Summary
该协议描述了创建具有两个具有不同血流动力学（残端和分叉星座）的弹性蛋白酶消化动脉瘤的兔子模型的步骤。这允许在单个动物内具有不同血管结构和血流动力学状况的动脉瘤中测试新型血管内装置。
Abstract
具有接近人颅内动脉瘤的血流动力学、形态学和组织学特征的临床前动物模型在理解病理生理过程以及开发和测试新的治疗策略方面起着关键作用。这项研究旨在描述一种新的兔动脉瘤模型，该模型允许在同一动物内创建两个具有不同血流动力学条件的弹性蛋白酶消化的囊状动脉瘤。
五只平均体重为4.0（±0.3）公斤，平均年龄为25（±5）周的雌性新西兰白兔接受了显微外科残端和分叉动脉瘤的形成。一个动脉瘤（残端）是由右颈总动脉（CCA）暴露在其起源头躯干造成的。在CCA原点应用了一个临时夹子，另一个在2厘米以上。用局部注射100U弹性蛋白酶处理该段20分钟。通过将弹性蛋白酶处理的动脉袋缝合到右侧CCA与左侧CCA的端对侧吻合口中，产生了第二个动脉瘤（分叉）。创建后立即通过荧光血管造影控制通畅性。
平均手术时间为221分钟。在同一只动物中产生两个动脉瘤在所有兔子中都是成功的，没有并发症。除一个分叉动脉瘤外，所有动脉瘤在手术后立即未愈合，由于弹性蛋白酶孵育和立即腔内血栓形成，该动脉瘤显示出极端的组织反应。在手术和长达一个月的随访期间未观察到死亡。发病率仅限于一过性前庭综合征（一只兔子），该综合征在一天内自发恢复。
这里首次证明了创建具有残端和分叉血流动力学特征以及高度退化壁条件的双动脉瘤兔模型的可行性。该模型允许在不同流动条件下基于动脉瘤生物学研究自然病程和潜在的治疗策略。
Introduction
颅内动脉瘤是一种严重的疾病，破裂后死亡率达到50%，10-20%的患者长期残疾1。在过去的十年中，血管内治疗方案发展迅速，但与此同时，复发率也在增加，卷曲后动脉瘤再通率高达33% 2，3。为了更好地了解动脉瘤闭塞和再通的潜在病理生理学，以及开发和测试新的血管内装置，目前需要可靠的临床前模型，其血流动力学、形态学和组织学特征与人颅内动脉瘤相似4，5，6.截至今天，还没有明确的模型作为临床前试验的标准，研究人员可以使用大量的物种和技术7，8。
然而，兔子是一个特别感兴趣的物种，因为它的颈部动脉和人类脑血管之间的大小和血流动力学相似性，以及其相似的凝血和溶栓特征。颈总动脉 （CCA） 上具有弹性蛋白酶消化囊状动脉瘤的几种模型在流动条件、几何特征和壁特征方面显示出与人颅内动脉瘤的定性和定量相似性9，10，11，12。本研究旨在描述一种在同一动物中同时使用残肢和分叉弹性蛋白酶消化动脉瘤创建新的兔动脉瘤模型的技术。手术技术的灵感来自Hoh等人13和Wanderer等人14的技术，略有修改，以提供良好的标准化和可重复性，并确保低死亡率和发病率。
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Protocol
注意：该实验已获得瑞士伯尔尼州地方动物护理委员会的批准（申请号BE108/16），所有动物护理和程序均按照机构指南和3R原则15，16进行。数据根据 REACH 指南报告。围手术期管理由董事会认证的兽医麻醉师进行。在这项研究中，雌性新西兰白兔，平均体重为4.0（±0.3）公斤，平均年龄为25（±5）周，被饲养在22-24°C的室温下，进行12小时的光照/黑暗循环，自由获取水，颗粒和干草。
1.术前阶段和麻醉
- 按照兽医麻醉师协会和欧美兽医麻醉和镇痛学院的建议进行临床检查，通过称量每只动物、评估粘膜、记录毛细血管再充盈时间和脉搏质量、进行肺和心脏听诊以及腹部触诊来确认兔子是健康的。
- 根据临床发现，将美国麻醉师协会 （ASA） 分类归因于每只兔17。仅对具有ASA I评分的动物进行手术。
- 剃除双耳外耳，并在耳动脉和静脉上涂抹丙胺卡因-利多卡因乳膏。联合使用氯胺酮 20 mg/kg、右美托咪定 0.1 mg/kg 和 0.3 mg/kg 皮下注射 （SC） 美沙酮，实现深度镇静。让动物不受干扰15分钟。通过松开的面罩给予补充氧合 （3 L/min），并用脉搏血氧仪监测。
- 在左耳中央动脉和耳静脉中放置 22 G 套管。用异丙酚1-2mg / kg静脉注射（IV）诱导全身麻醉，直到效果（吞咽反射丧失）。通过硅胶管（内径 3 mm）进行气管插管。
