구 역학이 단계 1.4.2에서 설명 된 바와 같이 동일한 방식으로 탱크로부터 피퍼 카운팅 / 샘플링하여 측정 하였다 - 1.4.5. 그것이 완료 될 때까지 다종 단계의 처음부터 하루에 한번 수행 하였다.

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Representative Results

여기에 기술 된 연속 로티퍼 배양 시스템은 동적이며, 매일 공급 및 수확 속도의 변동이있는 경우 로티퍼 번호는 시간이 지남에 작은 정도 변동하는 것은 통상이다. 보스턴 어린이 병원 양식장의 활성 배양 중 하나 피퍼의 인구는, 상기와 같이 유지 30 일 (도 3)에 대해 모니터링 하였다. 이 기간 동안 배양 평균 밀도는 1,330 피퍼 / ml의 최대 및 피퍼 510 / ml의 최소, 피퍼 932 / ㎖이었다. 이는이 프로토콜에 따라 유지 로티퍼 문화의 전형적인 성능을 나타냅니다.

제브라 피쉬와 다종 양식 탱크에있는 로티퍼 인구의 역학은 그림 4에 나타나있다. 3.5 L 물고기 탱크 FCV에서 로티퍼 문화의 500 ml의 멸균 F 500 ㎖로 접종틱 물, 40 5 일된 야생형 (튀빙겐 변형) 유충, 로티퍼와 제브라 피쉬는 전형적인 다종 양식 탱크에 수행 방법을 설명합니다. 다종 양식 탱크에있는 로티퍼 인구는 747 로티퍼 / ㎖ (그림 4)의 밀도와 두 번째 날에 뾰족 해졌다. 다종 탱크 피퍼의 밀도 그러나 일 5. 481 피퍼 / ml의 최소 5 주 다종 걸쳐 감소, 전 기간에 걸쳐 평균 로티퍼 밀도는 589.4 피퍼 / ㎖ 및 481의 최소값이었다 피퍼 / ㎖가 이전에 발행 ~ 12 일에서 다종 기간 말 로티퍼 밀도의 10 배이다.

5 일 기간 제브라 성장은도 5에 도시된다. 물고기 0.063 SEM ± 3.904 mm의 평균 총 길이로부터 매일 지속적인 성장을 보였다 이들은 5.423 ± 0.063 SEM의 평균 총 길이 다종 탱크에 첨가 될 때 ...에다종 양식 단계의 마지막 날. 생존은 95 % (40분의 38)이었다.

수질 파라미터 대표 다종 탱크를 매일 측정하고, 표 1에 나타내었다. 이러한 파라미터의 값은 이전에 발행 된 워크 (12)와 유사하며, 피퍼 및 물고기 모두의 성장 및 생존에 이바지하는 조건을 나타낸다 다종 양식의 5 일 동안.

염분 탠 껍질 NO이 없습니다 NO 3 없음 pH가 알칼리성 경도 온도
(실제) (포스트 수정) G / L ㎎ / ℓ ㎎ / ℓ ㎎ / ℓ ㎎ / ℓ (CACO 3) ㎎ / ℓ (CACO 3) 섭씨 </ TD>
월요일 (5) (5) (2) 0 0 8.4 (120) (425) 23.2
화요일 (6) (5) 3 0 0 8.4 (180) (425) 23.3
수요일 7 (5) 3 0 0 8.3 (240) (425) 22.3
목요일 8 (6) 3 0 0 8.4 (240) (425) 22.8
금요일 9 7 3 0 0 7.9 (240) (425) 22.2

표 1. 수질 매개 변수 전NA 대표 Zebrafish의 다종 양식 탱크.

그림 1
그림 1. 로티퍼 문화 설정 설명 :. 배양 용기 (CV), 피드 아웃 배양 용기 (FCV), 공기 공급 (AS), 치실 입자 필터 (FPF), 조류의 공급 혼합물 (AFM)는 저수지 (FR), 프로그램 미터링 피드 타이머 (PMT). 실선은 조류 사료 배달을 나타냅니다. 점선은 공기 공급을 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 2
그림 세지-서까래 계산 슬라이드 2. 작성합니다. 을 보려면 여기를 클릭하십시오이 그림의 더 큰 버전.

그림 3
.도 30 일 동안 배양 3. 로티퍼 인구 역학 범례 : mL의 카운트 피퍼 (암컷 + 계란)의 개수는 X 축 상에있다. 문화 일 수는 y 축에있다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 4
. 5 주 동안 다종 범례도 4 로티퍼 인구 역학 : mL의 카운트 피퍼 (암컷 + 계란)의 개수는 X 축 상에있다. 다종 양식에 일의 수는 y 축에있다. VI에 대한 여기를 클릭하십시오이 그림의 더 큰 버전을 EW.

