Summary

माउस कॉर्निया और कंजक्टिवा की लाइव इमेजिंग के लिए एक कस्टम मल्टीफोटोन माइक्रोस्कोपी प्लेटफॉर्म

Published: May 17, 2020
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Summary

यहां प्रस्तुत लाइव माउस ऑक्यूलर सरफेस इमेजिंग के लिए एक मल्टीफोटोन माइक्रोस्कोपिक प्लेटफॉर्म है। फ्लोरोसेंट ट्रांसजेनिक माउस नेत्र सतह के भीतर कोशिका नाभिक, कोशिका झिल्ली, तंत्रिका फाइबर और केशिकाओं के दृश्य को सक्षम बनाता है। कोलेजनस संरचनाओं से प्राप्त गैर-रैखिक दूसरा हार्मोनिक पीढ़ी के संकेत स्ट्रोमल आर्किटेक्चर के लिए लेबल-मुक्त इमेजिंग प्रदान करते हैं।

Abstract

पारंपरिक हिस्टोलॉजिकल विश्लेषण और सेल कल्चर सिस्टम वीवो शारीरिक और पैथोलॉजिकल गतिशीलता में पूरी तरह से अनुकरण करने के लिए अपर्याप्त हैं। मल्टीफोटॉन माइक्रोस्कोपी (एमपीएम) वीवो में सेलुलर स्तरों पर जैव चिकित्सा अध्ययन के लिए सबसे लोकप्रिय इमेजिंग तौर-तरीकों में से एक बन गया है, लाभों में उच्च संकल्प, गहरे ऊतक प्रवेश और न्यूनतम फोटोटोक्सिसिटी शामिल हैं। हमने एक एमपीएम इमेजिंग प्लेटफॉर्म तैयार किया है जिसमें एक कस्टमाइज्ड माउस आई होल्डर और वीवो में इमेजिंग ऑक्यूलर सरफेस के लिए स्टीरियोटैक्सिक स्टेज है । दोहरी फ्लोरोसेंट प्रोटीन रिपोर्टर माउस नेत्र सतह के भीतर कोशिका नाभिक, कोशिका झिल्ली, तंत्रिका फाइबर और केशिकाओं के दृश्य को सक्षम बनाता है। मल्टीफोटोन फ्लोरेसेंस संकेतों के अलावा, दूसरी हार्मोनिक पीढ़ी (एसएचजी) प्राप्त करना एक साथ कोलेजनस स्ट्रोमल वास्तुकला के लक्षण वर्णन के लिए अनुमति देता है। इस मंच को कॉर्निया और कंजक्टिवा सहित पूरे नेत्र सतह में सटीक स्थिति के साथ इंट्राविटल इमेजिंग के लिए नियोजित किया जा सकता है।

Introduction

कॉर्निया और कंजक्टिवा सहित नेत्र सतह संरचनाएं बाहरी गड़बड़ी से अन्य गहरे नेत्र ऊतकों की रक्षा करती हैं। कॉर्निया, आंखों का पारदर्शी सामने का हिस्सा, आंखों में प्रकाश को निर्देशित करने और एक सुरक्षात्मक बाधा के रूप में अपवर्तक लेंस के रूप में कार्य करता है। कॉर्नियल एपिथेलियम कॉर्निया की सबसे बाहरी परत है और इसमें सतही कोशिकाओं, पंख कोशिकाओं और बेसल कोशिकाओं की अलग-अलग परतें होती हैं। कॉर्नियल स्ट्रोमा केराटोसाइट्स के साथ एम्बेडेड परिष्कृत रूप से पैक किए गए कोलेजनस लैमेले से बना है। कॉर्नियल एंडोथेलियम, फ्लैट हेक्सागोनल कोशिकाओं की एक परत, अपने पंपिंग कार्यों के माध्यम से अपेक्षाकृत निर्जलित राज्य में कॉर्निया स्ट्रोमा रखकर कॉर्निया की पारदर्शिता बनाए रखने में महत्वपूर्ण भूमिका निभाता है1। लिम्बस कॉर्निया और कंजक्टिवा के बीच की सीमा बनाता है, और कॉर्नियल एपिथेलियल स्टेम सेल2का जलाशय है। अत्यधिक संवहनी संविवाह बलगम और आँसू का उत्पादन करके आंखों को चिकनाई करने में मदद करता है3.

