Syftet med protokollet är att presentera en optimerad förfarande för inrättande av ett in vitro- blod – hjärnbarriären (BBB) modell baserad på primära svin hjärnan endotelceller (pBECs). Den modellen visar hög reproducerbarhet, hög täthet, och är lämplig för studier av transport och intracellulära människohandel läkemedelsutveckling.
Syftet med detta protokoll presenterar en optimerad förfarande för rening och odling av pBECs och att upprätta in vitro- blod – hjärnbarriären (BBB) modeller baserade på pBECs i mono-kultur (MC), MC med Astrocyten denvillkorade medium (ACM), och Beröringsfri samtidig kultur (NCC) med astrocyter av svin eller råtta ursprung. pBECs var isolerade och odlade från fragment av kapillärerna från de hjärnan cortices av tamsvin 5-6 månader gammal. Dessa fragment var renas genom noggrann borttagning av hjärnhinnorna, isolering och homogenisering av grå substans, filtrering, enzymatisk nedbrytning och centrifugering. För att ytterligare minska kontaminerande celler, odlades kapillär fragment med puromycin-innehållande medium. När 60-95% konfluenta, pBECs växande från kapillär fragment var anpassade till genomsläpplig membranfilter infogar och etablerade i modellerna. För att öka barriär täthet och BBB karakteristiska fenotyp av pBECs, cellerna behandlades med följande differentiering faktorer: membran diffusionskoefficient 8-CPT-cAMP (här förkortad cAMP), hydrokortison och en inhibitor för phosphodiesterasetyp, RO-20-1724 (RO). Förfarandet genomfördes under en period av 9-11 dagar, och vid fastställandet av NCC modellen, astrocyterna odlades 2-8 veckor i förväg. Efterlevnad av förfarandena som beskrivs i protokollet har möjliggjort inrättandet av endotel lager med mycket begränsad paracellular permeabilitet, med NCC modell visar en genomsnittlig transendothelial elektrisk resistans (TEER) 1249 ± 80 Ω cm 2, och paracellular permeabilitet (Papp) för Lucifer gul 0,90 10-6 ± 0,13 10-6 cm SEK-1 (menar ± SEM, n = 55). Ytterligare utvärdering av denna pBEC fenotyp visade bra uttryck för den snäva Junktional proteiner claudin 5, ZO-1, occludin och adherens junction proteinet p120 catenin. Den modell som presenteras kan användas för en rad studier av BBB vid hälsa och sjukdom och med mycket restriktiva paracellular permeabilitet, denna modell är lämplig för studier av transport och intracellulära människohandel.
Cellulära struktur och funktion på blod – hjärnbarriären
På gränssnittet i cirkulations- och centrala nervsystemet (CNS) fungerar BBB som en viktig reglerande webbplats för homoeostatic kontroll av den CNS mikromiljö, vilket är viktigt för korrekt funktion och skydd av nervsystemet. Platsen för BBB är de endothelial celler som kantar blodkärl lumen. I hjärnan kapillärerna, endothelial celler bildar komplexa intercellulära åtsittande föreningspunkter och starkt polariserade uttrycksmönster av särskilt inflödet och utflödet transportörer säkerställa mycket specifika molekylär transport mellan blod och hjärna 1. De strukturella komponenterna i åtsittande föreningspunkt komplexen innehålla proteiner från occludin och claudin familj, zonula occludens (ZO) proteiner, cingulin, och tillhörande Junktional adhesionsmolekyler (JAMs). Claudin 5 är särskilt viktigt i paracellular Junktional begränsningen. Induktion och underhåll av detta karakteristiska BBB endothelial fenotyp involvera dynamiska samspel med omgivande celler, inklusive pericyter, astrocyter, nervceller och källaren membranen, som tillsammans med hjärnan endothelial celler bildar den neurovaskulära enhet (NVU)2,3. Mekanismerna som är involverade i dessa interaktioner är ännu inte helt förstått, men inkluderar utbyte av kemiska signaler mellan celler, som möjliggör modulering av BBB permeabilitet på kort sikt och inducerar långsiktiga BBB funktioner4. Astrocyter särskilt är kända för att bidra till den hjärna endotelceller fenotypen och är en källa till reglerande faktorer såsom gliaceller som härrör neurotrofa faktor (som påverkar intracellulära cAMP)5, basic fibroblast tillväxtfaktor6, hydrokortison7och omvandla tillväxtfaktor β (TGF-β)8. Effekten av TGF-β, har dock varit omdebatterade9.
