Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Biology
Click here for the English version

Biology

מודל מבוסס קפסולה לשריצה בשלבי קרציות קשות לא בוגרים בעכברי מעבדה

Published: July 9, 2020 doi: 10.3791/61430
Automatic Translation
1, 1, 1,2,3, 1, 1
1UMR BIPAR, INRAE, Ecole Nationale Vétérinaire d'Alfort, ANSES, Université Paris-Est, 2Faculté de Pharmacie, Université de Limoges, 3UMR SPE 6134 CNRS, Université de Corte Pascal Paoli

Summary

במחקר זה, מערכת האכלה עבור שלבי נימפה וזחל של קרצייה קשה פותחה באמצעות כמוסה המחוברת לעכבר מעבדה. קפסולת ההאכלה עשויה מחומרים גמישים ונשארת מחוברת היטב לעכבר למשך שבוע אחד לפחות ומאפשרת ניטור נוח של הזנת קרציות.

Abstract

קרציות הן טפילי הזנת דם חובה בכל שלבי הפיתוח (למעט ביצים) ומוכרות כקטורים של פתוגנים שונים. השימוש במודלים של עכבר במחקר קרציות הוא קריטי להבנת הביולוגיה שלהם ואינטראקציות פתוגן-מארח-קרציות. כאן אנו מדגימים טכניקה לא מייגעת להזנת שלבים לא בוגרים של קרציות קשות על עכברי מעבדה. היתרון של השיטה הוא הפשטות שלה, משך הזמן הקצר, ואת היכולת לפקח או לאסוף קרציות בנקודות זמן שונות של ניסוי. בנוסף, הטכניקה מאפשרת חיבור של שתי כמוסות בודדות באותו עכבר, אשר מועיל עבור מגוון רחב של ניסויים שבו שתי קבוצות שונות של קרציות נדרשים כדי לאכול על אותה חיה. הקפסולה הלא מעצבנת והגמישה עשויה מחומרים נגישים בקלות וממזערת את אי הנוחות של בעלי החיים הניסיוניים. יתר על כן, המתת חסד אין צורך, עכברים להתאושש לחלוטין לאחר הניסוי והם זמינים לשימוש חוזר.

Introduction

קרציות הן וקטורים חשובים של מספר פתוגנים ומייצגים סיכון רציני לבריאות בעלי החיים והאדם1. הקמת מערכת הזנה יעילה היא קריטית כאשר לומדים את הביולוגיה שלהם, אינטראקציות טיק-מארח-פתוגן, או קביעת אמצעי בקרה יעילים. כיום, מספר מערכות הזנה מלאכותיות, הימנעות משימוש בבעלי חייםחיים,זמינות לקרציות2,3,,4, ויש לנצלן בכל פעם שתנאים ניסיוניים מאפשרים זאת. עם זאת, בהגדרות ניסיוניות שונות מערכות אלה אינן מחקות כראוי את התכונות הפיזיולוגיות הספציפיות והשימוש בבעלי חיים הוא הכרחי כדי להשיג תוצאות רלוונטיות.

עכברי מעבדה משמשים בדרך כלל למחקר של מערכות ביולוגיות רבות, הם מנוצלים באופן שגרתי כמארחים עבורקרציות האכלה 5,,6,,7,,8,,9. שתי השיטות הנפוצות ביותר להאכלת קרציות לא בוגרות בעכברים כוללות התפשטות חופשית ושימוש בחדרי כליאה המחוברים לעכבר. התפשטות חופשית משמשים בעיקר עבור שלבי זחל וקרציות גדושות יכול לרדת לאזור שבו הם יכולים להיות התאושש. תאי כליאה מורכבים בדרך כלל מכובעי אקרילי או פוליפרופילן המודבקים על גב העכבר. הטכניקה הראשונה היא מערכת טבעית יעילה להזנת קרציות, אך אינה מאפשרת ניטור צמוד במהלך הניסוי מכיוון שהקרציות הבודדות מפוזרות בחלקים שונים של הגוף המארח. בנוסף, קרציות גדושות שירדו לאזור ההחלמה עלולות להיות מזוהמות בצואהובשתן 10, 11,,12,,,13,14 שעשויות להשפיע קשות על כושר הקרציות או שהעכבר עלול להיפגעאו לאכול אותם אם אין הפרדהבין החיה לאזור ההחלמה 15 .12, מערכות מבוססות תא מאפשרות את כליאה של קרציות לאזור מוגדר, עם זאת, תהליך ההדבקה הוא מייגע ואת הכיפות לעתים קרובות חלשים דבק ולכן הם לעתים קרובות להתנתקבמהלך הניסוי 16,17,18,19. הכובעים גם נוקשים, לא נוחים, והוביל לתגובות עור, אשר למנוע שימוש חוזר בעכברים ומחייב המתת חסד שלהם לאחר הניסוי.

