Summary
우리는 신경 손상 후 후각 내성 glia (OEG) 신경 재생 능력을 평가하는 체외 모델을 제시한다. 그것은 RGN 축상 및 somatodritic 마커를 분석해서, OEG 단층 및 축 변성의 후속 연구 결과에 축축한 성인 망막 신경절 신경절 뉴런 (RGN)의 공동 문화를 기반으로합니다.
Abstract
후각 내시경 신경교 (OEG) 세포는 후각 점막에서 후각 전구의 후각 신경 층 (ONL)으로 모든 방법을 국소화된다. 성인 생활 내내, 그들은 새로 생성 된 후각 뉴런의 축 하 성장에 대 한 열쇠, 라미나 프로 프리 테리토리에서 ONL. 그들의 프로 재생 속성으로 인해, 이 세포는 척수 또는 시신경 상해 모형에 있는 축축재생을 육성하기 위하여 이용되었습니다.
우리는 신경 손상 후 OEG 신경 재생 용량을 분석하고 측정하기 위해 체외 모델을 제시합니다. 본 모델에서, 가역적으로 불멸의 인간 OEG(ihOEG)는 단층으로 배양되고, 망막은 성인 쥐로부터 추출되고 망막 신경절 뉴런(RGN)은 OEG 단층상에 공동 배양된다. 96h 후, RGNs의 축산 및 소종 절인 마커는 축축및 평균 축산 길이/뉴런을 가진 RG의 수에 의해 정량화된다.
이 프로토콜은 배아 또는 산후 뉴런에 의존하는 다른 체외 분석에 비해 장점이 있으며 성인 조직에서 OEG 신경 재생 특성을 평가합니다. 또한 ihOEG의 신경 재생 잠재력을 평가하는 데 유용할 뿐만 아니라 OEG 또는 다른 신경교 세포의 다른 소스로 확장 될 수 있습니다.
Introduction
성인 중추 신경계 (CNS) 뉴런은 부상이나 질병 후 재생 능력이 제한되어 있습니다. CNS 재생을 촉진하는 일반적인 전략은 줄기 세포, 슈완 세포, 성상세포 또는 후각 내성 신경교(OEG) 세포1,2,3,4,5와같은 축축성장을 유도하는 세포 유형의 부상부위에서이식된다.
OEG는 신경 문장6에서 파생되고 후각 점막과 후각 전구에서 찾습니다. 성인에서, 후각 감각 뉴런은 환경 노출의 결과로 정기적으로 죽고 새로 분화 된 뉴런으로 대체됩니다. OEG는 이러한 새로운 후각 축축을 둘러싸고 안내하여 후각 전구에 들어가 CNS7에서목표를 가진 새로운 시냅스를확립합니다. 이러한 생리적 특성으로 인해 OEG는 척수 나 시신경 손상과 같은 CNS 부상 의 모델에 사용되어 왔으며 신경 생성 및 신경 보호 특성은8,9,10,11로입증되었습니다. 세포외 매트릭스 프로테아제 생산 또는 신경영양 및 축삭 성장 인자12,13,14의분비를 포함한 이러한 세포의 재생 특성에 대한 여러 가지 요인으로 확인되었습니다.
1차 OEG 세포를 확장하는 기술적 한계를 감안할 때, 우리는 이전에 균일 한 OEG의 무제한 공급을 제공하는 가역 불멸의 인간 OEG (ihOEG) 클론 라인을 설립하고 특성화했습니다. 이러한 ihOEG 세포는 부검에서 얻은 후각 전구에서 제조된 1차 배양에서 유래한다. 그(것)들은 텔로머라아제 촉매 서브유닛 (TERT)과 종양균 Bmi-1의 전도에 의해 불멸되고 SV40 바이러스 큰 T 항원15,16,17,18로변형되었다. 이들 ihOEG 세포주 중 2개는 Ts14로, 이는 본래 배양과 Ts12의 재생 능력을 유지하며, 이러한 실험에서 낮은 재생 제어로 사용되는 낮은 재생성라인(18)이다.
