Summary

Periferik Kan Damlasından Elde Edilen T Hücrelerine Bağlı Pd-1-Blokaj Antikorlarının İzlenmesi

Published: February 05, 2020
doi:

Summary

PD-1-bloke antikorların T hücrelerine bağlanmasını değerlendirmek için basit bir akış sitometrisi tsay geliştirdik ve kanser hastalarından sadece bir damla periferik kan almasını gerektiren bir çalışma sitometri sitometri sitometri sitometri sitometri sitometri sitometri geliştirdik.

Abstract

PD-1-bloke antikorlar da dahil olmak üzere bağışıklık kontrol noktası inhibitörleri, kanser çeşitli tedavi sonuçları önemli ölçüde iyileşmiştir. Bu immünoterapilerin farmakolojik etkinliği uzun ömürlüdür, kalıcı kan konsantrasyonları nedeniyle enjeksiyonlarının kesilmesinin bile ötesine uzanır. Burada PD-1-bloke antikorlar nivolumab ve pembrolizumab T hücre bağlama durumunu değerlendirmek için basit bir akış sitometri tsay geliştirdi. Glikoz testi gibi, bu tahlil sadece bir damla periferik kan gerektirir. T hücrelerinde antikor bağlanmasını görselleştirmek antikor kan konsantrasyonlarını ölçmekten daha güvenilirdir. Buna ek olarak, gerekirse, PD-1-bloke edici antikorlara bağlı T hücrelerinde bağışıklıkla ilgili birçok ayırt edici belirteçleri analiz edebiliriz. Bu nedenle, bu kanser hastalarında PD-1-bloke antikorların farmakolojik etkisini analiz etmek için basit ve minimal invaziv bir stratejidir.

Introduction

PD-1-bloke antikorlar kanser çeşitli tedavi için standart seçim haline gelmiştir, küçük hücreli dışı akciğer kanseri de dahil olmak üzere (NSCLC)1,2,3,4. Onlar konvansiyonel sitotoksik chemotherapies yanıt vermedi kanser hastalarının bir alt kümesinde dikkate değer bir terapötik etki göstermektedir. Ancak, pd-1-bloke antikorlar içeren bağışıklık kontrol noktası inhibitörleri (ICIs), advers olayların benzersiz ve farklı bir spektrum neden olabilir, immün ilişkili advers olaylar (irAEs) olarak adlandıran5. IrAEs hemen hemen tüm dokuları etkileyebilir rağmen, en sık gastrointestinal sistem gözlenen, endokrin bezleri, cilt, ve karaciğer, ve onlar kaşıntı neden olabilir, döküntü, mide bulantısı, ishal, ve tiroid bozuklukları6,7. Genel olarak, çoğu irAEs ICIs başlatılmasından sonra 1 ila 2 ay içinde görünür. Ancak, bazı durumlarda, onlar tedavinin başlamasından sonra 1 yıl daha sonra oluşabilir hatta tedavi kesilmesinden sonra6,7. Ayrıca diğer patolojilerden ayırt etmek zor olabilir çeşitli belirtilere neden olur. Bu nedenle, irAEs derhal teşhis etmek ve uygun şekilde tedavi etmek zor olabilir. irAE’ler tüm dokuları etkileyebilir ve bunların başlangıcı, özellikle PD-1-bloke edici antikorlara bağlı T hücreleri olmak üzere dolaşan bağışıklık hücrelerinden güçlü bir şekilde etkilenir. Bu nedenle, antikor hedefli T hücrelerini izlemek için basit ve minimal invaziv bir yöntem klinik ortamlarda önemlidir.

Burada, nivolumab veya pembrolizumab alan kanser hastalarından periferik tam kan damlası kullanarak PD-1-bloke antikorların T hücrelerine bağlanmasını değerlendirmek için basit bir yöntem geliştirdik. Bu yaklaşımı kullanarak, aşağıdakilerin her birini izleyebildik: 1) T hücrelerine bağlanma nın süresi, 2) T hücre PD-1 moleküllerinin terapötik antikorlar tarafından doluluğu ve 3) T hücrelerinin aktivasyon durumu ve immünolojik özellikleri. Bu yöntem, daha önce bildirilen teknik8bir değişikliktir. Gerekli kan miktarı bir glikoz testi için gerekli hemen hemen aynıdır, ve yaklaşım mononükleer hücre zenginleştirme veya PD-1-bloke antikorlar ile co-culturing gerektirmez. Bu yöntemin periferik kan mononükleer hücreleri (PBMCs) ve plevral efüzyon, perikardiyal efüzyon, bronkoalveoler lavaj sıvısı ve beyin omurilik sıvısı hücreleri de dahil olmak üzere dondurulmuş numuneler kullanılarak da uygulanabileceğini doğruladık ve bu stratejinin çok merkezli bir çalışma bağlamında yararlı olabileceğini öne sürdük. Bu yöntem irAE’lerin erken tanısını kolaylaştırabilir ve aynı zamanda semptomlarını kontrol etmek için uygun immünsupresif tedavilerin belirlenmesine ve PD-1 inhibitörlerinden sonra sonraki tedavilerin başlatılması için en uygun süreyi belirlemeye yardımcı olabilir.

Protocol

Rutin klinik işlemler sırasında örnekleme yapıldı. Tüm insan örnekleri, Helsinki Bildirgesi uyarınca ve Japonya Osaka Üniversitesi Tıp Fakültesi Etik İnceleme Kurulu’nun (15383 ve 752) etik inceleme kurulunun onayı ile, denekler tarafından bilgilendirilmiş onay sağlandıktan sonra elde edilmiştir. 1. Tam Kan Örneği Hazırlama ve Boyama Etilen diamin tetra-asetik asit (EDTA) içeren kan toplama tüpleri içine tam kan örnekleri toplamak.NOT: Kan toplama ya nor…

Representative Results

Gating stratejisi ve akış sitometri analizi(Şekil 1)NSCLC hasta periferik kan damlasından elde edilen T hücrelerine bağlanan PD-1-bloke antikor ları saptayabiliyor. PD-1-bloke edici antikor verilmeden önce insan IgG4-pozitif CD8 veya CD4 T hücreleri bulunmaz ve PD-1 ekspresyonu PD-1-saptanan antikor (EH12.1) ile doğrulanabilir(Şekil 2A). Nivolumab veya pembrolizumab uygulamasından sonra, IgG4 (nivolumab, pembrolizumab) T hücrelerind…

Discussion

Bu makalede, başlangıçta nivolumabtespitiiçin geliştirdiğimiz periferik kan damlasından elde edilen T hücrelerine bağlı PD-1-bloke edici antikorları tespit etmek için bir akış sitometresi kullanarak bir yöntem rapor ediyoruz. Bu teknik çok basit ve kolay bir şekilde gerçekleştirilebilmesine rağmen, doğru sonuçlar elde etmek için iki önemli noktaya dikkat edilmelidir. Bir PD-1 molekülleri tespit etmek için, nivolumab ve pembrolizumab ile rekabet uygun bir antikor kullanıl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma, Japonya Bilim KAKENHI (JP17K16045) ve Japonya Tıbbi Araştırma ve Geliştirme Ajansı (JP18cm0106335 ve 19cm0106310) için Japonya Derneği’nden S.K.’ye verilen hibelerle desteklenmiştir.

