Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

תכופות לקיחת דמים קצה הזנב בעכברים להערכה של הפרשת הורמון מחלמן פועמת

Published: July 4, 2018 doi: 10.3791/57894

Summary

כאן אנו מציגים פרוטוקול דגימה דם הזנב-טיפ לאיסוף הדגימה תכופים בעכברים ערככם. שיטה זו שימושית עבור להערכת דפוסי הפרשת הורמון מחלמן פועמת, יכול להיות מותאם ניתוח גורמים אחרים במחזור.

Abstract

במערכות רבות האנדוקרינית, במחזור הורמונים או גורמים לא מתפרסמים באופן רציף, אך מופרשים כמו דופק דיסקרטית בתגובה גורם releasing. נקודה אחת דגימה אמצעים מתאימים להבין באופן מלא את המשמעות הביולוגית של התבנית הפרשה של הורמונים פועמת בתנאים רגילים הפיזיולוגיות או במהלך תנאי dysregulation. הורמון מחלמן (LH) מסונתז על ידי תאים gonadotrope יותרת המוח הקדמי והוא מופרש בצורה תבניתית פועמת המחייב אוסף תכופים של דגימות דם להערכת הדופק. זה לא היה אפשרי בעכברים עד לאחרונה, עקב התפתחות assay LH רגישות גבוהה, התקדמות טכניקה עבור תכופים בנפח נמוך המדגם אוסף, תיאר בתחילה על ידי סטיין ועמיתיו. 1 כאן נתאר פרוטוקול עבור אוסף דגימת דם היקפיים תכופים של עכברים עם הסתגלות טיפול מספיק כדי לזהות פועמת הפרשת LH. בפרוטוקול הנוכחי מפרט תקופת הסתגלות מורחב המאפשר הערכה של פולסים חזקה ומתמשכת של LH שעות מרובות. פרוטוקול זה, קצה הזנב מקוצצת, דם נאסף מן הזנב באמצעות פיפטה של כף יד. עבור הערכה של LH פועמת בעכברים gonadectomized, טורי הדגימות שנאספו כל 5-6 דקות עבור 90-180 דקות חשוב, האוסף של דם ומדידה של פולסים חזקים של LH יכול להתבצע בעכברים ער, להתנהג בחופשיות, לתת טיפול הולם הסתגלות, מאמץ כדי למזער את גורמי איכות הסביבה. הסתגלות מספיק יכולה להיות מושגת תוך 4-5 שבועות לפני איסוף דם. פרוטוקול זה מדגיש ההתקדמות המתודולוגיה כדי להבטיח אוסף דגימות דם מלא עבור הערכת דפוסי הפרשת LH פועמת במשך שעות רבות בתוך העכבר, במודל בעלי חיים רב עוצמה לחקר נוירואנדוקרינים.

Introduction

תפקוד בלוטת המין אצל יונקים הוא תלוי גונדוטרופין הפרשת הורמון מחלמן (LH), הורמוני, מבלוטת יותרת המוח. Gonadotropins המופרשים בדפוס או פועמת או גל בתגובה היפותלמי הפרשת הורמון releasing – גונדוטרופין (GnRH). סינתזה של הפרשת LH ו- FSH מוסדרים באמצעות פעולה אנדוקרינית, paracrine ו- autocrine מתוך מגוון של מולקולות כולל GnRH היפותלמי, האשכים הורמונים סטרואידים, מערכת activin-inhibin-follistatin, כמו גם מספר עצום של מצבים פיזיולוגיים כולל איזון מתח ואנרגיה. 2

הדפוס פועמת של LH בדם נובע הפרשות די פתאומי של LH לדם ההיקפי, ואחריו כ מעריכי חיסול. חשוב על תכונות של הדפוס כוללות את התדירות של כל הפרשה LH את משרעת של התגובה LH, אשר שניהם מוכתבים, בחלקו, על ידי שחרורו של GnRH. בשל הקושי באיסוף הדם פורטל ההיפותלמוס, יותרת המוח למדידת GnRH פועמת, דגימה של מדידה של LH משמש כמדד לקבלת GnRH רגולציה של הציר ההיפותלמוס-יותרת המוח-האשכים. לכן, מידע קריטי מקודד בתדר ו משרעת של LH פולסים, אשר לא ניתן לקבוע מתוך מדגם בודד.