कॉर्नियल सतह संरचनाओं की सेल गतिशीलता पारंपरिक रूप से या तो हिस्टोलॉजिकल विश्लेषण या इन विट्रो सेल संस्कृति द्वारा अध्ययन की जाती है, जो वीवो सेल गतिशीलता में पर्याप्त रूप से अनुकरण नहीं कर सकती है। एक गैर आक्रामक लाइव इमेजिंग दृष्टिकोण, इसलिए, इस तरह के अंतर को पाटने कर सकते हैं । इसके फायदों के कारण, जिसमें उच्च संकल्प, न्यूनतम फोटोडैमेज और गहरी इमेजिंग गहराई शामिल है, एमपीएम जैविक अनुसंधान,,4, 5,6,7,8के विविध क्षेत्रों में एक शक्तिशाली मोडलि मोडलि मोडल बन गया है।,5, कॉर्नियल इमेजिंग के लिए, एमपीएम इंट्रासेल्युलर एनएडी (पी)एच से प्राप्त आंतरिक ऑटोफ्लोरेसेंस से सेलुलर जानकारी प्रदान करता है। फेमटोसेकंड लेजर स्कैनिंग के तहत गैर-सेंट्रोमममेमसिक प्रकार I कोलेजन फाइबर से प्राप्त दूसरी हार्मोनिक पीढ़ी (एसएचजी) संकेत अतिरिक्त धुंधला प्रक्रियाओं के बिना कोलेजनस स्ट्रोमल संरचनाएं प्रदान करता है9। पहले , हमने और अन्य समूहों ने पशु और मानव कॉर्निया 9 , 10 , 11 ,12,,,13,14,,15की इमेजिंगकेलिए एमपीएम का शोषण किया है ।1215

विशिष्ट कोशिका आबादी में फ्लोरोसेंट प्रोटीन का प्रदर्शन करने वाली ट्रांसजेनिक माउस लाइनों का व्यापक रूप से सेल जीव विज्ञान में विभिन्न अध्ययनों के लिए उपयोग किया गया है, जिसमें विकास, ऊतक होमोस्टेसिस, ऊतक उत्थान और कार्सिनोजेनेसिस शामिल हैं। हमने एमपीएमद्वारा कॉर्निया9,10,बालों के रोम 10 और एपिडर्मिस10 के वीवो इमेजिंग में फ्लोरोसेंट प्रोटीन के साथ लेबल किए गए ट्रांसजेनिक माउस उपभेदों का उपयोग किया।, टीडीटोमाटो और ईजीएफपी के साथ टैग किए गए सेल न्यूक्लियस के साथ लेबल की गई कोशिका झिल्ली के साथ दोहरी फ्लोरोसेंट माउस तनाव दो माउस उपभेदों से पैदा होता है: R26R-GR (B6;129-Gt (ROSA)। 26Sortm1Ytchn/J,#021847)16 और mT-mG (Gt(ROSA26)ACTB-tdTomato-EGFP,#007676)17। R26R-जीआर ट्रांसजेनिक माउस लाइन में एक दोहरी फ्लोरोसेंट प्रोटीन रिपोर्टर स्ट्रगल होता है, जिसमें एक एच2बी-ईजीएफपी फ्यूजन जीन और mCherry-GPI एंकर सिग्नल फ्यूजन जीन शामिल है, जो जीटी (रोजा) 26Sor लोकस में डाला गया है । MT-mG ट्रांसजेनिक तनाव एक सेल झिल्ली लक्षित tdTomato और EGFP फ्लोरोसेंट क्रे रिपोर्टर चूहों है । क्रे रीकॉम्बिनेशन से पहले, टीडीटोमा फ्लोरेसेंस अभिव्यक्ति के साथ कोशिका झिल्ली प्रोटीन विभिन्न कोशिकाओं में व्यापक रूप से मौजूद है। यह ट्रांसजेनिक माउस तनाव हमें क्रे उत्तेजन के बिना टीडीटोमाटो के साथ नाभिक-ईजीएफपी और झिल्ली की कल्पना करने में सक्षम बनाता है। प्रयोगों के लिए पर्याप्त चूहों का उत्पादन करने के लिए दो महिलाओं (R26R-GR+/+)और एक पुरुष (mT-mG+/+)ट्रांसजेनिक माउस को एक साथ पैदा किया गया था । इस अध्ययन में R26R-GR +/-;mT-mG+/-जीनोटाइप, दोहरी फ्लोरोसेंट चूहों के तनाव के साथ उनकी संतानों का उपयोग किया गया था ।+/- एक फ्लोरोसेंट रिपोर्टर माउस लाइन के साथ तुलना में जैसा कि पहले9,,10वर्णित है, यह दोहरी फ्लोरोसेंट रिपोर्टर माउस तनाव हमें इमेजिंग समय के 50% कम अधिग्रहण के साथ प्रदान करता है।

इस काम में, हम अपने इमेजिंग प्लेटफॉर्म और दोहरे फ्लोरोसेंट ट्रांसजेनिक चूहों का उपयोग करके कदम-दर-कदम तरीके से नेत्र सतह के वीवो इमेजिंग में एक विस्तृत तकनीकी प्रोटोकॉल का वर्णन करते हैं।

Protocol

सभी पशु प्रयोग राष्ट्रीय ताइवान विश्वविद्यालय और चांग गुंग मेमोरियल अस्पताल की संस्थागत पशु देखभाल और उपयोग समिति (IACUC) द्वारा अनुमोदित प्रक्रियाओं के अनुसार आयोजित किए गए थे । 1. मल्टीफोटोन ?…

Representative Results

इस लाइव इमेजिंग प्लेटफॉर्म का उपयोग करके, माउस नेत्र सतह को सेलुलर स्तरों पर कल्पना की जा सकती है। नेत्र सतह में व्यक्तिगत एकल कोशिकाओं की कल्पना करने के लिए, हमने कोशिका झिल्ली में व्यक्त नाभिक और टीड?…

Discussion

एक नियंत्रण सॉफ्टवेयर के साथ इस कस्टम-निर्मित एमपीएम इमेजिंग प्लेटफॉर्म का उपयोग माउस एपिथेलियल अंगों के इंट्राविटल इमेजिंग के लिए किया गया था, जिसमें त्वचा10,बाल कूप10 और नेत्र सतह<sup …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम विज्ञान और प्रौद्योगिकी मंत्रालय, ताइवान (106-2627-M-002-034, 107-2314-B-182A-089, से अनुदान सहायता का शुक्रिया अदा करते हैं, 108-2628-बी-002-023, 108-2628-बी-002-023), नेशनल ताइवान यूनिवर्सिटी अस्पताल (NTUH108-T17) और चांग गुंग मेमोरियल अस्पताल, ताइवान (सीएमआरपीजी3जी1621, सीएमआरपीजी3जी1623) ।

Materials

AVIZO Lite software Thermo Fisher Scientific Version: 2019.3.0
Bandpass filters Semrock FF01-434/17
FF01-500/24
FF01-585/40
Dichroic mirrors Semrock FF495-Di01-25×36 FF580-Di01-25×36
Galvano Thorlabs GVS002
Jade BIO control software SouthPort Corporation Jade BIO
Oxybuprocaine hydrochloride Sigma O0270000
PMT Hamamatsu H7422A-40
Polyesthylene Tube BECTON DICKINSON 427401
Stereotaxic mouse holder Step Technology Co.,Ltd 000111
Ti: Sapphire laser Spectra-Physics Mai-Tai DeepSee
Upright microscopy Olympus BX51WI
Vidisic Gel Dr. Gerhard Mann Chem-pharm. Fabrik GmbH D13581
Zoletil Virbac VR-2831

References

  1. DelMonte, D. W., Kim, T. Anatomy and physiology of the cornea. Journal of Cataract & Refractive Surgery. 37 (3), 588-598 (2011).
  2. Van Buskirk, E. M. The anatomy of the limbus. Eye (London). 3, 101-108 (1989).
  3. Hodges, R. R., Dartt, D. A. Tear film mucins: front line defenders of the ocular surface; comparison with airway and gastrointestinal tract mucins. Experimental Eye Research. 117, 62-78 (2013).
  4. Tan, H. Y., et al. Multiphoton fluorescence and second harmonic generation imaging of the structural alterations in keratoconus ex vivo. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (12), 5251-5259 (2006).
  5. Konig, K. Multiphoton microscopy in life sciences. Journal of Microscopy. 200, 83-104 (2000).
  6. Rompolas, P., et al. Spatiotemporal coordination of stem cell commitment during epidermal homeostasis. Science. 352 (6292), 1471-1474 (2016).
  7. Park, S., et al. Tissue-scale coordination of cellular behaviour promotes epidermal wound repair in live mice. Nature Cell Biology. 19 (2), 155-163 (2017).
  8. Xin, T., Gonzalez, D., Rompolas, P., Greco, V. Flexible fate determination ensures robust differentiation in the hair follicle. Nature Cell Biology. 20 (12), 1361-1369 (2018).
  9. Wu, Y. F., et al. Intravital multiphoton microscopic imaging platform for ocular surface imaging. Experimental Eye Research. 182, 194-201 (2019).
  10. Wu, Y. F., Tan, H. Y., Lin, S. J. Long-Term Intravital Imaging of the Cornea, Skin, and Hair Follicle by Multiphoton Microscope. Methods in Molecular Biology. , (2019).
  11. Lo, W., et al. Fast Fourier transform-based analysis of second-harmonic generation image in keratoconic cornea. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (7), 3501-3507 (2012).
  12. Tan, H. Y., et al. Multiphoton fluorescence and second harmonic generation microscopy for imaging infectious keratitis. Journal of Biomedical Optics. 12 (2), 024013 (2007).
  13. Jester, J. V., et al. Four-dimensional multiphoton confocal microscopy: the new frontier in cellular imaging. Oculur Surface. 2 (1), 10-20 (2004).
  14. Morishige, N., et al. Second-harmonic imaging microscopy of normal human and keratoconus cornea. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 48 (3), 1087-1094 (2007).
  15. Hao, M., et al. In vivo non-linear optical (NLO) imaging in live rabbit eyes using the Heidelberg Two-Photon Laser Ophthalmoscope. Experimental Eye Research. 91 (2), 308-314 (2010).
  16. Chen, Y. T., et al. R26R-GR: a Cre-activable dual fluorescent protein reporter mouse. PLoS One. 7 (9), 46171 (2012).
  17. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45 (9), 593-605 (2007).
  18. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  19. Masihzadeh, O., Lei, T. C., Ammar, D. A., Kahook, M. Y., Gibson, E. A. A multiphoton microscope platform for imaging the mouse eye. Molecular Vision. 18, 1840-1848 (2012).
  20. Zhang, H., et al. Two-photon imaging of the cornea visualized in the living mouse using vital dyes. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 54 (10), 6526-6536 (2013).
  21. Lee, J. H., et al. Comparison of confocal microscopy and two-photon microscopy in mouse cornea in vivo. Experimental Eye Research. 132, 101-108 (2015).
  22. Ehmke, T., et al. In vivo nonlinear imaging of corneal structures with special focus on BALB/c and streptozotocin-diabetic Thy1-YFP mice. Experimental Eye Research. 146, 137-144 (2016).
  23. Webster, M. T., Manor, U., Lippincott-Schwartz, J., Fan, C. M. Intravital Imaging Reveals Ghost Fibers as Architectural Units Guiding Myogenic Progenitors during Regeneration. Cell Stem Cell. 18 (2), 243-252 (2016).
  24. Mesa, K. R., et al. Homeostatic Epidermal Stem Cell Self-Renewal Is Driven by Local Differentiation. Cell Stem Cell. 23 (5), 677-686 (2018).
  25. Goh, C. C., et al. Real-time imaging of dendritic cell responses to sterile tissue injury. Journal of Investigative Dermatology. 135 (4), 1181-1184 (2015).
  26. Kissenpfennig, A., et al. Dynamics and function of Langerhans cells in vivo: dermal dendritic cells colonize lymph node areas distinct from slower migrating Langerhans cells. Immunity. 22 (5), 643-654 (2005).
  27. Chow, Z., Mueller, S. N., Deane, J. A., Hickey, M. J. Dermal regulatory T cells display distinct migratory behavior that is modulated during adaptive and innate inflammation. Journal of Immunology. 191 (6), 3049-3056 (2013).
  28. Dudeck, A., et al. Mast cells are key promoters of contact allergy that mediate the adjuvant effects of haptens. Immunity. 34 (6), 973-984 (2011).

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Wu, Y., Ye, R., Pan, M., Lin, S., Tan, H. A Custom Multiphoton Microscopy Platform for Live Imaging of Mouse Cornea and Conjunctiva. J. Vis. Exp. (159), e60944, doi:10.3791/60944 (2020).

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