Summary
وصف هنا هو بروتوكول للمناعة المباشرة من ألياف العضلية الميتة في العضلات. الخلايا الميتة هي نفاذيه للبروتينات المصل ، بما في ذلك الغلوبولين المناعي G (مفتش). الكشف عن امتصاص مفتش من قبل myofibers يسمح لتحديد والتقدير الكمي من ألياف العضلية التي تخضع لنخر بغض المثل عن حاله العضلات.
Abstract
نخر ألياف العضلات (فرط التعرق) يلعب دورا مركزيا في التسبب في العديد من الحالات العضلية, بما في ذلك حثل العضلات. من المتوقع ان تخفف الخيارات العلاجية التي تعالج أسباب الضمور العضلي من انحطاط العضلات. لذلك ، هناك حاجه إلى طريقه لفحص وقياس مدي موت الخلايا في الخزعات العضلية. الطرق التقليدية لمراقبه تنكس ألياف العضلية في الموقع اما ضعيفه الكمية أو تعتمد علي حقن الاصباغ الحيوية. في هذه المقالة ، يوصف بروتوكول المناعية ان البقع ألياف العضلية الميتة عن طريق استهداف الغلوبولين المناعي G (مفتش) امتصاص من قبل ألياف العضلية. ويستند أسلوب امتصاص مفتش علي ميزات الخلية تميز زوال نخريه ، بما في ذلك 1) فقدان سلامه غشاء البلازما مع الإفراج عن الاضرار المرتبطة الأنماط الجزيئية و 2) امتصاص البروتينات البلازما. في الأجزاء المتقاطعة murine ، والمناعية المشتركة من ألياف العضلية ، والبروتينات مصفوفة خارج الخلية ، والماوس مفتش يسمح بالتحديد النظيف والمباشر للألياف العضلية مع مصير نخريه. هذه الطريقة البسيطة مناسبه للتحليل الكمي وقابله للتطبيق علي جميع الأنواع ، بما في ذلك العينات البشرية ، ولا تتطلب حقن صبغه حيوية. ويمكن أيضا تلطيخ من ألياف العضلية نخريه من امتصاص مفتش ان يقترن مع غيرها من المناعية المشتركة.
Introduction
العضلات الهيكلية الشريطية تتكون أساسا من ألياف العضلات (ألياف العضلية) ، والتي هي المسؤولة عن وظيفة مقلص الطوعية المميزة. هذه الخلايا هي نوى ، وهياكل ما بعد الانقسام التي تدعم الإجهاد الميكانيكية التي تحدث اثناء الانكماش. الاستقرار الهيكلي لغشاء ميوليف (ساركولايما) ومصفوفة خارج الخلية هي حاسمه للتوازن الانسجه. خلايا الأقمار الصناعية تشكل العضلات الرئيسية السكان السلف في العضلات الهيكل العظمي ناضجه وموجودة في حاله هادئه في عضلات صحية. بعد وفاه ألياف العضلية ، يتم دعم تجديد العضلات بواسطة خلايا الأقمار الصناعية التي تتبع البرنامج العضلي الذي ينطوي علي تنشيط الخلايا الساتليه ، والانتشار ، والتمايز ، والانصهار لتشكل في نهاية المطاف نوى ليف جديده.
يمكن ان يحدث زوال ألياف العضلية في حالات العضلات المتعددة ، بما في ذلك الصدمات الميكانيكية ، وإصابات نقص التروية ، أو حثل العضلي ، ويرتبط بالتشكل الميت للخلايا النافقة1،2. ويتميز الموت نخريه من نفاذيه السريع لغشاء البلازما والإفراج عن محتوي الخلية في المقصورة خارج الخلية3. ويمكن ان ينتج اما عن عمليه غير منظمه لا تنطوي علي اشاره الخلية السليمة (اي النخر العرضي) ، أو مسار منظم داخل الخلايا (اي النخر المنظم). في ألياف العضلية ، وينظم كل من4 وغير المنظم5 عمليات يمكن ان يؤدي إلى نخر. ومن النتائج النموذجية للتهاب المفاصل هو الإفراج عن أنماط الجزيئات المرتبطة بالضرر ، وتفعيل استجابه التهابيه قويه6. لوحظ وجود الضامة في حوالي 48 h و 72 h بعد الاصابه7. وبالاضافه إلى دورها في أزاله الحطام نخريه ، فهي أيضا مهمة في تجديد العضلات8،9.