그림 5
. 5 일 다종 양식 동안 그림 5. Zebrafish의 성장을 설명 : 값은 mm 단위 평균 총 길이이다; 오차 막대는 평균의 표준 오차 (SEM)을 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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Discussion

같은 탱크에 로티퍼와 함께 zebrafish의 애벌레를 처음 공급 물고기를 공급하는 연속 로티퍼 배양 시스템의 구축과 유지 보수 및 배양 : 초기 애벌레 제브라 피쉬를 공급하기위한 로티퍼의 다종 양식 방법의 성공적인 구현은 효과적인 두 가지 작업을위한 프로토콜을 필요로한다.

처음 로렌스와 공동 저자 (14)에 의해 설명 된 제브라 피쉬의 실험실 연속 바닷물 로티퍼 생산 시스템에 대한 설정을 수정하고 응용 프로그램이 모두 더 강력하고 보편적하기 위해 여러 가지 방법으로 향상되었습니다. 새로운 프로토콜은 장비와 방법 모두에서 개선을 포함한다.

조류 사료 혼합물의 저장 시스템은 이제 메기 생산 시스템 (15)에 사용 된 항아리 부화 이용한다. 이 계층화 또는 덩어리와 방해로 연결되지 않도록이 둥근 바닥 항아리에서 사료의 저장은 조류 사료의 완전한 혼합을 용이하게전달 라인의 카 자주 원래 프로토콜을 괴롭혀 문제. 마찬가지로, 복합기 프로그래머블 타이머 / 계량 펌프의 사용은 부품 수를 감소시키고, 피퍼에 피드 계량 전달을 단순화한다. 또한, 공급 물을보다 효율적으로 흡수되기 때문에 더 적은, 더 바람직 수유에 24 시간 기간에 걸쳐 매 시간 피퍼에 사료 정량을 허용한다.

로티퍼 배양에 공급 전달 미세 조정을 허용 피퍼를 카운트하는 방법은이 프로토콜에 포함되고있다. 그 모집단 크기의 정확한 실시간 평가를 근거로 피퍼를 공급하는 정상 고레벨 생산을 보장한다. 보조 피드 아웃 배양 용기는 프로토콜에 추가되었습니다. 연속 배양 시스템으로 인해 보육 활동의 변화로도 큰 보육 작업에 필요한 것 이상의 수십 로티퍼의 수백만의 일일 초과가 발생할 수 있습니다. 이 피드 아웃 구리lture 용기 polycultures 매일 접종 피퍼를 보유하는 데 사용되며, 나머지는 피퍼 물고기 유충 및 이후 단계에 이른 청소년 고품질 영양제로 공급 될 수있다. 전송할 때 격렬한 수영 활성을 유지할 수 있도록 FCV의 감소 염분 (10g / L)은 또한, 다종 탱크 내의 조건을 피퍼 중고-acclimates.

중요한 것은, 로티퍼 배양 프로토콜 리드 이러한 변화는 특히 노동 투입과 관련하여, 다종 양식 방법의 개선을 지시합니다. 이 기간은 333 로티퍼에 뾰족 동안 베스트 참여 공동 저자뿐만 아니라 5 일에서 로티퍼의 초기 접종뿐만 아니라 정적 다종 양식의 위상이 하루 9 ~ 12 일에 종료 될 때까지 로티퍼의 매일 추가 발표 이전 방법. 로티퍼 밀도를 평균 / 접종 일에 mL 및 하루 9~12에 다종상의 종료시 아래 50 피퍼 / ㎖었다. 반면현재 프로토콜은 일반적으로 ~ 665 로티퍼 / ㎖에서 시작하고, 9 일에 481 ~와 로티퍼 / ㎖를 종료 전반에 걸쳐 훨씬 더 높은 밀도를 유지한다.

