Cryosectioning af sammenhængende regioner en enkelt mus Skeletal Muscle for genekspression og histologiske analyser
Summary
Konsekutive cryo-sektioner er samlet for at muliggøre histologiske applikationer og berigelse af RNA til genekspression målinger med tilstødende regioner fra en enkelt mus skeletmuskel. Høj kvalitet RNA fås fra 20 – 30 mg puljede kryosnit og målinger direkte sammenlignes på tværs af applikationer.
Abstract
Med denne metode bliver efterfølgende kryosektioner opsamlet for at give begge mikroskopi ansøgninger om væv histologi og berigelse af RNA til genekspression bruger tilstødende regioner fra en enkelt mus skeletmuskel. Typisk er det udfordrende at opnå tilstrækkelig homogenisering af små skeletmuskulaturen prøver, fordi buffer mængder kan være for lav til effektiv slibning applikationer, dog uden tilstrækkelig mekanisk afbrydelse, den tætte væv arkitektur muskel grænser penetration af buffer reagenser, i sidste ende forårsager lavt RNA udbytte. Ved at følge den protokol rapporteret her, er 30 um snit opsamlet og samlet tillade cryosectioning og efterfølgende nål homogenisering til mekanisk forstyrre musklen, forøgelse af overfladearealet eksponeret i buffer penetration. De primære begrænsninger af teknikken er, at den kræver en kryostat, og det er forholdsvis lille produktion. Imidlertid kan høj kvalitet RNA opnås fra små prøver af puljet muscle kryosektioner, hvilket gør denne metode i mange forskellige skeletmuskulatur og andre væv. Desuden muliggør denne teknik matchede analyser (fx væv histopatologi og genekspression) fra tilstødende områder af en enkelt skeletmuskulatur, så målingerne kan sammenlignes direkte på tværs af programmer for at reducere eksperimentel usikkerhed og for at reducere nødvendige replikative dyreforsøg at købe en lille væv til flere programmer.
Introduction
Målet med denne teknik er at foretage flere eksperimentelle analyser af forskellige modaliteter, såsom histologi og genekspression, tilgængelige fra en enkelt lille skeletmuskulatur kilde væv. Mikroskopi applikationer er de mest følsomme til at prøve konserveringsmetoder, som skal styres omhyggeligt for at begrænse dannelsen af iskrystal artefakter under kryopræservering. Således er metodeudvikling baseret på tibialis anterior (TA) muskel frosne delvis dækket med indlejring harpiks i en -140 ° C flydende nitrogen-afkølet 2-methylbutan bad som udgangsmateriale til både immunfluorescensmikroskopi og genekspression analyser.
Behovet for at bruge den samme kilde materiale til diverse tekniske tilgange er især vigtigt for intramuskulær injektion-baserede eksperimenter, hvor venstre og højre muskler repræsenterer forskellige betingelser, en eksperimentel og en kontrol. For eksempel i muskelregenerationen undersøgelser, en muscle injiceres med et toksin til at forårsage omfattende vævsskade, mens den kontralaterale muskel tjener som et vehikel-injiceret kontrol 1. Tilsvarende genterapi undersøgelser for muskelsygdomme begynder typisk med validering af genterapivektoren ved intramuskulær injektion for at blive sammenlignet med tom vektor, ubeslægtet vektor eller vehikelkontrol på den kontralaterale side 2. Derfor er det ikke muligt at kilde hver TA muscle til et andet program.
Fælles strategier til at håndtere dette problem er: i) at bruge en anden muskel gruppe for hver ansøgning, ii) at bruge ekstra mus, eller iii) at afskære et stykke af musklen for hvert program. Men væsentlige forskelle mellem muskelgrupper gør det vanskeligt at sammenligne data fra forskellige applikationer, og yderligere dyr øger regning og er dårligt berettiget, hvis der findes andre alternativer. Opdeling musklen efter dissektion til kilde forskellige applikationer er den bedste løsning in mange tilfælde. Imidlertid musklen stykker er ofte for lille til at bruge pulverisering under flydende nitrogen eller mekaniske formaling teknikker til homogenisering 2-5. Som muskel er en yderst strukturel væv pakket med ekstracellulære matrix og kontraktile proteiner, utilstrækkelig mekanisk homogenisering fører til et lavt udbytte af efterfølgende DNA, RNA eller protein. Metoden beskrevet her tillader små mængder af væv fra én kilde muskel til brug i flere programmer, og inddragelsen af cryosectioning og nål findeling forbedrer mekanisk homogenisering for bedre RNA udbytte.
Protocol
Representative Results
Discussion
For at opnå de bedste resultater med denne metode, holde indlejring harpiks begrænset til den nederste tredjedel eller halvdelen af musklen under vævet kryopræservering fordi overskydende harpiks vil bremse indsamlingen af de samlede kryosnit og kan øge indlejring harpiks forurening i RNA isolation. Også, omhyggelig opmærksomhed under nålen homogenisering er vigtigt at maksimere udbyttet og minimere sandsynligheden for tilstopning af nålen. Protokollen kan ændres ved hjælp af en Luer-Lok sprøjte …
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Madison Grant, Steven Foltz, Halie Zastre and Junna Luan provided technical assistance. Research reported in this publication was supported by the National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases of the National Institutes of Health under award number AR065077. The content is solely the responsibility of the author and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.
Materials
| Cork | VWR Scientific | 23420-708 | Cut into small squares with a sharp blade. |
| Plastic coverslip | Fisher Scientific | 12-547 | Used to orient the muscle during freezing. |
| Low temperature thermometer | VWR Scientific | 89370-158 | |
| 2-methylbutane | Sigma | M32631-4L | Caution: hazardous chemical. Store in flammable cabinet. |
| Embedding resin: "cryomatrix" | Thermo Fisher Scientific | 6769006 | Other embedding resins can be substituted for cryomatrix. |
| Cryostat | Thermo Fisher Scientific | microm HM550 with disposable blade carrier | Any working cryostat should be sufficient for the protocol. |
| Disposable cryostat blade | Thermo Fisher Scientific | 3052835 | Use an appropriate blade or knife for the cryostat to be used. |
| RNAse decontamination solution: "RNase Zap" | Thermo Fisher Scientific | AM9780 | |
| Analytical balance | Mettler Toledo | XS64 | |
| Paint brush | Daler Rowney | 214900920 | Use to handle cryosections. Can be found with in stores with simple art supplies. |
| Razor blade | VWR Scientific | 55411-050 | |
| Microscope slide | VWR Scientific | 48311600 | |
| RNA organic extraction reagent: TRIzol | Thermo Fisher Scientific | 15596026 | Caution: TRIzol is a hazardous chemical. Note: Only organic extraction reagents are recommended for RNA extraction from skeletal muscle. |
| 18 gauge needle | VWR Scientific | BD305185 | |
| 22 gauge needle | VWR Scientific | BD305155 | |
| 26 gauge needle | VWR Scientific | BD305115 | Optional. Can be used for a third round of sample trituration in the RNA extraction protocol. |
| 1 mL syringe | VWR Scientific | BD309659 | For very high value samples, a luer-lok syringe is recommended (e.g. VWR BD309628). |
| 1-bromo-3-chloropentane (BCP) | Sigma | B9673 | |
| For 70% ethanol in DEPC water: 200 proof alcohol | Decon Laboratories, Inc. | +M18027161M | Mix 35 ml 200 proof alcohol + 15 mL DEPC water. |
| For 70% ethanol in DEPC water: DEPC-treated water | Thermo Fisher Scientific | AM9922 | Mix 35 ml 200 proof alcohol + 15 mL DEPC water. |
| RNA purification kit: PureLink RNA minikit | Thermo Fisher Scientific | 12183018A | Final steps of RNA preparation. |
| DNase/Rnase-free water | Gibco | 10977 | DEPC-treated water can also be used. |
| Spectrophotometer: Nanodrop 2000 | Thermo Fisher Scientific | NanoDrop 2000 | |
| Dnase I | Thermo Fisher Scientific | AM2222 | Treat purified RNA to remove any DNA contamination before downstream appications. |
| Hydrophobic pen | Thermo Fisher Scientific | 8899 | |
| Dulbecco's PBS | Gibco | 14190 | PBS for immunofluorescence protocol. |
| Donkey serum | Jackson ImmunoResearch Laoratories, Inc | 017-000-121 | Rehydrate normal donkey serum stock according to the manufacturer's instructions, then dilute an aliquot to 5% for immunofluorescence. Normal goat serum can also be used. |
| eMHC antibody | University of Iowa Developmental Studies Hybridoma Bank | F1.652 | |
| Collagen VI antibody | Fitzgerald Industries | #70R-CR009x | |
| Donkey anti-rabbit AlexaFluor488 | Thermo Fisher Scientific | A21206 | |
| Goat anti-mouse IgG1 AlexaFluor546 | Thermo Fisher Scientific | A21123 | |
| DAPI (4',6-diamidino-2-phenylindole) | Thermo Fisher Scientific | D1306 | |
| Aqueous mounting media: Permafluor | Thermo Fisher Scientific | TA-030-FM | Only use mounting media designed for fluorescent applications with anti-fade properties. |
| Glass coverslip | VWR Scientific | 16004-314 | Use for mounting slides at the end of immunofluorescence protocl |
| Image analysis software: ImageProExpress | Media Cybernetics, Inc. | Image-Pro Express, or more advanced products | Freeware ImageJ should also work for manual counting. More advanced software with segmentation abiities may allow partial automation of the process. E.g. ImageProPremier. |
| Merge and map section images: Photoshop | Adobe | Photoshop | |
| Cardiotoxin | Sigma | C9659 | Sigma C9659 has been discontinued. Other options for cardiotoxin are EMD Millipore #217503; American Custom Chemicals Corp. # BIO0000618; or Ge Script # RP17303; but these have not been validated. |
| reverse transcription kit: Superscript III First-strand synthesis system | Thermo Fisher Scientific | 18080051 | Any validated, high quality reverse transcription reagents can be used. |
| Standard PCR: GoTaq Flexi polymerase system | Promega | M8298 | Any validated, high quality Taq polymerase system can be used. If DNA sequencing is to be used for any application downstream of the PCR, then a high fidelity PCR system should be used instead. |
| SYBR green | Thermo Fisher Scientific | S7585 | For use in qPCR when not using a dedicated qPCR master mix. Use with SuperROX (for Applied Biosystems instruments) and GoTaq Flexi polymerase and buffers. |
| ROX: SuperROX, 15 mM | BioResearch Technologies, Inc. Novato CA | SR-1000-10 | SuperROX is more stable in the PCR reaction, so it is preferred for use as a qPCR passive reference dye over ROX (carboxy-X-rhodamine). For qPCR with Applied Biosystems instruments |
| Real-time PCR | Applied Biosystems | 7900HT |
References
- Foltz, S. J., et al. Abnormal skeletal muscle regeneration plus mild alterations in mature fiber type specification in Fktn-Deficient Dystroglycanopathy Muscular Dystrophy Mice. PLoS One. 11 (1), 0147049 (2016).
- Bartoli, M., et al. Noninvasive monitoring of therapeutic gene transfer in animal models of muscular dystrophies. Gene Ther. 13, 20-28 (2006).
- Ip, W. T., Huggins, C. E., Pepe, S., Delbridge, L. M. Evaluating RNA preparation options for archived myocardial biopsies. Heart Lung Circ. 20 (5), 329-331 (2011).
- Beedle, A. M., et al. Mouse fukutin deletion impairs dystroglycan processing and recapitulates muscular dystrophy. J. Clin. Invest. 122 (9), 3330-3342 (2012).
- Foltz, S. J., et al. Four-week rapamycin treatment improves muscular dystrophy in a fukutin-deficient mouse model of dystroglycanopathy. Skeletal Muscle. 6, 20 (2016).
- Liu, L., Cheung, T. H., Charville, G. W., Rando, T. A. Isolation of skeletal muscle stem cells by fluorescence-activated cell sorting. Nat. Protoc. 10, 1612-1624 (2015).
- Rump, L. V., Asamoah, B., Gonzalez-Escalona, N. Comparison of commercial RNA extraction kits for preparation of DNA-free total RNA from Salmonella cells. BMC Res. Notes. 3, 211 (2010).
- Desjardins, P., Conklin, D. NanoDrop microvolume quantitation of nucleic acids. J. Vis. Exp. (45), e2565 (2010).
- Valdez, M. R., Richardson, J. A., Klein, W. H., Olson, E. N. Failure of Myf5 to support myogenic differentiation without myogenin, MyoD, and MRF4. Dev Biol. 219 (2), 287-298 (2000).
- Pavlath, G. K., Dominov, J. A., Kegley, K. M., Miller, J. B. Regeneration of transgenic skeletal muscles with altered timing of expression of the basic helix-loop-helix muscle regulatory factor MRF4. Am. J. Pathol. 162 (5), 1685-1691 (2003).
- Chomczynski, P., Mackey, K. Substitution of chloroform by bromo-chloropropane in the single-step method of RNA isolation. Anal. Biochem. 225 (1), 163-164 (1995).
- Lee, J. T. Y., Cheung, K. M. C., Leung, V. Y. L. Extraction of RNA from tough tissues with high proteoglycan content by cryosection, second phase separation and high salt precipitation. J. Biol. Methods. 2 (2), 20 (2015).
- Guo, D., Catchpoole, D. R. Isolation of intact RNA following cryosections of archived frozen tissue. BioTechniques. 34, 48-50 (2003).
- Goodpaster, T., Randolph-Habecker, J. A flexible mouse-on-mouse immunohistochemical staining technique adaptable to biotin-free reagents, immunofluorescence, and multiple antibody staining. J. Histochem. Cytochem. 62 (3), 197-204 (2014).
- Ikezawa, M., Minami, N., Takahashi, M., Goto, Y., Miike, T., Nonaka, I. Dystrophin gene analysis of 130 patients with Duchenne muscular dystrophy with a special reference to muscle mRNA analysis. Brain Dev. 20 (3), 165-168 (1998).
- Majumdar, G., Vera, S., Elam, M. B., Raghow, R. A streamlined protocol for extracting RNA and genomic DNA from archived human blood and muscle. Anal. Biochem. 474, 25-27 (2015).
- Espina, V., Heiby, M., Pieroban, M., Liotta, L. A. Laser capture microdissection technology. Expert Rev Mol Diagnostics. 7 (5), 647-657 (2007).