신경 손상 후 축 하 재생을 육성 하는 OEG 용량을 평가 하기 위해, 여러 시험 관 모델이 구현 되었습니다. 이러한 모델에서, OEG는 서로 다른 뉴런 기원과 중성염 형성 및 신장의 배양에 적용되며, 이는 글리아교 공동 문화에 대한 반응으로 분석된다. 이러한 뉴런 소스의 예로는 신생아 쥐 피질뉴런(19)이있으며, 피질조직(20)에서쥐 배아 뉴런에 수행된 스크래치 상처, 쥐 망막 이병21,쥐 시상하또는 해마 산후 뉴런22,23,산후 쥐 등쪽 뿌리 신경절뉴런(24), 산후 마우스 코르티코피타피통뉴런(25,인간 NT2 뉴런26)또는 사후 뇌피질 뉴런이 반응성 성상세포 흉터와 같은 배양(27)을 한다.
그러나 이러한 모델에서는 재생 분석이 부상당한 성인 뉴런에 없는 본질적인 가소성을 가진 배아 또는 산후 뉴런에 의존합니다. 이러한 단점을 극복하기 위해, 우리는 원래 Wigley등28,29,30,31에 의해 개발된 것을 기반으로 성인 망막 신경절 뉴런(RGNs)과 OEG 라인의 공동 배양에서 성인 축축산 재생 모델을 제시하고 우리 그룹12,13,14, 15,15, 16,16, 17, 18, 18, 18, 18, 18, 17, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 15, 16, 18,18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 17, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 17, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 18, 17, 18, 18, 18, 18,1 간략하게, 망막 조직은 성인 쥐에서 추출하고 papain로 소화됩니다. 망막 세포 현탁액은 폴리리신 처리 커버립 또는 Ts14 및 Ts12 단층층상에 도금됩니다. 배양은 축산(MAP1B 및 NF-H 단백질)34 및 소마토덴드리틱(MAP2A 및 B)35마커를 고정하기 전에 96시간 동안 유지된다. 축사 재생은 축축을 가진 뉴런의 백분율로 정량화되며, RGNs및 축축 재생 지수의 총 인구에 대하여 뉴런당 평균 축축수 길이로 계산된다. 이 프로토콜은 ihOEG의 신경 재생 잠재력을 평가하는 데 유용할 뿐만 아니라 OEG 또는 다른 신경교 세포의 다른 소스로 확장 될 수 있습니다.
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Protocol
참고: 동물 실험은 국가 및 기관 생물 윤리 위원회에 의해 승인되었습니다.
1. ihOEG (Ts12 및 Ts14) 문화
참고: 이 절차는 조직 배양 생물 안전 캐비닛의 멸균 조건하에서 수행됩니다.
- 표 1에제공된 50mL ME10 OEG 배양 배지를 준비한다.
- 표 1에제공된 대로 DMEM/F12-FBS 5mL을 15mL 원문 튜브에 준비합니다.
- 깨끗한 수조에서 37°C에서 두 미디어를 15분 동안 데우습니다.
- 깨끗한 수조에서 Ts12 및 Ts14 세포바이알을 37°C에서 해동합니다.
- 2단계에서 제조된 DMEM/F12-FBS 배양 배지에 세포를 다시 일시 중지하고 추가합니다.
- 200 x g에서5 분 동안 원심 분리기.
- 상체를 갈망합니다.
- ME10 배지 의 500 μL을 추가하고 펠릿을 다시 중단합니다.
- ME10의 3mL로 p60 세포 배양 접시를 준비하고 셀룰러 서스펜션을 드롭 와이즈로 추가합니다.
- 플레이트 에 걸쳐 균일하게 세포를 배포하려면 이동합니다.
- 배양 세포는 37°C에서 5% CO2로한다.
참고: 합류에 도달한 후, 적어도 다른 구절은 공동 문화를 위한 세포를 최적화하기 위하여 행해져야 합니다. 90%의 합류가 공동 문화를 위해 커버립에 시드하기 전에 필요합니다. Confluent p-60은 Ts14의 경우 7 x 105의 평균 셀 수와 Ts12 세포주에 대해 2.5 x 106의 평균 셀 번호를 가지고있다. Ts12 및 Ts14 세포주마다 2-3일마다 통과되어야 합니다.
2. 분석용 ihOEG(Ts12 및 Ts14) 준비
참고: 이 단계는 RGN 해부 및 공동 문화 전에 24h를 수행해야 합니다.
- 12mm Ø 커버립을 10 μg/mL 폴리 L-리신(PLL)으로 1시간 동안 처리합니다.