- 剃光前额以放置小儿脑电图 （EEG） 传感器。剃除手术区域，并皮内注射0.75%盐酸罗哌卡因。
- 将兔子放在背卧的手术台上，安装全面监测，并将气管插管连接到低阻力小儿环系统。通过在氧气中施用异氟醚来维持麻醉，目标是最大潮气末 （Et） 浓度为 1.3 %。
- 通过静脉通路连续输注 5 mL/kg/h 的乳酸林格。通过脉搏血氧饱和度、多普勒和有创血压、3 导联心电图、脑电图、直肠温度以及吸入和呼出的气体，确保在拔管前进行临床和器械监测。
- 用聚维酮碘从胸骨到下颌角消毒手术区域，并应用无菌悬垂。在手术过程中，用利多卡因（50μg/kg/min的恒速输注（CRI））和芬太尼（CRI为3-10μg/kg/h）提供镇痛。进行自主通气或辅助通气。允许允许性高碳酸血症。
- 在手术期间进行至少一次动脉血气分析。在低血压（平均动脉压低于60mmHg）的情况下，用去甲肾上腺素治疗，滴定直至见效。使用加热垫或加热强制空气加热系统以防止体温过低（目标：直肠温度 37.5-38.5 °C）。
注意：由于在左耳动脉测量侵入性动脉血压，因此左侧CCA的夹闭将停止血流并抑制曲线。然后必须用多普勒技术测量血压，直到血管重新打开。
2. 手术
- 方法
- 用手术刀从舌骨到胸骨尾部 1.5 cm 处做一个正中皮肤切口。在进行细致止血的同时，从内侧切口准备皮下和脂肪组织。
- 将胸头肌从粘附结缔组织中游离，局部应用利多卡因（2-4 mg/kg，首选利多卡因 1%）以避免肌阵挛。暴露胸头肌内侧的右侧CCA，并用湿拭子保持湿润。
- 现在准备胸头肌的外侧和近端部分，并用血管环将其内侧缩回以暴露 CCA。识别颈外静脉并用湿的微型拭子保护它。
- 沿着近端 CCA 仔细解剖结缔组织，直到头臂干分叉以暴露动脉。在存在来自动脉的小分支的情况下，用烧灼器凝固它们。
注意：注意避免任何神经损伤。
- 残端动脉瘤的形成和分叉动脉瘤的组织采集
- 在夹住右侧 CCA 之前，测量抗凝血时间 （ACT），并通过耳静脉全身给予肝素钠 （80 EI/kg）（由麻醉团队进行），以避免血栓栓塞事件。
- 现在应用2个临时夹子：第一个在CCA的原点，第二个在距离CCA远端2厘米处（图1A）。将橡胶垫放在容器下，用盐酸罂粟碱（40 mg/mL;1：1 溶解在 0.9% 盐水中）冲洗以舒张血管。
- 使用显微剪刀小心地取出外膜。使用22 G IV导管在远端夹下方进行动脉切开术，并将导管尾部插入近端夹（图1A，B）。
- 用肝素化的NaCl（500U / 100mL在0.9%盐水中）腔内冲洗节段，直到没有可见的血液，最后用结扎器固定导管（4-0）。现在，通过导管，将0.1-0.2mL弹性蛋白酶（100IU先前溶解在5mLTris缓冲液中）注入动脉段并孵育20分钟（图1B）。
- 从左侧的解剖开始，露出左侧的CCA（见第2.3节）。用弹性蛋白酶孵育20分钟后，清除弹性蛋白酶溶液，并更换注射器用0.9%NaCl冲洗动脉段约10次。
- 应用2个结扎（6-0）：第一个在近端夹子远端5毫米处，第二个在动脉切开术下近端（图1C）。在第一个结扎上方~3 mm处切开血管，在第二个结扎线和远端夹之间再切一次。将该自体移植物保持在肝素化溶液（500U / 100mL在0.9%盐水中）中，直到产生分叉动脉瘤（图1D）。最后，小心地打开第一个近端夹，并测量动脉瘤（长度、宽度和深度）。
- 分叉动脉瘤的形成
- 通过内侧解剖胸头肌以暴露 ~2 cm 的左侧 CCA 来准备左侧。将利多卡因局部涂抹在肌肉上以避免肌阵挛。
- 用纱布球和一根手套的小拭子覆盖颈动脉。涂抹一些罂粟碱。局部盐酸（40毫克/毫升;1：1溶于0.9%盐水中）。在显微镜下继续工作：准备动脉瘤袋并去除外膜。测量动脉瘤袋（长度，宽度，深度）。
- 用肝素化的NaCl冲洗右侧CCA的开放部分，如果需要，更换夹子使其具有~1厘米，以便自由操作缝合线。小心地取出外膜，并在右侧CCA的残端横向做一个~2毫米的纵向切口。
- 现在在左侧CCA上应用两个临时夹子以分隔~1厘米的片段并去除中间的外膜。用 23 G 针头进行动脉切开术。用肝素化NaCl（500U / 100mL在0.9%盐水中）冲洗段。使用显微剪刀将动脉切开术扩大到~4-5毫米，以缝合正确的CCA和动脉瘤袋（图1E）。在整个缝合过程中灌溉容器，并用湿微交换保护它们。