Från In Vivo att In Vitro BBB
In vivo studier fortsätta att ge värdefull information om BBB biologi. Cell kultur modeller kan dock ge ytterligare insikter och utgöra användbara verktyg för att förstå detaljerade molekylära och funktionella aspekter av BBB vid både hälsa och sjukdom. Även om de komplexa interaktioner mellan de celltyper och beståndsdelarna i BBB är svårt att fullt ut uppnå i in vitro- modeller, har det varit, sen första rening av hjärnan endotelceller och tillämpningen av dessa i mono-kulturer 10 , 11 , 12, omfattande utveckling av rening förfaranden och tillväxt villkor av BBB cell kultur modeller, vilket resulterar i större likheter med den in-vivo -barriären. BBB vanligen används in vitro- modeller är baserade på primära celler av gnagare, svin och nötkreatur ursprung och förevigade cellinjer. Varje modell har olika fördelar och nackdelar. För jämförelse- och modell val används validering markörer såsom uttryck för BBB enzymer, transportörer, receptorer och strukturella proteiner för att skapa översikter över nuvarande etablerade modeller1.
Syftet med protokollet
Ett viktigt inslag i BBB är barriären täthet och hög TEER, men ett stort antal av de tillgängliga modellerna återspeglar inte väl i vivo nivåerna. Införliva utveckling och optimering bidrag från flera laboratorier, är syftet med detta protokoll att presentera en metod för att fastställa en hög TEER i vitro BBB modell baserad på primära pBECs i MC med eller utan ACM eller i NCC med primär astrocyter råtta eller svin. De tillämpade förfarandena och inrättandet av modellen inkluderar ansträngningar för att eliminera kontaminerande celler och förbättra differentieringen av pBECs in i en BBB fenotyp. Detta arbete har resulterat i bildandet av tillförlitliga, högkvalitativa TEER modeller med låg paracellular permeabilitet och bra funktionella uttryck för nyckel snäva Junktional proteiner, transportörer och receptorer. Dock astrocyterna är en bidragande faktor till den hjärna endotelceller fenotypen, representerar tre olika villkoren för kulturen tre olika fenotyper av hjärnan endotelceller. NCC modellen är särskilt användbar för studier av vissa specialiserade mekanismer som är involverade i läkemedelsutveckling, transportstudier och intracellulära människohandel, samt för undersökning av cell-cell interaktioner där maximal uttryck för BBB funktioner är fördelaktiga.
Ursprung och historia av protokollet
Den pBEC modellen beskrivs här baseras till stor del på svin-modellen utvecklad vid Eisai Laboratories (London) av Dr Louise Morgan och kollegor, som bygger på en framgångsrik tidigare nötkreatur hjärnan endotelceller modell13. Den ursprungliga framställningsmetoden cellen var en två-stegs filtrering med nylon nät för att fånga de microvesselsna, följt av ett subculturing steg för att förbättra branschrenheten. I den tidigare utvecklingen av metoden, optimal BBB fenotyp och barriär täthet uppnåddes genom tillväxt i kompletterade medium, inklusive ACM. Ytterligare ändringar av metoden har gjorts av R. Skinner i Prof N. Rothwell’s lab i Manchester UK14,15. Metoden antogs av Abbott laboratoriet, KCL London, där Patabendige gjorde det betydligt enklare att förbereda genom att undvika användning av astrocyter eller ACM och genom att eliminera kontaminerande celler såsom pericyter med puromycin. De första tidningarna bekräftade att MC modellen bevaras flera viktiga funktioner i vivo BBB, inklusive effektiv åtsittande föreningspunkter, membran transportsystem och receptor-medierad transcytos16,17 , 18 , 19 , 20. senare S. Yusof igen testade Astrocyten samtidig kultur och fann det betydligt bättre TEER, så detta är den föredragna varianten som för närvarande används i Abbott lab21. Modellen har nu framgångsrikt lab i Århus, där ytterligare ändringar har överförts till den M. Nielsen och introducerade (protokollet), inklusive förenkla grå materia utvinning, använda endast en mesh filtrering steg, och ett enda filter beläggning att kombinera kollagen och Fibronektin. Tillämpade förfarandet för isolering av svin astrocyter (protokollet) baserades på protokoll som utvecklats av T. Moos laboratoriet i Aalborg, beskrivs av Thomsen et al22. TEER och andra egenskaper för den modell som genereras i London och Aarhus är liknande, som lånar förtroende till uppfattningen att modellen överförs lätt mellan labs och svarar väl på noggrann observation och rationalisering av metod steg. Faktiskt, S. Yusof har nu etablerat MC modellen i ett tropiskt land (Malaysia)23, som involverade ytterligare justering för lokala förhållanden och vävnad källor.