참고: 커버립은 PLL 솔루션에서 하룻밤 동안 방치할 수 있습니다. - 커버립을 1x 인산완충식염(PBS)으로 세 번 씻습니다.
- p60 세포 배양 접시로부터 Ts12 및 Ts14 ihOEG 세포를 분리한다.
- DMEM/F12-FBS 배양 배지(표1)의4mL을 15mL 원문 튜브에 추가합니다. 깨끗한 수조에서 37 °C에서 따뜻하게합니다.
- 접시에서 배지를 제거하고 1x PBS-EDTA1mL로 세포를 세척합니다.
- OEG 세포에 트립신-EDTA 1mL을 추가하고 37°C에서 3-5분, 5% CO2에서3-5분 동안배양한다.
- p1000 파이펫으로 세포를 수집하고 3.1 단계에서 준비된 매체로 전송합니다.
- 200 x g에서5 분 동안 원심 분리기.
- 상체를 갈망합니다.
- ME10 배지 1mL을 추가하고 펠릿을 다시 중단합니다.
- 혈종계에서 셀 수를 계산합니다.
- 종자 80,000 Ts14 세포 또는 100,000 Ts12 세포 /잘 ME10 배지의 500 μL에서 24 웰 플레이트에서 커버립에.
- 배양 세포는 37°C에서 5%CO2,24h.
3. 망막 조직 해부
참고: 2개월 된 수컷 위스타 쥐는 RGN 소스로 사용됩니다. 24웰 세포 접시의 20 개의 우물에 대한 두 개의 망막 (한 마리의 쥐). 사용하기 전에 자동 클클레이브 수술 재료. 파팡 해리 키트는 상업적으로 구입(재료의 표). 재구성에 대한 공급자의 지침을 따릅니다. 5mM 스톡에서 D,L-2-아미노-5-인포노발레산(APV)을 재구성하고 알리쿼트준비한다.
- 분석 당일, 다음 미디어를 준비한다.
- 차가운 EBSS (파아펜 해리 키트의 바이알 1)의 5mL와 p60 세포 배양 접시를 준비합니다.
- p60 세포 배양 접시를 파팔 해리 키트의 재구성된 바이알 2(papain)와 50 μL의 APV로 준비한다. 그런 다음 250 μL의 상반신 3(DNase plus 5 μL)를 추가합니다.
- 멸균 튜브 믹스 2.7 mL의 유리병 1과 300 μL 의 유리병 4 (알부민-ovomucoid 프로테아제 억제제). 바이알 3(DNase)의 150 μL과 30 μL의 APV를 추가합니다.
- 표 1에제공된 바와 같이 신경분사-B27 배지(NB-B27)의 20mL를 준비한다.
- CO2로질식하여 쥐를 희생하십시오.
- 기요틴으로 참수하여 머리를 제거하십시오. 100mm 페트리 접시에 넣고 머리에 에탄올 70%로 스프레이한 후 라미나르 플로우 후드에 넣습니다.
- 쥐의 수염을 가위로 잘라 서 눈 조작을 방해하지 않도록 합니다.
- 메스로 눈을 가로질러 절개를 할 수 있을 만큼 안구를 꺼내서 포셉으로 시신경을 잡아냅니다.
- 렌즈와 유리체 유머를 제거하고 망막 (오렌지 와 같은 조직)을 꺼내고 눈의 나머지 층은 내부에 머물러 있습니다 (안료 상피 층을 포함).
- 3.1.1 단계에서 제조된 p60 세포 배양 접시에 망막을 놓습니다.
- 3.1.2 단계에서 제조된 p60 세포 배양 접시에 망막을 옮기고 메스로 메스를 대략 적인 크기의 작은 조각으로 자르고 1mm.
- 15mL 플라스틱 튜브로 옮김합니다.
- 조직을 30분 동안 배양하고, 가습된 인큐베이터에서 5% CO2미만의 37°C에서, 10분마다 교반한다.
- 유리 파스퇴르 파이펫으로 위아래로 피펫을 하여 세포 덩어리를 분리합니다.
- 5 분 동안 200 x g에서 세포 현탁액을 원심 분리합니다.
- 수퍼나탄을 버리고 파아픔을 비활성화하고, 3.1.3 단계에서 준비된 용액의 세포 펠릿을 재보중단한다. (2 눈에 1.5 mL).
- 이 셀 서스펜션을 재구성된 바이알 4의 5mL로 조심스럽게 파이프화합니다.