- 用9-0不可吸收的缝合线进行吻合。
- 用5针缝合右颈动脉钝的近端后壁，从左侧CCA动脉切开术的近端边缘开始。然后，用 4-5 针缝合动脉瘤袋的背面，从左侧 CCA 上动脉切开术的远端边缘开始。
- 继续在鱼口切口水平处的远端背部缝合动脉瘤移植物的垂直背面，缝合3针。用3针缝合鱼嘴切口的正面，从向上开始向下移动。
- 完成左CCA和动脉瘤移植物正面之间的前缝合线和右CCA之间的缝合~6针。在完成吻合术之前，用肝素化的0.9%盐水溶液冲洗血管腔内。
- 在取下钳夹之前，再次测量抗凝血时间（ACT），并全身给予适剂量的肝素（目标：基线ACT的2-3倍）。
- 取下右侧CCA上的夹子，同时用微型拭子对吻合口施加一些压力以进行止血。然后，继续从左侧 CCA 中移除远端夹。如果没有大出血，继续取出左侧CCA上的近端夹，以使血液流动。如果吻合口出血，用纱布球和拭子施加一些压力;等待几分钟。如果仍然存在，请更换夹子并重新缝合。
注意：失血量超过 20-30 mL 会危及恢复阶段。
- 通畅控制和记录
- 打开所有容器后，以照片方式记录结果并对其进行测量（图1F 和 图2A，B）。
- 通过侵入性动脉血压曲线（在耳动脉（颈外动脉的直接分支）处测量）确认远端 CCA 血流的恢复，这也应恢复正常。
- 通过使用 2 个带通滤光片、摄像机和自行车聚光灯施用 1 mL 荧光素 IV 进行荧光血管造影。有关整个过程的说明，请参阅以前的出版物18，19。
- 关闭
- 重新调整吻合口上的脂肪垫，并用 4-0 可吸收缝合线缝合。最后用4-0可吸收缝合线缝合皮下和皮肤单针。
3. 术后阶段
- 在手术结束时，停止异氟醚和全身镇痛而不恢复，以维持镇痛效果。在进行气管拔管之前，确保吞咽反射的控制已恢复。
- 静脉注射美洛昔康0.5mg / kg以确保镇痛，阿司匹林（ASS）10mg / kg静脉注射以防止立即血栓形成事件，维生素B12 100μgSC和克拉莫西尔20mg / kg静脉注射作为抗生素预防。
- 提供补充氧合和升温，直到兔子自发地恢复胸骨卧位。如果观察到任何疼痛迹象，则使用美沙酮进行抢救性镇痛。根据啮齿动物和兔子疼痛评估和管理指南，在前 3 天每天进行 4 次术后随访和护理23，24。
- 确保术后镇痛，在外耳上贴芬太尼贴剂（12μg/h），美洛昔康1x/ SC3天，美沙酮作为挽救治疗，以及疼痛评估评分表（补充文件）。
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Representative Results
残端和分叉动脉瘤的产生在所有5只新西兰大白兔中均成功，没有术中并发症。在手术期间或24±2天的随访期间未观察到死亡。一只兔子经历了术后并发症，伴有前庭综合征和右侧失明。动物在24小时后完全自发恢复。这种并发症不会干扰其正常活动（自由运动，水和食物摄入，与其他动物的相互作用），并且不需要任何特殊治疗。没有自发性动脉瘤破裂。
平均手术时间为221分钟（范围在190至255分钟之间）。所有动脉瘤在手术后立即通畅，除了一个分叉动脉瘤，由于弹性蛋白酶孵育和立即血栓形成而显示出极端的组织反应。在随访中，通过磁共振血管造影（图3）和组织提取后的肉眼检查（图4）确认动脉瘤通畅性。除了在手术过程中已经血栓形成的分叉动脉瘤外，所有动脉瘤在随访终点仍处于未闭状态。这导致通畅率为90%（10分中有9分）。
取样后对动脉瘤的肉眼检查和测量显示，所有动脉瘤在创建时平均大小为 5.4 mm x 2.4 mm x 2.3 mm ±创建时为 1 mm x 0.6 mm x 0.3 mm，在残端动脉瘤收获时为 4.5 mm x 3.1 mm x 2.5 mm ± 1.5 mm x 0.9 mm x 0 mm ;分叉动脉瘤采集时为 3.4 毫米 x 2 毫米 x 2.1 毫米± 0.6 毫米 x 1 毫米 x 0.4 毫米，3.8 毫米 x 2.8 毫米 x 2.6 毫米± 1.2 毫米 x 0.3 毫米 x 0.6 毫米。有趣的是，分叉动脉瘤比残端动脉瘤增长得更多，创建时的平均体积为 14.4 mm 3 ±3.5 mm 3，提取时的平均体积为 28.6 mm 3 ± 16.4 mm 3（比率 1.9），而残端版本的创建体积为 30.8 mm 3 ± 15 mm 3 和 34.9 mm 3 ± 24.1 mm 3（比率 1.1）。