ניתוח של הפרשת LH פועמת היסטורית הוגבלה ל היונקים הגדולים (בני אדם, יונקים ו כבשים) עקב שלהם נפח הדם גדול וסובלנות עבור איסוף דגימת דם תכופים. בחולדות, דגימה דם תכופים היה מוגבל חולדה, מושגת באמצעות שכינתה קטטר פרפור. 3 , 4 עלות נמוכה יחסית וזמינות של גנטי (למשל cre-לקס, CRISPR) ולבצע מניפולציות מורכבות מעגל עצבי (למשל optogenetics, chemogenetics) עכברים אורגניזם מודל יפה; עם זאת, הפרי של דגימות דם תכופים וניתוח עוקבות של LH ריכוזים עד לאחרונה, הוכח חמקמק. מטלה זו היה חלוץ ידי סטיין ועמיתים לעבודה. 1 מאז אז, מספר מעבדות החלו לנצל דגימה דם תכופים ואת מבחני לאולטרה רגישות LH כדי להעריך את הפרשת LH פועמת במגוון של פרדיגמות ניסיוני. 5 , 6 , 7 , 8 , 9 יצוין כי המרדף אחר שיטה מעשית של איסוף דגימות דם מרובים מעכברים כבר מתקיים כבר שנים לפחות 4010 עם ליטושים מרובים שנעשתה בדרך. 11 , 12

הערכת דפוסי הדופק LH (כלומר תדר ו משרעת) מייצג עידון הגדולות בפיקוח גונדוטרופין הבזליים הפרשת במודל בעלי חיים זה גנטית צייתן. באופן מסורתי, LH ריכוזים בעכברים היו נחושים בדגימת דם בודדת. חולשה אחת הדוגמאות נקודה אחת היא ערכת נתונים משתנה מאוד בגלל ריכוזים LH הם יציבים באופן טבעי במהלך לכל פעימה. חולשה נוספת היא כי מדידות מבודד מטבעו לפסוח על מידע חיוני מועברת על ידי דפוסי הפרשת LH דופק. לפיכך, שיטה לאיסוף דגימות דם תכופים ב להתנהג בחופשיות, עכברים ערככם (למעט טיפול עדין במהלך דגימה) לספק מידע משופרת ולהוכיח שימושי מעבדות רבות חוקרים הורמון פועמת רגולציה.

כאן, אנו מתארים את פרוטוקול עבור האוסף של בתדירות גבוהה (כל 6 דקות) דם דגימות ער, ערככם עכברים. חשוב לציין, אנו כוללים טיפול הסתגלות פרוטוקול המאפשר עבור זיהוי חזקה ומתמשכת של הפרשת LH פועמת בדגימות דם שנאסף מעל ניתן לקבוע את משך הזמן בו מראש, שלאחר הערכת אתגר חריפה, כמו התגובה ללחץ פסיכו-סוציאלי של קיבעון ואיפוק. וזמינותו יעיל עבור LH ריכוזים של דגימות דם שתיארנו קודם לכן; 1 שפרוטוקול זה מתמקדת שיטה לאיסוף דגימות הדם למדידה הדופק LH.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

השיטה המתוארת כאן הוא מסכים עם הנחיות שימוש ו נבחרת מוסדות של בעלי חיים בריאות, קיבלו אישור על ידי טיפול בעלי חיים מוסדיים ועל שימוש הוועדה ב אוניברסיטת קליפורניה, סן דייגו.