이 훨씬 더 높은 로티퍼 밀도를 가능하게 두 가지 요인이있다. 1) 접종에 사용되는 로티퍼 문화의 전반적인 안정성은 훨씬 더 크다. 또한, 동일 10g / L의 염분에서 조류 / 로티퍼의 볼륨과 0 ~ G / L 염분 물고기 물, 5g / 다종 양식 전반에 걸쳐 유지되는 L의 중간 염분 결과 다종 양식을 접종의 수정 단계. 물보다 총 부피를 시작으로 (1L)도 다종 양식 탱크에서 로티퍼의 성장과 생존에 더 도움이되는 것입니다. 이전에 발행 된 방법에서, 작은 볼륨에서 낮은 시작 로티퍼 밀도는 물고기 유충을 개발하여 소비 (아마도 불량으로 인한 수질에) 마찰에 의한 손실을 보충하기 위해 로티퍼의 매일 추가를 필요로. 프로토콜 dramat 이러한 조정의 결과ically (이전 방법 4 일 4 수유에 비해 사일을 통해 하나의 먹이를) 노동 투입을 줄일 수 있습니다. 초기 오일의 다종 양식 기간 동안 애벌레의 성장과 생존의 성능은 이전에 12 게시에 필적한다.

로티퍼 배양의 생산성은 반드시 공급 입력에 의해 제한된다. 2,000 로티퍼 밀도 - 3,000 / ㎖ 단순히 공급 전달을 증가시킴으로써 이러한 방법으로 달성 될 수있다. 피드 단위당 로티퍼 수율이 공지되면, 공급 속도가 투사 요구 로티퍼 생산에 맞게 조정할 수있다. 주말과 휴일 동안 공급이 감소 할 수 있고 자신의 생산 잠재력은 일상 공급 될 때까지 최적하고 일상적인 이력서를 수확한다하더라도, 로티퍼를 해치지 않고 하루 이틀 생략 수확.

평소보다 피퍼 대한 예기치 필요가있을 때, 모집단의 더 큰 부분이 막힌을 해치지 않고 수확 할 수있다스트럭처가 있지만, 수확의 크기에 따라 배양은 통상 밀도를 복구하는 일 이상을 필요로 할 수있다. 로티퍼 요구량이 하루 이틀보다 더 감소 될 경우, 생산이 가장 피드 전달을 감소보다는 수확을 감소시킴으로써 감소된다. 25 % 이상 / 일의 수확 속도는 다종 양식 탱크에서의 성능을 향상, 로티퍼가 더 활발하고 다산 있도록 젊은 로티퍼 나이 프로파일을 유지합니다.

이 프로토콜은 쉽게 작은 제브라 시설에 대한 작은 스케일하도록 구성된다. 예를 들면, 편리하게 하루 두번 손 급지와 표준 US 5 갤런 (20 L) 버킷에 설치 될 수 15 L 배양은 용이 1,000 피퍼 / ml의 밀도를 달성 할 수있다. 공급 펌프의 사용은 2,000-3,000 / ㎖의 밀도를 가능하게한다. 30 polycultures - 하나의 버킷 따라서 10을 시작하기에 충분 5-15000000 로티퍼 / 일을 제공 할 수 / 일 30 %에서 수확. 설명 된 바와 같이 두 개의 버킷은 동일한 CV + FCV 프로토콜에서 사용될 수있다보브. 조류 + 암모니아 컨트롤러 + 산도 버퍼 사전 혼합 사료 (특정 시약 / 장비의 표 참조) 소규모 애플리케이션에 편리하다 할 수 있습니다. 이는 조류 세포가 신속하게 정착되지 않고, 그래서 피드 저장소에 연속 혼합을 필요로하지 않는 것을 충분한 점도를 갖는다.

로티퍼 배양 생산성 감소, 또는 죽은 로티퍼의 비정상적인 축적이 문화에서 발견되면, 모든 수질 매개 변수 (온도, 염분, pH는 NH 3 농도)가 부화 할 때까지 Brachionus의 plicatilis 일반적으로 알을 수행한다. 확인하고해야 문화 (보통 부화하지 않음) 많은 부착되지 않은 계란의 존재는 축적 된 암모니아로 인해 가장 자주 스트레스의 징조입니다.

로티퍼 배양 물은 평소보다 더 강한 녹색 인 경우, 어느 공급 속도가 너무 높거나 피퍼는 보통 속도로 음식을 소비하지 않는다. 일반적으로이 CA입니다스트레스 인자, 또는 배양 중 하나에 의해 사용되는 감소 된 인구에 따른 이송 속도를 조정하지 않고 overharvested되었다. 밀도 문화에서 그것은 조류 안료가 로티퍼에 의해 대사되는 등의 갈색 착색 물에 축적하는 정상입니다.