图1：手术步骤。（A）在右侧CCA上应用2个临时夹：第一个从头臂躯干开始，第二个在第一个~2厘米远端。星号表示使用 22 G 静脉导管（IV 导管）定位动脉切开术。（B）用4-0结扎插入和固定IV导管后，用肝素化NaCl（500U / 100mL的0.9%盐水）冲洗段，并注射0.1-0.2mL弹性蛋白酶（100U先前溶解在5mL的TRIS缓冲液中）。孵育20分钟（C）应用2个不可吸收的结扎（6-0）：第一个在近端夹子远端5毫米处，第二个在动脉切开术下近端。（D）在结扎上方~3毫米处切开血管，以形成残端动脉瘤和分叉动脉瘤的自体移植物。（E）右CCA的吻合术和左侧CCA上的自体移植物以产生分叉动脉瘤。（F）最终结果为右侧残端动脉瘤，左侧为分叉动脉瘤。缩写：CCA = 颈总动脉;IV = 静脉注射。 请点击此处查看此图的大图。
图2：术中照片记录结果。 黄色虚线代表中线，指示颅骨和尾部方向。（A）颈部右侧残端动脉瘤的视图。SCEM通过血管环（蓝色）的平均值向内侧缩回。（B）颈部左侧分叉动脉瘤的视图。缩写：SCEM = 胸头肌;SA = 残端动脉瘤;JV = 颈静脉;rCCA：右颈总动脉;lCCA=左颈总动脉;Tr = 气管;* = 复发或喉分支;BA = 分叉动脉瘤。 请点击此处查看此图的大图。
图 3：随访时的磁共振血管造影结果。使用3特斯拉MRI获取的三维TOF序列的图像集中在颈部动脉上。（A）右锁骨下动脉残端动脉瘤（黄色箭头）。（B）分叉动脉瘤（黄色箭头）通过吻合左侧CCA产生的分叉。缩写：TOF = 飞行时间;MRI = 磁共振成像;CCA = 颈总动脉。请点击此处查看此图的大图。
图4：组织提取后的宏观照片记录。 夹子上的大凹槽（2 个分区）表示 1 mm，中间的小凹槽（1 个分区）表示 0.5 mm。 （A） 头臂干和右锁骨下动脉残端动脉瘤。（B）通过吻合左侧CCA产生的分叉动脉瘤。缩写：SA = 残端动脉瘤;BCT = 头臂躯干;rSC = 右锁骨下动脉;BA = 分叉动脉瘤;CCA = 颈总动脉;rCCA = 右 CCA;lCCA = 左 CCA。 请点击此处查看此图的大图。
图 5：残端和分叉动脉瘤的组织学发现。用苏木精-伊红染色的标本（2倍放大倍数）。 （A）残端动脉瘤（a）与头臂干（b）和右锁骨下动脉（c）的显微镜概述。（*） 表示血流方向。（B）分叉动脉瘤（a）的显微镜概述，左近端CCA（b），远端左CCA（c）和右远端CCA（d）。（*） 表示血流方向。在 （A） 和 （B） 的插图中，I） 代表动脉瘤壁的被膜内膜，II） 被膜介质，III） 被膜外层（20 倍放大倍率）。缩写：CCA = 颈总动脉。 请点击此处查看此图的大图。
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Discussion
最常见的动脉瘤形成技术包括通过开放或血管内方法在右侧CCA的起源处创建残端动脉瘤。该模型已被验证为一种稳定的非生长动脉瘤，随时间20，21 保持开放状态。第二种可能的技术涉及通过手术在左侧吻合右侧CCA并在分叉处缝合动脉瘤袋14，22，23来建立动脉分叉动脉瘤。尽管这两种方法都已显示出适用于血管内装置的测试和病理生理学研究，但动脉瘤形态以及所涉及的血流动力学和流动特性却大不相同。鉴于现有模型只允许每只动物创建一种动脉瘤类型，目前很难将分叉型动脉瘤的自然病程与残端型动脉瘤的自然病程进行比较。
事实上，动物之间的生理差异（如血压或血管壁的确切胶原蛋白含量）并不总是在实验环境中完全控制，并且会影响动脉瘤生物学和自然过程。这项研究证明了在同一只动物（或单个动物）中创建具有树桩和分叉血流动力学和退化壁条件的兔子模型的可行性。该技术产生的动脉瘤可重复，发病率和死亡率低，通畅率高（90%）。这种方法的主要缺点仍然与创建经典树桩或分叉模型本身相同 - 需要复杂的实验室设备和特定的显微外科技能。