1. הסתגלות לטיפול

  1. הליך הטיפול
    1. מקום העכבר הכלובים אבטחה הקבינט. הסר את העכבר הראשון הכלוב ואת המקום על משטח מתאים (למשל מכסה כלוב נקי) בתוך ארון אבטחה.
    2. בעדינות לרסן את העכבר על משטח העבודה על-ידי החזקת בבסיס הזנב עם לאצבע, של יד אחת. לאחר מכן, בחוזקה קו השטח הגחון של הזנב, מהבסיס ועד קצה הזנב, עם לאצבע, האגודל של היד השנייה. חזור על פעולה זו הוספת קו 6 פעמים (כלומר 1 מוגדרת) ולהחזיר את העכבר לכלוב שלו.
    3. חכה 6 דקות וחזור על שלב 1.1.2.
      הערה: בסך הכל, שלב 1.1.2 תחזור על עצמה 4 פעמים לכל העכבר (כלומר 4 קבוצות של קווים 6), כך כל עכבר יקבל סך של משיכות הזנב 24 על כל יום של טיפול.
  2. התדירות של טיפול יומי
    1. מ-5 עד שבועיים לפני יום איסוף דם המתוכנן, להתמודד עם עכברים כפי שמתואר בשלב 1.1, חמישה ימים בשבוע (עכברים לא מטופלים ביום שבת או ראשון עד השבועיים האחרונים של הסתגלות).
    2. אם טיפול ניסיוני במהלך תקופת הדגימה יכלול כל טיפול נוספים (למשל scruffing או הזרקת בקרום הבטן), ואקלום העכברים פעילות זו טיפול בכל מפגש טיפול.
      הערה: עבור הסתגלות לשגרות הזרקה, השתמש מחט קהות לבצע זריקה המזויפים.
    3. במהלך השבועיים לפני יום איסוף דם המתוכנן, להתמודד עם עכברים כמתואר ב- 1.1, שבעה ימים בשבוע.
    4. לפחות שבועיים לפני יום איסוף דם המתוכנן, בית עכברים בזוגות כדי למזער שיבושים לעכברים במהלך הדגימה.

2. הכנת צינורות איסוף דם

  1. הכנת מאגר assay העדינה של LH בבקבוק זכוכית: אלבומין שור 0.2% ל- 0.05% Tween-20 ב- PBS [0.2 גרם אשלגן כלורי, 8 g NaCl, g 1.44 נה2HPO4 (נטול מים), 0.24 g ח'2PO4, מים הנדסה גנטית 1 ליטר, pH 7.4, מסנן אוטוקלב] , לאחסן ב 4 º C. 1
    הערה: נפח של מאגר assay העדינה של LH להיות מוכן יכול להיות מחושב בהתבסס על מספר דוגמאות ואת אמצעי האחסון עבור דגימה כמצוין להלן (2.2 & דיונים)
  2. להכין צינורות איסוף דם (0.6 מ"ל microcentrifuge צינורות). תווית צינורות, מאגר aliquot assay (57 µL מאגר למחזור; הערה, אמצעי אחסון זה עשוי להשתנות בהתאם נפח הדם שנאספו או היחס של הדם אל המאגר הרצוי). צינורות יכול להיות מוכן ימים לפני דגימה, לאחסן ב 4 º C.

