Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

एक खरगोश में अलग-अलग हेमोडायनामिक्स के साथ दो सैकुलर इलास्टेस-डाइजेस्टेड एन्यूरिज्म का निर्माण

Published: April 15, 2021 doi: 10.3791/62518
Automatic Translation
1,2, 2, 1,2, 1,2, 2, 3, 1,2, 1,2
1Department of Neurosurgery, Kantonsspital Aarau, 2Cerebrovascular Research Group, Department for BioMedical Research, University of Bern, 3Experimental Surgery Facility, Department for Biomedical Research, Faculty of Medicine, University of Bern

Summary

यह प्रोटोकॉल अलग-अलग हेमोडायनामिक्स (स्टंप और द्विभाजन नक्षत्र) के साथ दो इलास्टेस-डाइजेस्टेड एन्यूरिज्म के साथ एक खरगोश मॉडल के निर्माण के चरणों का वर्णन करता है। यह एक ही जानवर के भीतर विभिन्न एंजियोआर्किटेक्चर और हेमोडायनामिक स्थितियों के साथ एन्यूरिज्म में नए एंडोवास्कुलर उपकरणों के परीक्षण की अनुमति देता है।

Abstract

मानव इंट्राक्रैनियल एन्यूरिज्म के करीब हेमोडायनामिक, आकृति विज्ञान और हिस्टोलॉजिकल विशेषताओं के साथ प्रीक्लिनिकल पशु मॉडल पैथोफिजियोलॉजिकल प्रक्रियाओं की समझ और नई चिकित्सीय रणनीतियों के विकास और परीक्षण में महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं। इस अध्ययन का उद्देश्य एक नए खरगोश एन्यूरिज्म मॉडल का वर्णन करना है जो एक ही जानवर के भीतर अलग-अलग हेमोडायनामिक स्थितियों के साथ दो इलास्टेस-डाइजेस्टेड सैक्यूलर एन्यूरिज्म के निर्माण की अनुमति देता है।

4.0 (± 0.3) किलोग्राम के औसत वजन और 25 (±5) सप्ताह की औसत आयु के साथ पांच मादा न्यूजीलैंड सफेद खरगोशों को माइक्रोसर्जिकल स्टंप और द्विभाजन धमनीविस्फार निर्माण से गुजरना पड़ा। एक धमनीविस्फार (स्टंप) ब्राचियोसेफेलिक ट्रंक में इसकी उत्पत्ति पर दाहिने आम कैरोटिड धमनी (सीसीए) जोखिम द्वारा बनाया गया था। एक अस्थायी क्लिप सीसीए मूल पर लागू किया गया था और दूसरा, 2 सेमी ऊपर। इस खंड को 20 मिनट के लिए इलास्टेस के 100 यू के स्थानीय इंजेक्शन के साथ इलाज किया गया था। एक दूसरा एन्यूरिज्म (द्विभाजन) दाहिने सीसीए से बाएं सीसीए के एंड-टू-साइड एनास्टोमोसिस में एक इलास्टेस-उपचारित धमनी थैली को जोड़कर बनाया गया था। पैटेंसी को निर्माण के तुरंत बाद फ्लोरेसेंस एंजियोग्राफी द्वारा नियंत्रित किया गया था।

सर्जरी की औसत अवधि 221 मिनट थी। एक ही जानवर में दो एन्यूरिज्म का निर्माण जटिलता के बिना सभी खरगोशों में सफल रहा। एक द्विभाजन धमनीविस्फार को छोड़कर सर्जरी के तुरंत बाद सभी एन्यूरिज्म पेटेंट थे, जिसने इलास्टेस इनक्यूबेशन और तत्काल इंट्राल्यूमिनल थ्रोम्बोसिस के कारण चरम ऊतक प्रतिक्रिया दिखाई। सर्जरी के दौरान और एक महीने के फॉलो-अप तक कोई मृत्यु दर नहीं देखी गई। रुग्णता एक क्षणिक वेस्टिबुलर सिंड्रोम (एक खरगोश) तक सीमित थी, जो एक दिन के भीतर अनायास ठीक हो गई।