在这次手术中，有两个步骤被确定为关键：第一个步骤是解剖和暴露正确的CCA，直到其起源于头臂干。在这种方法中，以下重要结构可能特别危险：气管、颈静脉和喉神经。由于气管操作会损害呼吸，因此先前的插管可确保气道通畅。此外，手术时间长且在重要结构附近，全面监测有助于及时识别任何生理偏差。外科医生还应注意避免直接按压或过度牵引气管本身。颈静脉直接在颈动脉旁边延伸，在某些情况下，颈静脉粘附在颈动脉上。需要格外小心以避免任何病变。我们建议使用湿拭子保护静脉并保持湿润。
最后，以前的研究已经描述了保护喉神经的重要性。这些神经上的任何病变都会在术后导致喘鸣的出现，伴有连续呼吸受损和动物死亡的高概率。为了防止神经的医源性病变，CCA解剖应避免牵引动脉周围的组织。我们建议使用剪刀剪裁粘附的组织，而不是分散它们的注意力。肌肉组织回缩后也必须尽快识别神经，以便在手术过程中保持视觉控制。第二个关键步骤是与弹性蛋白酶消化的动脉瘤建立无张力的微吻合。这种动脉瘤呈现其壁结构的高度退化，阻碍了组织的操纵。它需要良好的显微外科技能，并且可以预期学习曲线。
此外，我们建议选择体重至少 4.0 公斤（平均年龄为 25（±5） 周）的兔子，以确保颈血管的正确尺寸。在经典的单残端动脉瘤模型中，文献中报道的主要并发症是应用弹性蛋白酶后由右侧CCA引起的气管食管动脉引起的气管坏死。已经建议对技术进行一些修改以避免问题13，24，25，26。这种方法可以在应用弹性蛋白酶之前轻松识别这些分支及其凝血，以避免弹性蛋白酶溶液的任何流出和类似的并发症。
手术期间应用的抗凝方案包括在右侧CCA第一次夹子应用之前和移除夹子之前使用肝素，以及恢复左侧CCA的循环。这可以有效地防止由于暂时的流动中断和血管操纵而导致的血栓形成。此外，手术结束后立即给予独特剂量的阿司匹林（10mg / kg IV），以防止由于缝合材料和弹性蛋白酶的血栓形成作用而形成血栓。该方案允许控制血栓形成事件并确保动脉瘤通畅，而不会增加出血并发症。
残端模型是最常见的囊状动脉瘤兔模型，已多次用于血管内治疗的转化研究。分叉模型在文献中也有很好的描述，适用于动脉瘤病理生理学的研究和新型治疗策略的测试。然而，两种模型都显示出不同的形态，这表明不同的血流动力学特征。众所周知，动脉瘤优先出现在分叉处，并且生长取决于壁剪切应力27，28。以前的出版物还显示，与其他更复杂的模型相比，手术创建的侧壁动脉瘤中的自发性血栓形成更高29 ，并且与其他更复杂的模型相比，血流分流后残端动脉瘤的闭塞率更高8;然而，比较总是在两种不同的动物之间进行。
在本研究中，创建了直径为2-4mm的标准动脉瘤，如前所述14，22，29，30，31，32，33，34，35，36。我们的目标是创建一个与分叉动脉瘤大小相似的残端动脉瘤进行比较。因此，目前的交易量略小，如已报告的5，8，10，11，13，21。然而，两种动脉瘤在随访1个月时均显示出增长的趋势。因此，较长的随访期可能会诱导更大体积的动脉瘤形成，这将允许与人类动脉瘤进行更好的长期比较。此外，这些基于苏木精-伊红染色的组织学发现显示细胞动脉瘤壁和平滑肌细胞呈线性或杂乱无章模式的存在，以及弹性纤维的紊乱（图5）。这些结果与目前显示兔弹性蛋白酶诱导的动脉瘤与人类颅内动脉瘤之间的组织学相似性相关11，32，37，38，39，40，41。
结果表明，使用相同的手术方法同时创建残端和分叉动脉瘤的技术可行性。这项研究的局限性在于样本量小，不允许进行统计分析或真正比较残端和分叉动脉瘤之间的组织学差异。尽管如此，该模型提供了研究两种动脉瘤在生长、破裂、自发闭塞和组织学变化方面差异的可能性，在未来的实验中，随着样本量的增加和不同的随访时间，精确确定两种类型动脉瘤的优点和特征。此外，这种新的手术模型允许在一种动物的两种不同的配置和流动条件下以及在独特的手术过程中应用血管内装置。这减少了所需的动物数量，并可能提高临床前试验的效率。
总而言之，这项研究描述了一种可重复的方法，可以在一只动物内产生 2 个具有不同流动条件和高度退化壁的动脉瘤。所提出的模型允许直接比较囊状动脉瘤血管内治疗的自然过程和对血流动力学作用的影响。最后，它提供了一个有效的模型，有助于减少使用的动物和整体实验成本。
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Disclosures