3. איסוף דם

  1. הכנת דם אוסף חומרים.
    1. להכין הקבינט אבטחה לשימוש ולארגן את החומרים הבאים בשכונה או על עגלה בקרבת מקום: פיפטה טיפים פיפטה (ערכת 3 µL או נפח איסוף הדם הרצויה), 10 µL, לבזבז סל טיפים בשימוש פיפטה, טיימר, התדפיס עם מספרים בעלי חיים, דוגמת מספרים ( עבור הערות בנוגע לסוגיות מדגם או בעלי חיים), קרח בדלי עם צינורות איסוף דם, מספריים, גזה קטנים (2 "x 2").
      הערה: "לספור עד" פונקציה על טיימר מעבדה שימושי. כי אין לו התראה נשמעים עלול להפריע העכברים
    2. השתמש בסמן קבוע כדי לסמן את הזנב של כל עכבר (ליד הבסיס) כדי לסייע בזיהוי מהיר של העכבר הנכון במהלך הדגימה.
  2. מסיכה של הכנת זנב ואיסוף הדם מראש.
    1. ב- 45 דקות לפני תחילת איסוף דם, להסיר את העכבר הראשון מהכלוב ומניחים על משטח מתאים (מכסה כלוב נקי עובד היטב) בתוך אבטחה הקבינט.
    2. להשתמש במספריים חדות, סטרילי כדי להסיר 1-2 מ מ של קצה זנב העכבר, בעקבות הכנת אספטי (קרי לשפשף עם betadine ואלכוהול).
      הערה: זה יכול להתבצע בבעלי ער באיפוק עדין או תחת הרדמה איזופלוריין.  בנוסף, שיכוך כאבים עשויים להינתן בעקבות המלצות IACUC המקומי.
    3. בזהירות ללטף את הזנב של העכבר כפי שתואר לעיל (1.1.2; 1-2 קווים מספיקים בדרך כלל) עד ה-droplet של דם צורות בקצה הזנב.
    4. השתמש פיפטה עם טיפ נקי כדי לאסוף 3 µL של דם מקצה הזנב ולהשליך את הטיפ פיפטה עם דם.
    5. לפני שחזר העכבר לכלוב שלו, לוודא כי זרימת הדם הפסיק. במידת הצורך, החל לחץ עדין עם גזה סטרילית.
    6. חזור על שלבים 3.2.1 - 3.2.5 עבור כל העכברים. ניתן לאסוף דגימות דם עוקבות מאת בחוזקה ללטף את הזנב של העכבר עד droplet של צורות דם בקצה הזנב.
      הערה: אם droplet דם אינו הטופס לאחר משיחות המשרד, הזנב יכול להיות נכנס עם כרית גזה ספוגה תמיסת מלח. קרישי דם הם נוטים יותר טופס במהלך דגימה בתדירות נמוכה יותר (קרי > במרווחי זמן של 15 דקות). לאחר שקריש מנוקה מן הווריד, הדגימה תוכל להמשיך.
    7. להמשיך לאסוף 3 µL של דם בכל עכבר כמתואר לעיל כל 6 דקות למשך כ- 45 דקות במהלך תקופה זו הכנה איסוף דם מראש. למחוק את הטיפ דם, פיפטה.
  3. לקיחת דמים
    1. לאסוף 3 µL של דם מקצה הזנב כמתואר לעיל. קח זהירות כדי להבטיח כי לקיחת דגימה 3 µL כולו לתוך קצה פיפטה (ללא בועות או מצעים זיהום). הוצא את דגימת הדם לתוך המאגר assay בשפופרת עם תוויות. לערבב על ידי היפוך ולחזור ברכבת התחתית לקרח.
    2. לפני שחזר העכבר בכלוב, להבטיח זרימת הדם הפסיק. במידת הצורך, החל לחץ עדין עם גזה סטרילית.
    3. חזור על הצעדים 3.3.1 - 3.3.2 עבור כל עכבר, כל 6 דקות, משך הדגימה מראש. לפקח על כל בעל חיים סימנים של מצוקה (למשל סגור חלקית העפעפיים, תפקיד הכפוף [אינה נגרמת על ידי טיפול אחר] או חוסר תגובה לטיפול) ולסיים את הדגימה, במידת הצורך.
      הערה: מצוקה התנהגותית או לסיבוכים אחרים הדורשים סיום של הדגימה מתרחשות לעתים רחוקות מאוד במעבדה שלנו.
    4. אם בעלי חיים אינם מורדמים בעקבות לקיחת דמים, להבטיח זרימת הדם מהקצה הזנב הפסיק לגמרי. לנגב דם שנשפך מהחלק הפנימי של כל חיה בכלוב (או שינוי הכלובים) ולחזור חיות הכלובים אל המדף דיור.

