Introduction
目前将单个细胞单独在培养空间通常是通过使用有限稀释或荧光激活细胞分选（FACS）来实现的。对于许多实验室，有限稀释是一个方便的方法，因为它仅需要一个吸管和组织培养板中，这是容易获得的。在这种情况下，细胞悬浮液连续稀释至适当的细胞密度，然后通过使用手动移液管放置到培养孔。然后，这些隔间单细胞被用于细胞分析，如遗传异质性筛选1和集落形成2。然而，该方法是低通量和劳动密集的，不利用用于协助一机械臂，因为有限稀释法的泊松分布性质限制了单细胞事件的37％3的最大概率。 FACS机，集成机械臂可以通过准确PLAC克服泊松分布的限制ING在文化井一单细胞在同一时间4。然而，高机械剪切应力（因此，降低细胞活力）5和机购买和操作成本在许多实验室已经限制了它的使用。
为了克服上述限制，微型装置已经发展到高效的单细胞装入微孔6。然而，微孔不提供足够的空间用于装载的细胞增殖，由于需要使每个的尺寸微孔关闭到单个细胞的最大化单细胞加载的概率。作为培养测定在许多基于细胞的应用（ 例如，克隆形成实验7），较大微孔需要（从90 - 650微米的直径或边长）也被用于允许延长细胞培养物。然而，像有限稀释法，它们也具有低的单细胞负载效率，范围从10 - 30％的8，9
以前，我们已经开发出一种高通量微流体平台，单个细胞中分离出在个体微孔，并在分离的细胞的克隆形成实验证明其应用10的装置，用聚二甲基硅氧烷（PDMS）制成，并包括两组微孔阵列具有不同微孔尺寸，从而可以大大提高在微孔的大小加载单个细胞的效率是比电池显著大。值得注意的是，这种“双阱”的概念允许在不影响单细胞捕获效率，使得它直接地调整该装置的设计，以适应不同的细胞类型和应用程序灵活调整培养面积的大小。这种高效率的方法应该是对于长期的细胞培养实验对于细胞的异质性的研究和单克隆细胞系建立有用的。
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Protocol
注意：我们的微流体装置的制造的光掩模的设计通过使用计算机辅助设计（CAD）软件绘制。然后设计被用于制造使用的是商业服务镀铬光掩膜。 PDMS的设备用软光刻技术制成。11
1.制作母模的通过光刻
- 光刻工艺12之前，使用4英寸硅晶片作为基板，并在120℃下脱水在常规烘箱晶片10分钟。
- 通过在100瓦特使用氧等离子体处理中的等离子体清洁器30秒清洗脱水硅晶片。
- 预热在65℃两个分别电炉和95℃，对下列烘烤过程。
- 涂层5克，以通过旋涂机的清洗硅晶片负光致抗蚀剂（PR）的;旋在1,200rpm下（SU-8 50）30秒，以产生微通道层。
- 放置PR在65℃涂覆的晶片上的预热加热板上12分钟，并在95℃下转移至另一预热加热板上33分钟（100微米厚的图案），以执行软烘烤过程。
- 烘烤后，放置在一个半自动化掩模对准的支架的PR涂覆的硅晶片，并对准一个25400 dpi分辨率透明度光掩模。
- 的剂量为500mJ / cm 2的中暴露的PR涂覆的硅晶片到UV光（365纳米）来创建在硅晶片上的PR图案。
- 从对准器中取出晶片，并放置在烘烤后在95℃下12分钟的加热板上。
- 浸泡在SU-8显影剂（丙二醇单甲醚乙酸酯，PGMEA）溶液晶片以洗掉未交联PR为12分钟，并用氮气轻轻擦干以暴露对准标记。
- 再次，涂层5克，以通过旋涂在晶片的负光致抗蚀剂;旋在700rpm（SU-8 100）30秒和1,200rpm下（SU-8 10），用于为300 30秒＃181;米厚的格局和27微米厚的图案分别使微孔层。
- 放置在电炉上的PR涂覆的晶片在65℃下进行4分钟，并在95℃下8分钟（27微米深捕集阱层）;并在65℃40分钟，并在95℃110分钟（300微米深培养阱层）。
- 冷却后，放置在装有UV光掩模对准器的PR涂覆的硅晶片。
- 剂量250毫焦耳/ 平方厘米（27微米厚的图案）和700兆焦耳/厘米2（300微米厚的图案）暴露PR涂硅片紫外光灯（365纳米）。
- 烘烤在95℃下的晶片5分钟，（27微米厚图案）和30分钟（300微米厚图案），分别。
- 由PGMEA为分别为6分钟（27微米厚图案）和25分钟（300微米厚图案），洗掉未交联PR，然后用氮气干燥。
- 测量高度的图案展示了通过放置在晶片上扫描激光轮廓曲线的在xy阶段用扫描激光表面光度仪晶片。
- 调整焦平面清楚地显示了由一20X物镜下使用“相机视图”观察模式在晶片上的图案特征。
- 从“摄像机视图”到“激光视图”切换观察模式，以及设置特征的上下位置。
- 设定分别测量模式，面积，质量，和z音调高达透明（上），1线（1,024×1），高准确度和0.5微米，然后按下开始底部开始测量。
2.准备PDMS器械的单细胞分离
- PDMS铸造之前，silanize主模具与三氯硅烷以创建一个疏水性表面，这使得它更容易从主模具剥离PDMS复制品。
- 将主模具和含权舟三氯硅烷的200微升在干燥器，和15分钟，施加真空（-85千帕）。
- 停止真空，然后离开主模具在干燥器中silanize在室温下将主模具至少1小时。
- 从干燥器中取出主模具和各母模放置在一个10cm培养皿。
- 混合含有碱和以10比的固化剂17.6克PDMS聚合物试剂盒的总量：1，然后倒入PDMS上的培养皿的母模。
- 放置培养皿在干燥器和1小时施加真空（-85千帕），以除去在PDMS中的气泡。
- 从干燥器中取出培养皿并将其放置在常规烘箱中在65℃下3 - 6小时以固化的PDMS。
- 从主模中取出固化的PDMS复制品，并通过与内径-0冲床冲两个孔作为入口和出口处的捕集阱阵列的PDMS复制品所述微通道的两端。75毫米;流体通道（ 图2A）。
- 使用磁带清洁PDMS复制品的表面上，然后将PDMS复制品在短暂氧等离子体处理（100瓦14秒）的等离子体清洁器。
- 除去由氧等离子体机器与PDMS复制品。
- 对齐的顶（包含捕获微孔）和一个底部PDMS（含有培养微孔）复制品用手在立体显微镜下，并使其接触。
- 放置在烘箱对准PDMS复制品在65℃下放置24小时以实现PDMS复制品之间的永久接合，以形成最终器件。
- 浸泡PDMS设备在去离子（DI） - 水填充容器，并将该容器在干燥器真空（-85千帕）下15分钟，以从PDMS设备的微通道除去空气。
- 放置的DI水填充PDMS设备在组织培养罩，并使用UV光（光的波长：254nm），以30英里消毒装置的ñ。
- 在PDMS设备与在1×PBS溶液，5％牛血清白蛋白（BSA）替换DI水，并在37℃下孵育30分钟，以防止细胞粘到PDMS表面。
注意：BSA涂层是至关重要的，以提高从分离的细胞的转移效率捕获孔到培养孔。 - 替换在PDMS设备用无菌1×PBS溶液中的5％BSA溶液。
3.单细胞悬浮液的制备
- 培养的神经干细胞KT98和人癌A549细胞和MDA-MB-435，我们在常规细胞培养孵育箱（37℃，5％CO 2和95％湿度）的培养皿来制备细胞用于PDMS设备细胞实验。
- 卸下并丢弃废培养基从生长至70细胞培养皿（含10％胎牛血清和1％抗生素的供给DMEM基础培养基） - 80％汇合。
- 轻轻洗涤细胞用无菌PBS清洗3次。</ LI>
- 卸下并丢弃PBS，加入2毫升蛋白，胶原溶解和DNA酶的活动重组酶混合物（请参阅材料清单的详细信息）。
- 在室温下孵育培养皿5分钟，然后点击培养皿，以促进细胞脱落。
- 添加4毫升灭菌PBS以分散细胞，然后将细胞悬浮液转移到15毫升锥形管中。
- 离心管中，在300×g离心3分钟，去除上清。
- 轻轻重悬在1ml的灭菌PBS细胞沉淀和计数使用标准台盼蓝排除法13的活细胞数目。
注意：此悬浮步骤是制备以及解离的单细胞悬浮液，以提高单细胞分离效率是至关重要的。
4.单细胞的分离和克隆培养
- 负载50微升细胞悬浮液中的2.2的浓度 - 2.5×10
- 通过进口孔加载其他50微升细胞悬液，以均匀地填充了细胞的整个微通道。
- 用密封塞（3毫米长，直径1毫米的尼龙切鱼线），以避免流由从入口和出口孔滴静水压力感应出水孔。
注意：插头是紫外线使用前组织培养罩内灭菌。 - 填补了用培养基1毫升无菌注射器，从中弹出气泡，并将其设置在注射器泵。
- 经由23政钝针和聚四氟乙烯（PTFE）管道连接介质装载注射器与PDMS装置的入口孔。
- 从出线孔，所有拔下插头流2分钟的时间间隔，使细胞沉淀成重力单细胞捕获井。
- 洗去未捕获的细胞用300μl培养基以600微升/分钟通过注射器泵驱动的流速。
- 等待2分钟，以稳定装置，和密封带插头的入口和出口孔，以形成一个封闭的培养系统。
- 手工翻转设备将捕获的单细胞转移到培养微孔。
- 放置PDMS设备在100毫米组织培养皿，并在该装置周围添加灭菌的PBS 10毫升，以避免从所述微通道培养基蒸发。
- 移动至培养皿的常规细胞培养孵育箱（37℃，5％CO 2和95％湿度）为单细胞的克隆培养。
5.培养基补货
- 培养1天后，具有提高细胞PR新鲜培养基替换PDMS设备培养基oliferation。
- 放置在邻近所述入口孔和出口孔的区域的PDMS设备的顶部培养基的两个液滴以避免引入气泡进入所述微通道在执行下一个步骤。
- 从微通道作为入口的两端附近的PDMS装置的顶部和用于所述微通道的出口冲两个孔。
注意：不要通过PDMS设备的整个两层冲;相反，仅仅通过与PDMS的顶层打孔。 - 通过连接一个23政钝针和PTFE管含有对进口新鲜培养基1毫升的塑料注射器。
- 流120微升新鲜培养基到设备5分钟，更换旧培养基。
- 插入两个塞子以密封所述入口和出口孔，并且该设备返回到细胞培养孵化器。
- 通过除去该密封塞，然后通过重复步骤5.4至5.5刷新培养基中培养的期间每2天。
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Representative Results
对于单细胞的分离和培养的微流体平台包括一个微通道（200微米的高度）与两套微孔阵列（ 图2A）。两套微孔阵列被称为捕捉阱（25微米直径27微米的深度），并培养良好（285微米直径300微米深度）分别为单细胞分离和培养，每从顶视图（ 图2B）观察时捕获阱被定位在培养孔的中心。对于设备操作（概略操作流程在图1中示出），所需要的设备（注射器泵，组织培养箱和显微镜）和建筑材料（注射器，移液管，并且管）是在生物实验室常用的。而且，该平台的可移植性和透明度允许容易地观察和分析的装置中的细胞与conven细胞培养实验期间TIONAL显微镜。
在洗涤步骤的范围之后捕捉阱细胞的捕获效率从67.80±11.38％至85.16±1.91％（取决于细胞类型）（ 图3A）。此外，大部分的捕获阱的只包含所有三种细胞类型（89.89％ - 92.98％）的单细胞，这是由在培养井（ 图3B）分析装载细胞的数量确定。在培养井的最终的单细胞分离效率是KT98和MDA-MB-435细胞76％以上，但只有61％的为由于测试细胞类型中细胞大小差异A549细胞。
癌症研究，单细胞的集落形成试验可用于测试药物抗性和单个细胞克隆的增殖率。在我们的P中的细胞培养和克隆形成实验中分离的单细胞的latform被刷新培养基每2天进行。这个示范突出了这种装置的用于通过测量细胞存活和单个细胞的增殖速率的差异在单细胞水平研究细胞异质性的适用性。
分离的细胞的细胞异质性和增殖速率从日用获取的图像进行分析。结果表明，在分离的单细胞可为7天中培养并表现出不同的生长模式。例如，分离的细胞的13％的人没有细胞分裂和保持作为一个单细胞（ 图4B），而细胞的17.5％分成多于15细胞和培养过程中形成的细胞集落（ 图4A）。 14细胞 - 增殖细胞中的细胞异质性也通过形成两个细胞（4.3％），三细胞（2.5％），和4的各自不同的生长模式证明（15％）的细胞培养实验（ 图4C）。
这些结果表明，该平台可以用于长期的细胞培养，克隆测定和细胞异质性的研究。具有大量的小尺寸区域生长单个细胞集落也使得细胞更容易的显微分析。
图1.在微流体平台的高通量单细胞分离和培养的操作流程的示意图用于单细胞分离和克隆培养的操作过程包括4个步骤：ⅰ）负载细胞进入微通道由一个塑料尖端和手动移液器; II）洗去未捕获细胞通过注射泵驱动的新鲜培养基; iii）与插头密封入口和出口开口之后，是olated细胞，通过翻转设备从捕获井文化井转让;和iv）执行文化井克隆培养（克隆法）。 请点击此处查看该图的放大版本。
图2. 照片和微单细胞分离和培养平台的SEM图像。（A）装有红色染料，显示单细胞培养的微通道和微孔结构的微流体平台。 （B）从切断装置拍摄，显示在微流体平台的三个单细胞分离和克隆培养单位侧视图代表图像。比例尺：100微米。单细胞培养物（C）和捕获的SEM图像（D ，请点击此处查看该图的放大版本。