حثل العضلي (MDs) هي مجموعه غير متجانسة من الامراض التي غالبا ما تنجم عن عيب في بنيه ساركولايما. ضمور العضلات duchenne (DMD) هو مرض الاحداث المرتبطة ب X التي تؤثر علي ما يقرب من 1 من كل الولادات الذكور 3,500 في جميع انحاء العالم10، وسببه عدم وجود dystrophin التعبير في sarcolemma. الانحطاط المزمن للانسجه العضلية في DMD الأولاد يؤدي إلى ضعف العضلات المدقع والوفاات المبكرة. التهاب الناتج عن الموت نخريه يعزز السمية الخلوية ، ويعزز التليف العضلي وفقدان وظيفة العضلات11،12. العلاجات الحالية في التجارب السريرية التي تستهدف جذور الاضطرابات التنكسية العضلية ، مثل العلاج الجيني ، من المتوقع ان تخفف من التهاب المفاصل. ولذلك هناك حاجه إلى تقنيات بسيطه لقياس انحطاط العضلات بدقه.
يتم استخدام عده طرق بشكل روتيني لمراقبه فقدان ألياف العضلية في الجسم المجري. قياس النشاط الانزيمي من الكرياتين كيناز (CK) في الدم يسمح كميات موثوقه من النخر المستمر في انسجه العضلات والقلب. في الموقع ، وتلطيخ هيماتوكسيلين و ايوسين (H & E) هو الأسلوب الأكثر شعبيه المستخدمة حاليا في التشخيص لتقييم انحطاط التجديد أعاده النمذجة. بيد ان الأساس الجزيئي لوسم الخلايا الميتة & E لا يزال غير واضح. وعلاوة علي ذلك ، التعديلات اللون مما يوحي الموت ليف في تلطيخ H & E هي خفيه نسبيا ولا تسهل التحديد الكمي موثوق بها واستنساخها. طرق الكشف عن تجزئه الحمض النووي ، مثل المحطة الطرفية ديكسينوكليوديتيل الناقل dutp نك نهاية الوسم (tunel) ، التسمية ناقص الموت نخريه3. كما انها غير مهياه بشكل سيء لرصد وفاه الخلايا الخلوية مثل ألياف العضلية. حقن الاصباغ الحيوية ، مثل صبغه ايفان الزرقاء (EBD) ، يمثل بديلا مفيدا لتقييم ألياف العضلية التي فقدت سلامه ساركولايما ، ولكن ليس بالضرورة مريحه في بعض البروتوكولات التجريبية. فعلي سبيل المثال ، يمكن ان يؤثر وجود EBD في عينات الدم علي نتائج قياسات الكورونا التشيكية ، وهو فحص لوني. وعلاوة علي ذلك ، امتصاص داخل الخلايا من EBD يجعل التعاون المناعي تحديا. ولذلك ، فان الطريقة البديلة التي تسمح بالوسم المباشر للألياف العضلية التي تمر بالنخر هي ذات فائده.
تعتمد اليه عمل الاصباغ الحيوية علي فقدان سلامه غشاء البلازما في ألياف العضلية الميتة والامتصاص السلبي لصبغه الحقن. المثل ، امتصاص ميونوتيك بروتينات الدم مثل الزلال ، والتي EBD لديه تقارب قوي13،14، الغلوبولين المناعي G (مفتش) ، و15الغلوبولين. التالي فان وجود غير طبيعي للبروتينات الدم داخل ألياف العضلية يمثل علامات مريحه للتهاب المفاصل في الموقع. تلطيخ هذه البروتينات يمكن ان يكون بديلا لاستخدام الاصباغ الحيوية.