4. לטעום עיבוד וניתוח

  1. לאחסן דגימות דם ב-20 ° C עד הניתוח.
    הערה: LH הוא לבדיקה בדגימות דם מדולל במאגר assay; אין הפרדה של sera או פלזמה נדרשת לפני אחסון או ניתוח.
  2. Assay דגימות דם מאת אליסה העדינה כמו שתואר לעיל ערכים1 וח ב- ng/mL של דם מלא בעקבות תיקון עבור דילול של אמצעי האחסון מדגם במאגר וזמינותו.
  3. לזהות LH פולסים בערכת הנתונים. לחשב ולהשוות הדופק הממוצע משרעת תדירות דופק (או מרווח בין הדופק) בהתאם לערכת הנתונים.
    הערה: קריטריונים שפורסמו13,14 תוכניות,15,16 לגילוי פולסים LH הינם זמינים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

נציג LH הדופק דפוסים של עכברים 4 מוצגים באיור 1 (נתונים הודפס מחדש של יאנג. et al., 2017). LH נמדדה בדגימות דם בתדירות גבוהה כדי לקבוע את התגובה מהווה אתגר כהתקפת פסיכו-סוציאלי. עכברים C57/Bl6 הנשי למבוגרים היו ovariectomized, טיפל כמפורט בפרוטוקול זה עבור איסוף דם תכופים. דגימות דם נאספו עבור 90 דקות הראשון בכל בעלי החיים כדי לקבוע תוכנית בסיסית לטיפולי קדם של הפרשת LH פועמת. במהלך 90 דקות השני הדיגום, חיות (שאינם הדגיש) בקרת נותרו בכלובים שלהם, איפוק הלחץ היו ימוקם התקני ריסון מכרסמים וחיות מבודד לכלובים החדשים. חיות בקרת הראה פולסים LH ברורה חד משמעית לאורך כל תקופת הדגימה כולה. לעומת זאת, הלחץ פסיכו-סוציאלי של איפוק במהירות באופן חד משמעי לדכא הפרשת LH פועמת.

Figure 1
איור 1: LH נציג דפוסי הדופק של עכברים ovariectomized. (A, C) שליטה ללא הדגיש עכברים. (B, D) הדגיש עכברים שבו הריסון שהוטל מ 0-90 דקות (אזור מוצל אפור), LH היה לבדיקה. נקודות נתונים פתוח מייצגים פולסים המזוהה על-ידי DynPeak. 15 דמות זו שונתה מן יאנג. et al., אנדוקרינולוגיה 158(11): 2017 3716-3723, עם אישור של האגודה האנדוקרינית, זכויות יוצרים 2017. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

כאן נתאר פרוטוקול עבור איסוף דם תכופים של דגימות דם כל זנב-טיפ להערכת הפרשת LH פועמת בעכברים. פרוטוקול זה מאפשר איסוף דגימות לגילוי של שינויים חריפה פועמת הפרשת LH בעקבות חשיפה דחק פסיכו-סוציאלי, והוא מותאם היטב עבור הערכה של LH פולסים מתחת אחרים מניפולציות אקוטי או כרוני.

הטיפול הוא מרכיב קריטי של פרוטוקול זה להשגת פרופילים אמין וחזק של LH פולסים תקופת הסתגלות. הרעיון כי טיפול מתח עלול לפגום הפרשת הורמון העריך בספרות,17 אבל במפורש לא נבדק. עם זאת, ניתוח של LH נציג את הדופק דפוסי מתואר בפרסומים האחרונים מדגים בבירור יש יתרון הסתגלות יסודית לטיפול. במחקרים מוקדם, ניצול 10 ימים של טיפול, LH פולסים אירעה במרווחים לא עם תקופות ממושכות באילו LH לא אותרו פולסים. 1 מיד לאחר הפרסום החלוצי הזה, חלה מגמה בספרות למשך פרקי זמן ממושכים טיפול (כלומר 3 או 4 שבועות של טיפול יומי). 5 , 6 , 8 הפרוטוקול המתוארים כאן כרוכה סך של 5 שבועות של טיפול, אך משמיט טיפול בסופי שבוע קודם 3, ובכך, להשגת מספר דומה של טיפול הפעלות וצמצום השבוע עומסי עבודה עבור ניסיונאים. אמנם אנו לא מספקים מספר הסף מאומתים של טיפול הפעלות הדרושים עבור זיהוי מוצלח של LH פולסים, אנו ממליצים מתרגלים חדשים של הליך זה לשקול תקופת הסתגלות ממושכת. תחת מסוימים פרדיגמות ניסיוני (למשל לומד LH פולסים בבעלי חיים צעירים), לא ייתכן מספר שבועות של טיפול הסתגלות מעשית. לניסויים האלה, זה קריטי כי מושגת הסתגלות טיפול מספיק; אולי הפעלות מרובות טיפול ליום יהיה מספיק.