作者声明不存在利益冲突。
Acknowledgments
作者感谢Hans Rudolf Widmer教授，Luca Remonda博士和Javier Fandino教授对这项工作的科学支持和技术贡献。特别感谢Olgica Beslac在手术过程中的建议和Kay Nettelbeck的帮助。此外，我们感谢Daniela Casoni DVM，博士和医学兽医。Luisana Garcia，PD Alessandra Bergadano博士和Carlotta Detotto博士，感谢他们敬业的兽医支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 4-0 resorbable suture | Ethicon Inc., USA | VCP292ZH | |
| 4-0 resorbable suture | Ethicon Inc., USA | VCP304H | |
| 6-0 non absorbable suture | B. Braun, Germany | C0766070 | |
| 9-0 non absorbable suture | B. Braun, Germany | G1111140 | |
| Adrenaline | Amino AG | 1445419 | any generic |
| Amiodarone | Helvepharm AG | 5078567 | any generic |
| Anesthesia machine | Dräger | any other | |
| Aspirin | Sanofi-Aventis (Suisse) SA | 622693 | any generic |
| Atropine | Labatec Pharma SA | 6577083 | any generic |
| Bandpass filter blue | Thorlabs | FD1B | any other |
| Bandpass filter green | Thorlabs | FGV9 | any other |
| Biemer vessel clip (2x) | B. Braun Medical AG, Aesculap, Switzerland | FD560R | any other |
| Bipolar forceps | any other | ||
| Bispectral index (neonatal) | any other | ||
| Blood pressure cuff (neonatal) | any other | ||
| Bycilces spotlight | any other | ||
| Clamoxyl | GlaxoSmithKline AG | 758808 | any generic |
| Dexmedetomidine | Ever Pharma | 136740-1 | any generic |
| Elastase | Sigma Aldrich | E7885 | |
| Electrocardiogram electrodes | |||
| Ephedrine | Amino AG | 1435734 | |
| Esmolol | OrPha Swiss GmbH | 3284044 | |
| Fentanyl (intravenous use) | Janssen-Cilag AG | 98683 | |
| Fentanyl (transdermal) | Mepha Pharma AG | 4008286 | |
| Fluoresceine | Curatis AG | 5030376 | |
| Fragmin | Pfizer PFE Switzerland GmbH | 1906725 | |
| Heating pad or heating forced-air warming system | |||
| Isotonic sodium chloride solution (0.9%) | Fresenius KABI | 336769 | |