Materials

10X RBC Lysis Buffer (Multi-species) Thermo Fisher Scientific 00-4300-54 50 mL
APC/Cyanine7 anti-human CD4 Antibody BioLegend 300518 Clone RPA-T4
BD FACS Canto II Flow Cytometer BD
Brilliant Violet 510 anti-human CD8a Antibody BioLegend 301048 Clone RPA-T8
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline nacalai tesque 14249-95 500 mL
Falcon Round-Bottom Polystyrene Tubes STEMCELL Technologies 352058 5 mL
FcR Blocking Reagent, human Miltenyi Biotec 130-059-901 2 mL
FLOWJO BD
Gibco Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific 12676029 500 mL
Mouse IgG1 monoclonal – Isotype control abcam ab81200
Mouse monoclonal Anti-Human IgG4 Fc abcam ab99825 Clone HP6025
Pacific Blue Mouse Anti-Human CD3 BD 558117 Clone UCHT1
PE-Cy7 Mouse anti-Human CD279 (PD-1) BD 561272 Clone EH12.1
PE-Cy7 Mouse IgG1 κ Isotype Control BD 557646

References

  1. Gong, J., Chehrazi-Raffle, A., Reddi, S., Salgia, R. Development of PD-1 and PD-L1 inhibitors as a form of cancer immunotherapy: a comprehensive review of registration trials and future considerations. Journal for ImmunoTherapy of Cancer. 6 (1), 8 (2018).
  2. Borghaei, H., et al. Nivolumab versus Docetaxel in Advanced Nonsquamous Non-Small-Cell Lung Cancer. The New England Journal of Medicine. 373 (17), 1627-1639 (2015).
  3. Brahmer, J., et al. Nivolumab versus Docetaxel in Advanced Squamous-Cell Non-Small-Cell Lung Cancer. The New England Journal of Medicine. 373 (2), 123-135 (2015).
  4. Herbst, R. S., et al. Pembrolizumab versus docetaxel for previously treated, PD-L1-positive, advanced non-small-cell lung cancer (KEYNOTE-010): a randomised controlled trial. The Lancet. 387 (10027), 1540-1550 (2016).
  5. Postow, M. A., Sidlow, R., Hellmann, M. D. Immune-Related Adverse Events Associated with Immune Checkpoint Blockade. The New England Journal of Medicine. 378 (2), 158-168 (2018).
  6. Weber, J. S., et al. Safety Profile of Nivolumab Monotherapy: A Pooled Analysis of Patients With Advanced Melanoma. Journal of Clinical Oncology. 35 (7), 785-792 (2017).
  7. Champiat, S., et al. Management of immune checkpoint blockade dysimmune toxicities: a collaborative position paper. Annals of Oncology. 27 (4), 559-574 (2016).
  8. Brahmer, J. R., et al. Phase I study of single-agent anti-programmed death-1 (MDX-1106) in refractory solid tumors: safety, clinical activity, pharmacodynamics, and immunologic correlates. Journal of Clinical Oncology. 28 (19), 3167-3175 (2010).
  9. Bommareddy, P. K., Lowe, D. B., Kaufman, H. L., Rabkin, S. D., Saha, D. Multi-parametric flow cytometry staining procedure for analyzing tumor-infiltrating immune cells following oncolytic herpes simplex virus immunotherapy in intracranial glioblastoma. Journal of Biological Methods. 6 (2), 112 (2019).
  10. Osa, A., et al. Clinical implications of monitoring nivolumab immunokinetics in non-small cell lung cancer patients. JCI Insight. 3 (19), 59125 (2018).
  11. Zelba, H., et al. Accurate quantification of T-cells expressing PD-1 in patients on anti-PD-1 immunotherapy. Cancer Immunology, Immunotherapy. 67 (12), 1845-1851 (2018).
  12. Simoni, Y., et al. Bystander CD8(+) T cells are abundant and phenotypically distinct in human tumour infiltrates. Nature. 557 (7706), 575-579 (2018).
  13. Chiu, H. H., et al. Development of a general method for quantifying IgG-based therapeutic monoclonal antibodies in human plasma using protein G purification coupled with a two internal standard calibration strategy using LC-MS/MS. Analytica Chimica Acta. 1019, 93-102 (2018).

Play Video

Cite This Article
Naito, Y., Osa, A., Masuhiro, K., Hirai, T., Koyama, S., Kumanogoh, A. Monitoring PD-1-Blocking Antibodies Bound to T Cells Derived from a Drop of Peripheral Blood. J. Vis. Exp. (156), e60608, doi:10.3791/60608 (2020).

View Video