باستخدام امتصاص مفتش كعلامة علي فرط التعرق في الموقع, ويستخدم هذا البروتوكول لتقييم انحطاط العضلات في الامامي الظنبوبي (TA) من الفئران mdx dystrophin ناقص. ويقدم هذا الأسلوب مزايا كبيره علي التقنيات البديلة: 1) انها قابله للاستنساخ وبسيطه في تنفيذه ؛ 2) انه لا يتطلب اي علاج الحيوانية قبل جمع العضلات ، مثل حقن الاصباغ الحيوية المتداولة ، و 3) كما اي المناعية التقليدية ، فانه متوافق مع وضع العلامات المشتركة.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
وأجريت التجارب وفقا للتشريع الفرنسي وتشريع الجماعة الاوروبيه (رقم الترخيص 11-00010).
1. اعداد اللثة تراغاكانث
- في كوب زجاجي ، ذوب 6 غرام من مسحوق تراغاكانث في 100 مل من الماء منزوع الأيونات. غطيه بورق القصدير واتركيه لمده 3 ساعات علي الأقل. يحرك أحيانا يدويا مع ملعقة معدنيه كما يصبح الخليط بسرعة لزج.
- يترك الخليط تراغاكانث عند 60 درجه مئوية ليلا في حمام مائي أو في الفرن. ختم بعناية الكاس لتجنب التجفيف. يحرك علي الأقل مره واحده قبل الاقتباس.
- Aliquot وتخزين في 4 درجه مئوية لمده تصل إلى 2 أسابيع.
2. جمع العضلات
ملاحظه: بالنسبة لهذه التجربة ، تم التضحية بماوس mdx الذكور البالغ من العمر 4 أسابيع عن طريق خلع عنق الرحم. ولا يتطلب هذا الاجراء التخدير وهو أسلوب قتل انساني وفقا للتشريعات المحلية.
- تشريح العضلات الاماميه (TA) الظنبوبي
- بعد حلاقه الساق الماوس ، وضع الماوس علي ظهرها ودبوس القدمين علي اللوح مع الابر. باستخدام مقص الدقة (أو مشرط) والملقط ، وأزاله الجلد الساق من القدم حتى الركبة للكشف عن طول كامل الساق و TA.
- مع مقص ، وجعل شق بين الساق و TA. وهذا سوف يسهل فصل TA من العظم وتوفير قبضه سهله لغمد. باستخدام ملقط الدقة ، وأزاله بعناية طبقه غمد من سطح TA.
ملاحظه: من هذه الخطوة ، TA قد تكون أكثر عرضه للتجفيف ، والتي ينبغي تجنبها. - في منطقه الكاحل ، وعزل وتر TA من الأوتار الأخرى مع ملقط. سحب برفق حتى وتر TA لعزله من الساق والعضلات المحيطة بها.
- عندما يتم فصل بطن TA تماما ، وعقد وتر حتى ان الجزء القريب فقط من العضلات TA تعلق علي الركبة. تقطع برفق الوتر القريب أقرب ما يمكن إلى عظم الركبة.
- وضع TA في الشاش الذي قللت بخفه مع المالحة لتجنب التجفيف قبل تجميد العضلات.
- قبل بارد 70 − 100 مل من نظير في كوب من البلاستيك أو تترافلوروايثيلين من خلال غمس جزئيا في النيتروجين السائل. السماح لها لتبرد حتى نظير في الجزء السفلي من الكاس يصبح صلبه بيضاء.
- علي قطعه دائريه من الفلين (20 مم × 11 مم × 8 مم) ، مكان ~ 0.5 مل من الصمغ تراغاكانث. بعناية قبل تسميه الجانب الآخر من الفلين بحيث يمكن تحديد الخزعة بشكل صحيح بعد خطوه التجميد.
- تضمين TA في اللثة مع ملقط ، وتر البعيدة. للسماح المقاطع العرضية المناسبة من العضلات, عقد العضلات مع محورها عمودي علي سطح الفلين. وسوف تتحسن نوعيه الحلوى إذا لم يتم تضمين الخزعة تماما في اللثة. السماح لمده لا تقل عن نصف TA (الجانب وتر) ليتم كشفها من قبل اللثة.