图3. KT98，A549和MDA-MB-435的单细胞分离效率的微流体平台。（A）KT98，A549和MDA-MB-435细胞的效率洗去未捕获细胞后，捕获俘虏井。细胞的捕获效率是从67.80％至85.16％，在三种细胞类型。 （B）在总培养井的单细胞比（斜线巴）是KT98和MDA-MB-435的76％以上，但对于A549 61.63％。 （ 三 ）个人KT98单细胞的形象代表（红，与细胞染色追踪）的大型文化井克隆培养隔离。比例尺：300微米。 （D）在KT98细胞模型的细胞培养占用井细胞数。培养井的比率为77.3％，与单细胞，16.31％，无细胞，5.96％与两个单元，以及具有三个以上的细胞0.43％。误差线表示为±SD。 请点击此处查看该图的放大版本。
图4.细胞培养，克隆形成实验，并在7天的微流体平台分离的A549细胞的细胞异质性的研究。（A）中的分离的单细胞生长和在培养孔增殖至细胞集落。 （B）分离的单细胞活了下来，但没有分裂，7 d后的文化。比例尺：100微米。 （C）的培养7天之后显示出多相生长模式的分离的单细胞。误差线表示为±SD。 请点击此处查看该图的放大版本。
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Discussion
基于微孔的设备系统6,14已用于单细胞操纵和分析，例如大型单细胞俘获6和单造血干细胞增殖15。虽然井大小，数量和形状可以调节为特定的应用中，当孔的大小增加时，单细胞分离效率总是受到损害。9,15
为了克服此限制，Park等人报告了具有高的单细胞的捕集率（58.34％）的三角形的微孔的微流体芯片，而微孔尺寸放大以允许细胞扩散和生长。然而，微孔（侧〜50微米的长度）可以仅支持细胞增殖达2天。16我们的双阱策略允许在大的微孔单细胞装载到不受泊松概率被限制分布在限制DILU遇到化的方法和开放以及系统3，这表现在提供大微孔，其大小足以为细胞增殖至少7天（ 图4A）高的单细胞分离效率（75％以上）。由于其能够以简单的装置和操作过程高度有效地进行单细胞分离和克隆培养能力，我们设想，我们的微流体平台可以构成为广泛应用的有用的工具，包括通过克隆形成实验17癌干细胞的选择药品18,19和高通量筛选的心脏毒性。
我们的单细胞分离和培养平台的一个主要限制是它不会形成单独封闭培养孔，以防止在培养井培养的细胞之间的串扰。因此，该细胞的行为可通过其它分离的单细胞的在微流体装置中的旁分泌的影响。旧约她我们的平台的限制是相对制备高密度细胞悬液，高效率的单细胞分离的需要。这种高消耗的细胞可以限制罕见细胞分离和培养，的应用，如房水细胞。
该装置的操作之前，它从入口孔注入DI水来填充所述微通道，并仔细观察从键合PDMS设备的任何流体泄漏是重要的。液体泄漏影响的微流状况从而可以在细胞捕获和转移的结果产生不利影响。此外，虽然我们的单细胞装载效率研究结果表明传送从捕获阱到培养孔中的分离的细胞后非常低的信元丢失，指示由翻转设备，大多数细胞可以有效地传递，转印效率降低，如果未正确执行的BSA封闭步骤（2.12）。用户可以修改BSA封闭协议或使用人ternative表面改性方法对他们的特定细胞实验的需要（ 例如 ，增加的BSA浓度或涂布时使用更加贴壁细胞类型）。细胞捕获孔的尺寸是主要的因素，其中需要为在捕集阱的最佳单细胞装载效率进行优化，这取决于感兴趣的特定细胞类型的大小。高的多细胞功能于一个捕获阱事件是由于具有捕获孔尺寸过大的感兴趣的细胞类型，而在捕获以及低电池装载效率是捕获的大小的福祉的指示太小。同样重要的是，以细胞簇最小化所制备的单细胞悬浮液，如细胞簇所用的捕集阱减少单小区负载的效率。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| AutoCAD software | Autodesk | AutoCAD LT 2011 | Part No. 057C1-74A111-1001 |
| Silicon wafer | Eltech corperation | SPE0039 | |
| Conventional oven | YEONG-SHIN company | ovp45 | |
| Plasma cleaner | Nordson | AP-300 | Bench-Top Plasma Treatment System |
| SU-8 50 negative photoresist | MicroChem | Y131269 | |
| SU-8 100 negative photoresist | MicroChem | Y131273 | |
| Spin coater | Synrex Co., Ltd. | SC-HMI 2" ~ 6" | |
| Hotplate | YOTEC company | YS-300S | |
| Msak aligner | Deya Optronic CO. | A1K-5-MDA | |
| SU-8 developer | Grand Chemical Companies | GP5002-000000-72GC | Propylene glycol monomethyl ether acetate |
| Scanning laser profilometer | KEYENCE | VK-X 100 | |
| Trichlorosilane | Gelest, Inc | SIT8174.0 | Tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahydrooctyl. Hazardous. Corrosive to the respiratory tract, reacts violently with water. |
| Desiccator | Bel-Art Products | F42020-0000 | Space saver vacuum desiccator 190 mm white base |
| Polydimethylsiloxane (PDMS) kit | Dow corning | Sylgard 184 | |
| Harris Uni-Core puncher | Ted Pella Inc. | 15072 | with 0.75 mm inner-diameter |
| Removable tape | 3M Company | Scotch Removable Tape 811 | |
| Stereomicroscope | Leica Microsystems | Leica E24 | |
| Bovine serum albumin (BSA) | Bersing Technology | ALB001.500 | |
| DMEM basal medium | Gibco | 12800-017 | |
| Fetal bovine serum | Thermo Hyclone | SH30071.03HI | |
| Antibiotics | Biowest | L0014-100 | Glutamine-Penicillin-Streptomycin |
| Recombinant enzyme mixture | Innovative cell technology | AM-105 | Accumax |
| DiIC12(3) cell membrane dye | BD Biosciences | 354218 | Used as a cell tracker |
| Syringe pump | Harvard Apparatus | 703007 | |
| Plastic syringe (1 ml) | BD Biosciences | 309659 | |
| 23 gauge blunt needles | Ever Sharp Technology, Inc. | TD21 | |
| Poly-tetrafluoroethene (PTFE) tubing | Ever Sharp Technology, Inc. | TFT-23T | inner diameter, 0.51 mm; outer diameter, 0.82 mm |
References
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