- 원심 분리기 200 x g에서 5 분 동안.
- 원심분리하는 동안, OEG 24 웰 셀 플레이트(이전에 2단계에서 제조됨)에서 ME-10 배지를 완전히 제거하고 잘 당 NB-B27 배지의 500 μL로 대체한다.
- 상체를 버리고 NB-B27 배지의 2mL에서 세포를 다시 중단한다.
- m24 플레이트의 웰당 망막 셀 서스펜션 100 μL을 PLL 처리 또는 OEG 단층 커버립에 플레이트.
- NB-B27 배지에서 96h에 대해 5%CO2로 37°C에서 배양을 유지한다.
4. 면역 염색
- 96h 후, 배양 배지(600 μL)(PFA 최종 농도 2%)에 1x PBS에서 4%의 파라포름데히드(PFA)의 동일한 부피를 첨가하여 10분 동안 세포를 고정한다.
- 24-멀티웰 플레이트에서 미디어와 PFA를 제거하고 다시 한 번 1배 PBS에 4% 파라포름알데히드(PFA)의 500 μL을 추가합니다. 10 분 동안 인큐베이션하십시오.
- 픽서를 버리고 1x PBS로 3번 5분 동안 세척하십시오.
- PBS(PBS-TS)에서 0.1% 트리톤 X-100/1% FBS를 30~40분 동안 차단합니다.
- 다음과 같이 PBS-TS 완충제에서 1차 항체를 준비하십시오: SMI31 (MAP1B 및 NF-H 단백질에 대하여) 단클론 항체 (1:500). 514 (MAP2A 및 B 단백질인식) 토끼 폴리클론 항혈제 (1:400).
- 1 차적인 항체를 균원에 추가하고 4°C에서 하룻밤 동안 배양합니다.
- 다음날, 항체를 버리고 커버립을 1x PBS로 3번, 5분 동안 씻는다.
- 다음과 같이 PBS-TS 버퍼에서 이차 항체를 준비하십시오: SMI-31의 경우, 항 마우스 알렉사 플루어 488 (1:500). 514, 안티 토끼 알렉사-594 (1:500).
- 1 h, RT에서, 어둠 속에서 대응하는 형광 이차 항체를 가진 세포를 배양한다.
- 커버립을 1x PBS로 3회, 어둠 속에서 5분 동안 씻습니다.
- 마지막으로, 장착 매체(재료의 표)와커버립을 마운트하고 4 ° C에서 유지합니다.
참고: 필요할 때마다 DAPI(4,6-디아미드노-2-페닐린돌)를 가진 형광 핵 염색이 수행될 수 있다. 장착하기 전에, DAPI (1x PBS에서 10 μg /mL)와 어둠 속에서 10 분 동안 세포를 배양한다. 커버립을 1x PBS로 3번 세척하고 마지막으로 마운팅 매체로 커버립을 장착합니다.
5. 축축한 재생 정량화
참고: 샘플은 상피 성화 현미경의 40배 목표에 따라 정량화됩니다. 최소 30장의 사진을 무작위 필드에서 촬영해야 하며, 적어도 200개의 뉴런이 있는 각 치료에 대해 정량화되어야 합니다. 각 실험은 최소 3회 반복되어야 합니다.
- RGNs의 총 인구에 비해 축축 (SMI31 양성 중성염)을 가진 뉴런의 백분율을 정량화 (MAP2A/B 514 뉴런 바디및 원원수의 양성 면역 염색으로 확인).
- 축 축 재생 지수 또는 평균 축 산 길이(μm/뉴런)를 정량화합니다. 이 매개변수는 모든 확인된 축축의 길이(μm)의 합으로 정의되며, 각축을 제시했는지 여부에 관계없이 계산된 뉴런의 총 수로 나뉜다. 축 사 길이 이미지 소프트웨어 ImageJ (NIH-미국)의 플러그인 NeuronJ를 사용 하 여 결정 됩니다.
- 적절한 소프트웨어를 사용하여 평균, 표준 편차 및 통계적 유의를 계산합니다.