במחקר הקודם שלנו, פיתחנו בהצלחה מערכת יעילה באמצעות תאים עשויים אטילן-ויניל אצטט (EVA) קצף להזנת קרציות עלארנבי מעבדה 20. בזאת, התאמנו את המערכת למודל העכבר ומציעים שיטה פשוטה ונקייה כדי להזין שלבי קרציות קשיחים לא בשלים בכמוסות סגורות עשויות מקצף EVA. באופן ספציפי, המערכת שלנו משתמשת כמוסות קצף אווה אלסטי מודבק עכברים מגולחים בחזרה עם ייבוש מהיר (3 דקות), דבק לטקס לא מעצבן. טכניקה זו מאפשרת חיבור מוצק וארוך של כמוסות לעכבר הניסיוני, כמו גם התפשטות קרציות/אוסף יעיל במהלך כל הניסוי. הכמוסה השטוחה עשויה מחומרים גמישים ואינה מסתבלת במניפולציה של העכבר לצורך איסוף דם או למטרות אחרות. המערכת מתאימה בעיקר לשלבי הקרציות הנימפליות, אך עם שינוי קל ניתן להשתמש בה גם להאכלת זחלים. השיטה יכולה להסתיים על ידי אדם מנוסה אחד אחד והכשרה נרחבת אינה נדרשת.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

אנא שימו לב כי פרוטוקול זה יכול לחול רק כאשר כל אמצעי הרווחה והבטיחות יתקיימו במעבדה. פרוטוקול זה קיבל אישור להשתמש בעכברים להזנת קרציות על ידי ועדת האתיקה לניסויים בבעלי חייםComEth Anses/ENVA/UPEC, מספרי היתר E 94 046 08. עבור נקודת הקצה, בעלי החיים נחשפו CO2 במשך 9 דקות בשני שלבים של 4 ו 5 דקות כל אחד.

1. הכנת הקפסולה

  1. מקל 2 מ"מ EVA עבה קצף וקצף דביק כפול דביק יחד(איור 1A).
  2. בעזרת ניקוב חור עור בקוטר 20 מ"מ, חותכים עיגול מחתיכות הקצף הדביקות. לאחר מכן, באמצעות ניקוב חור בקוטר 12 מ"מ, לחתוך את הפנים כדי ליצור את מעגל קצף כפול(איור 1B).
    הערה: עובי המסגרת של הקפסולה צריך להיות גדול מ-3 מ"מ בגודל כדי להבטיח משטח מספיק לתהליך ההתמהמהות לעור המארח (ראה להלן).
  3. מקלפים את רצועת נייר המגן מהקצף הדביק הכפול(איור 1C)וצרףו פלסטיק עגול שקוף בקוטר 20 מ"מ(איור 1D).
    הערה: אם האכלה זחלים, לא להסיר את רצועת נייר ההגנה מקצף דבק ולעבור ישירות לשלב 2 בפרוטוקול. הדבק את טבעת הקצף הכפולה, כולל רצועת נייר מגן לעכבר.
  4. לעשות ~ 1 ס"מ חריץ בפלסטיק שקוף (איור 1E).
  5. ליצור לפחות 10 חורים קטנים עם סיכה אנטומולוגית(איור 1F)כדי לאפשר אידוי לחות מוגזם במהלך הניסוי.
    הערה: הקפסולה(איור 1G)יש גובה כולל של 4 מ"מ (2 מ"מ EVA-קצף יחד עם 2 מ"מ קצף דבק) והוא יכול לשמש כדי להאכיל נימפות וזחלים של כל מיני קרציות קשה. גודל הקפסולה (איור 1H) בקוטר חיצוני של 20 מ"מ מתאים לרוב הזנים של העכבר, אך ניתן לשנותו במידת הצורך.

