Summary

ドットの試金を使用して細胞シートの移行を分析するには

Published: December 05, 2017
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Summary

細胞遊走は開発、組織のメンテナンスと修復、および腫瘍発生の促進に欠かせない、成長因子、ケモカイン、サイトカインによって調節されています。このプロトコルでは、ドットの試金、アイソレータケージ キューに応答に接続されている、まとまりのある細胞シートの渡り鳥の表現型を評価するために二次元、制約のない移行アッセイについて説明します。

Abstract

複雑な生物は静的に表示が彼らの組織が継続的な売り上げ高の下です。細胞の年齢、死ぬとは新しい細胞に置き換えられて細胞移動組織内でしっかりと管弦楽に編曲された方法で。腫瘍の開発の間にこの平衡が妨げられるし、腫瘍細胞がローカル微小環境、遠いサイトに行き、最終的に遠隔部位に転移性の腫瘍を形成するために侵入するために原産の上皮を残します。ドットの試金はセル フリーエリアに細胞シートの網の動きを評価し、タイムラプス イメージングによる細胞遊走のパラメーターを分析する簡単な二次元の制約のない移行アッセイ。ドット アッセイは実証してここでは、侵襲的人間、肺コロニー形成乳房癌細胞ライン、MCF10CA1a を使用して上皮成長因子 (EGF)、乳癌細胞の悪性の可能性を高めるに知られている細胞の渡り鳥応答を分析して渡り鳥の細胞表現型を変更します。

Introduction

腫瘍細胞の in vitroの侵襲と転移の可能性を評価する移動分析広く使用されます。よく、傷やスクラッチの試金は上皮シートのセルをオフにエリア1,2,3への移行を評価するために使用されます。スクラッチのアッセイを行う細胞が単層にメッキされ、ピペット チップ「スクラッチ」または無料のセル領域が作成されます。スクラッチの試金、一般的な培養装置を設定する簡単なウェル プレート、複数のサンプルの処理を可能にするうことができます。ただし、スクラッチでセル単一層から物理的に削除されます、細胞死をしばしば受けます。さらに、細胞外マトリックス プレートに取り付けがしばしばスクラッチ処理中に破損しています。同様に、シリコンの使用を挿入します (たとえば、Ibidi 室4) またはステンシルの5,6,7細胞の機械的崩壊とコーティングに使用されるマトリックス蛋白質の部分的な除去につながることができます、プレート。傷や傷の閉鎖を監視の試金の別の欠点は、スクラッチが閉じられるまで、細胞の移動を分析のみことができます彼らの期間限定コースです。

ドット アッセイを行うセルをコーティングしたまたはコーティング プレート8の上に円形のコロニーとしてめっき。このめっき方法の理論的根拠は、移行または挿入またはセルの削除によって文化を乱すことがなく細胞周辺に侵入できる定義されたエッジを持つ細胞シートを取得することです。ドット アッセイの全体的な目標は、移行細胞シート端変位または、同様高い時空間的解像度で細胞の渡り鳥の表現型を解析するタイムラプス イメージングを実行するコロニー径で測定したを観察することです。

細胞遊走はアイソレータケージ手がかり EGF などの成長因子、サイトカイン、ケモカインなどの様々 な影響を受けます。EGF が成長因子、その受容体は、EGF 受容体9へのバインディングを介してその生物学的効果を発揮し、腫瘍細胞4,9,10の侵襲と転移挙動が増加します。ドット試金を研究に使用するここで、EGF は、人間、侵襲性肺コロニー乳房癌細胞ライン (MCF10CA1a)8,11,12を形成細胞の移動を刺激します。

Protocol

1. 料理 (1 日目) のコーティング 注: しないように取り扱いにプレートの底に指紋や汚れを残します。 マウスのコラーゲン氷の上の IV を解凍し、それを希釈 50 mM HCl (pH 1.3) 10 μ g/mL コラーゲン IV 溶液 3 mL を準備します。注: コラーゲンを 37 ° C で沈殿させるしたがって、コラーゲン溶液を低温融解と使用中保つことが重要です。適切なサイズの因数を準備することによって凍結?…

Representative Results

侵襲型を使用して (図 1) を紹介ドット アッセイを行った肺コロニー モデル システムとして乳癌細胞 (MCF10CA1a) を形成します。ドット アッセイを生成するのに便利ですし、初心者の手でも再現性の高いセル ドットと簡単な試金 (図 1D) を実行します。ドット アッセイは、HE 染色、またはタイムラプス イメージ?…

Discussion

腫瘍の進行の間に周囲の組織に侵入し、15遠隔部位に転移する起源の組織から移行します。細胞の細胞群からの移動は、ドットのアッセイで観察できます。ここでは、ドットの試金は EGF に応えてひと乳癌細胞の渡り鳥の表現型の分析によって例証されます。

ドットのセットアップでいくつかの手順の正確かつ複製可能な結果を得るための試金は重要で?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者は、読書と原稿のコメントを Bhagawat サブラマニアン、李 (ジェイソン) チャン ポール ランダッツォとキャロル ・親に感謝したいです。この作品は、国立がん研究所の学内研究プログラムによって支えられた健康の国民の協会。

Materials

MCF10CA1a cells Karmanos Research Institute N/A cells used for asay
mouse collagen IV BD Biosciences 354233 used to coat plates
trypsin / EDTA Thermo Fisher 25300054 used to remove cells from tissue culture plates
DPBS  Mediatech 21-031-CV used to wash cells
DMEM / F12 Thermo Fisher 11320082 used as culture medium
horse serum Thermo Fisher 26050088 used to supplement culture medium
12well glass bottom plate MatTek P12G-1.5-14-F used to grow cells for imaging
LPA (1-Oleoyl Lysophosphatidic Acid ) Cayman 10093 used to stimulate cells
EGF (epidermal growth factor, human recombinant) Peprotech AF-100-15 used to stimulate cells
fatty acid free BSA Sigma A8806-1G used to make buffer for LPA and EGF
hematoxylin Sigma HHS32 used to stain colonies
eosin Electron Microscopy Sciences 26051-10 used to stain colonies
37C, 5% CO2 incubator Sanyo model MCO-18AIC (UV)
Zeiss AxioObserver with incubator chamber and motorized stage Zeiss model Axio Observer.Z1 used for time lapse imaging
ORCA Flash LT sCMOS camera BioVision C11440-42U-KIT used for timelapse imaging in combination with Zeiss AxioObserver
Metamorph BioVision MMACQMIC software used for time lapse imaging
inverted microscope Olympus model IX70 used to count cells and to check colonies in tissue culture
plastic box Lock&Lock N/A used as humid chamber (any tight closing plastic box that fits the plates can be used)

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Cite This Article
Stuelten, C. H. Using the Dot Assay to Analyze Migration of Cell Sheets. J. Vis. Exp. (130), e56451, doi:10.3791/56451 (2017).

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