- تراجع بسرعة الفلين مع العضلات المضمنة في طبقه نظير الباردة التي لم يتم تجميدها. لاحظ ان الفلين سوف تطفو في isopentane السائل. عقد العينة راسا علي عقب لان العضلات تحتاج إلى ان انخفض إلى isopentane. ترك العينات في نظير لحوالي 2 دقيقه للسماح تجميد كامل.
ملاحظه: من هذه المرحلة ، يجب ان تبقي TA المجمدة حتى البرودة. تخزين العضلات في الجليد الجاف قبل التخزين علي المدى الطويل في 80 درجه مئوية الفريزر.
3. التجميد
- تعيين درجه حرارة التبريد عند-25 درجه مئوية. الحفاظ علي درجه حرارة الجسم في جميع انحاء-20 درجه مئوية. إصلاح الكائن في التبريد باستخدام مركب درجه حرارة القطع الأمثل (أكتوبر). تقليم العضلات حتى تصل إلى بطن العضلات ثم قطع 7 − 10 ميكرومتر المقاطع.
ملاحظه: يتطلب تثبيت درجه حرارة الكائن 10 دقائق علي الأقل. - الحفاظ علي الشرائح الزجاجية المستخدمة لجمع الحلويات في درجه حرارة الغرفة (RT). جمع قسمين علي الأقل علي كل شريحة. سوف المقاطع العضلات عصا تلقائيا وذوبان الجليد في الاتصال من الشريحة الزجاجية الدافئة. أزاله الشريحة والاحتفاظ بها في RT.
- السماح للمقاطع لتجف 20 دقيقه علي الأقل في RT في بيئة التهوية.
- تخزين الحلوى علي الشرائح الزجاجية في-80 درجه مئوية حتى الاستخدام.
4. المناعة
- ذوبان الشرائح في RT لمده 15 دقيقه علي الأقل في بيئة التهوية.
- يرسم منطقه الأقسام بقلم مسعور. السماح لحاجز مسعور لتجف.
- إصلاح الانسجه مع 2 ٪ بارافورمالدهيد لمده 10 دقيقه في غرفه الرطبة.
- غسل الأقسام مع الفوسفات مخزنه المالحة (تلفزيوني) 2x لمده 5 دقائق لكل منهما.
- منع أقسام العضلات مع المصل الماعز 10 ٪ المخفف في التليفزيون لمده 1 ساعة في RT في غرفه الرطبة.
- احتضان الأقسام ل 2 ح في RT (أو بين عشيه وضحيها في 4 درجه مئوية) في غرفه رطبه مع الأجسام المضادة الاساسيه المخففة في مصل الماعز 5 ٪. لوضع العلامات البسيطة لامتصاص اللقاحات في ألياف العضلية ، فقط الأقسام المحتضنة مع الأجسام المضادة لأرنب لlaminin الفار.
ملاحظه: يمكن استهداف مستضدات أخرى من المصفوفة خارج الخلية طالما انها توفر وسم واضح لمصفوفة خارج الخلية المحيطة من ألياف العضلية. علامات لتجديد العضلات, التهاب, أو المعلمات الأخرى يمكن الجمع بين طالما لم يتم رفع الأجسام المضادة في مضيف الماوس. وينبغي ان يتضمن المجهر المستخدم في التحليل لونا مضانا تكميليا. - اغسل الأقسام مع 3x تلفزيوني لمده 5 دقائق لكل منهما.
- احتضان الأقسام مع الأحمر الرطب الماعز الأجسام المضادة الثانوية إلى الأرنب مفتش h & l والأخضر الرطب الماعز بولكلونل الأجسام المضادة الثانوية إلى الماوس مفتش h & ل. احتضان في RT ل 45 دقيقه في غرفه الرطبة.
- غسل مع تلفزيوني 3x لمده 10 دقيقه لكل منهما.
- جبل الأقسام في الفلورسنت تركيب المتوسطة التي تحتوي علي 100 ng/mL 4 ′, 6-diamidino-2-فينيلانديول (DAPI) وتغطي كل شريحة مع coverslip.
- السماح بالتجفيف بين عشيه وضحيها عند 4 درجه مئوية قبل التصوير.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
ألياف العضلية محاطه بمصفوفة خارج الخلية تحتوي علي laminin. الأحمر تلطيخ يحدد ميونوليف محيط ويسمح للتعرف عليها. ويظهر مفتش باللون الأخضر. النوى ملطخه DAPI ويتم العثور علي الأزرق تحت المجهر. ومع ذلك ، يتم عرض النوى باللون الأبيض هنا (الشكل 1). ومن المتوقع ان المناعي ضعيفه مفتش في المقصورة خارج الخلية ، والتي يمكن زيادتها في حاله التهاب. تلطيخ الأخضر داخل ألياف العضلية يعكس وجود مفتش.
تتميز الفاره Mdx بمرحله انتقاليه من فرط التعرق الحاد في 3 أسابيع من العمر ، متبوعه باحداث غير متزامنة لتجديد الانحطاط. ونتيجة لذلك ، غالبا ما تعرض TAs من الفئران mdx البالغة من العمر 4 أسابيع ملفات تعريف غير متجانسة بما في ذلك المناطق المتاثره بشكل سيئ ، والمناطق التي يتم فيها الازاله والتجديد معا في نفس المقطع العرضي (رقم 1ا). مناطق العضلات غير المتاثره/المتضررة بشكل معتدل تحتوي علي ألياف العضلية ذات الحجم الكبير والمتجانس ، ويتم العثور علي النوى في كثافة منخفضه وتقع أساسا في المحيط أو بين ألياف العضلية (رقم 1b). وألياف العضلية الايجابيه غير موجودة عموما في هذه المناطق الصحية أو المتاثره بشكل معتدل.
يشير النشاط المناعي داخل ألياف العضلية إلى فرط التعرق (الشكل 1ج، الجزء السفلي). بعد تنكس الخلية ، يتم مسح ألياف نخريه من قبل الخلايا الشحمية. ألياف العضلية التي شكلت حديثا تقدم حجم صغير في المراحل المبكرة ، ومن ثم تكبير تدريجيا كما العضلات الأسلاف الصمامات والمساهمة في الخلية الخلوية. وخلال هذه العملية ، تظل الكريات الوحيدة النواة في المركز المركزي. تشير مجموعات ألياف العضلية الصغيرة النواة المركزية مؤخرا إلى تجديد ألياف العضلية (الشكل 1ج، الجزء العلوي).
الشكل 1: صوره تمثيليه لتلطيخ امتصاص في مقطع عرضي من العضلات mdx التشويه. (ا) TA من الماوس mdx البالغ من العمر 4 أسابيع والتي تم تطعيمها والمناعية باستخدام الأجسام المضادة لlaminin التي أثيرت في الأرنب (الأحمر) والماوس مفتش (الأخضر). تم وصف النوى باستخدام DAPI (ابيض). (ب ، ج) المساحات الموسعة للوحه ا. شريط مقياس = 500 μm. الرجاء النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
نخر myofiber هو نتيجة شائعه لممارسه الصدمة في العضلات العادية. ويعوض جيدا من قدره التجدد قويه من المولدين العضلات المحلية. ومع ذلك, في العديد من الحالات العضلات مثل في MDs, القدرة علي التجدد من الخلايا الأقمار الصناعية للخطر من قبل التهاب المفاصل المزمن والتليف المفرط. وتظهر النتائج الاخيره ان ألياف العضلات يمكن ان تموت بواسطة النخر الميت ، وهو شكل من اشكال النخر المنظم. وبشكل أكثر تحديدا ، قد يصبح تثبيط النخر الميت استراتيجية علاجيه جديده لعلاج DMD4. التحقيق في مسارات موت الخلايا في اضطرابات انحطاط العضلات يتطلب أساليب موثوق بها من الخلايا العضلية الكمية الموت. يصف هذا البروتوكول تقنيه امتصاص المناعة التي تسمي ألياف العضلية التي خضعت لنخر.