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Representative Results
이 프로토콜에서, 우리는 신경 손상 후 OEG 신경 재생 용량을 분석하는 체외 모델을 제시한다. 도 1에도시된 바와 같이, OEG 소스는 부검15,17,18에서얻은 후각 전구로부터 제조된 1차 배양으로부터 유래한 가역불멸인간 OEG 클론 세포주-Ts12-이다. 망막 조직은 성인 쥐로부터 추출되고, 소화되고, 망막 신경절 뉴런(RGN) 현탁액은 PLL 처리커버립 또는 ihOEG 단층층, Ts14 또는 Ts12에 도금된다. 축 산 및 소종 호르몬 성 마커는 면역 형광및 축산 재생에 의해 정량화된다.
Ts14 OEG 정체성은 S100β(도 2A)및 바이멘틴(도2B)과같은 천신하는 glia(도2)로표현되는 것으로 기재된 마커로 면역스테인링에 의해 평가된다. GFAP 발현은 또한 성상세포오염(도 2C)을폐기하도록 분석하였다. 표시된 바와 같이, Ts14는 S100 β 및 vimentin을 표현했지만 GFAP는 표현하지 않았습니다.
축산 재생 분석에서, Ts14 재생 용량은 PLL 기판을 음의 대조군으로 사용하여 RGN-OEG 공동배양에서 Ts12와 비교된다(도3). 축축을 가진 세포의 백분율뿐만 아니라 재생된 축축의 평균 길이는 Ts14 단층상에 배양된 뉴런에서 현저히 높았으며, Ts12 세포 또는 PLL(그림3D,E)에도금된 뉴런과 비교하였다. 대표적인 이미지는 PLL 또는 Ts12세포(그림 3A, B)를통해 축축을 재생하기 위한 RGN 용량의 부족을 나타내며 Ts14는 RGN(3C)에서 축축의 성장을 자극합니다.
도 1: 후각을 가진 쥐 망막 신경절 뉴런의 다이어그램은 성인 축축산 재생의 모델로서, 심교를 천신하는 glia 세포 공동 배양. 불멸의 인간 OEG (ihOEG) 클로날 세포주 -Ts12 및 Ts14- 후각 전구에서 1 차 배양에서 유래. 성인 쥐의 망막 신경절 뉴런은 PLL 처리 커버립 (네거티브 컨트롤) 또는 Ts14 또는 Ts12 단층층으로 도금됩니다. 배양은 고정되기 전에 96h동안 유지되고 축산 및 소마토덴디트 마커는 면역 형광에 의해 분석된다. 축 하 와 축 하 길이/뉴런을 가진 뉴런의 백분율은 분석 RGN 축 상 재생에 정량화된다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: ihOEG 세포주 Ts14의 ID. 배양시 Ts14의 면역형광 이미지, 안티 S100 β (패널 A, 녹색) 및 vimentin (패널 B, 빨간색)로 표시. GFAP 발현(패널 C, 레드)도 성상세포 오염을 폐기하는 것으로 분석되었다. 핵은 DAPI (파란색)로 염색됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: 성인 망막 신경절 뉴런 (RGNs)와 OEG 라인의 공동 배양에서 축 변 재생을위한 분석. (A-C) 514개의 항체를 가진 소마토덴탈성 라벨링을 보여주는 면역 형광 심상은, microtubule 관련 단백질 MAP2A및 B를, 적색으로 인식하고, MAP1B 및 NF-H 단백질에 대하여 녹색에 있는 축산 특정 SMI31 항체를 가진. 녹색 화살표는 RGN 축축 (SMI31 양성 : 녹색) 및 노란색 화살표는 신경 몸과 원더라이트를 나타냅니다 (514 긍정적 인 : 빨간색과 노란색). (D,E) 그래프는 축축과 축산 재생 지수를 나타내는 뉴런의 백분율의 평균 및 표준 편차를 나타내며, 뉴런당 축축의 평균 축축 길이(μm)를 반영하는 파라미터입니다. 무작위 필드에서 최소 30장의 사진(40x)을 촬영하고 각 셀 샘플에 대해 정량화하였다. 실험은 3개의 다른 쥐 (N = 3), 각 실험 조건에 대한 중복 (각 glia 인구 시험)에 대한 중복으로 양눈에서 풀린 망막 조직에서 triplicate에서 수행되었습니다. 별표는 통계적 유의를 나타냅니다: *p< 0.05, **p< 0.01, ***p< 0.001, NS: 비유의(Ts14 대 Ts12, Ts14 vs PLL, Ts12 대 PLL에 대해 정량화된 매개변수 간의 ANOVA 및 포스트 호크 투키 테스트 비교). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
CNS 상해 부위에서 OEG 이식은 구성적인 프로 신경 재생특성7,8,9로인해 CNS 부상에 대한 유망한 치료법으로 간주됩니다. 그러나, 조직원에 따라 후각점막(OM-OEG)과 후각전(OB-OEG)-또는 기증자의 나이에 따라, 이러한 용량26,31,33,36에상당한 변화가 존재한다. 따라서 생체 내 연구를 시작하기 전에 주어진 OEG 샘플의 신경 재생 용량을 분석하기 위해 시험관 모델에서 쉽고 재현 가능한 것이 중요합니다. 이 프로토콜에서, 성인 쥐의 축축화 된 RGN은 분석하기 위하여 OEG의 단층상에 교배됩니다. 면역 형광에 의한 RGN 축축및 소종 절인 마커의 후속 분석은 RGN 축축변 재생을 평가하기 위해 수행됩니다.
