Summary

Isolement des cellules monnucléaires tonsillar pour étudier les réponses immunitaires innées Ex Vivo dans un tissu lymphoïde muqueuse humain

Published: June 14, 2020
doi:

Summary

Dans le protocole actuel, nous expliquons comment traiter et culturer facilement les cellules monnucléaires amygdaler des humains sains subissant l’amygdalectomie chirurgicale partielle pour étudier les réponses immunitaires innées lors de l’activation, imitant l’infection virale dans les tissus muqueuses.

Abstract

L’étude des cellules isolées des tissus lymphoïdes associés à la muqueuse (MALT) permet de comprendre la réponse des cellules immunitaires dans les pathologies impliquant l’immunité muqueuse, car elles peuvent modéliser les interactions hôte-pathogène dans le tissu. Alors que les cellules isolées dérivées des tissus étaient le premier modèle de culture cellulaire, leur utilisation a été négligée parce que les tissus peuvent être difficiles à obtenir. Dans le présent protocole, nous expliquons comment traiter et culturer facilement les cellules monnucléaires amygdales (TMCs) à partir d’amygdales humaines saines pour étudier les réponses immunitaires innées lors de l’activation, imitant l’infection virale dans les tissus muqueuses. L’isolement des TMCs des amygdales est rapide, parce que les amygdales ont à peine de l’épithélium et de produire jusqu’à des milliards de tous les principaux types de cellules immunitaires. Cette méthode permet la détection de la production de cytokines à l’aide de plusieurs techniques, y compris les immunotests, qPCR, microscopie, cytométrie de flux, etc., semblables à l’utilisation de cellules mononucléaires périphériques (PBMC) à partir du sang. De plus, les CTM présentent une plus grande sensibilité aux tests de dépistage des drogues que les PBMC, qui doivent être prises en considération pour les futurs tests de toxicité. Ainsi, les cultures ex vivo TMCs sont un modèle muqueuse facile et accessible.

Introduction

Les études sur les organes humains sont limitées en raison de l’accessibilité ainsi que des raisons éthiques évidentes. Cependant, ils sont essentiels pour bien comprendre la complexité de la biologie humaine. Les cultures de cellules isolées (cultures primaires ou lignées cellulaires) sont un système standard dans les études de biologie cellulaire en raison de leur disponibilité. Bien que les cultures cellulaires isolées aient permis des découvertes exceptionnelles, l’utilisation de lignées cellulaires a fait l’objet d’un examen plus approfondi parce qu’elles n’imitent pas entièrement la biologie in vivo des organes. Cependant, la culture des cellules tridimensionnelles ou des explants de tissu est très complexe4,5,6. En effet, un morceau de tissu ou d’organe est fortement hétérogène parce que sa composition cellulaire diffère selon la localisation dans le tissu. Ainsi, l’utilisation de blocs de tissus nécessite l’analyse de nombreuses répliques techniques et biologiques, conduisant à la nécessité d’un grand nombre de donneurs ou de patients.

Les tissus lymphoïdes associés à la muqueuse (MALT) sont structurellement semblables aux ganglions lymphatiques, mais ont des fonctions uniques, parce que leur rôle principal est de réguler l’immunité muqueuse7. Contrairement aux ganglions lymphatiques, qui sont généralement situés à une certaine distance des tissus, MALT sont généralement situés immédiatement en dessous de l’épithélium du tissu muqueuse. Histologiquement, ils sont principalement composés de fortes concentrations de cellules B et T, mais aussi de cellules présentant des antigènes telles que les macrophages et les cellules dendritiques. MALT constituent environ 50% du tissu lymphoïde dans le corps humain. Les MALT sont subdivisés en neuf groupes selon leur emplacement : GALT (intestin-), BALT (bronches-), NALT (nasal-), CALT (conjonctival), LALT (larynx-), SALT (peau-), VALT (vulvo-), O-MALT (organisé) et D-MALT (diffusé). L’O-MALT est principalement composé des amygdales de l’anneau amygdale de Waldeyer et est le malt le plus accessible8,9. En effet, les amygdales situées dans l’oropharynx constituent la principale barrière protégeant les voies digestives et respiratoires contre les micro-organismes (potentiels) invasifs10. En outre, les amygdales sont couvertes par un épithélium squameux non kératinisant stratifié fin, soutenu par une capsule de tissu conjonctif contenant des vaisseaux sanguins, les nerfs et les lymphatiques, offrant un accès facile aux cellules immunitaires11,12. En outre, l’amygdalectomie, l’acte chirurgical d’enlever les amygdales, est une procédure courante effectuée sur les enfants ayant une respiration trouble du sommeil, ce qui rend les amygdales un tissu facilement disponible13 dans les milieux physiologiques.

Les amygdales permettent l’étude de la réponse des cellules immunitaires dans les pathologies impliquant l’immunité muqueuse. En effet, dans l’infection par le VIH, parce que les amygdales sont composées d’une forte concentration de cellules immunitaires, ils sont la cible principale de la réplication virale, mais produisent également une grande quantité de cytokines qui ne sont pas détectés dans la circulation14,15. À des états stables, de rares populations de cellules innées sont présentes dans divers tissus muqueuses, y compris les amygdales, mais sont essentiellement absentes du sang.

