Summary
对多个生物分子进行系统分析对于获得对生物过程的功能和机械见解至关重要。因此,描述了一个广泛的协议,用于从从同步衣原体培养中采集的单一样本中高通量提取脂质、代谢物、蛋白质和淀粉。
Abstract
微藻一直是其在高价值化合物、食品和燃料生产中的应用研究的重点。此外,它们是有价值的光合模型,有助于理解基本的细胞过程。系统范围的研究有助于全面和深入地了解生物体的分子功能。然而,蛋白质组学、脂质学和代谢组学研究需要多个独立的样本和协议,这些研究具有更高的误差和可变性。这里介绍了一种强大的高通量提取方法,用于同时从绿色藻类衣原蛋白的单个样品中提取叶绿素、脂质、代谢物、蛋白质和淀粉。图示的实验设置适用于使用 12 h/12 h 光/暗条件同步的衣原体培养物。在24小时细胞周期内采集样本,证明使用各种分析平台获得的代谢物、脂质和淀粉数据均符合要求。此外,使用相同的提取方案采集的蛋白质样本进行详细的蛋白质组学分析,以评估其质量和可重复性。根据这些数据,可以推断,图示方法提供了一个强大和可重复的方法,以增进对各种生物化学途径及其功能的理解,更有信心的基础和应用研究。
Introduction
微藻是天然产品(如燃料、人类和动物营养、化妆品和药理物质)的丰富来源。为了提高微藻1、2、3、4等高价值产品的生产效率,我们进行了大量研究。系统层面对新陈代谢的理解是提高天然产品的质量和产量的先决条件5,6,7。随着功能基因组技术的出现和改进的质谱方法,数千个基因、转录本、蛋白质和代谢物可以同时被监测。然而,深入蛋白质组学、脂质学和代谢组学研究需要多个样本,这在单细胞生物体中往往难以实现,特别是如果要进行时间课程研究。此外,将不同样本等分的收集和处理与不同的协议相结合,以收集高度复杂的组分数据(即蛋白质组、脂质组和代谢组学),引入可变性,从而使数据的集成成为具有挑战性的任务。
衣原体不仅为细胞过程的研究提供了优良的微生物系统,而且为研究细胞周期和代谢的协调提供了方便的模型。因此,使用对衣原体8的同步培养的高分辨率转录组分析,显示了与细胞周期的转录表达的强烈协调。约80%的被分析的转录本在24小时细胞周期8中表现出强健的周期性。同样,在一项研究中,两种不同菌株的衣原体干重、蛋白质、叶绿素、氨基酸和脂肪酸与细胞分裂相关,该研究每4小时9次进行一次取样。最近,据报道,代谢物和脂质动力学的细胞转移基于细胞周期10的特定阶段。使用坚固的甲基醚-丁基醚(MTBE):甲醇:水基萃取方法,可监测不同生物分子的细微变化,为全面的多组分分析提供了一个理想的起点。,11.
提出的协议指南通过可重复和有效的策略10,同时从单个样本等分中提取脂质,代谢物,蛋白质和淀粉,为时间解决了代谢和脂质学研究同步生长的衣原体文化。除了说明强健和可重复的代谢和脂质数据10外,这里还演示了从同一颗粒获得的蛋白酶样本的质量。
Protocol
1.衣原体前文化
- 通过将细胞从TAP介质的固体板转移到Erlenmeyer烧瓶,用200 mL的HSM介质12,准备衣原体的预培养物(应变野生型CC-1690 mt+)。
- 在24°C的旋转摇床上生长预培养物,在100 μmolesμm-2 μs-1连续光下生长,直到细胞密度达到± 2 x 106细胞/mL。
2. 发酵罐中衣原体液体培养物的同步
注:该协议中提供的参数,如温度、光和CO2,是特定于应变CC-1690mt+的。为了使用另一个应变来开发同步培养,有必要测试最佳条件。
- 将预培养体转移到发酵罐系统(参见定制发酵罐设计补充图1),连接到循环冷却器以保持温度,过滤 CO2 (2%, v/v) 冒泡,并搅拌发酵罐底部的磁搅拌棒,具有恒定的搅拌力。
- 要启动同步,将发酵罐设置为12:12 h的暗度,在34°C和200 μmolesμm-2μs-1光下,并确保其含有500 mL的HSM培养基,细胞密度为1 x 106细胞/mL。
- 在 24 h 周期结束时,使用管系统与蠕动泵结合使用管系统,将培养物重新稀释至 1 x 106细胞/mL,并将扰动降至最低,从而可以先泵出不同量的培养物,然后泵送高压灭菌介质。
注:作为蠕动泵的备用,接种注射器可用于提取培养剂,而所需的新鲜培养剂量可在无菌条件下直接添加到发酵罐中。 - 重复步骤2.3三次,在接种的第4天获得同步培养。
- 为了验证细胞的同步性,每隔2小时采集一次样品,并使用细胞计数器和大小分析仪测量细胞密度和细胞体积(见材料表)。根据细胞密度,在1:10至1:100之间稀释样品,并在30~1900μm3的尺寸范围内测量。
3. 收获衣原体细胞
- 标记 15 mL 锥形离心管,并准备充满液氮的脱华。
- 使用注射器(50厘米3)通过发酵罐的内玻璃管采集样品。将样品分配到圆锥形离心管中,该管应包含10-15 x 106个细胞。注意传输到每个管的体积,并使用细胞计数器和大小分析仪测量每个时间点的细胞密度和细胞大小(参见材料表)
- 在4000 x g下通过离心将细胞进行5分钟的细胞。然后丢弃上清液,将颗粒冻结在液氮中,然后储存在-80°C。
4. 制备提取缓冲液和提取叶绿素、脂质和代谢物
注意:甲醇 (MeOH) 和 MTBE 是易燃的,在长时间接触和/或接触时会刺激呼吸道、眼睛或皮肤。请仅在烟罩中小心处理,并在提取过程中使用适当的安全程序(实验室外套、安全眼镜、手套等)。
-
提取缓冲区 1
- 在 100 mL 体积烧瓶中,加入 75 mL 的 MTBE、25 mL 的 MeOH(UHPLC 级)和均质(3:1,vol/vol)。
- 添加以下内部标准溶液:50 μL 皮质酮(MeOH 中为 1 毫克/毫克),50 μL 1,2-二甲苯二甲苯-SN-甘油-3-磷胆碱(氯仿 HPLC 等级为 1 毫克/mL),25 μL 的亚霉素(1 mg/mL 在水 UHPLC 等级中)和 50 μLD-Sorbitol-1-13C(水中1毫克/升/升UHPLC等级)。
- 将萃取缓冲液转移到干净的玻璃瓶中,并在 -20°C、使用前 1 小时预冷却溶液。使用新鲜制备的萃取溶液。此溶液可在 4°C 下存储长达 2 周。
-
提取缓冲区 2
- 在100 mL体积烧瓶中,加入75 mL水UHPLC级和25 mL的MeOH UHPLC级和均质。
- 将萃取缓冲液转移到干净的玻璃瓶中。使用新鲜溶液进行萃取。此溶液可在室温下储存数周。
5. 叶绿素、脂质和代谢物的提取
- 将管与细胞颗粒(包含 10-15 x 106细胞)放在液氮中。
- 用1 mL的预冷(-20°C)萃取液液1重新悬浮每个管中的细胞颗粒。
注:快速执行此步骤以避免低粘度提取缓冲液蒸发。加入萃取缓冲液1后,将管保持在室温下。 - 涡旋,直到细胞在萃取混合物中很好地均匀化,并将混合物与2 mL微离心管等分。
- 在冰冷水中用声波浴(见材料表)对培养物进行10分钟的声波处理。
- 在 1000 rpm 转速下孵育轨道振动器上的所有样品 60 分钟,在 4°C 下孵育。
- 要诱导相分离,添加650 μL的萃取缓冲液2。
- 涡旋在20000 x g下短暂离心,在4°C下5分钟。
注:此步骤后,管底部有液相和固体颗粒的分离。小心处理管子,避免混合两个液相。顶级MTBE相含有脂质和叶绿素,而下相含有极性和半极性代谢物。底部沉淀的颗粒含有蛋白质、淀粉和其他不溶性分子。
6. 对分数进行加法
- 将 500 μL 的上 MTBE 相(脂质)转移到标有 1.5 mL 的管中。使用真空浓缩器干燥样品(参见材料表),并储存在-80°C,直到测量。
- 使用 200 μL 移液器取出剩余的 MTBE 相。
- 将650 μL的下相(极极和半极性代谢物)转移到新的标记管中。使用真空浓缩器干燥样品(参见材料表),并储存在-80°C,直到测量。
- 通过移液多余的体积来去除剩余的下相。
- 将固体颗粒冷冻在液氮中,并储存在-80°C,直到进一步提取。
7. 极性代谢物(原代谢物)的测定
- 在甲氧胺-盐酸/丙烯溶液中重新悬浮极性相的干燥颗粒(步骤6.3),用于碳基团的甲氧西化。
- 在37°C加热样品90分钟。
- 如前13所述,在37°C下用N-甲基-N-三甲基硅酰三氟酰胺(MSTFA)衍生样品30分钟。
- 使用与飞行时间质谱法(GC-TOF-MS)耦合的气相色谱分析主要代谢物。使用的梯度参数根据前面描述的协议14。
8. 非极性代谢物的测定(脂质)
- 在乙酰乙酰二醇(7:3,v:v)的混合物中重新悬浮非极相的干燥颗粒(步骤6.1)。
- 在 20000 x g下离心,在反向相 C8 柱(100 mm ×2.1 mm ×1.7 μm 颗粒)上分离,使用 UPLC 系统(参见材料表)。两个移动相为含1%1M醋酸铵、0.1%醋酸(缓冲A)和醋酸:异丙醇(7:3),含有1%1M醋酸铵、0.1%醋酸(缓冲液B)。
- 根据前面描述的协议14使用梯度参数。
9. 叶绿素含量的测定
- 将 MTBE 相位(步骤 6.1)的 100 μL 与 900 μL 的 90% 甲醇混合,用于方法空白和实验样品。
- 使用波长为 665 nm 和 652 nm 的分光光度计测量吸光度,以区分叶绿素a和叶绿素b。
注:有效浓度计算的吸收范围应在0.1和1之间。如有必要,稀释样品。 - 根据以下公式计算叶绿素 a 和 b 的含量,以及总叶绿素含量。
Chla = 16.82A665 = 9.28A652
Chlb = 36.92A652 = 16.54A665
Chla_b = 0.28A665 = 27.64A652
注:公式由Bar-Nun和Ohad15描述。
10. 蛋白质含量的提取和测定、消化和分析
注:为了重新悬浮蛋白质,颗粒尿素/尿素缓冲液(6M尿素,2M尿酸蛋白酶和磷酸酶抑制剂)用于修改先前描述的16的协议。然而,任何选择的缓冲液都可用于蛋白质的重新悬浮。
- 使用以下浓度制备蛋白质缓冲液:6M尿素和2M尿酸。
- 在200 μL的蛋白质缓冲液(10.1)中溶解颗粒(步骤6.5)。
- 在室温下孵育样品30分钟,随后在20000 x g下离心5分钟。
- 将含有蛋白质的上清液转移到新管中。
- 通过布拉德福德测定17测定蛋白质浓度。
- 通过选择的协议,消化50μg的蛋白质溶液中。在这里,使用以下协议。
- 使用 5 mM DTT 减少 50 μg 的蛋白质样品 30 分钟,然后使用 10 mM 碘乙酰胺在室内温度黑暗下进行 30 分钟的烷基化。
- 以25:1的蛋白质:蛋白酶比(w/w)加入胰蛋白酶/Lys-C混合物,在37°C下混合和孵育3小时。
- 使用 50 mM TrisHCl (pH 8) 稀释样品六折,并在 37°C 下孵育过夜。
- 通过将三氟乙酸(TFA)加入0.5~1%的最终浓度,终止消化。
- 消化后,使用C18级提示在质谱前对肽进行脱盐,并洗脱消化的肽18。
- 将样品浓缩到接近干燥度,将2-5 μL溶液留在真空集中器中(见材料表),无需加热。
- 在装载缓冲液中重新悬浮样品(5%醋酸,0.5%用于甲酸),并使用连接到纳米UPLC系统的高分辨率质谱仪(见材料表)通过LC-MS/MS分析肽混合物。
- 使用UPLC系统(见材料表)在20厘米反向带电表面混合(CSH)柱上分离肽(见材料表),内径为75μm,颗粒尺寸为1.7μm。
- 加载 4 μL 样品,以 300 nL/min 的流速穿过 90 分钟梯度。
- 设置渐变。使用偏置梯度设置为缓冲液 B 的 3% (99.9% 醋酸 = 0.1% 的甲酸)的部分环离线设置,在循环与柱移至联机位置之前保持 14 分钟,此后梯度线性增加 50 分钟,直到 20%缓冲区 B 达到。
- 在接下来的15分钟内,将缓冲液B的浓度提高到30%。然后在以下 15 分钟内,将缓冲液 B 增加到 40%,然后再达到缓冲区 B 的 90%。 执行洗涤步骤,需要以 400 nL/min 清洁列,并按住 10 分钟(详细梯度见表 1条件)。
- 最后,将系统设定为300 nL/min的流速,并在1分钟内将3%的缓冲液B浓度平衡15分钟,然后再注入下一个样品。
注:在LCMS/MS分析后,表2列出了已识别的蛋白质的完整列表。
11. 淀粉含量的提取和测定
注:为了确定总蛋白质和淀粉含量,固体颗粒在两步步骤中提取,如前10所述。
- 在细胞颗粒中加入500 μL的80%(v/v)乙醇(步骤6.5),并在80°C下孵育10分钟。
- 在室温下以4000 x g离心10分钟。然后溶解在250μL无菌水中的颗粒,然后加入250μL的100mM醋酸钠。
- 在99°C下加热3小时,将淀粉水解。通过加入β-淀粉酶(每个样品4.2个单位)和β-淀粉糖凝酶(每个样品10个单位)的酶混合物,在一夜之间将溶解的淀粉消化成葡萄糖单体。在37°C孵育管过夜。
注:孵育后,样品可在-20°C冷冻数天,或在-80°C冷冻数月,在进行葡萄糖测量。 - 在20000 x g下将消化的提取物离心5分钟,并收集上清液。将上清液(含淀粉衍生的葡萄糖单体)溶解在含有5 mM MgCl 2、60mg/mL ATP、36mg/mL NADP和葡萄糖-6-磷酸脱氢酶(每个样品1个单位)的100 mM中。
- 为了分析淀粉含量,首先测量340nm的基线吸收度。然后加入六角激酶(每个样品1个单位)以开始反应。最后测量使用 96 孔板读取器在 340 nm 处的 NADPH+H+ (指示淀粉消化到葡萄糖的水平)的增加。
注:340 nm 时最大值的差值(不应超过 1 的线性范围)和基线相当于消化淀粉的葡萄糖浓度。应建立葡萄糖曲线,以确定每 mL 的 Nmol 中葡萄糖浓度。
Representative Results
衣拉米多莫纳斯·赖因哈特蒂CC-1690 区域性同步
为了演示给定协议的代表性结果,我们给出了从同步衣原体培养物10采集和提取样品后获得的多组分数据示例。衣原体同步培养物由在特定时间点属于均匀生长阶段的细胞组成。衣原体培养物在12小时/12小时光/暗循环时同步,34°C的光强为200μmolμm-s-1,CO2浓度为2%,v/v,被描述为CC-1690 mt® 10菌株的最佳浓度.这些条件以前已经使用各种细胞周期参数10进行优化和验证。图 1显示了在同步培养的不同时间点使用库尔特计数器测量的单元格大小分布。当细胞在整个光相中大小增大时,可以观察到细胞体积的变化,然后从10小时光相结束时开始释放子细胞。一旦释放所有子细胞,当新释放的子细胞被释放开始下一个周期10时,可以观察到细胞体积的变化(图1)。
样品采集、处理和-提取
样品的快速采集使用离心,在丢弃上清液后,颗粒可以储存在-80°C,直到提取。如上所述(步骤5),MTBE提取结果分为三个不同的阶段:a)有机相用于测量脂质和叶绿素水平(正常化因子),b)收集极性在GCMS上测量代谢物,而c)使用颗粒以测量淀粉含量和蛋白质。图2概述了不同阶段的分布及其就业情况。
极性和非极性代谢物
根据对极性馏分的GCMS分析,对65种代谢物进行了批复,包括氨基酸、核酸、糖解中间体、葡萄糖成因、三甲苯酸循环、磷酸五角星通路和聚胺(图3A)。LCMS对含脂脂的中性相的分析,确定了204种不同的脂质,涵盖各种脂质类别,即磷脂酰甘油、磷脂酰乙胺、磺基诺沃西尔二乙醇醇,单糖酰二醇,二甘醇,二乙酰三乙二甲苯甲酸酯,脂肪酸,二乙酸甘油和三乙基甘油酯。为了可视化细胞周期中代谢物和脂质的全局变化,使用了主要成分分析(PCA)。PCA 显示代谢组学和脂质学数据的明和暗相分离。此外,两个数据都可以注意到一个半循环(部分打开的圆圈)(图3C,D)。圆形模式的部分间隙归因于以下事实:在细胞周期24小时处采集的样本是在暗下收集的,与在0.25小时暴露于光线后在细胞周期开始时收集的样本形成对比(图3C) ,D)。
蛋白质和淀粉分析
为了检查MTBE提取所得的蛋白质颗粒的质量,使用了6个样本进行蛋白质组分析。通过消化50μg蛋白质/样品获得蛋白质组学数据的质量,使用计算质量控制工具-蛋白质组学质量控制(PTXQC)19进行检验,表明从中获取的蛋白质组学数据的可重复性和高质量所有复制 (补充图 1)。使用REVIGO20检查了蛋白质的分子功能覆盖。图4A中介绍了2463种识别蛋白质的功能富集概述(见表2)。蛋白质提取后的剩余颗粒用于淀粉的可重复定量,如不同复制之间的低标准偏差所示(图4B)。
图1:在衣原体细胞周期的不同阶段细胞体积变化的例子。表示像元体积的 x 轴,而表示像元数的 y 轴。请点击此处查看此图的较大版本。
图2:在多组细胞提取细胞颗粒期间使用不同阶段的图示工作流程。这个数字从朱普纳、J.等人得到重用。10.请点击此处查看此图的较大版本。
图3:使用所述协议识别的代谢物和脂质的代表性示例。(A) 由 GCMS 分析识别的代谢物类.(B) 属于LCMS分析所鉴定的不同类别的脂质物种。(C) 24 h 细胞周期中代谢物水平的原理组分分析.(D) 24 h 细胞周期脂质的原理组分分析.请点击此处查看此图的较大版本。
图4:蛋白质和淀粉数据的代表性示例。A) 使用LCMS分析识别的蛋白质的分子功能富集,使用REVIGO 20 B)代表性淀粉数据绘制树状图,显示协议的可重复性。请点击此处查看此图的较大版本。
补充图1:针对衣原体培养物的温度和曝气控制同步生长的发酵罐系统的定制设计。这个数字从朱普纳、J.等人得到重用。10.请点击此处下载此文件.
补充图2:蛋白质组学数据质量的代表性结果。使用计算PTXQC工具绘制的热图19。请点击此处下载此文件。
| 时间(分钟) | % 缓冲区 B 到缓冲区 A | |
| 0 至 15 分钟 | 线性梯度从 0 到 3% | 缓冲液A:UPLC级水中0.1%的甲酸 |
| 15 至 75 分钟 | 线性梯度从 3% 到 30% | 缓冲液B:60%UPLC级乙酰乙酸中0.1%的甲酸 |
| 75 至 90 分钟 | 线性梯度从 30% 到 40% | 流速 300 nL/min |
| 90 至 94 分钟 | 线性梯度从 40% 到 90% | 喷射体积 4 μL |
| 94 到 104 分钟 | 洗涤柱与 90% | |
| 105 至 120 分钟 | 以 3% 将列平衡 15 分钟 |
表1:肽样品的液相色谱、梯度参数。
表2:LCMS/MS分析后确定的蛋白质清单。请点击此处下载此文件。
Discussion
在本文中,我们展示了一个强大且高度适用的提取方案,用于从10-15 x 106细胞的单粒中进行综合脂质组学、代谢组学、淀粉和蛋白质组学分析。该方法已在多种研究中成功实现,研究范围广泛,研究范围广泛,研究范围广泛,研究范围为10、14、21、22、23、24、25 ,26,27,28,29,30,31,32,33,34 ,35,36.在这里,我们提出了一个逐步管道,用于从从衣原体(CC-1690 mt+)培养中采集的单一样本中分一步分析不同的生物分子。
该协议提供了一种强大且可重复的方法,用于同时处理多个样品,用于分析各种生物分子。但是,应注意执行一些关键步骤,以尽量减少技术差异。首先,应尽快收获细胞,同时保持所有采集样品的统一条件,以保持细胞的生物状态。虽然我们使用离心来收获细胞,但替代采集策略可用于采集样品。然而,需要注意的是,不同的收获策略已知会影响细胞的代谢状态37因此,必须对所有实验样本采用一致的采集方法。其次,避免干燥含有叶绿素的上部非极性,因为这会影响溶剂中溶解叶绿素的水平,影响样品的正常化因子。最后,在去除剩余的极性时应注意获得蛋白质和淀粉颗粒,以避免干扰可能影响淀粉和蛋白质含量的颗粒。
因此,提出的提取协议为多组分数据分析提供了几个优点。除了最小化所需的样品等分数外,它还减少了不同生物分子的分析结果之间的差异。这允许直接比较从初级代谢物、脂质和蛋白酶数据中获得的结果。同样,同时提取多个复合类允许不同数据集的一致和统一规范化策略。如果使用干重或新鲜重量38或细胞号很难实现规范化,则尤其适用。
该协议可以用于对复杂生物样品进行常规筛选。这些整体代谢、脂质和蛋白酶数据集可以提供关于代谢系统变化的全面信息。此外,从蛋白质组学分析中获得的数据提供了对蛋白质与代谢物相关的定量(丰度)和定性(修饰)变化的见解。因此,整合组学数据可以揭示关于生物系统遗传或生物和/或非生物扰动引起的变化的深入信息。因此,阐明特定代谢途径或细胞过程的分子变化。同样,这些高通量数据可以识别代谢工程的目标,并优化或测试来自基因组规模代谢模型37,39的预测。
Disclosures
作者没有披露。
Acknowledgments
我们非常感谢古德伦·沃尔特和奥内·米夏里斯的出色技术援助。我们要感谢贾瓦利斯科实验室的所有成员的帮助。我们感谢马克斯·普朗克协会资助了L A Giraldi奖学金的研究和FAPESP
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagents and standards | |||
| 1,2-diheptadecanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (17:0 PC) | Avanti Polar Lipids | 850360P | Internal standard for lipids |
| 13C Sorbitol | Sigma Aldrich | 605514 | Internal standard for metabolites, ISOTEC® Stable Isotopes |
| Ampicillin | Sigma Aldrich | A9393-5G | Internal standard for metabolites |
| Corticosterone | Sigma Aldrich | 27840-500MG | Internal standard for metabolites, HPLC grade |
| Methanol (MeOH) | Biosolve Chemicals | 13684102 | ULC-MS grade |
| Methyl tert-butyl ether (MTBE) | Biosolve Chemicals | 13890602 | HPLC grade |
| Trypsin/Lys-C mix | Promega | V5072 | Enzymatic digestion of proteins |
| Water | Biosolve Chemicals | 23214102 | ULC-MS grade |
| Equipment | |||
| 1.5 ml Safe-lock microcentrifuge tubes | Eppendorf | 30120086 | Used for fractions |
| 2 ml Safe-lock microcentrifuge tubes | Eppendorf | 30120094 | Used for sample extarction |
| Balance | Sartorius Corporation | 14 557 572 | |
| Fermenter system | Glasbläserei Müller, Berlin, Germany | custom made fermenter of 800ml capacity | |
| Q-exactive HF Orbitrap Mass Spectrometer | Thermo Scientific | IQLAAEGAAPFALGMBFZ | |
| Refrigerated microcentrifuge | Eppendorf, model 5427R | 22620701 | |
| Reversed Phase (RP) Bridged Ethyl Hybrid (BEH) C8 column (100 mm×2.1 mm containing 1.7 μm diameter particles) | Waters, Machester, UK | 186002878 | Analysis of lipids |
| RP Charged Surface Hybrid (CSH) column (Waters) with an inner diameter of 75 μm and a particle size of 1.7 μm | Waters, Machester, UK | 186007477 | Analysis of proteins |
| RP High Strength Silica (HSS) T3 column (100 mm×2.1 mm containing 1.8 μm diameter particles) | Waters, Machester, UK | 186003539 | Analysis of metabolites |
| Shaker | Eppendorf Thermomixer 5436 | 2050-100-05 | |
| Sonicator | USC 300 TH | 142-0084 | standard preset sonication power at 45kHz |
| UPLC system | Waters Acquity UPLC system (Waters, Machester, UK) | ||
| Vacuum concentrator | Scan Speed Maxi Vac Alpha Evaporators | 7.008.500.002 | |
| Vortex mixer | Vortex-Genie 2, Model G560 | SI-0236 | |
| Z2 Coulter Particle Count and Size Analyzer | Beckman Coulter | 6605700 | particle (cells) volume and number analyser |
References
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