제 1 급전 단계에서 바닷물 로티퍼의 사용은 널리 메소드는 우선 2010 12 년에 출판 된 이후 제브라 피쉬 연구 커뮤니티를 통해 채택되었다.이 프로토콜에 설명 된 다종 양식의 양육 방법에 만든 수정이의 더 큰 숫자를 허용합니다 실험실에 관계없이 규모의이 방법을 채택한다. 이러한 발전은시의 적절하다; 유전자 녹아웃 기술의 발전 (예., CRISPR, TALENs 등) 과학의 다양한 분야에서 사용을 위해 유전자 변형 물고기의 새로운 변종의 수천 성장을 간소화하고 효율적인 양육 프로토콜을 필요로 제브라 피쉬합니다.

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Disclosures

EC 헨리 리드 해양 생물 양식, 주식, 양식 물고기 취미 시장에 로티퍼, 조류 농축, 및 기타 소모품을 제공하는 회사에 의해 사용된다.

Acknowledgments

관리 및이 프로토콜에 설명 된 대표적인 결과에 대해 생성 된 물고기의 사용은 보스턴 어린이 병원, 프로토콜 # 1 14-05-2673R에서 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 명시된 지침과 전체에 따라 수행되었다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Rotifer Culture Infrastructure
100 L Culture Vessel Aquaneering Custom Polycarbonate culture vessel, conical bottomed, with drain valve
5 Gallon Culture Bucket Kit Reed Mariculture CCS Starter Kit Small volume culture vessel for small facilities
Rigid Clear Tubing 1/2" O.D., 36” Pentair Aquatic Ecosystems 16025 Rigid clear tubing for air delivery
Mesh tube Pentair Aquatic Ecosystems RT444X Mesh tube support for floss filter
Rotifer Floss Reed Mariculture Rotifer floss 12” x 42” Particulate waste trap
Peristaltic Metering Timer Pump, 5 GPD Grainger 38M003  Metering pump with timer for dosing feed to rotifers
Peristaltic Metering Timer Pump, 1-100 mL/hr (for smaller-scale culture) Coral Vue SKU: IC-LQD-DSR Metering pump with timer for dosing feed to rotifers
Silicone Tubing  Cole Parmer Tubing for algae delivery to rotifer vessel
Rigid Clear Tubing " O.D.,36” Pentair Aquatic Ecosystems 16025 Rigid clear tubing for air delivery to algae paste
Rigid Clear Tubing O.D., 36” Pentair Aquatic Ecosystems 16025 Rigid clear tubing for algae delivery
Rotifers
Live Rotifers Brachionus plicatilis Type L Reed Mariculture Type L 5 million Rotifer stock culture for system startup
Rotifer Feed
Sodium hydroxymethylsulfonate Reed Mariculture ClorAm-X® 1lb tub Ammonia reducer for algae feed mix
Sodium Bicarbonate Fisher Scientific S25533B pH buffer for algae feed mix
Microalgae concentrate Reed Mariculture Rotigrow Plus® 1 liter bag Nutritionally optimized rotifer feed
RG Complete Reed Mariculture RG Complete 6 oz bottle All in one microalgae based feed for small scale cultures
Water Preparation
 Reef Crystals Reef Salt That Fish Place 198210 Salt for making culture water (NOTE: this item is an example only; any contaminant free salt formulations may be used). 
Refractometer Pentair Aquatic Ecosystems SR6 measuring salinity
Rotifer Culture Equipment
Plankton Collectors 12" Dia, 53 microns Pentair Aquatic Ecosystems BBPC20 Mesh screen for collecting rotifers
Scrub Pads Pentair Aquatic Ecosystems SCR-58 Scrub pad for cleaning inside of culturing vessels
Scrub Brush
Bucket Grainger Supply  43Y530 Graduated bucket for mixing culture water
Hatching Jar Pentair Aquatic Ecosystems J30 Storage of algae feed mix
Lugol’s Solution, Dilute Fisher Scientific S99481 Agent used to immobilize live rotifers for counting
Sedgewick-Rafter plankton counting slide with grid  Pentair Aquatic Eco-Systems M415 Counting rotifers
Miscelleneous
Tea Strainer Kitchenworks 971972 Used for collecting zebrafish embryos after spawning

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References

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발달 생물학 첫 번째 문제 (107) 제브라 피쉬 로티퍼 다종 양식 먹이 larviculture
양육 먼저 먹이 제브라 피쉬의 전체 및 업데이트 &quot;로티퍼 다종 양식 방법&quot;
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Lawrence, C., Best, J., Cockington,More

Lawrence, C., Best, J., Cockington, J., Henry, E. C., Hurley, S., James, A., Lapointe, C., Maloney, K., Sanders, E. The Complete and Updated "Rotifer Polyculture Method" for Rearing First Feeding Zebrafish. J. Vis. Exp. (107), e53629, doi:10.3791/53629 (2016).

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