فقدان سلامه غشاء البلازما الذي يميز نخر يؤدي إلى الإفراج عن أنماط الجزيئات المرتبطة بالضرر وامتصاص البروتينات البلازما مثل الزلال ، مفتش و الغلوبولين المناعي15. اليه العمل الخاصة بطريقه وضع العلامات علي امتصاص المفتشين مشابهه لتلك الخاصة بالاصباغ الحيوية مثل EBD. ألياف العضلية نخريه تصبح نفاذيه وفخ بروتينات الدم من حقن الاصباغ الحيوية ، في حين ان الخلايا الحية لا. وقد تم التصديق علي إثبات المفهوم لهذه التقنية من قبل مجموعه كيفين كامبل علي MDs15 ولكن لا تزال غير منشوره بشكل كاف.
ويقدم الشكل 1 النتائج النموذجية لوضع العلامات علي امتصاص الطفيليات في العضلات التصنعه المتاثره بداء الورم العضلي. مع واحد المناعية بما في ذلك ثلاثه ألوان فقط (مفتش في الأخضر ، مصفوفة خارج الخلية باللون الأحمر ونوى في الأزرق/الأبيض). العديد من المعلمات الهامه لأنسجه العضلات يمكن قياسها كميا ، بما في ذلك عدد وحجم ألياف العضلية ومدي الورم العضلي ، وأعرب اما عن طريق النسبة المئوية لوضع العلامات في المنطقة المقطعية أو النسبة المئوية للألياف الفطرية الميتة. ويمكن أيضا ان يتم تحديد تقدير عادل للتجديد مع هذا تلطيخ. في الواقع ، يعكس وجود ألياف العضلية النواة المركزية (الشكل 1ج، الجزء العلوي) التجدد المحلي التالي الماضية الحدث المولد. للمقارنة ، يتم تقديم انسجه العضلات الصحية في الشكل 1ب. من الملاحظة ، النواة المركزية في ألياف العضلية التي شكلت حديثا تدوم لعده أسابيع في ألياف العضلية المجددة للفئران البالغة. ومع ذلك ، يحدث أعاده التموضع النووي بشكل أسرع بكثير قبل سن الفطام في الفئران16.
ويمكن إثراء هذا النوع من النتائج بسهوله عن طريق أضافه وسم آخر يكشف عنه لون آخر. فعلي سبيل المثال ، يمكن مواصله فحص طبيعة الخلايا المتسللة ونمطها الظاهري باستخدام العلامات المناسبة. الأجسام المضادة الموجهة ضد CD68 سيتم تسميه السكان الضامة بصفه تفضيليه ، بغض المثل عن حالتها التهابيه4،9. إذا لزم الأمر ، يمكن المزيد من التحقيق في حاله التهاب هذه الخلايا17.
كما اي تلطيخ الفلورية التقليدية ، ونوعيه العضلات أمر حاسم. يجب ان تبقي الخزعات العضلية والحلوى في الثلج الجاف في جميع الأوقات وللتخزين علي المدى الطويل في-80 درجه مئوية حتى الاستخدام. وينبغي تجنب التخزين عند-20 درجه مئوية لأنه يمكن ان تؤثر علي الحفاظ علي الانسجه. وينبغي أيضا تجنب دورات تجميد الذوبان من العينات بصرامة.
هذه التقنية لها مزايا كبيره علي التقنيات الأكثر شعبيه ، مثل البقع EBD و H & E. انها بسيطه ومرنه وتتطلب فقط المواد المناعية التقليدية والمجهر الفلورسنت. وتقدم المرونة فيما يتعلق باختيار لون فلوروكوفيري المرتبطة مع مفتش وفقا للاحتياجات التجريبية ، وكذلك فيما يتعلق بأداء المناعية المشتركة ضد مستضدات اضافيه. كمقارنه ، يمكن الكشف عن وصمه عار H & E و EBD فقط في نفس اللون ولا يمكن ان تترافق مع العلامات الأخرى لتقييم المعلمات الهامه مثل موقع ليف أو مدي وطبيعة التسلل الخلايا التهابيه. تتطلب طريقه EBD حقن الصبغ للحيوانات حول 24 ساعة قبل حصاد العضلات ، في حين يمكن اجراء طريقه امتصاص مفتش في اي عينات ، بما في ذلك البشر. تحتوي العضلات الكاملة للحيوانات المحقونة بالحقن EBD علي الصبغة التي يمكن ان تؤثر علي المزيد من التحليل مثل تطعيم العضلات الفلوري أو الفحص اللوني للدم CK.
تحديد القياس الكمي الدقيق للتهاب المفاصل يعني بشكل تفضيلي علامة موثوق بها من نوع الخلية. هنا ، يمكن تقييم طبيعة الخلايا مع مصير نخريه عن طريق المشاركة في وضع العلامات مفتش مع المقصورة خارج الخلية المحيطة ألياف العضلية. في الشكل 1، تم تحديد ألياف العضلية باستخدام الأجسام المضادة الموجهة ضد البروتينات من المصفوفة المحيطة خارج الخلية مثل laminin. المكونات الأخرى مثل الكولاجين يمكن أيضا ان تكون ملطخه. ومع ذلك ، ينبغي تجنب الأجسام المضادة ضد البروتينات التي تنتمي إلى ساركولايما. في تجربتنا ، فان نشاطهم المناعي يختفي علي الفور بعد نخر ألياف.
المناعية من امتصاص مفتش داخل ألياف العضلية هو وسيله بسيطه وموثوق بها لوصمه عار علي وجه التحديد ألياف العضلات نخريه. يمكن ان يتم بسهوله وبشكل روتيني وينطبق علي عينات قابله لتلطيخ المناعية الكلاسيكية. بالنظر إلى خصوصيتها والافتقار العام للمؤشرات المضادة ، فمن المستحسن ان تستخدم كمعيار الذهب لتقييم الاصابه بالورم العضلي ، وبغض النظر عن طبيعة إصابات نخريه.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
وليس لدي المؤلفين ما يفصحون عنه.
Acknowledgments
وقد حظي هذا العمل بدعم الرابطة الفرنسية لمكافحه الامراض العضلية مع برنامج التسلية الانتقالية. ويشكر المؤلفان الدكتور بيرلا رييس فرنانديز والدكتور ماثيو بوروك علي قراءتهما المتانيه للمخطوطة.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Circular cork disks | Pyramid Innovation | R30001-E | Don't forget to clearly label the cork so that the the ID of the sample can be determined after freezing |
| Cryostat | Leica | CM3050 sn34 | Muscle cryosectionning should be performed between -20 and -25°C. Thickness:7-10 micrometers. |
| Dakopen | Dako | S2002 | A hydrophobic barrier around the muscle sections. It prevents the dispertion of medium during incubation |
| Forceps | FST | 91117-10 | / |
| Goat anti-Mouse IgG (H+L) antibody, Alexa Fluor Plus 488 | ThermoFischer Scientific | A-11029 | Dilution: 1/500 |
| Goat anti-Rabbit IgG (H+L) antibody Alexa Fluor Plus 594 | ThermoFischer Scientific | A32740 | Dilution: 1/500 |
| Goat serum | Jackson ImmunoResearch | 005-000-121 | At the blocking step, use 10% dilution in PBS. For antibodies incubation, use 5% dilution in PBS |
| Isopentane | Sigma Aldrich | 78-78-4 | Freezing medium. Should be cooled down in a beaker placed in liquid nitrogen. |
| mdx mouse | Jackson Laboratory | C57BL/10ScSn-Dmdmdx/J | Mdx mice are mutated for the dystrophin gene. From three weeks of age, muscles are characterized by chronic degeneration |
| Microscope | Zeiss | Imager.D1 | / |
| OCT | Cellpath | KMA-0100-00A | Embedding matrix |
| PFA (Paraformaldehyde) | ThermoFischer Scientific | 28908 | Used for fixing cryosection (2% or 4% PFA can be used) |
| PBS | Eurobio | CS3PBS00-01 | Dilution medium for immunolabeling |
| Precision scisors | FST | fst 14001-12 and fst 14001-14 | Used for the muscle collection |
| Rabbit antibody to mouse pan-Laminin | Sigma Aldrich | L9393 | Dilution: 1/1000 |
| Tragacanth | Sigma Aldrich | G1128 | Aliquots to keep at +4°C |
References
- Carpenter, S., Karpati, G. Duchenne muscular dystrophy: plasma membrane loss initiates muscle cell necrosis unless it is repaired. Brain. 102 (1), 147-161 (1979).