מזעור עקה במהלך תקופת איסוף דם הוא גם קריטי להצלחה של פרוטוקול זה. במרדף אחרי המטרה, אנחנו בבית שלנו עכברים בחדר שקט בתוך ביבר במהלך תקופת הסתגלות כולו. הצבת שלט "שקט בבקשה" מחוץ לדלת החדר בעלי חיים ביום הדיגום עשוי לעזור כדי למנוע הפרעות לא מכוונות. במהלך תקופת איסוף דם, בד יכול לשמש את אבטחה בארון כדי לספק מקום לנוח על פיפטה, פיפטה טיפים ועטים, ובכך, צמצום רעש נגרם על-ידי מניפולציה פריטים אלה. לבסוף, מומלץ שאדם צריך להתמודד עם העכברים ולאסוף כל הדגימות דם ביום ניסיוני. האדם הזה צריך להיות חרוץ בטיפול בבעלי חיים עם טיפול, בזמן עקבית של יום (אשר אמור להיות דומה זמן הדגימה), מאז תשומות היממה ידועים להשפיע על תגובות הלחץ. 18 פולסים LH אם הם נדירים או לא לגילוי, מקורות מתח מיותר צריך להיות מזוהה ממוזער. עוד פרט פרוצדורליים הקשורים צמצום הלחץ במהלך תקופת איסוף דם היא משך הזמן החולף בין מסיכה של הזנב ואיסוף דגימות כדי להיות לבדיקה של LH. אנחנו קליפ הזנב של העכבר כל 45 דקות לפני איסוף דגימות של LH וזמינותו. עיכוב זה משמש להפרדת חנותם הלחץ הקשורים עם הזנב גזיר כל טיפולים נוספים שהוטלו במהלך דגימה, כמו הזנב מסיכה לבד הוכח כדי להעלות את רמת ריכוז corticosterone במחזור. 19 דגימות דם הם מופנמים (אך שנמחקו) במהלך חלון זה 45-מין נוסף ואקלום עכברים הנוהל לטיפול ולמנוע היווצרות קרישי דם במהלך עיכוב זה.

שיקול הסופי כאשר העסקת פרוטוקול זה עבור איסוף דם תכופים אצל עכברים הוא נפח הדם קטן של מין זה יגביל את מספר ואת נפח של כל דגימה שנאספו. לפי המדריך פיקוח משרד החקלאות חיה, עכברים יש 72 מ של דם לכל ק ג משקל גוף. 20 לניסויים הישרדות, 7.5% נפח הדם ניתן לאסוף תוך תקופה דגימה בודדת ניתנה תקופת התאוששות שבוע אחד ו 10% נפח הדם ניתן לאסוף עם נקודה 2-שבוע התאוששות. אנו אוספים באופן שגרתי < 7.5% נפח הדם המשוער של העכבר באמצעות פרוטוקול הנוכחי של אוסף דם בתדירות גבוהה (כולל נציג התוצאות המוצגות כאן), ללא כל השפעה שלילית על דפוסי הפרשה של LH. בביבר שלנו, הבוגרים עכברים C57/Bl6 ovariectomized שוקל כ 22 גרם (נפח הדם תיאורטי של 1.58 mL), המאפשר 118.5 µL של דם להיות שנאספו. בתוספת 7 דוגמאות אוסף קדם הטיפול (אשר לא לבדיקה או ניתוח), דגימות 30 נאספים מעל 180 דקות עבור סכום כולל של µL 111 של דם (µL 3 עבור דגימה), אשר נמצא מתחת לגבול נפח הדם 7.5%. יצוין, כי נפח דגימת הדם עשוי צריך להיות מותאם כדי לזהות LH בתנאים מסוימים כאשר ריכוזי LH צפויים להיות נמוכים. בעכברים gonadectomized, 3 µL של דם מלא מספיקה לזהות LH. איסוף נפח דם גדול יותר יש לשקול מתי LH ריכוז נמוך, לכן צפוי להיות קרוב יותר את מידת הרגישות של LH וזמינותו. לכן, למרות נפח הדם קטן של עכבר, ניתן לאסוף דגימות דם מספיקים כדי להעריך פרופיל ללא פשרות של הפרשת LH פועמת על פני תקופה 180-מין.

לסיכום, זה דם תכופים דגימה פרוטוקול מדגיש מורחבת של טיפול תקופת הסתגלות כדי להבטיח הערכה של הפרשת LH פועמת בעכברים על פני תקופה ארוכה של זמן. הראו כי פרוטוקול זה מספיקה לאפיין קבוע ועמיד פולסים של LH שניתן לפקח עליהם לפני ועקב חשיפה דחק פסיכו-סוציאלי. פרוטוקול זה ניתן להתאים כדי להעריך את התגובה של LH לסוגים אחרים של מתח או טיפולים אחרים, זה עשוי לשנות את הפרשת הורמון הרבייה. יתר על כן, הפרוטוקול אוסף דם יכול להיות מותאם עבור המידה של גורמים אחרים במחזור להשתנות בריכוז לאורך זמן, כפי שדווח על הורמון גדילה. 21 זה תרומה יוצאת דופן לשדה של neuroendocrinology כי דפוס הפרשה של LH יכול עכשיו להיות במעקב בבית זן שם מתחם גנטי, ויוו גישות מולקולריות ללמוד ויסות הדופק LH זמינות ו מעשי.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgments

המחברים תודה ד"ר ג'ניפר יאנג קאופמן אלכסנדר (סשה) לקבלת סיוע טכני עם טכניקה זו, כמו גם דיונים קריטיים ומסייע רבים. סרום הורמון מבחני בוצעו על ידי היאנג. et al., 2017 אוניברסיטת וירג'יניה במרכז לחקר רבייה ליגנד Assay ניתוח הליבה, נתמך על ידי מענק יוניס קנדי שרייבר NICHD/NIH (NCTRI) P50-HD28934.

מקורות תמיכה מחקר: R01 NICHD 86100 (KMB), RBM נתמכה על ידי T32 NICHD 007203.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Biosaftey cabinet Lab Products Inc L/F-B
Bovine serum albumin Sigma A5403
Tween-20 Sigma P2287
KCl Sigma P9333
NaCl Sigma S7653
Na2HPO4 (anhydrous) Sigma S7907
KH2PO4 Sigma P5655
Ultrapure water Millipore Purified and filtered water
Broome Rodent Restraint Device Harvard Apparatus 52-0460 Not necessary for blood collection, but were used in the collection of representative data.
DynPeak n/a n/a http://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0039001

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Steyn, F. J., et al. Development of a methodology for and assessment of pulsatile luteinizing hormone secretion in juvenile and adult male mice. Endocrinology. 154 (12), 4939-4945 (2013).
  2. McArdle, C. A., Roberson, M. S. Knobil and Neill's Physiology of Reproduction. Plant, T. M., Zeleznik, A. J. , (2015).
  3. Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. Blood sample collection in small laboratory animals. Journal of Pharmacology and Pharmacotherapy. 1 (2), 87-93 (2010).
  4. Steiner, R. A., Bremner, W. J., Clifton, D. K. Regulation of luteinizing hormone pulse frequency and amplitude by testosterone in the adult male rat. Endocrinology. 111 (6), 2055-2061 (1982).
  5. Moore, A. M., Prescott, M., Marshall, C. J., Yip, S. H., Campbell, R. E. Enhancement of a robust arcuate GABAergic input to gonadotropin-releasing hormone neurons in a model of polycystic ovarian syndrome. Proceedings of National Academy of Science U S A. 112 (2), 596-601 (2015).
  6. Czieselsky, K., et al. Pulse and Surge Profiles of Luteinizing Hormone Secretion in the Mouse. Endocrinology. 157 (12), 4794-4802 (2016).
  7. Campos, P., Herbison, A. E. Optogenetic activation of GnRH neurons reveals minimal requirements for pulsatile luteinizing hormone secretion. Proceedings of National Academy of Science U S A. 111 (51), 18387-18392 (2014).
  8. Yang, J. A., et al. Acute Psychosocial Stress Inhibits LH Pulsatility and Kiss1 Neuronal Activation in Female Mice. Endocrinology. 158 (11), 3716-3723 (2017).
  9. Clarkson, J., et al. Definition of the hypothalamic GnRH pulse generator in mice. Proceedings of National Academy of Science U S A. 114 (47), E10216-E10223 (2017).
  10. Lewis, V. J., Thacker, W. L., Mitchell, S. H., Baer, G. M. A new technic for obtaining blood from mice. Laboratory Animal Science. 26 (2 Pt 1), 211-213 (1976).
  11. Abatan, O. I., Welch, K. B., Nemzek, J. A. Evaluation of saphenous venipuncture and modified tail-clip blood collection in mice. Journal of the American Association of Laboratory Animal Science. 47 (3), 8-15 (2008).
  12. Durschlag, M., Wurbel, H., Stauffacher, M., Von Holst, D. Repeated blood collection in the laboratory mouse by tail incision--modification of an old technique. Physiology and Behavior. 60 (6), 1565-1568 (1996).
  13. Goodman, R. L., Karsch, F. J. Pulsatile secretion of luteinizing hormone: differential suppression by ovarian steroids. Endocrinology. 107 (5), 1286-1290 (1980).
  14. Clarke, I. J., Cummins, J. T. Increased gonadotropin-releasing hormone pulse frequency associated with estrogen-induced luteinizing hormone surges in ovariectomized ewes. Endocrinology. 116 (6), 2376-2383 (1985).
  15. Vidal, A., Zhang, Q., Medigue, C., Fabre, S., Clement, F. DynPeak: an algorithm for pulse detection and frequency analysis in hormonal time series. PLoS One. 7 (7), e39001 (2012).
  16. Merriam, G. R., Wachter, K. W. Algorithms for the study of episodic hormone secretion. American Journal of Physiology. 243 (4), E310-E318 (1982).
  17. Xie, T. Y., et al. Effect of Deletion of Ghrelin-O-Acyltransferase on the Pulsatile Release of Growth Hormone in Mice. Journal of Neuroendocrinology. 27 (12), 872-886 (2015).
  18. Koch, C. E., Leinweber, B., Drengberg, B. C., Blaum, C., Oster, H. Interaction between circadian rhythms and stress. Neurobiology of Stress. 6, 57-67 (2017).
  19. Tuli, J. S., Smith, J. A., Morton, D. B. Corticosterone, adrenal and spleen weight in mice after tail bleeding, and its effect on nearby animals. Laboratory Animal. 29 (1), 90-95 (1995).
  20. United States Department of Agriculture. Animal Welfare Inspection Guide. , Available from: https://www.aphis.usda.gov/animal_welfare/downloads/Animal-Care-Inspection-Guide.pdf (2017).
  21. Steyn, F. J., et al. Development of a method for the determination of pulsatile growth hormone secretion in mice. Endocrinology. 152 (8), 3165-3171 (2011).

Tags

מדעי המוח גיליון 137 עכברים דם לדוגמה דגימה הזנב-עצה בתדירות גבוהה הורמון מחלמן הורמון פולסים
תכופות לקיחת דמים קצה הזנב בעכברים להערכה של הפרשת הורמון מחלמן פועמת
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

McCosh, R. B., Kreisman, M. J.,More

McCosh, R. B., Kreisman, M. J., Breen, K. M. Frequent Tail-tip Blood Sampling in Mice for the Assessment of Pulsatile Luteinizing Hormone Secretion. J. Vis. Exp. (137), e57894, doi:10.3791/57894 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter