Summary

Biomekaniske testing av murine sener

Published: October 15, 2019
doi:

Summary

Protokollen beskriver effektiv og reproduserbar strekk biomekaniske testmetoder for murine sener gjennom bruk av tilpasset-Fit 3D trykt inventar.

Abstract

Sene lidelser er vanlig, påvirker folk i alle aldre, og er ofte ødeleggende. Standard behandlinger, som anti-inflammatoriske legemidler, rehabilitering, og kirurgisk reparasjon, ofte mislykkes. For å definere sene funksjon og demonstrere effekten av nye behandlinger, de mekaniske egenskapene til sener fra dyremodeller må være nøyaktig bestemmes. Murine dyremodeller er nå mye brukt til å studere sene lidelser og evaluere romanen behandlinger for tendinopathies; men å bestemme de mekaniske egenskapene til mus sener har vært utfordrende. I denne studien, et nytt system ble utviklet for sene mekanisk testing som inkluderer 3D-trykt inventar som nøyaktig samsvarer med anatomi av humerus og calcaneus til mekanisk test supraspinatus sener og Achilles sener, henholdsvis. Disse inventar ble utviklet ved hjelp av 3D rekonstruksjoner av innfødte bein anatomi, solid modellering, og additiv produksjon. Den nye tilnærmingen eliminert artifactual gripende svikt (f. eks svikt ved vekst plate svikt snarere enn i senen), redusert total testing tid, og økt reproduserbarhet. Videre er denne nye metoden lett å tilpasse for å teste andre murine sener og sener fra andre dyr.

Introduction

Sene lidelser er vanlig og svært utbredt blant de aldrende, atletisk og aktive populasjoner1,2,3. I USA, 16 400 000 bindevevs skader rapporteres hvert år4 og står for 30% av all skade-relaterte legekontor besøk3,5,6,7, 8i den. De hyppigst rammede områdene inkluderer Rotator cuff, Achilles sene, og patellar sene9. Selv om en rekke ikke-operative og operative behandlinger har blitt utforsket, inkludert antiinflammatoriske legemidler, rehabilitering, og kirurgisk reparasjon, utfall forblir fattige, med begrenset avkastning til funksjon og høy forekomst av svikt5, 6i den. Disse dårlige kliniske utfall har motivert grunnleggende og translational studier som søker å forstå tendinopati og å utvikle romanen behandling tilnærminger.

Strekk biomekaniske egenskaper er de primære kvantitative utfall definere sene funksjon. Derfor, laboratorie karakterisering av tendinopati og behandling effekt må inneholde en streng testing av sene strekk egenskaper. Tallrike studier har beskrevet metoder for å bestemme biomekaniske egenskaper av sener fra dyremodeller som rotter, sauer, hunder og kaniner10,11,12. Imidlertid har få studier testet biomekaniske egenskapene til murine sener, hovedsakelig på grunn av vanskeligheter med å gripe den lille vev for strekk testing. Som murine modeller har en rekke fordeler for mechanistically studere tendinopati, inkludert genetisk manipulasjon, omfattende reagens alternativer, og lave kostnader, utvikling av nøyaktige og effektive metoder for å biomekanisk teste murine vev er nødvendig.

For å kunne teste de mekaniske egenskapene til sener, må vevet bli grepet effektivt, uten å skli eller artifactual rive i grepet grensesnittet eller oppsprekking av veksten plate. I mange tilfeller, spesielt for korte sener, benet er grepet på den ene enden og senen er grepet i den andre enden. Bein er vanligvis sikret ved å bygge dem inn i materialer som epoxy harpiks13 og polymetalmetakrylat14,15. Sener er ofte plassert mellom to lag med sandpapir, limt med Cyanoacrylate, og sikret ved hjelp av kompresjon klemmer (hvis tverrsnitt er flat) eller i et frosset medium (hvis tverrsnitt er stor)15,16,17 . Disse metodene har blitt brukt til biomekanisk test murine sener, men utfordringene oppstår på grunn av den lille størrelsen på prøvene og etterlevelse av veksten plate, som aldri ossifies18. For eksempel er diameteren på murine ledd hode bare noen få millimeter, og dermed gjør gripende av benet vanskelig. Nærmere bestemt, strekk testing av murine supraspinatus sene-til-bein prøver ofte resulterer i svikt i vekst plate i stedet for i senen eller ved sene enthesis. Tilsvarende er biomekaniske testing av Achilles sene utfordrende. Selv om Achilles sene er større enn andre murine sener, er calcaneus liten, noe som gjør gripende av dette benet vanskelig. Benet kan fjernes, etterfulgt av gripende de to sene endene; men dette utelukker testing av sene-til-bein vedlegg. Andre grupper rapport gripende calcaneus benet ved hjelp av skreddersydde inventar19,20, forankring av klemmer21, festing i selv herding plast sement22 eller ved hjelp av en konisk form slot22, men disse tidligere metoder fortsatt begrenset av lav reproduserbarhet, høy gripe svikt priser, og kjedelige forberedelser krav.

Målet med den nåværende studien var å utvikle en nøyaktig og effektiv metode for strekk biomekaniske testing av murine sener, med fokus på supraspinatus og Achilles sener som eksempler. Ved hjelp av en kombinasjon av 3D-rekonstruksjoner fra opprinnelig bein anatomi, solid modellering og additiv produksjon, ble en ny metode utviklet for å gripe inn i beina. Disse inventar effektivt sikret bein, hindret vekst plate svikt, redusert prøveforberedelse tid, og økt testing reproduserbarhet. Den nye metoden er lett å tilpasse for å teste andre murine sener samt sener i rotter og andre dyr.

Protocol

Dyrestudier ble godkjent av Columbia University institusjonelle Animal Care og use Committee. Mus som brukes i denne studien var av en C57BL/6J bakgrunn og ble kjøpt fra The Jackson Laboratory (bar Harbor, ME, USA). De ble plassert i patogen-fri barriere forhold og ble gitt mat og vann ad lib. 1. utvikling av tilpasset-Fit 3D trykte inventar for gripende bein Bone image oppkjøp og 3D-bein modell konstruksjonAnalysere bein av interesse i forberedelsene til 3D modell opprette…

Representative Results

3D-trykte inventar ble brukt til å teste 8-ukers gamle murine supraspinatus og Achilles sener. Alle mekaniske prøver mislyktes på enthesis, som kjennetegnes ved microCT-skanninger, visuell inspeksjon og video analyse etter strekk prøver. En en-til-en sammenligning av tidligere og nåværende metoder for supraspinatus sene testing i vårt laboratorium er vist i Figur 3. I forrige metode28,29,30, …

Discussion

Murine dyremodeller er ofte brukt til å studere sene lidelser, men karakterisering av deres mekaniske egenskaper er utfordrende og uvanlig i litteraturen. Formålet med denne protokollen er å beskrive en tid effektiv og reproduserbar metode for strekk testing av murine sener. Den nye metoder reduserte tiden det tar å teste en prøve fra timer til minutter og eliminert en stor gripende gjenstand som var et vanlig problem i tidligere metoder.

Flere trinn beskrevet i denne protokollen er avgj?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Studien ble støttet av NIH/NIAMS (R01 AR055580, R01 AR057836).

Materials

Agarose Fisher Scientific BP160-100 Dissovle 1g in 100 ml ultrapure water to make 1% agarose 
Bruker microCT  Bruker BioSpin Corp Skyscan 1272  Used by authors
ElectroForce  TA Instruments 3200 Testing platform
Ethanol 200 Proof Fisher Scientific A4094 Dilute to 70% and use as suggested in protocol
Fixture to attach grips Custom made Used by authors
Kimwipes Kimberly-Clark  S-8115 As suggested in protocol
MicroCT CT-Analyser (Ctan) Bruker BioSpin Corp Used by authors for visualizing and analyzing micro-CT scans 
MilliQ water (Ultrapure water) Millipore Sigma QGARD00R1 (or related purifier) 100 ml 
Meshmixer Autodesk http://www.meshmixer.com/ Free engineering software used by authors to refine mesh
Objet EDEN 260VS  Stratasys LTD Precision Prototyping
Objet Studio Stratasys LTD Used by authors with 3D printer
PBS – Phosphate-Buffered Saline ThermoFisher Scientific 10010031 2.5 L of 10% PBS 
S&T Forceps Fine Science Tools 00108-11 Used by authors
Scalpel Blade – #11 Fine Science Tools 10011-00 Used by authors
Scalpel Handle – #3 Fine Science Tools 10003-12 Used by authors
SkyScan 1272 Bruker BioSpin Corp Used by authors for visualizing and analyzing micro-CT scans 
Skyscan CT-Vox Bruker BioSpin Corp Used by authors for visualizing and analyzing micro-CT scans 
SkyScan NRecon Bruker BioSpin Corp Used by authors for visualizing and analyzing micro-CT scans 
SolidWorks CAD Dassault Systèmes SolidWorks Research Subsription Solid modeling computer-aided design used by authors
SuperGlue Loctite 234790 As suggested in protocol
Testing bath Custom made Used by authors
Thin film grips  Custom made Used by authors
VeroWhitePlus Stratasys LTD NA 3D printing material used by authors
WinTest  WinTest Software Used by authors to collect data

References

  1. Girish, N., Ramachandra, K., Arun, G. M., Asha, K. Prevalence of Musculoskeletal Disorders Among Cashew Factory Workers. Archives of Environmental & Occupational Health. 67, 37-42 (2012).
  2. Thomopoulos, S., Parks, W. C., Rifkin, D. B., Derwin, K. A. Mechanisms of tendon injury and repair. Journal of Orthopaedic Research. 33, 832-839 (2016).
  3. Scott, A., Ashe, M. C. Common Tendinopathies in the Upper and Lower Extremities. Current Sports Medicine Reports. 5, 233-241 (2006).
  4. Praemer, A., Furner, S., Rice, D. P. Musculoskeletal Conditions in the United States. American Academy of Orthopaedic Surgeons. , (1992).
  5. Nourissat, G., Berenbaum, F., Duprez, D. Tendon injury: From biology to tendon repair. Nature Reviews Rheumatology. 11, 223-233 (2015).
  6. Galatz, L. M., Ball, C. M., Teefey, S. A., Middleton, W. D., Yamaguchi, K. The outcome and repair integrity of completely arthroscopically repaired large and massive rotator cuff tears. The Journal of Bone and Joint Surgery. 86, 219-224 (2004).
  7. Sher, J. S., Uribe, J. W., Posada, A., Murphy, B. J., Zlatkin, M. B. Abnormal findings on magnetic resonance images of asymptomatic shoulders. The Journal of Bone and Joint Surgery. 77, 10-15 (1995).
  8. Ker, R. F., Wang, X. T., Pike, A. V. Fatigue quality of mammalian tendons. The Journal of Experimental Biology. 203, 1317-1327 (2000).
  9. Wilson, J. J., Best, T. M. Common overuse tendon problems: A review and recommendations for treatment. American Family Physician. 72, 811-818 (2005).
  10. Fleischer, J., et al. Biomechanical strength and failure mechanism of different tubercula refixation methods within the framework of an arthroplasty for shoulder fracture. Orthopaedics & Traumatology: Surgery & Research. 103, 165-169 (2017).
  11. West, J. R., Juncosa, N., Galloway, M. T., Boivin, G. P., Butler, D. L. Characterization of in vivo Achilles tendon forces in rabbits during treadmill locomotion at varying speeds and inclinations. Journal of Biomechanics. 37, 1647-1653 (2004).
  12. Cavinatto, L., et al. Early versus late repair of rotator cuff tears in rats. Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 27, 606-613 (2018).
  13. Potter, R., Havlioglu, N., Thomopoulos, S. The developing shoulder has a limited capacity to recover after a short duration of neonatal paralysis. Journal of Biomechanics. 47, 2314-2320 (2014).
  14. Connizzo, B. K., Sarver, J. J., Iozzo, R. V., Birk, D. E., Soslowsky, L. J. Effect of Age and Proteoglycan Deficiency on Collagen Fiber Re-Alignment and Mechanical Properties in Mouse Supraspinatus Tendon. Journal of Biomechanical Engineering. 135, 021019 (2013).
  15. Beason, D. P., et al. Hypercholesterolemia increases supraspinatus tendon stiffness and elastic modulus across multiple species. Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 22, 681-686 (2013).
  16. Miller, K. S., Connizzo, B. K., Soslowsky, L. J. Collagen fiber re-alignment in a neonatal developmental mouse supraspinatus tendon model. Annals of Biomedical Engineering. 40, 1102-1110 (2012).
  17. Cong, G. T., et al. Evaluating the role of subacromial impingement in rotator cuff tendinopathy: Development and analysis of a novel murine model. Journal of Orthopaedic Research. 36, 2780-2788 (2018).
  18. Thomopoulos, S., Birman, V., Genin, G. M. Structural Interfaces and Attachments in Biology. Infection and Immunity. 35, (2013).
  19. Boivin, G. P., et al. Biomechanical properties and histology of db/db diabetic mouse Achilles tendon. Muscles, Ligaments and Tendons Journal. 4, 280-284 (2014).
  20. Ansorge, H. L., Adams, S., Birk, D. E., Soslowsky, L. J. Mechanical, Compositional, and Structural Properties of the Post-natal Mouse Achilles Tendon. Annals of Biomedical Engineering. 39, 1904-1913 (2011).
  21. Shu, C. C., Smith, M. M., Appleyard, R. C., Little, C. B., Melrose, J. Achilles and tail tendons of perlecan exon 3 null heparan sulphate deficient mice display surprising improvement in tendon tensile properties and altered collagen fibril organisation compared to C57BL/6 wild type mice. PeerJ. 6, 5120 (2018).