- Cornelio, F., Dones, I. Muscle fiber degeneration and necrosis in muscular dystrophy and other muscle diseases: cytochemical and immunocytochemical data. Annals of Neurology. 16 (6), 694-701 (1984).
- Galluzzi, L., et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring cell death in higher eukaryotes. Cell Death and Differerentiation. 16 (8), 1093-1107 (2009).
- Morgan, J. E., et al. Necroptosis mediates myofiber death in dystrophin-deficient mice. Nature Communications. 9 (1), 3655 (2018).
- Moens, P., Baatsen, P. H., Marechal, G. Increased susceptibility of EDL muscles from mdx mice to damage induced by contractions with stretch. Journal of Muscle Research and Cell Motility. 14 (4), 446-451 (1993).
- Tidball, J. G., Villalta, S. A. Regulatory interactions between muscle and the immune system during muscle regeneration. American Journal of Physiology Regulatory Integrative and Comparative Physiology. 298 (5), R1173-R1187 (2010).
- Riederer, I., et al. Slowing down differentiation of engrafted human myoblasts into immunodeficient mice correlates with increased proliferation and migration. Molecular Therapy. 20 (1), 146-154 (2012).
- Arnold, L., et al. Inflammatory monocytes recruited after skeletal muscle injury switch into antiinflammatory macrophages to support myogenesis. Journal of Experimental Medicine. 204 (5), 1057-1069 (2007).
- Bencze, M., et al. Proinflammatory macrophages enhance the regenerative capacity of human myoblasts by modifying their kinetics of proliferation and differentiation. Molecular Therapy. 20 (11), 2168-2179 (2012).
- Moat, S. J., Bradley, D. M., Salmon, R., Clarke, A., Hartley, L. Newborn bloodspot screening for Duchenne muscular dystrophy: 21 years experience in Wales (UK). European Journal of Human Genetics. 21 (10), 1049-1053 (2013).
- Serrano, A. L., Munoz-Canoves, P. Regulation and dysregulation of fibrosis in skeletal muscle. Experimental Cell Research. 316 (18), 3050-3058 (2010).
- Rosenberg, A. S., et al. Immune-mediated pathology in Duchenne muscular dystrophy. Science Translational Medicine. 7 (299), (2015).
- Kobayashi, Y. M., Rader, E. P., Crawford, R. W., Campbell, K. P. Endpoint measures in the mdx mouse relevant for muscular dystrophy pre-clinical studies. Neuromuscular Disorders. 22 (1), 34-42 (2012).
- Saunders, N. R., Dziegielewska, K. M., Mollgard, K., Habgood, M. D. Markers for blood-brain barrier integrity: how appropriate is Evans blue in the twenty-first century and what are the alternatives? Frontiers in Neuroscience. 9. 385, (2015).
- Straub, V., Rafael, J. A., Chamberlain, J. S., Campbell, K. P. Animal models for muscular dystrophy show different patterns of sarcolemmal disruption. Journal of Cell Biology. 139 (2), 375-385 (1997).
- Pastoret, C., Sebille, A. Age-related differences in regeneration of dystrophic (mdx) and normal muscle in the mouse. Muscle and Nerve. 18 (10), 1147-1154 (1995).
- Villalta, S. A., Nguyen, H. X., Deng, B., Gotoh, T., Tidball, J. G. Shifts in macrophage phenotypes and macrophage competition for arginine metabolism affect the severity of muscle pathology in muscular dystrophy. Human Molecular Genetics. 18 (3), 482-496 (2009).