Ainsi, les cellules mononucléaires des amygdales (TMC) sont un modèle plus pertinent et complexe que les PBMC et peuvent répondre à des questions plus profondes. D’autre part, l’utilisation d’explants de tissu peut être complexe et pas toujours pertinente pour les études immunitaires innées. Ainsi, nous avons établi un modèle pour étudier l’activation immunitaire muqueuse à l’aide de TMCs16. Ici, nous décrivons une méthode pour l’isolement efficace des TMCs des amygdales humaines fraîches. Cette méthode permet la récupération d’un grand nombre de cellules immunitaires tout en gardant leur intégrité pour les études ex vivo.

Protocol

Les spécimens ne sont pas recueillis spécifiquement à des fins de recherche et l’étude n’est pas considérée comme envahissante. Toutefois, la collecte des amygdales humaines nécessite l’approbation éthique des autorités locales compétentes. Dans notre cas, il a été approuvé par le Comité de protection des personnes (IDRCB/EUDRACT: 2018A0135847). De plus, le consentement de chaque patient ou représentant légal est demandé pour obtenir les données personnelles des donneurs (p. ex., sexe, âge, anté…

Representative Results

Nous avons d’abord caractérisé le profil immunitaire des cellules présentes dans la culture et analysé la quantité de TMCs. Nous avons phénypique les TMC des amygdales avec la cytométrie de flux. Comme le montre la figure 1, tous les principaux types de cellules immunitaires présents dans les PBMC provenant du sang étaient représentés dans les TMC à partir d’amygdales. Toutefois, dans les TMC, la fréquence de tous les types de cellules, à l?…

Discussion

Les amygdales humaines représentent un modèle ex vivo intégratif et physiologique pour étudier les réponses immunitaires innées à l’interface muqueuse, parce qu’elles imitent le rôle d’un organe lymphoïde secondaire. Fait intéressant, la composition cellulaire des TMC est similaire aux PBMC et comprend toutes les principales populations de cellules, bien que leur pourcentage puisse être différent des PBMC du sang (figure 1). D’autres populations peuvent également être t…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par l’Agence nationale de la recherche sur le SIDA et les Hépatites ANRS (J-P. H) pour les expériences et la bourse du N.-B. (AAP 2017 166). N.S. reconnaît le soutien de l’ANRS pour la bourse (AAP 2016 1), de l’Organisation européenne de biologie moléculaire EMBO for Fellowship (LT 834 2017), du programme de financement de démarrage « Baustein » de la Faculté de médecine de l’Université d’Ulm (LSBN.0147) et de la Deutsche Forschungsgemeinschaft DFG (SM 544/1 1).

Materials

10 meshes steel grid – 1910 µm Dutscher 198586 To put in the cell strainer Cellector
60 meshes steel grid – 230 µm Dutscher 198591 To put in the cell strainer Cellector
70 µm white ClearLine cell strainers Dutscher 141379C
Anios Excell D detergent Dutscher 59852 Detergent
Antibiotic solution, 100x Thermo Fisher 15140122 100 U/mL Penicilium and 100 μg/mL Streptomycin – to add to culture media
BD FalconTM Round-Bottom Tubes, 5 mL BD Biosciences 352063 FACS Tubes
Cell strainer Cellector, 85 mL and 37 mm diameter Dutscher 198585
CellTiter-Glo (CTG) Luminescent Cell Viability Assay Promega G7572 Viability assay
Centrifuge 5810 R Eppendorf
Conical tubes Falcon 50 mL Dutscher 352070
Curved tweezers Dutscher 711200
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D2650
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS) Sigma-Aldrich D8537 Without calcium and magnesium
EnVision PerkinElmer Measures the luminescence
Fetal Bovine Serum (FBS) To add to culture media
Fluorescence labeles antibodies See Table 1
Glass Pestle Dutscher 198599
Hepes (1M) Thermo Fisher 15630056 Use at 20 mM
Incubator
LEGENDplex Human Anti-Virus Response Panel BioLegend 740390 Bead-based immunoassay
Lymphoprep StemCell 7801 Density gradient medium
Mr. Frosty container Thermo Fisher 5100-0001 Slow freezing container
Pierce 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free Thermo Fisher 28908
Resiquimod (R848) InvivoGen tlrl-r848 TLR7/8 agonist
RPMI-1640 Medium Sigma-Aldrich R8758
SPL Cell Culture Dish, 150 x 25 mm (SPL150) Dutscher 330009
Surgical blade sterile N°23 Dutscher 132523
UltraComp eBeads Compensation Beads Thermo Fisher 01-2222-41
UltraPure 0.5M EDTA, pH 8.0 Thermo Fisher 15575020 To make wash buffer in PBS

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Smith, N., Bekaddour, N., Leboulanger, N., Richard, Y., Herbeuval, J. Isolation of Tonsillar Mononuclear Cells to Study Ex Vivo Innate Immune Responses in a Human Mucosal Lymphoid Tissue. J. Vis. Exp. (160), e60914, doi:10.3791/60914 (2020).

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