2. הכנת העכברים לפני שריצה קרציות

הערה: במחקר זה, 10 - 12 שבועות עכברים ניסיוניים נקבה בת שבועות (זן C57BL/6 ו BALB /cByJ) נשמרו בכלובים סטנדרטיים עם מזון ומים הציעו ליביטום אד (קו ירוק מאוורר מתלים ב -20 הרשות) בסוכנות הצרפתית למזון, בריאות סביבתית ותעסוקתית & בטיחות (ANSES) מתקני בעלי חיים מוכרים ב Maisons-Alfort, צרפת. בעלי חיים היו במעקב פעמיים ביום על ידי טכנאים מנוסים לכל תגובות עור חריגות, בעיות בריאות או סיבוכים.

  1. להניא עכבר עם זופלוראן בתא האינדוקציה. לאחר ההדמה, מניחים את העכבר על משטח המניפולציה וצרףו לקונוס אף לאספקת isoflurane רציפה(איור 2A). נטרו את קצב הנשימה והפחיתו את רמת ההשתסה כדי לוודא שפחות מ-80 נשימות לדקה.
    הערה: לפני המניפולציה, תייג את העכבר הבודד על-ידי קעקוע או שבב זיהוי תדר רדיו במידת הצורך. מומלץ לשמור על העכברים הבודדים בכלובים נפרדים כדי למנוע נזק כמוסה על ידי נשכוך.
  2. לגלח את החלק הקדמי של העכבר מאחורי הכתף להבים עד לאזור ממש מאחורי האוזניים(איור 2A).
    הערה: האזור המגולח צריך להיות גדול יותר משטח הקפסולה.
  3. למרוח דבק לטקס לא מעצבן על כל אתר קצף EVA של הקפסולה המוכנה ולחכות 1 דקות(איור 2B).
  4. הדבק את הקפסולה לעכבר על-ידי לחץ קל של 3 דקות עםהאצבעות (איור 2C), במיוחדבצד שמאל וימין של הקפסולה. הרם מעט את הקפסולה כדי לבדוק ויזואלית את הקשר שלה לעור. אם נמצאו אזורים שאינם מחוברים, החל דבק נוסף באמצעות מרית ולחץ למשך 3 דקות נוספות.

3. שריצה טיק

  1. לשריצה נימפה, להכניס את נימפות בודדות לתוך הקפסולה באמצעות החתך עשה בשלב 1.4(איור 2D).
    הערה: עבור מינים קרציות Ixodes מקסימום של 20 נימפות מומלץ לכל כמוסה אחת.
  2. לסחוט מעט את הקפסולה משני הצדדים כדי לאפשר פלסטיק שקוף להתכופף עבור מבוא קל יותר של נימפות בודדות באמצעות מלחציים פירוקבסדר (איור 2D). לדחוף את הנימפות בודדות דרך החתך בתוך הקפסולה. ברגע שנכנסים, הפעל את המקרנים ב-90° ומשוך את המפסים להפקיד קרציות בתוך הקפסולה.
  3. לשריצה זחלים להסיר את פתק הנייר מהקפסולה המצורפת(איור 2E). מניחים את המזרק, המכיל זחלים(איור 2F),ישירות בתוך הקפסולה ומשקעים על ידי דחיפת בוכנה המזרק. סובבו בעדינות את הבוכנה לכיוון העור כדי להסיר את שאר הזחלים המחוברים.
    הערה: מניחים זחלים במזרק של 1 מ"ל עם קצה חתוכה שמחובר לחתיכת כותנה לפני הניסוי.
  4. לאחר שהזחלים מופקדים על העור, סגור את הכמוסה על ידי חיבור הפלסטיק השקוף(איור 2G).
  5. למרוח את רצועה פלסטיק מגן סביב הכמוסה (איור 2H).
    הערה: רצועה פלסטיק מגן שיפרה מאוד את העמידות של הקפסולה במשך כל תקופת הניסוי (איור 2I,J). ניתן לחבר שתי כמוסות לעכבר אחד בודד(איור 2K). במקרה זה, יש להגדיל לפחות 3 מ"מ בין הכמוסות ואת האזור המגולח יש להגדיל כראוי.
  6. החזר את העכברים לכלוב.

4. אוסף קרציות

  1. להניע את העכבר כמו בשלב 2.1 לעיל.
  2. לעשות חתך בצורת צלב(איור 3A)לפלסטיק עם אזמל.
    הערה: חתך בצורת צלב זה מאפשר איסוף קל של קרציות גדושות או ניתוק של קרציות ההאכלה במידת הצורך.
  3. במידת הצורך, תסתרו מחדש את הכמוסה על-ידי הדבקת מדבקת פלסטיק דביקה לפלסטיק השקוף (קוטר 20 מ"מ, איור 3B).
    הערה: אם רצוי אוסף קרציות בנקודות זמן מרובות, ניתן להשתמש באותו תיקון פלסטיק דביק. אם הפרוטוקול דורש, אפשר גם להמתת תותן לעכבר, להסיר את הקפסולה ולאסוף/לנתק את הקרציות(איור 3C).

5. שחזור העכברים

  1. שמור את העכברים בכלוב לשבוע נוסף.
  2. תן לקפסולה לנתק באופן טבעי.
    הערה: במקרה זה, זה לוקח בערך 8-9 ימים עבור כמוסות ליפול. כאשר הקפסולה מוסרת, חשוב לבדוק אם יש תגובות חריגות על העור של העכברים. במקרה של גירוי להחיל עלם מרכך, אם כי בדרך כלל אין טיפול נדרש. אם הפרוטוקול האתי מאפשר, ניתן לעשות בהןאפשרות לעשות פעולהנוספת בעכברים השוחזרים (איור תלת-מימד) לצורך התפשטות קרציות אחרת או לניסויים שונים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

אנו מציעים את השיטה מפורטת שלב אחר שלב עבור הזנת שלבים קרציות קשיחות לא בוגרות בקפסולות אווה-קצף מוחל על גבו של העכבר(איור 2). פרוטוקול לא מיצי זה מתאים לסוגים שונים של ניסויים כאשר נדרש ניטור ואיסוף מדויקים של קרציות. היתרונות העיקריים של שיטה זו הם הפשטות שלה, חומרים חסכוניים הנגישים בקלות ומשך זמן קצר. בנוסף, הצלחנו לחבר שתי כמוסות לאדם עכבר אחד(איור 2K)המאפשר לנו להאכיל שתי קבוצות שונות של קרציות על אותה חיה. השימוש בדבק לטקס יעיל מאוד, ייבוש מהיר ולא מעצבן מבטיח כי הקפסולה מחוברת היטב בתוך 3 דקות. כמו כן, הקפסולה נשארה מחוברת לפחות שבוע אחד(איור 2J)שהיה מספיק זמן לתהוות של רובמיני הקרציות הקשות הלא בוגרות 21,22,,23,,24. בשל גמישות הקפסולה, מניפולציה נוספת של העכבר לאיסוף דם או למטרות אחרות היה נוח מאוד. הליך זה גם מאפשר התאוששות מלאה של העכברים לאחרהניסויים (איור 3D)המעניק את ההזדמנות לעשות שימוש חוזר בבעלי החיים ולהימנע מהמתת חסד. המערכת שלנו שימשה בהצלחה כדי להאכיל נימפות ריצינוס Ixodes (איור 4). שיעור הצלחה בינוני עד גבוה הושג בזני העכבר C57BL/6 ו-BALB/cByJ, בהתאמה. בשני המקרים כל הנימפות סיימו את ההאכלה בתוך 4 – 5 ימים, בעוד הרוב (~ 75%) ירד ביום הרביעי.

Figure 1
איור 1: הכנת קפסולת קצף EVA. (א)קובץ מצורף של קצף אווה (שחור) וקצף דביק כפול דביק (לבן). (ב)חיתוך 20 מ"מ קוטר החוצה ו 12 מ"מ מעגל פנימי באמצעות ניקובי חור עור. הסרתסרטההגנה על הנייר מהקצף הדביק הכפול. (ד)חיבור של הפלסטיק השקוף לקפסולה. (ה)חותכים את החתך בפלסטיק השקוף עם אזמל. (ו)יצירת חורים באמצעות סיכה אנטומולוגית בפלסטיק. (G-H) מה אתה עושה? ציור סכמטי של החלקים השונים של הכמוסה והממדים. לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.

Figure 2
איור 2: ההחפת הכמוסה לעכברים ושריצה קרציות. (א) החלק הקדמי האחורי של העכבר גילוח.(ב)יישום של דבק לטקס לצד EVA-קצף של הקפסולה. (ג)חיבור של כמוסה לעכבר. (ד)הנחת הנימפה בכמוסה באמצעות החתך בפלסטיק השקוף. (ה)לקלף את קלטת ההגנה מנייר מהקצף הדביק הכפול לפני התפשטות הזחלים. (F)זריקות זחלים בתוך הקפסולה באמצעות מזרק לחתוך. (ז)סגירת הקפסולה עם הפלסטיק השקוף. (H)הנחת רצועה מגן פלסטיק סביב הקפסולה. עכברעםהקפסולה המצורפת -יום אחד. (J)עכבר עם הקפסולה המצורפת -7 היום. (K)עכבר עם שתי כמוסות מחוברות. לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.

Figure 3
איור 3: אוסף תקתוקים ושחזור עכברים. (א)חיתוך חיתוך חיתוך צורה צולבת לאיסוף קרציות. (ב)לאטום מחדש את הקפסולה עם מדבקת פלסטיק דביקה. הסרתקפסולהמעכבר המתת חסד. החצים מציגים את הקרציות המצורפות. (ד)עכבר התאושש לאחר ירד כמוסה. לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.

Figure 4
איור 4: הצלחה ומשך הזנה של נימפות ריצינוס של איקסודות הניזונים מעכברים. (א)אחוז כולל של נימפות גדושות בעכברים C57BL/6 ו BALB /cByJ. (ב)משך ההתלכדות נימפה ב C57BL/6 ועכברי BALB /cByJ. המספרים (n) עבור נימפות שורצות הם 130 ו-25 עבור 15 עכברי C57BL/6 בודדים ו-5 עכברי BALB/cByJ בודדים, בהתאמה. לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

הצעד הקריטי ביותר בפרוטוקול הוא ההתגענות איתנה של הקפסולה לעור העכבר. לכן, דבק לטקס צריך להיות מיושם הומוגנית על כל משטח קצף EVA של הקפסולה ולחץ מתמיד במשך 3 דקות יש להחיל, במיוחד בצד שמאל וימין של הקפסולה. כמו כן, אנו ממליצים על מיקום הקפסולה רחוק ככל האפשר על הגב כדי למנוע את הסרתה על ידי העכבר באמצעות כפות רגליו האחוריות. בניסויים שלנו, רק ההדבקה של קצף EVA ודבק לטקס לעור העכבר אומתה ואנחנו לא יכולים להבטיח את ההישג של אותן תוצאות באמצעות חומרים שונים.

במהלך הניסויים שלנו, ניתוק הקפסולה מהעור בתוך שבעת הימים הראשונים לא נצפתה. אנו ממליצים בחום להגן על המשטח החלקי של הכמוסה באמצעות רצועה פלסטית(איור 2H). אם רצועה מגן פגום במהלך הזנת קרציות, זה יכול להיות מוחלף עם אחד חדש. את הקוטר של הקפסולה ניתן לשנות עבור גדלים שונים של זן העכבר. אנו מציעים לפקח על קרציות ההאכלה לפחות פעמיים ביום ולאסוף קרציות גדושות מיד לאחר הניתוק כדי למנוע את ההישבות שלהם.

מספר הקרציות שורץ מוגבל על ידי קוטר הקפסולה, כמו גם את גודל המארח. בניסויים שלנו השתמשנו ב-20 נימפות או 100 זחלים של אי. עבור קרציות גודל גדול יותר כגון Amblyomma או Hyalomma sp., וכו 'מספר קרציות שורץ יש להפחית כדי למנוע נזק למארחמאיבוד דם 19,,26,27. לכן, טכניקה זו אינה מתאימה לתחזוקה של מושבות גידול קרציות, שם נדרשים מספר רב של קרציות כדי להאכיל. לשם כך, מומלץ למארחים גדולים יותר כמוארנבים או כבשים 20,27 כדי להפחית את הדרישה הכוללת של בעלי חיים.

הטכניקה שלנו מתאימה לסוגים שונים של ניסויים בהם נדרש מודל עכבר, ויש צורך לשמור קרציות באזור סגור לאיסוף קל ו/או ניטור של הפרמטרים הביולוגיים שלהם. בהשוואה לטכניקותאחרות 10,11,12,13,14,15,16,17,18, פרוטוקול פשוט זה מפחית מאוד את זמן ההרדמה הכולל (כ 5 דקות) לכל עכבר ואת ייבוש מהיר, דבק לטקס לא מעצבן אינו גורם נזק לחיה. קפסולת קצף EVA דביקה מאוד מגנה על אזור ההזנה קרציות וממזערת את הסיכון של קרציות אבודות, פגומות או אכלו כפי שדווח במערכות שריצה חינם10,11,12,,13,,15. היתרון הגדול של הטכניקה המוצעת הוא כמוסה שטוחה וחיבור מוצק לאורך זמן שלה לעור המאפשר מניפולציה קלה עם העכבר במידת הצורך. תשומת לב מיוחדת הונו על השימוש בחומרים אלסטיים ולא מעצבנים כדי להפחית את אי הנוחות לבעלי החיים הניסיוניים המאפשר שחזור מלא של מארח העכבר לאחר ניסוי (איור 3D).

השיטה צפויה לשמש למגוון ניסויים בעת לימוד אינטראקציות קרציות-מארח-פתוגן, מניפולציה קרציות של מערכות חיסוניות מארחות, הערכת אמצעים שונים לבקרת קרציות או ביולוגיה קרציות.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

לסופרים אין מה לחשוף.

Acknowledgments

אנו מכירים בסיוע הטכני של המכון הלאומי הלאומי אלן ברניאר למחקר חקלאי (INRAE), וOcéane Le Bidel (ANSES). המחקר נתמך על ידי דים אחד בריאות - Région איל דה פראנס (ראשי תיבות של הפרויקט: NeuroPaTick). העכברים נרכשו על ידי ANSES. ד"ר ג'פרי ל. בלייר מוכר על סקירת הגרסה הקודמת של כתב היד.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
EVA-foam 2 mm thick, (low density) Cosplay Shop EVA-45kg (950/450/2 mm) It can be ordered also via Amazon (ref. no. B07BLMJDXD)
Heat Shrink Tubing Electric Wire Wrap Sleeve 31mm/1.22 inches Amazon B0848S3S6T Different diameters of Heat Shrink Tubing are available via Amazon.
Mice BALB/cByJ Charles River Strain code 627
Mice C57BL/6 Charles River Strain code 664
No-toxic Latex Glue Tear mender Fabric & Leather Adhesive Also available also via Amazon (ref. no. B001RQCTUU)
Punch Tool Hand Art Tool Amazon B07QPWNGBF Saled by amazon as Leather Working Tools 1-25mm Round Steel Leather Craft Cutter Working for Belt Strap
PVC Binding Covers Transparent Amazon B078BNLSNP Any transparent PVC sheet of ticknes between 0.150 mm to 0.180 mm is suitable
Self Adhesive Pad Sponge Double Coated Foam Tape Amazon B07RHDZ35J Saled by amazon as 2 Rolls Double Sided Foam Tape, Super Strong White Mounting Tape Foam
Transparent seal stickers (20 mm diameter circles) Amazon B01DAA6X66

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Sonenshine, D. E., Roe, M. Biology of Ticks. , Oxford University Press. (2014).
  2. Kröber, T., Guerin, P. M. In vitro feeding assays for hard ticks. Trends in Parasitology. 23 (9), 445-449 (2007).
  3. Bonnet, S., et al. Transstadial and transovarial persistence of Babesia divergens DNA in Ixodes ricinus ticks fed on infected blood in a new skin-feeding technique. Parasitology. 134 (2), 197-207 (2007).
  4. Bonnet, S., Liu, X. Laboratory artificial infection of hard ticks: A tool for the analysis of tick-borne pathogen transmission. Acarologia. 52 (4), 453-464 (2012).
  5. Kohls, G. M. Tick rearing methods with special reference to the Rocky Mountain wood tick, Dermacentor andersoni. Culture methods for invertebrate animals. Galtsoff, P. S., Lutz, F. E., Welch, P. S., Needham, J. G. , Comstock Publishing Co. Ithaca, N.Y. 246-256 (1937).
  6. Faccini, J. L. H., Chacon, S. C., Labruna, M. B. Rabbits (Oryctolagus cuniculus) as experimental hosts for Amblyomma dubitatum. Neumann (Acari: Ixodidae). Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia. 58 (6), 1236-1239 (2006).
  7. Chacon, S. C., Freitas, L. H. T., Barbieri, F. S. Relationship between weight and number of engorged Amblyomma cooperi. Nuttal (sic.) and Warburton, 1908 (Acari: Ixodidae) larvae and nymphs and eggs from experimental infestations on domestic rabbit. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology. 13, 6-12 (2004).
  8. Sonenshine, D. E. Maintenance of ticks in the laboratory. Maintenance of Human, Animal, and Plant Pathogen Vectors. Maramorsch, K., Mahmood, F. , Science Publishers Inc. Enfield NH. 57-82 (1999).
  9. Levin, M. L., Schumacher, L. B. M. Manual for maintenance of multi-host ixodid ticks in the laboratory. Experimental and Applied Acarology. 70 (3), 343-367 (2016).
  10. Almazán, C., et al. Identification of protective antigens for the control of Ixodes scapularis infestations using cDNA expression library immunization. Vaccine. 21 (13-14), 1492-1501 (2003).
  11. Banks, C. W., Oliver, J. H., Hopla, C. E., Dotson, E. M. Laboratory life cycle of Ixodes woodi. (Acari:Ixodidae). Journal of Medical Entomology. 35, 177-179 (1998).
  12. Almazán, C., et al. Characterization of three Ixodes scapularis cDNAs protective against tick infestations. Vaccine. 23 (35), 4403-4416 (2005).
  13. Levin, M. L., Ross, D. E. Acquisition of different isolates of Anaplasma phagocytophilum by Ixodes scapularis from a model animal. Vector Borne Zoonotic Diseases. 4 (1), 53-59 (2004).
  14. Heinze, D. M., Wikel, S. K., Thangamani, S., Alarcon-Chaidez, F. J. Transcriptional profiling of the murine cutaneous response during initial and subsequent infestations with Ixodes scapularis nymphs. Parasites & Vectors. 6 (5), 26 (2012).
  15. Nuss, A. B., Mathew, M. G., Gulia-Nuss, M. Rearing, Ixodes scapularis, the Black-legged Tick: Feeding Immature Stages on Mice. Journal of Visualized Experiments. (123), e55286 (2017).
  16. Wada, T., et al. Selective ablation of basophils in mice reveals their nonredundant role in acquired immunity against ticks. Journal of Clinical Investigation. 120 (8), 2867-2875 (2010).
  17. Saito, T. B., Walker, D. H. A Tick Vector Transmission Model of Monocytotropic Ehrlichiosis. The Journal of Infectious Diseases. 212 (6), 968-977 (2015).
  18. Boppana, V. D., Thangamani, S., Alarcon-Chaidez, F. J., Adler, A. J., Wikel, S. K. Blood feeding by the Rocky Mountain spotted fever vector, Dermacentor andersoni, induces interleukin-4 expression by cognate antigen responding CD4+ T cells. Parasites & Vectors. 2 (1), 47 (2009).
  19. Gargili, A., Thangamani, S., Bente, D. Influence of laboratory animal hosts on the life cycle of Hyalomma marginatum and implications for an in vivo transmission model for Crimean-Congo hemorrhagic fever virus. Frontiers in Cell and Infection Microbiology. 20 (3), 39 (2013).
  20. Almazán, C., et al. A Versatile Model of Hard Tick Infestation on Laboratory Rabbits. Journal of Visualized Experiments. (140), e57994 (2018).
  21. Zhijun, Y., et al. The life cycle and biological characteristics of Dermacentor silvarum Olenev (Acari: Ixodidae) under field conditions. Veterinary Parasitology. 168 (3-4), 323-328 (2010).
  22. Ahmed, B. M., Taha, K. M., El Hussein, A. M. Life cycle of Hyalomma anatolicum Koch, 1844 (Acari: Ixodidae) fed on rabbits, sheep and goats. Veterinary Parasitology. 177 (3-4), 353-358 (2011).
  23. Široký, P., Erhart, J., Petrželková, K. J., Kamler, M. Life cycle of tortoise tick Hyalomma aegyptium under laboratory conditions. Experimental and Applied Acarology. 54, 277-284 (2011).
  24. Chen, X., et al. Life cycle of Haemaphysalis doenitzi (Acari: Ixodidae) under laboratory conditions and its phylogeny based on mitochondrial 16S rDNA. Experimental and Applied Acarology. 56, 143-150 (2012).
  25. Jin, S. W., et al. Life Cycle of Dermacentor everestianus Hirst, 1926 (Acari: Ixodidae) under Laboratory Conditions. Korean Journal of Parasitology. 55 (2), 193-196 (2017).
  26. Labruna, M. B., Fugisaki, E. Y., Pinter, A., Duarte, J. M., Szabó, M. J. Life cycle and host specificity of Amblyomma triste (Acari: Ixodidae) under laboratory conditions. Experimental and Applied Acarology. 30 (4), 305-316 (2003).
  27. Breuner, N. E., et al. Failure of the Asian longhorned tick, Haemaphysalis longicornis, to serve as an experimental vector of the Lyme disease spirochete, Borrelia burgdorferi sensu stricto. Ticks Tick Borne Diseases. 11 (1), 101311 (2020).

Tags

החודש ב JoVE גיליון 161 קרציות שריצה האכלה נימפות זחלים עכברים כמוסה דבק התאוששות בעלי חיים
מודל מבוסס קפסולה לשריצה בשלבי קרציות קשות לא בוגרים בעכברי מעבדה
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Mateos-Hernández, L., Rakotobe, … More

Mateos-Hernández, L., Rakotobe, S., Defaye, B., Cabezas-Cruz, A., Šimo, L. A Capsule-Based Model for Immature Hard Tick Stages Infestation on Laboratory Mice. J. Vis. Exp. (161), e61430, doi:10.3791/61430 (2020).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter