Vi utviklet en enkel flow cytometri analyse for å evaluere bindingen av PD-1-blokkerende antistoffer mot T-celler, krever bare en dråpe perifert blod fra kreftpasienter.
Immunsjekkpunkthemmere, inkludert PD-1-blokkerende antistoffer, har betydelig forbedret behandlingsutfall i ulike typer kreft. Den farmakologiske effekten av disse immunterapiene er langvarig, og strekker seg selv utover seponeringen av injeksjonene, på grunn av vedvarende blodkonsentrasjoner. Her utviklet vi en enkel flyt cytometri analyse for å evaluere T celle binding status for PD-1-blokkerende antistoffer nivolumab og pembrolizumab. Som en glukosetest krever denne analysen bare en enkelt dråpe perifert blod. Visualisere antistoffbinding på T-celler er mer pålitelig enn å måle antistoffblodkonsentrasjoner. I tillegg kan vi potensielt analysere mange karakteristiske immunrelaterte markører på T-celler bundet til PD-1-blokkerende antistoffer. Dermed er dette en enkel og minimal invasiv strategi for å analysere den farmakologiske effekten av PD-1-blokkerende antistoffer hos kreftpasienter.
PD-1-blokkerende antistoffer har blitt standardvalget for behandling av ulike typer kreft, inkludert ikke-småcellet lungekreft (NSCLC)1,2,3,4. De viser en bemerkelsesverdig terapeutisk effekt hos en undergruppe av kreftpasienter som ikke har respondert på konvensjonelle cytotoksiske kjemoterapier. Imidlertid kan immunkontrollpunkthemmere (ICIer), som inkluderer PD-1-blokkerende antistoffer, forårsake et unikt og tydelig spekter av bivirkninger, kalt immunrelaterte bivirkninger (irAV-er)5. Selv om irAE kan påvirke nesten alle vev, de er oftest observert i mage-tarmkanalen, endokrine kjertler, hud, og lever, og de kan forårsake kløe,, kvalme, diaré, og skjoldbrusk lidelser6,7. Generelt vises de fleste irAE er innen 1 til 2 måneder etter initiering av ICIer. Men i noen tilfeller kan de oppstå senere enn 1 år etter begynnelsen av behandlingen eller til og med etter behandlingsopphør6,7. De forårsaker også ulike symptomer som kan være vanskelige å diskriminere fra andre patologier. Dermed kan det være utfordrende å umiddelbart diagnostisere irAE og behandle dem riktig. irAE kan påvirke alle vev, og deres utbrudd er sterkt påvirket av sirkulerende immunceller, spesielt T-celler bundet til PD-1-blokkerende antistoffer. Derfor er en enkel og minimal invasiv metode for å overvåke antistoffmålrettede T-celler viktig i kliniske innstillinger.
Her utviklet vi en enkel metode for å vurdere bindingen av PD-1-blokkerende antistoffer mot T-celler ved hjelp av en dråpe perifert fullblod fra kreftpasienter som fikk nivolumab eller pembrolizumab. Ved hjelp av denne tilnærmingen var vi i stand til å overvåke hvert av følgende: 1) varigheten av antistoffbinding til T-celler, 2) belegget til T-celle PD-1 molekyler ved terapeutiske antistoffer, og 3) aktiveringsstatus og immunologiske egenskaper i T-celler. Denne metoden er en endring av en tidligere rapportert teknikk8. Mengden blod som kreves er nesten den samme som det som trengs for en glukosetest, og tilnærmingen krever ikke enukleær celleberikelse eller co-culturing med PD-1-blokkerende antistoffer. Vi bekreftet at denne metoden også kan utføres ved hjelp av frosne prøver, inkludert perifert blod mononukleære celler (PBMCs) og celler fra pleural effusjon, perikardial effusjon, bronkoalveoor lavage væske, og cerebrospinalvæske, noe som tyder på at denne strategien kan være nyttig i sammenheng med en multisenterstudie. Denne metoden kan lette tidlig diagnose av irAE, og også bidra til å bestemme de riktige immunsuppressive behandlingene for å kontrollere symptomene og identifisere de optimale tidene for å initiere påfølgende behandlinger etter PD-1-hemmere.
I denne artikkelen rapporterer vi en metode ved hjelp av et strømningscytometer for å oppdage PD-1-blokkerende antistoffer bundet til T-celler avledet fra en dråpe perifert blod, som vi opprinnelig utviklet for nivolumab deteksjon10. Selv om denne teknikken er veldig enkel og enkel å utføre, bør to viktige punkter noteres for å oppnå nøyaktige resultater. Det ene er at for å oppdage PD-1 molekyler, bør et passende antistoff som konkurrerer med nivolumab og pembrolizumab brukes. Dette pr…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av tilskudd til S.K. fra Japan Society for The Promotion of Science KAKENHI (JP17K16045) og Japan Agency for Medical Research and Development (JP18cm0106335 og 19cm0106310).
10X RBC Lysis Buffer (Multi-species) | Thermo Fisher Scientific | 00-4300-54 | 50 mL |
APC/Cyanine7 anti-human CD4 Antibody | BioLegend | 300518 | Clone RPA-T4 |
BD FACS Canto II Flow Cytometer | BD | ||
Brilliant Violet 510 anti-human CD8a Antibody | BioLegend | 301048 | Clone RPA-T8 |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline | nacalai tesque | 14249-95 | 500 mL |
Falcon Round-Bottom Polystyrene Tubes | STEMCELL Technologies | 352058 | 5 mL |
FcR Blocking Reagent, human | Miltenyi Biotec | 130-059-901 | 2 mL |
FLOWJO | BD | ||
Gibco Fetal Bovine Serum | Thermo Fisher Scientific | 12676029 | 500 mL |
Mouse IgG1 monoclonal – Isotype control | abcam | ab81200 | |
Mouse monoclonal Anti-Human IgG4 Fc | abcam | ab99825 | Clone HP6025 |
Pacific Blue Mouse Anti-Human CD3 | BD | 558117 | Clone UCHT1 |
PE-Cy7 Mouse anti-Human CD279 (PD-1) | BD | 561272 | Clone EH12.1 |
PE-Cy7 Mouse IgG1 κ Isotype Control | BD | 557646 |