분석의 초기 난이도는 OEG의 소스입니다. 이 작품에서, 우리는 이전에 우리의 그룹15,16,17,18에의해 설립 및 특징화 된 가역 불멸의 인간 OEG (ihOEG) 복제 라인을 사용하여 균일 한 OEG의 무제한 공급을 제공합니다. 이들 ihOEG 세포주 중 2개는 Ts14로, 본래 배양과 Ts12의 재생 능력을 유지하며, 이러한 실험에서 낮은 재생 제어로 사용되는 낮은 재생 성라인(18 그럼에도 불구하고) 인간 1차 OEG 세포를 확장하는 기술적 한계가 존재하지만, 또한 오베르의 오베르시코시픽 생체공학으로부터 얻을 수 있다.
단층 OEG 배양의 준비는 너무 많은 세포가 접시에서 분리하는 공동 문화를 일으키는 원인이 될 수 있기 때문에 중요한 절차입니다. 따라서, 분석에 대한 OEG 준비 에 앞서, 사용자는 자신의 크기 및 분할 속도에 따라 도금될 세포의 최적 수를 결정하는 것이 좋습니다.
또 다른 중요한 문제는 망막 해부 후 망막 조직 해리입니다. 그것은 해리 믹스에 잠복 다음, 조직 조각을 깰 필요가있다. 너무 격렬하게 수행하면 세포가 파괴되지만 너무 약하게 하면 조직 조각이 그대로 유지됩니다. 균일한 세포 현탁액을 얻기 위해, 우리는 버블링을 피하면서, 중간 직경의 끝으로, 파스퇴르 파이펫을 10-15 번 채우고 비우는 것이 좋습니다. 넓은 팁이 있는 파스퇴르 파이펫은 분젠 버너를 사용하여 좁힐 수 있습니다.
성인 뉴런의 축축재생을 촉진하기 위해 상이한 신경교 집단의 용량을 평가하기 위해, 우리는 96 h가 목표에 가장 적합한 시간 간격이라고 결정했습니다: 1) OEG 단층층을 방해하지 않고 살아있는 문화를 유지하는 가장 긴 시간입니다; 및 2) 뉴런이 축축을 충분히 길게 성장하여 다른 OEG 집단 또는 기타 비재생 세포의 재생능력(즉, 섬유아세포12,13,14,15,16,17,18, 32,33)의차이를 드러내는 데 필요한 시간입니다. 그것은 확실히 재생 과정의 시간 과정을 결정 하는 재미 있을 것 이다, 그것은 다른 신경 교 인구의 차동 재생 속성에 대 한 정보를 제공할 수 있습니다., 공동 문화의 짧은 시간에. 우리의 손에, 재생 신경교에 대 한, 사이 시간 과정 72-96 h 모든 세포주 대 한 매우 유사, 축 은 72 h에서 짧은 하지만 (게시 되지 않은 데이터). 또한, 96h의 공동 배양, 성인 축축산 재생의 OEG 의존적 메커니즘을 연구할 수 있는 허가12,14.
축 상 재생 정량화 하는 동안, 커버 슬립의 다른 무작위 영역에서 400 증강 (40 x 목표)에서 최소 30 사진을 찍는 것이 중요 하지만 촬영 된 뉴런의 완전한 축 하에 따라. 따라서 실험자는 실제 축축 길이를 측정하기 위해 선택한 영역에서 직렬 사진을 찍어야 합니다.