Fördelar över alternativa metoder och för närvarande etablerade modeller
PBECs jämfört med hjärnan endothelial celler av nötkreatur och gnagare ursprung, och ger fördelen av att ha en lägre frekvens av förlust av den i vivo BBB fenotyp efter isolering24. PBECs är dessutom kan bilda relativt snäva endotelceller hinder, även när den odlas i MC (800 Ω cm2)16 jämfört med vanligt rapporterade nivåerna för enskiktslager av cellinjer som bEND.5 och bEND.3 (50 Ω cm2) 25 , 26 , 27och cerebEND (500 Ω cm2)29,31,32, cslutet (300-800 Ω cm2)28,29,30, och primära hjärnan endotelceller i mus (100-300 Ω cm2)SS = ”xref” > 33,34,35,36 och råtta (100-300 Ω cm2)37,38. TEER har emellertid visat beroende på förfarandena som rening och kultur. I de flesta fall visar tillägg av ACM eller samtidig kultur med astrocyter särskiljande effekter på endotelceller och en ökning i täthet av endotel lager1. Dock med insatser för att optimera de culturing villkor, endast de nötkreatur-baserade modellerna har visat TEER värden jämförbara till svin-baserade modeller (genomsnitt av 800 Ω cm2 i MC, upp till 2500 Ω cm2 i Astrocyten samtidig kultur)13 ,39,40,41,42,43,44,45. Som modeller baserat på primära nötkreatur hjärnan har endotelceller visat stora variationer, både mellan och inom laboratorier14,45,46,47,48, reproducerbarhet kan vara ett problem. I den pBEC modellen redovisas här, har de bidragande laboratorierna uppnått mycket liknande TEER och paracellular permeabilitet värden med låg variabilitet, både i och mellan laboratorier. Därför bör det vara möjligt för andra laboratorier för att upprätta en robust modell med låg variabilitet med metoden presenteras här. Förutom att bilda snäva endotelceller lager, har modeller med pBECs tidigare validerats av uttryck av åtsittande föreningspunkt proteiner, funktionella BBB transportörer, receptorer och enzymer och visat lämplighet för en rad studier15 , 16 , 17 , 19 , 20 , 22 , 49 , 50 , 51 , 52 , 53 , 54 , 55 , 56 , 57 , 58 , 59. Dessutom opublicerade transkriptom data på samtidig kulturerna av pBECs visar en förväntad profil av BBB transportörer och receptorer (opublicerade resultat, Nielsen et al.).
Svin-baserade BBB modellen har ytterligare en fördel som genomet, anatomi, fysiologi och sjukdomsprogression av gris återspeglar den mänskliga biologin i högre grad än andra etablerade modeller60, som är gynnsamma funktioner för den läkemedelsindustrin. Som svin hjärnor är en gemensam biprodukt från köttindustrin, utgör de en lättillgänglig källa av hjärnan endotelceller, vilket minimerar antalet djur behövs för experiment, och ger en hög rening avkastning från en svin hjärna. Även om rening och odling av primära celler är något tidsödande och kräver sakkunskap för standardisering i inställningen upp modellen, generera primärceller de mest tillförlitliga BBB-modellerna. Förevigade cellinjer kan inte vara ett substitut, som viktiga egenskaper såsom barriär täthet, transportören uttrycket profiler och mikromiljö förordning inte återspeglar den experimentella fynd i vivo61, 62. in vitro -modeller ger fördelen med live-cell imaging med högre upplösning, möjliggör visualisering av intracellulära processer genom att låta ett nära förhållningssätt till urvalet eller observerade cellerna, med mål med högre förstoring och bättre optisk kvalitet63. Detta är inte fallet för användning av 2-foton mikroskopi i levande djur. In vitro- modeller ger dessutom möjlighet att transfect celler, möjliggör visualisering av märkta proteiner och utredning av deras handel.
Tillämpningar av modellen
Funktionen av BBB inte är fast och kan anpassas dynamiskt både fysiologi och patologi. I många neurologiska sjukdomar, inklusive neurodegenerativa, observeras inflammatoriska och infektiösa sjukdomar, störningar och ökad permeabilitet i BBB64,65,66,67 . För att minska och förebygga sjukdomsutveckling och efterföljande skador, är identifiering och karakterisering av de molekylära mekanismerna bakom moduleringen av BBB av stor betydelse. I detta sammanhang tillförlitlig in vitro- modeller är i hög efterfrågan av läkemedelsindustrin, och dessutom spela en viktig roll i att förutsäga BBB permeabilitet av läkemedel till CNS. Alla in vitro- modell som fungerar som en permeabilitet skärm ska visa en restriktiv paracellular väg, ett fysiologiskt realistiska cell arkitektur och funktionella uttryck för transportören mekanismer68. Visat i tidigare studier16,17,57, och av paracellular permeabilitet och uttrycket av TJ och AJ proteiner här, den presenterade modellen uppfyller alla dessa kriterier och är lämplig för en rad av BBB studier av både normal fysiologi och patologi. Styrkan i den presenterade metoden för rening och odling omfattar en kombination av enkelhet och reproducerbarhet och förmågan att inbegripa astrocytic inflytande med en resulterande robust och tillförlitlig hög TEER i vitro BBB modell. För detta ändamål, astrocyter av svin och råtta ursprung har visat sig öka BBB fenotypen av pBECs i ett liknande sätt22.
Rening och spridning av pBEC
Under förfarandet för rening inkluderar kritiska steg snabbt och effektivt avlägsnande av hjärnhinnorna och separation av vita och grå materia, vilket är viktigt för rening avkastning och renhet och för korrekt fastställande av modellen. För presenteras i vitro BBB modellen med pBECs, har vi förbättras och förenklas en rening förfarande baserat på mekanisk homogenisering av isolerade grå hjärnsubstans, selektivt filtrering för isolering av m…
The authors have nothing to disclose.
Författarna vill erkänna Elisabeth Helena Bruun, Sarah Christine Christensen och Niels M. Kristiansen för tekniskt bistånd och stiftelsen Lundbeck bevilja nummer R155-2013-14113.
Fibronectin | Sigma-Aldrich | F1141 | |
Collagen IV | Sigma-Aldrich | C5533 | |
Poly-L-lysine | Sigma-Aldrich | P1524 | |
DMEM/F-12 | Lonza | BE12-719F | |
DMEM/Low Glucose | Sigma-Aldrich | D6046 | |
Penicillin/Streptomycin | Gibco Invitrogen | 15140 | |
Plasma derived serum (PDS) | First Link UK Ltd. | 60-00-89 | |
Fetal bovine serum (FBS) | Gibco Invitrogen | 10-270-106 | |
Trypsin/EDTA | Gibco Invitrogen | 15090-046 | |
Heparin | Sigma-Aldrich | H3393 | |
Puromycin | Sigma-Aldrich | P8833 | |
Hydrocortisone | Sigma-Aldrich | H4001 | |
8-CPT-cAMP | Biolog | C010 | |
RO 20-1724 | Sigma-Aldrich | B8279 | |
Gentamicin Sulfate | Lonza | 17-518Z | |
DMSO | Sigma-Aldrich | 34896 | |
PBS | Sigma-Aldrich | D8537 | |
EtOH | VWR | 20,824,296 | Mix the 70 % solution from the 96 % EtOH |
DNAse 1 | Sigma-Aldrich | D4513 | |
Collagenase CLS2 | Sigma-Aldrich | C6885 | |
ddH2O | Made with Elga System | ||
T75 flasks | Thermo Scientific | 156499 | |
Costar Transwell inserts (Cell permeable membrane inserts) | Costar | CLS3401 | 12-well plate, 12 mm diameter, 0.4 μm polycarbonate membrane |
15 ml centrifuge tubes | Cellstar | 188271 | |
50 ml centrifuge tubes | Cellstar | 227261 | |
Petri dishes | Thermo Scientific | 150350 | |
Cryo vials | Thermo Scientific | 377224 | |
500 ml bottle | Thermo Scientific | 159910/159920 | |
Scalpels | Swann-Morten | REF0211 | Type 24 |
Tissue homogenizer | Sigma | D9188 | |
140 μm filters | MERCK | NY4H04700 | |
40 μm filters | Corning | 431750 | |
EndOhm chamber system | World Precision Instruments | ENDOHM-12 | EndOhm chamber for 12mm Culture Cups |
EVOM2 electrode system | World Precision Instruments | 300523+STX100C | TEER measurement system with rigid STX-100C electrode pair |
Long needle | Sigma | Attach to a syringe | |
Fine-tip curved forceps | KLS Martin | 12-409-12-07 | |
Broad tip forceps | VWR | 82027-390 | |
Filter holder | MERCK Milipore | Swinnex-47 | |
50 ml syringe | Braun | 4617509F | |
10 ml syringe | Terumo | SSt20ESI | |
Anti-Occludin antibody | Abcam | ab31721 | 1:100 |
Anti-p120 Catenin antibody | BD Transduction laboratories | 610133 | 1:200 |
Anti-ZO-1 antibody | Invitrogen | 61-7300 | 1:200 |
Anti-Claudin 5 antibody | Sigma-Aldrich | SAB4502981 | 1:100 |
Donkey anti rabbit IgG conjugated with Alexa Flour 568 | Thermo Scientific | A10042 | 1:500 |
Donkey anti mouse IgG conjugated with Alexa Flour 488 | Thermo Scientific | A21202 | 1:500 |
Sucrose | Perkin Elmer | NEC100X250UC | 0.15µl/ml final working conc |
Lucifer Yellow | Sigma | L0144 | 10 µg/ml final working conc |