  22. Probst, A., et al. A new clamping technique for biomechanical testing of tendons in small animals. Journal of Investigative Surgery. 13, 313-318 (2000).
  23. Talan, M. Body temperature of C57BL/6J mice with age. Experimental Gerontology. 19, 25-29 (1984).
  24. Newton, M. D., et al. The influence of testing angle on the biomechanical properties of the rat supraspinatus tendon. Journal of Biomechanics. 49, 4159-4163 (2016).
  25. Schwartz, A. G., Lipner, J. H., Pasteris, J. D., Genin, G. M., Thomopoulos, S. Muscle loading is necessary for the formation of a functional tendon enthesis. Bone. 55, 44-51 (2014).
  26. Gimbel, J. A., Van Kleunen, J. P., Williams, G. R., Thomopoulos, S., Soslowsky, L. J. Long durations of immobilization in the rat result in enhanced mechanical properties of the healing supraspinatus tendon. Journal of Biomechanical Engineering. 129, 400-404 (2006).
  27. Freedman, B. R., Sarver, J. J., Buckley, M. R., Voleti, P. B., Soslowsky, L. J. Biomechanical and structural response of healing Achilles tendon to fatigue loading following acute injury. Journal of Biomechanics. 47, 2028-2034 (2014).
  28. Deymier, A. C., et al. The multiscale structural and mechanical effects of mouse supraspinatus muscle unloading on the mature enthesis. Acta Biomaterialia. 83, 302-313 (2019).
  29. Killian, M. L., Thomopoulos, S. Scleraxis is required for the development of a functional tendon enthesis. FASEB Journal. 30, 301-311 (2016).
  30. Schwartz, A. G., Long, F., Thomopoulos, S. Enthesis fibrocartilage cells originate from a population of Hedgehog-responsive cells modulated by the loading environment. Development. 142, 196-206 (2015).
  31. Bell, R., Taub, P., Cagle, P., Flatow, E. L., Andarawis-Puri, N. Development of a mouse model of supraspinatus tendon insertion site healing. Journal of Orthopaedic Research. 33, 25-32 (2014).
  32. Connizzo, B. K., Bhatt, P. R., Liechty, K. W., Soslowsky, L. J. Diabetes Alters Mechanical Properties and Collagen Fiber Re-Alignment in Multiple Mouse Tendons. Annals of Biomedical Engineering. 42, 1880-1888 (2014).
  33. Eekhoff, J. D., et al. Functionally Distinct Tendons From Elastin Haploinsufficient Mice Exhibit Mild Stiffening and Tendon-Specific Structural Alteration. Journal of Biomechanical Engineering. 139, 111003 (2017).
  34. Mikic, B., Bierwert, L., Tsou, D. Achilles tendon characterization in GDF-7 deficient mice. Journal of Orthopaedic Research. 24, 831-841 (2006).
  35. Sikes, K. J., et al. Knockout of hyaluronan synthase 1, but not 3, impairs formation of the retrocalcaneal bursa. Journal of Orthopaedic Research. 36, 2622-2632 (2018).
  36. Wang, V. M., Banack, T. M., Tsai, C. W., Flatow, E. L., Jepsen, K. J. Variability in tendon and knee joint biomechanics among inbred mouse strains. Journal of Orthopaedic Research. 24, 1200-1207 (2006).
  37. Wang, V. M., et al. Murine tendon function is adversely affected by aggrecan accumulation due to the knockout of ADAMTS5. Journal of Orthopaedic Research. 30, 620-626 (2011).
  38. Zhang, K., et al. Tendon mineralization is progressive and associated with deterioration of tendon biomechanical properties, and requires BMP-Smad signaling in the mouse Achilles tendon injury model. Matrix Biology. 52-54, 315-324 (2016).
  39. Rooney, S. I., et al. Ibuprofen differentially affects supraspinatus muscle and tendon adaptations to exercise in a rat model. American Journal of Sports Medicine. 44, 2237-2245 (2016).
  40. Galasso, O., et al. Quality of Life and Functional Results of Arthroscopic Partial Repair of Irreparable Rotator Cuff Tears. Arthroscopy – Journal of Arthroscopic and Related Surgery. 33, 261-268 (2017).
  41. Sarver, D. C., et al. Sex differences in tendon structure and function. Journal of Orthopaedic Research. 35, 2117-2126 (2017).
  42. Razmjou, H., et al. Disability and satisfaction after Rotator Cuff decompression or repair: A sex and gender analysis. BMC Musculoskeletal Disorders. 12, 66 (2011).

Play Video

Cite This Article
Kurtaliaj, I., Golman, M., Abraham, A. C., Thomopoulos, S. Biomechanical Testing of Murine Tendons. J. Vis. Exp. (152), e60280, doi:10.3791/60280 (2019).

View Video