| Ketamine | Pfizer PFE Switzerland GmbH | 342261 | |
| lid retractor | Approach | ||
| Lidocaine | Streuli Pharma AG | 747466 | |
| Longuettes | |||
| Metacam | Boehringer Ingelheim | P7626406 | Medication |
| Methadone | Streuli Pharma AG | 1084546 | Sedaton |
| Micro-forceps curved | Ulrich Swiss, Switzerland | U52-015-15 | |
| Micro-forceps straight 2x | Ulrich Swiss, Switzerland | U52-010-15 | |
| Microscissors | Ulrich Swiss , Switzerland | U52-327-15 | |
| Midazolam | Accord Healthcare AG | 7752484 | |
| Needle 23 G | arteriotomy | ||
| Needle holder | |||
| O2-Face mask | |||
| Operation microscope | Wild Heerbrugg | ||
| Papaverin | Bichsel | topical application | |
| Povidone iodine | Mundipharma Medical Company | any generic | |
| Prilocaine-lidocaine creme | Emla | ||
| Propofol | B. Braun Medical AG, Switzerland | General anesthesia | |
| Pulse oxymeter | |||
| Rectal temperature probe (neonatal) | |||
| Ringer Lactate | Bioren Sintetica SA | Infusion | |
| Ropivacain | Aspen Pharma Schweiz GmbH | 1882249 | Local anesthesia |
| Scalpell | Swann-Morton | 210 | |
| Small animal shaver | |||
| Soft tissue forceps | |||
| Soft tissue spreader | |||
| Stainless steel sponge bowls | |||
| Sterile micro swabs | |||
| Stethoscope | |||
| Surgery drape | |||
| Surgical scissors | |||
| Syringes 1 mL, 2 mL, and 5 mL | |||
| Tris-Buffer | Sigma Aldrich | 93302 | Elastase solution |
| Vascular clip applicator | B. Braun, Germany | FT495T | |
| Vein and arterial catheter 22 G | |||
| vessel loop | Approach | ||
| video camera or smartphone | |||
| Vitarubin | Streuli Pharma AG | 6847559 | |
| Yasargil titan standard clip (2x) | B. Braun Medical AG, Aesculap, Switzerland | FT242T |
References
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