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Artigo de método

Usando uma técnica de estratificação para executar microscopia confocal da esclera humana

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DOI:

10.3791/53920

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6 de maio de 2016

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Neste artigo

Resumo

O tecido da esclera humana é principalmente colágeno; portanto, não é facilmente utilizável para imuno-histoquímica. Para atingir o objetivo de realizar imuno-histoquímica para microscopia confocal de tecido escleral, foi utilizada a técnica de laminação.

Resumo

A esclerótica é um tecido conjuntivo denso que cobre e protege o olho. Ela consiste principalmente de feixes de colágeno densas (tipos I, III, IV, V, VI e VII). Devido à sua autofluorescência, opacidade, e espessura, não foi considerado adequado para a microscopia confocal. Uma abordagem alternativa para o apresentado aqui, que utiliza esclera fixado com formalina embebido em parafina para imuno-histoquímica, tem desafios técnicos, especialmente quando o pré-aquecimento do tecido para a recuperação de antigénio. Desde a esclera é relativamente pobre em ambas as células e vasos, o uso de amostras de tecido maiores foi explorada para ajudar a evitar que as células com vista e para compreender a sua localização em relação aos navios e outros sítios anatômicos. Para permitir a análise de amostras de tecido maiores, sob o microscópio confocal, uma técnica de laminação foi efectuada para criar camadas finas da esclera. Após a análise dos resultados dos vasos sanguíneos CD31 e vasos linfáticos endotelial hyalureceptor Ronan 1 (LYVE1) células positivas, para o qual foi obtido uma autorização para exame científico, as vantagens e limitações deste método são discutidas.

Introdução

A esclerótica é a camada externa rígida que cobre o olho, o que é feito de tecido conjuntivo denso. Isso ajuda a proteger as estruturas intra-oculares e para manter a pressão intra-ocular. Assim, a esclerótica é essencial para a visão clara. É desprovida de vasos linfáticos 1,2 e, assim, forma uma borda livre-linfática exterior entre ele e o olho interior livre de linfático 3-7. Ele também fornece locais de ligação para os músculos extra-oculares, partilhando assim semelhanças anatômicas com tendões. Porque a esclera consiste principalmente de feixes densos de colágeno tipo I e tem um número menor de colágeno tipo III, IV, V, VI, ....

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Protocolo

O uso de tecidos humanos devem ser revistos e aprovados por um conselho de revisão institucional ou equivalente. O trabalho aqui descrito foi aprovado pelo comitê de ética local e teve a aprovação para análise científica. Este trabalho foi realizado de acordo com a Declaração de Helsinki. Os espécimes esclerais humanos foram obtidos a partir dos olhos de doadores globo (máximo de post-mortem de tempo de 24 horas), no Banco de Olhos do Departamento de Oftalmologia da Universidade de Colônia, Alemanha.

1. Preparação Experimental

  1. Preparar 96% de etanol e salino tamponado com fosfato (PBS) em diferentes tubos. Prepare os anticorpos primários na diluiçã....

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Resultados

Nas experiências representativas realizadas aqui, há benefícios demonstráveis ​​derivados da utilização desta técnica de laminação em particular. A primeira experiência ilustra a rede diversificada de plexo de vasos sanguíneos episcleral em três imagens representativas (Figura 3). Os vasos são positivas para CD31.

O segundo experimento mostra células do sistema imunológico, em particular de células LYVE1 + do .......

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Discussão

Laminar a esclerótica humana é um método para a realização de microscopia confocal sobre este tecido. Um passo essencial neste processo é a utilização de etanol em vez de formalina para a aposição do tecido. Em nossa experiência, os melhores resultados são obtidos quando se utiliza etanol em vez de formol para fixação. bisturis Blunt agravar o processo e devem ser evitadas. Da mesma forma, a secagem da esclera deve ser evitado, uma vez que complica o processo e reduz a qualidade das imagens.

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Divulgações

Os autores declaram não haver divulgações financeiras. O conteúdo deste artigo é de responsabilidade exclusiva dos autores.

Agradecimentos

German Research Foundation (FOR2240 "Angiogênese (linfática) e imunidade celular em doenças inflamatórias do olho" para CC e LMH; HE 6743/2-1 e HE 7643/3-1 para LMH; CU47/6-1 para CC), German Cancer Aid (para LMH e CC), programa GEROK da Universidade de Colônia (para SLS e LMH) e EU COST BM1302 "Unindo Forças para a Regeneração da Córnea" (para CC).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
96% etanolMerck Chemicals, Darmstadt, AlemanhaP075.4
microscópio estéreo binocular Motic, Hong Kong, Chinan.a
26 G agulhas Terumo, Leuven, Bélgica303800
15.5 mm trepanGeuder, Heidelberg, Alemanhan.a no.10
bisturi;Pena, pfm medical, Osaka, Japão2E+08
bisturi oftálmico micro pena Feather, pfm medical, Osaka, Japãono. 7657BR
CD 31 anticorpo (camundongo monoclonal anti humano)Dako, EUAIR610
LYVE1 anticorpo  (coelho policlonal anti humano)Zytomed, AlemanhaRBK014-05
anticorpo FITC de cabra anti-ratoSigma Aldrich, Steinheim, AlemanhaF0257
anticorpo Cy3 de cabra anti-coelhoDianova, Alemanha111-165-003
Soro de cabra normalDako, Glostrup, DinamarcaX090710-8
DAPICarl Roth GmbH, Karlsruhe, Alemanha6335.1
microscópio slides Engelbrecht, Edermü nde, AlemanhaWC7695002
Lamínulas 24 mm x 24 mmTh. Gayer, Lohmar, Alemanha7695026
Meio de montagem fluorescente DAKO DAKO, EUAS3023
LSM Meta 510 microscopia confocal Carl Zeiss AG, Jena, Alemanhan.a

Referências

  1. Schlereth, S. L., et al. Enrichment of lymphatic vessel endothelial hyaluronan receptor 1 (LYVE1)-positive macrophages around blood vessels in the normal human sclera. Invest Ophthalmol Vis Sci. 55 (2), 865-872 (2014).
  2. Schlereth, S. L., et al.

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Reimpressões e permissões

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