다른 체외 접근법도 OEG 재생 기능을 평가하기 위해 개발되었습니다. 이들 모델에서, OEG는 상이한 뉴런 기원의 배양에 적용되며, 신경교 균양에 대응하여, 신경질 형성 및 신장은19,20,21,22, 23,24, 25,26,27을분석한다. 그러나, 재생 분석 배아 또는 산후 뉴런에 의존, 부상 성인 뉴런에서 결석 본질적인 가소성. 성인 망막 신경절 뉴런 (RGNs)와 OEG 라인의 공동 재배에서 성인 축소 재생으로 구성된이 모델은이 단점을 극복한다. 또한, 우리는 성인 망막을 해부하고, 우리는 시신경과 축축을 절단하기 때문에 해부 과정에서 철회, 우리는 myelin의 깨끗한 신경 체를 얻을, 공동 문화를 수행. 이것은 myelin이 공동 문화에 대한 깨끗한 뉴런을 얻기 위해 해부와 매우 많이 방해 할 수있는 성인 CNS의 다른 부분과의 차이입니다.
Wigley 등28,29,30,31에의해 원래 개발 된 것을 기반으로, 우리는 프로토콜의 다음과 같은 개선을 강조한다. 첫째, OEG-RGN 공동배양 매체로서 B27로 보충된 신경물질 배지의 사용은 신경 세포의 성장을 허용하고 실험의 재현성에 긍정적으로 영향을 미친다. 둘째, 축산구의 특정 마커를 이용하여 축축재생을 특성화하고 정량화하는 단계; 셋째, OEG의 축축 성장 재생 잠재력을 평가하는 추가 직접 매개 변수, 평균 축사 길이/뉴런을 사용합니다.
요약하자면, 우리는 이것이 ihOEG의 신경 재생 잠재력을 평가하는 데 유용할뿐만 아니라 OEG 또는 다른 신경교 세포의 다른 소스로 확장 될 수 있기 때문에 간단하고 재현 가능한 시간 절약 및 중간 비용 분석이라고 생각합니다. 더욱이, 그것은 OEG 또는 신경교 샘플의 신경 재생 잠재력의 개념의 귀중한 증거로 사용될 수 있습니다., 생체 내 또는 임상 연구에서 번역 하기 전에.
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Disclosures
저자는 공개 할 것이 없습니다.
Acknowledgments
이 작품은 프로젝트 SAF2017-82736-C2-1-R 장관 드 시엔시아 e 이노바시온에서 MTM-F, Fundación Universidad Francisco de Vitoria에서 JS에 의해 재정적으로 지원되었다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| antibody 514 | Reference 34 | Rabbit polyclonal antiserum, which recognizes MAP2A and B. | |
| antibody SMI-31 | BioLegend | 801601 | Monoclonal antibody against MAP1B and NF-H proteins |
| anti-mouse Alexa Fluor 488 antibody | ThermoFisher | A-21202 | |
| anti-rabbit Alexa Fluor 594 antibody | ThermoFisher | A-21207 | |
| B-27 Supplement | Gibco | 17504044 | |
| D,L-2-amino-5-phosphonovaleric acid | Sigma | 283967 | NMDA receptor inhibitor |
| DAPI | Sigma | D9542 | Nuclei fluorescent stain |
| DMEM-F12 | Gibco | 11320033 | Cell culture medium |
| FBS | Gibco | 11573397 | Fetal bovine serum |
| FBS-Hyclone | Fisher Scientific | 16291082 | Fetal bovine serum |
| Fluoromount | Southern Biotech | 0100-01 | Mounting medium |
| ImageJ | National Institutes of Health (NIH-USA) | Image software | |
| L-Glutamine | Lonza | BE17-605F | |
| Neurobasal Medium | Gibco | 21103049 | Neuronal cells culture medium |
| Papain Dissociation System | Worthington Biochemical Corporation | LK003150 | For use in neural cell isolation |
| PBS | Home made | ||
| PBS-EDTA | Lonza | H3BE02-017F | |
| Penicillin/Streptomycin/Amphotericin B | Lonza | 17-745E | Bacteriostatic and bactericidal |
| Pituitary extract | Gibco | 13028014 | Bovine pituitary extract |
| Poly -L- lysine (PLL) | Sigma | A-003-M |
References
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