यहां पहली बार स्टंप और द्विभाजन हेमोडायनामिक विशेषताओं और अत्यधिक विकृत दीवार स्थितियों के साथ दो-एन्यूरिज्म खरगोश मॉडल बनाने की व्यवहार्यता का प्रदर्शन किया गया है। यह मॉडल विभिन्न प्रवाह स्थितियों के तहत धमनीविस्फार जीव विज्ञान के आधार पर प्राकृतिक पाठ्यक्रम और संभावित उपचार रणनीतियों के अध्ययन की अनुमति देता है।

Introduction

इंट्राक्रैनील एन्यूरिज्म एक गंभीर स्थिति है जिसमें टूटने के बाद मृत्यु दर 50% तक पहुंच जाती है और 10-20% रोगियों में दीर्घकालिक विकलांगता होतीहै। पिछले दशक में एंडोवास्कुलर उपचार विकल्पों का तेजी से विकास देखा गया है, लेकिन साथ ही, 2,3 कोइलिंग के बाद एन्यूरिज्म के 33% तक पुनरावृत्ति की बढ़ती दर भी देखी गई है। एन्यूरिज्म रोड़ा और रिकैनलाइजेशन के पैथोफिज़ियोलॉजी को बेहतर ढंग से समझने के लिए, साथ ही साथ नए एंडोवास्कुलर उपकरणों के विकास और परीक्षण के लिए, वर्तमान में विश्वसनीय प्रीक्लिनिकल मॉडल की आवश्यकता है जिनकी हेमोडायनामिक, रूपात्मक और हिस्टोलॉजिकल विशेषताएं मानव इंट्राक्रैनील एन्यूरिज्म 4,5,6 की नकल करती हैं। . आज तक, प्रीक्लिनिकल परीक्षण के लिए मानक के रूप में कोई परिभाषित मॉडल नहीं है, और प्रजातियों और तकनीकों की एक बड़ी श्रृंखला शोधकर्ताओं 7,8 के लिए उपलब्ध है।

हालांकि, खरगोश अपनी गर्दन की धमनियों और मानव सेरेब्रल वाहिकाओं के बीच आकार और हेमोडायनामिक समानता के साथ-साथ इसके समान जमावट और थ्रोम्बोलिसिस प्रोफाइल के कारण विशेष रुचि की एक प्रजाति है। सामान्य कैरोटिड धमनियों (सीसीए) पर इलास्टेस-डाइजेस्टेड सैकुलर एन्यूरिज्म वाले कई मॉडलों ने प्रवाह की स्थिति, ज्यामितीय विशेषताओं और दीवार विशेषताओं 9,10,11,12 के संदर्भ में मानव इंट्राक्रैनियल एन्यूरिज्म के साथ गुणात्मक और मात्रात्मक समानताएं दिखाई हैं। इस अध्ययन का उद्देश्य एक ही जानवर में स्टंप और द्विभाजन इलास्टेस-डाइजेस्टेड एन्यूरिज्म दोनों के साथ एक नया खरगोश एन्यूरिज्म मॉडल बनाने की तकनीक का वर्णन करना है। सर्जिकल तकनीकें होह एट अल.13 और वांडरर एट अल.14 से प्रेरित हैं, जिसमें एक अच्छा मानकीकरण और प्रजनन क्षमता प्रदान करने और कम मृत्यु दर और रुग्णता सुनिश्चित करने के लिए मामूली संशोधन किए गए हैं।

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

नोट: प्रयोग को कैंटन बर्न, स्विट्जरलैंड की पशु देखभाल के लिए स्थानीय समिति (आवेदन संख्या बीई 108/16) द्वारा अनुमोदित किया गया था, और सभी पशु देखभाल और प्रक्रियाओं को संस्थागत दिशानिर्देशों और 3 आर सिद्धांतों15,16 के अनुसार किया गया था। डेटा आगमन दिशानिर्देशों के अनुसार रिपोर्ट किए जाते हैं। पेरी-ऑपरेटिव प्रबंधन एक बोर्ड-प्रमाणित पशु चिकित्सक एनेस्थेसियोलॉजिस्ट द्वारा आयोजित किया गया था। अध्ययन के लिए, 4.0 (± 0.3) किलोग्राम के औसत वजन और 25 (±5) सप्ताह की औसत आयु के साथ मादा न्यूजीलैंड सफेद खरगोशों को 22-24 डिग्री सेल्सियस के कमरे के तापमान पर रखा गया था, जिसमें पानी, छर्रों और घास तक मुफ्त पहुंच के साथ 12 घंटे का प्रकाश / अंधेरा चक्र था।

1. प्री-सर्जिकल चरण और एनेस्थीसिया

  1. पशु चिकित्सा एनेस्थेटिस्ट और यूरोपीय और अमेरिकन कॉलेज ऑफ वेटरनरी एनेस्थीसिया और एनाल्जेसिया एसोसिएशन द्वारा अनुशंसित एक नैदानिक परीक्षा करें ताकि यह पुष्टि की जा सके कि खरगोश प्रत्येक जानवर का वजन करके, श्लेष्म झिल्ली का मूल्यांकन करके, केशिका रिफिल समय और नाड़ी की गुणवत्ता का दस्तावेजीकरण करके और फुफ्फुसीय और हृदय संबंधी उत्तेजना के साथ-साथ पेट की धड़कन का प्रदर्शन करके स्वस्थ हैं।
  2. नैदानिक खोज के आधार पर, प्रत्येक खरगोश17 के लिए अमेरिकन सोसाइटी ऑफ एनेस्थेसियोलॉजिस्ट (एएसए) वर्गीकरण का श्रेय दें। केवल एएसए आई स्कोर वाले जानवरों पर सर्जरी करें।
  3. दोनों बाहरी कानों को शेव करें, और ऑरिकुलर धमनियों और नसों पर प्रिलोकेन-लिडोकेन क्रीम लागू करें। केटामाइन 20 मिलीग्राम / किग्रा, डेक्समेडेटोमिडीन 0.1 मिलीग्राम / किग्रा, और मेथाडोन 0.3 मिलीग्राम / किग्रा के संयोजन के साथ गहरी बेहोशी प्राप्त करें। जानवरों को 15 मिनट के लिए अबाधित छोड़ दें। ढीले फेस मास्क के माध्यम से पूरक ऑक्सीकरण (3 एल / मिनट) दें, और पल्स ऑक्सीमीटर के साथ मॉनिटर करें।
  4. बाईं ऑरिकुलर केंद्रीय धमनी के साथ-साथ एक ऑरिकुलर नस में 22 ग्राम कैनुला रखें। प्रोपोफोल 1-2 मिलीग्राम / किग्रा अंतःशिरा (IV) के साथ सामान्य संज्ञाहरण को प्रेरित करें जब तक कि प्रभाव (निगलने के रिफ्लेक्स का नुकसान)। एक सिलिकॉन ट्यूब (3 मिमी आंतरिक व्यास) के माध्यम से एंडो-ट्रेचियल इंटुबैशन के साथ आगे बढ़ें।
  5. बाल चिकित्सा इलेक्ट्रोएन्सेफलोग्राफिक (ईईजी) सेंसर लगाने के लिए माथे को शेव करें। सर्जिकल क्षेत्र को शेव करें, और रोपिवैकेन हाइड्रोक्लोराइड को 0.75% इंट्राडर्मल रूप से इंजेक्ट करें।
  6. खरगोश को ऑपरेशन टेबल पर पृष्ठीय रिकंबेंसी में रखें, पूर्ण निगरानी स्थापित करें, और एंडो-ट्रेचियल ट्यूब को कम प्रतिरोध वाले बाल चिकित्सा सर्कल सिस्टम से कनेक्ट करें। ऑक्सीजन में आइसोफ्लुरेन के प्रशासन के साथ संज्ञाहरण बनाए रखें, 1.3% की अधिकतम अंत ज्वारीय (ईटी) एकाग्रता को लक्षित करें।
  7. शिरापरक पहुंच के माध्यम से रिंगर लैक्टेट 5 एमएल / किग्रा / घंटा का निरंतर जलसेक प्रदान करें। पल्स ऑक्सीमेट्री, डॉप्लर और इनवेसिव ब्लड प्रेशर, 3-लीड इलेक्ट्रोकार्डियोग्राम, ईईजी, रेक्टल तापमान, और साँस और साँस छोड़ने वाली गैसों के माध्यम से निकास तक नैदानिक और वाद्य निगरानी सुनिश्चित करें।
  8. सर्जिकल क्षेत्र को पोविडोन आयोडीन के साथ मनुब्रियम स्टर्नी से जबड़े के कोण तक कीटाणुरहित करें, और बाँझ ड्रेपिंग लागू करें। सर्जरी के दौरान, लिडोकेन (50 μg / kg / min) और फेंटानिल (3-10 μg / kg / h का CRI) के साथ एनाल्जेसिया प्रदान करें। सहज या सहायक वेंटिलेशन करें। अनुमेय हाइपरकेनिया की अनुमति दें।
  9. सर्जरी के दौरान कम से कम एक धमनी रक्त गैस विश्लेषण करें। हाइपोटेंशन (60 मिमीएचजी से नीचे औसत धमनी दबाव) के मामले में, इसे नॉरएड्रेनालाईन के साथ इलाज करें, प्रभाव तक टाइटरेटेड। हाइपोथर्मिया को रोकने के लिए हीटिंग पैड या हीटिंग मजबूर-एयर वार्मिंग सिस्टम का उपयोग करें (उद्देश्य: रेक्टल तापमान 37.5-38.5 डिग्री सेल्सियस)।
    नोट: जैसा कि आक्रामक धमनी रक्तचाप को बाएं कान धमनी में मापा जाता है, बाएं सीसीए की क्लिपिंग रक्त प्रवाह को रोक देगी और वक्र को दबा देगी। रक्तचाप को तब तक डॉपलर तकनीक के साथ मापा जाना चाहिए जब तक कि वाहिका फिर से न खुल जाए।

2. सर्जरी

  1. पहुँच
    1. हाइइड हड्डी से 1.5 सेमी पुच्छल तक एक स्कैल्पल के साथ मैनुब्रियम स्टर्नी तक एक औसत त्वचा चीरा लगाएं। सावधानीपूर्वक हेमोस्टेसिस करते समय उपचारात्मक चीरा से चमड़े के नीचे और वसा ऊतक तैयार करें।
    2. स्टर्नोसेफेलिकस मांसपेशी को अनुगामी संयोजी ऊतक से मुक्त करें, और मायोक्लोनस से बचने के लिए लिडोकेन को शीर्ष पर (2-4 मिलीग्राम / किग्रा, लिडोकेन 1%) पसंद करें। स्टर्नोसेफेलिकस मांसपेशियों के दाहिने सीसीए को उजागर करें और इसे गीले स्वैब से गीला रखें।
    3. अब स्टर्नोसेफेलिकस मांसपेशी के पार्श्व और समीपस्थ भागों को तैयार करें और सीसीए को उजागर करने के लिए एक पोत लूप के साथ इसे वापस लें। बाहरी जुगुलर नस की पहचान करें और इसे गीले माइक्रो स्वैब से बचाएं।
    4. धमनी को उजागर करने के लिए ब्राचियोसेफेलिक ट्रंक के विभाजन तक समीपस्थ सीसीए के साथ संयोजी ऊतक को सावधानीपूर्वक विच्छेदित करें। धमनी से आने वाली छोटी शाखाओं की उपस्थिति में, उन्हें कॉटराइज़र के साथ जोड़ दें।
      नोट: किसी भी तंत्रिका क्षति से बचने के लिए ध्यान रखें।
  2. विभाजन धमनीविस्फार के लिए स्टंप एन्यूरिज्म निर्माण और ऊतक कटाई
    1. सही सीसीए को क्लिप करने से पहले, एंटी-क्लॉटिंग टाइम (एसीटी) को मापें, और थ्रोम्बोम्बोलिक घटनाओं से बचने के लिए कान की नस (संज्ञाहरण टीम द्वारा किए गए) के माध्यम से व्यवस्थित रूप से नैट्रियम हेपरिन (80 ईआई / किग्रा) दें।
    2. अब 2 अस्थायी क्लिप लागू करें: पहला सीसीए की उत्पत्ति पर और दूसरा इससे 2 सेमी दूर (चित्रा 1 ए)। बर्तन के नीचे एक रबर पैड रखें और वाहिकाफैलाव के लिए पापावेरिन एचसीएल (40 मिलीग्राम / एमएल; 1: 1 0.9% खारा में घुल गया) के साथ कुल्ला करें।
    3. माइक्रोसिसर का उपयोग करके एडवेंटिटिया को सावधानीपूर्वक हटा दें। 22 जी IV-कैथेटर के साथ डिस्टल क्लिप के नीचे एक धमनीटॉमी करें, और कैथेटर को समीपस्थ क्लिप (चित्रा 1 ए, बी) तक डालें।
    4. सेगमेंट को हेपरिनाइज्ड एनएसीएल (0.9% खारा में 500 यू / 100 एमएल) के साथ इंट्राल्यूमिनल रूप से फ्लश करें, जब तक कि कोई रक्त दिखाई न दे, और अंत में कैथेटर को लिगेचर (4-0) के साथ ठीक करें। अब, कैथेटर के माध्यम से, धमनी खंड में 0.1-0.2 एमएल इलास्टेस (100 आईयू पहले ट्राइस-बफर के 5 एमएल में घुल गया था) इंजेक्ट करें और 20 मिनट के लिए इनक्यूबेट करें (चित्रा 1 बी)।
    5. बाएं सीसीए को उजागर करने के लिए बाईं ओर विच्छेदन से शुरू करें (अनुभाग 2.3 देखें)। इलास्टेस के साथ इनक्यूबेशन समय के 20 मिनट के बाद, इलास्टेस समाधान को साफ करें, और 0.9% NaCl के साथ धमनी खंड को लगभग 10 बार कुल्ला करने के लिए सिरिंज बदलें।
    6. 2 लिगेटर्स (6-0) लागू करें: पहला एक समीपस्थ क्लिप का 5 मिमी डिस्टल और दूसरा धमनीटॉमी (चित्रा 1 सी) के नीचे समीपस्थ रूप से। पोत को पहले लिगेचर से ~ 3 मिमी ऊपर और दूसरे लिगेचर और डिस्टल क्लिप के बीच एक और बार काटें। द्विभाजन धमनीविस्फार (चित्रा 1 डी) के निर्माण तक इस ऑटोलॉगस ग्राफ्ट को हेपरिनाइज्ड घोल (500 यू / 100 एमएल में 0.9% खारा) में रखें। अंत में, सावधानीपूर्वक पहली समीपस्थ क्लिप खोलें, और धमनीविस्फार (लंबाई, चौड़ाई और गहराई) को मापें।
  3. द्विभाजन धमनीविस्फार निर्माण
    1. बाएं सीसीए के ~ 2 सेमी को उजागर करने के लिए स्टर्नोसेफेलिकस मांसपेशी को विच्छेदित करके बाईं ओर तैयार करें। मायोक्लोनस से बचने के लिए मांसपेशियों पर लिडोकेन को शीर्ष पर लागू करें।
    2. कैरोटिड धमनी को एक धुंध की गेंद के साथ और दस्ताने के टुकड़े के साथ एक छोटा स्वैब। कुछ पापावेरिन लागू करें। एचसीएल शीर्ष रूप से (40 मिलीग्राम / एमएल; 1: 1 0.9% खारा में घुल गया)। सूक्ष्म दृश्य के तहत काम करना जारी रखें: एन्यूरिज्म थैली तैयार करें और एडवेंटिटी को हटा दें। धमनीविस्फार थैली (लंबाई, चौड़ाई, गहराई) को मापें।
    3. सही सीसीए के खुले हिस्से को हेपरिनाइज्ड एनएसीएल के साथ फ्लश करें और यदि आवश्यक हो, तो सीवन के लिए मुफ्त जोड़तोड़ की अनुमति देने के लिए क्लिप को ~ 1 सेमी तक बदलें। एडवेंटिटिया को सावधानी से हटा दें, और दाएं सीसीए के स्टंप में ~ 2 मिमी अनुदैर्ध्य चीरा लगाएं।
    4. अब ~ 1 सेमी के एक खंड को सीमांकित करने और बीच में एडवेंटिटिया को हटाने के लिए बाएं सीसीए पर दो अस्थायी क्लिप लागू करें। 23 ग्राम सुई के साथ एक धमनीटॉमी करें। सेगमेंट को हेपरिनाइज्ड एनएसीएल (0.9% खारा में 500 यू / 100 एमएल) के साथ फ्लश करें। माइक्रोसिसर का उपयोग करके धमनीटॉमी को ~ 4-5 मिमी तक बढ़ाएं ताकि सही सीसीए और एन्यूरिज्म थैली (चित्रा 1 ई) के झुकाव की अनुमति मिल सके। पूरी व्याख्यान प्रक्रिया के दौरान जहाजों की सिंचाई करें और उन्हें गीले माइक्रो स्वैप के साथ संरक्षित करें।
    5. एनास्टोमोसिस को 9-0 गैर पुनर्जीवित सीवन के साथ निष्पादित करें।
      1. दाएं कैरोटिड ब्लंट की समीपस्थ पीछे की दीवार को 5 टांके के साथ सीवन करें, जो बाएं सीसीए पर धमनी के समीपस्थ किनारे से शुरू होता है। फिर, एन्यूरिज्म थैली के पिछले हिस्से को 4-5 टांके के साथ सीवन करें, जो बाएं सीसीए पर धमनीटॉमी के बाहर के किनारे से शुरू होता है।
      2. मछली के मुंह के चीरे के स्तर पर डिस्टल बैकसाइड के साथ 3 टांके के साथ एन्यूरिज्म ग्राफ्ट के ऊर्ध्वाधर बैकसाइड के साथ सीवन करना जारी रखें। मछली के मुंह के सामने के हिस्से को 3 टांके के साथ चीरा लगाएं, ऊपर की ओर शुरू करें और नीचे की ओर बढ़ें।
      3. बाएं सीसीए और एन्यूरिज्म ग्राफ्ट के सामने की तरफ और ~ 6 टांके के साथ दाएं सीसीए के बीच फ्रंट सीवन के साथ समाप्त करें। एनास्टोमोसिस को खत्म करने से पहले, हेपरिनाइज्ड 0.9% खारा घोल के साथ वाहिकाओं को कुल्ला करें।
    6. क्लैंप को हटाने से पहले, एंटी-क्लॉटिंग टाइम (एसीटी) को एक और बार मापें, और हेपरिन की अनुकूलित खुराक को व्यवस्थित रूप से प्रशासित करें (लक्ष्य: 2-3 गुना बेसलाइन एसीटी)।
    7. हेमोस्टेसिस के लिए माइक्रो स्वैब के साथ एनास्टोमोसिस पर कुछ दबाव डालते हुए दाईं सीसीए पर क्लिप को हटा दें। फिर, बाएं सीसीए से डिस्टल क्लिप को हटाकर जारी रखें। यदि कोई बड़ा रक्तस्राव नहीं है, तो रक्त प्रवाह की अनुमति देने के लिए, बाएं सीसीए पर समीपस्थ क्लिप को बाहर निकालना जारी रखें। यदि एनास्टोमोज़ से कुछ रक्तस्राव होता है, तो धुंध की गेंद और स्वैब के साथ कुछ दबाव लागू करें; कुछ मिनट प्रतीक्षा करें। यदि यह बना रहता है, तो क्लिप को बदलें और फिर से टांके लगाएं।
      नोट: 20-30 एमएल से अधिक का रक्त हानि वसूली चरण को खतरे में डाल सकती है।
  4. पैटेंसी नियंत्रण और प्रलेखन
    1. सभी जहाजों को खोलने के बाद, परिणामों को फोटोग्राफिक रूप से दस्तावेज करें और उन्हें मापें (चित्रा 1 एफ और चित्रा 2 ए, बी)।
    2. आक्रामक धमनी रक्तचाप वक्र (कान धमनी, बाहरी कैरोटिड की एक सीधी शाखा पर मापा जाता है) के माध्यम से डिस्टल सीसीए में प्रवाह की बहाली की पुष्टि करें, जिसे सामान्य पर भी लौटना चाहिए।
    3. 2 बैंडपास फिल्टर, एक वीडियो कैमरा और एक साइकिल स्पॉटलाइट का उपयोग करके फ्लोरेसिन IV के 1 एमएल को प्रशासित करके फ्लोरेसेंस एंजियोग्राफी करें। पूरी प्रक्रिया18,19 के विवरण के लिए पिछले प्रकाशन देखें।
  5. समापन
    1. एनास्टोमोसिस पर वसा पैड को फिर से तैयार करें और इसे 4-0 पुनर्जीवित सीवन के साथ सीवन करें। अंत में 4-0 पुनर्जीवित सीवन का उपयोग करके एकल टांके के साथ सीवन सबक्यूटिस और त्वचा।

3. पोस्टसर्जिकल चरण

  1. सर्जरी के अंत में, एनाल्जेसिक प्रभाव को बनाए रखने के लिए पुनरावृत्ति के बिना आइसोफ्लुरेन और प्रणालीगत एनाल्जेसिया को बंद करें। सुनिश्चित करें कि श्वासनली को बाहर निकालने से पहले निगलने वाले रिफ्लेक्स का नियंत्रण वापस आ गया है।
  2. एंटीबायोटिक प्रोफिलैक्सिस के रूप में एनाल्जेसिया, एस्पिरिन (एएसएस) 10 मिलीग्राम / किग्रा चतुर्थ, विटामिन बी 12 100 μg SC और क्लैमॉक्सिल 20 मिलीग्राम / किग्रा IV सुनिश्चित करने के लिए मेलोक्सिकैम 0.5 मिलीग्राम / किग्रा IV का उपयोग करें।
  3. पूरक ऑक्सीकरण और वार्मिंग प्रदान करें जब तक कि खरगोश अनायास उरोस्थि पुनरावृत्ति को पुनः प्राप्त नहीं कर लेता। यदि दर्द का कोई संकेत देखा जाता है तो मेथाडोन के साथ बचाव एनाल्जेसिया करें। कृन्तकों और खरगोशों में दर्द के आकलन और प्रबंधन के दिशानिर्देशों के अनुसार, पहले 3 प्रीऑपरेटिव दिनों के लिए दिन में 4 बार पोस्टऑपरेटिव फॉलो-अप और देखभाल करें।
  4. बाहरी कान पर लगाए गए फेंटानिल पैच (12 μg / h) के साथ पोस्टऑपरेटिव एनाल्जेसिया सुनिश्चित करें, 3 दिनों के लिए मेलोक्सिकैम 1x / SC, और मेथाडोन बचाव चिकित्सा के रूप में, दर्द मूल्यांकन के लिए स्कोर शीट (पूरक फ़ाइल) के साथ।

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

एक स्टंप और एक द्विभाजन धमनीविस्फार का निर्माण इंट्राऑपरेटिव जटिलताओं के बिना सभी 5 न्यूजीलैंड सफेद खरगोशों में सफल रहा। सर्जरी के दौरान या 24 से 2 दिनों की अनुवर्ती अवधि के दौरान कोई मृत्यु दर नहीं देखी ± गई। एक खरगोश ने वेस्टिबुलर सिंड्रोम और दाईं ओर के अंधापन के साथ पोस्टऑपरेटिव जटिलताओं का अनुभव किया। जानवर 24 घंटे के बाद पूरी तरह से और अनायास ठीक हो गया। इस जटिलता ने इसकी सामान्य गतिविधियों (मुक्त आंदोलनों, पानी और भोजन का सेवन, अन्य जानवरों के साथ बातचीत) में हस्तक्षेप नहीं किया और किसी विशिष्ट उपचार की आवश्यकता नहीं थी। कोई सहज धमनीविस्फार टूटना नहीं था।

सर्जरी की औसत अवधि 221 मिनट (190 और 255 मिनट के बीच) थी। सर्जरी के तुरंत बाद सभी एन्यूरिज्म पेटेंट थे, एक द्विभाजन धमनीविस्फार को छोड़कर जिसने इलास्टेस इनक्यूबेशन और तत्काल घनास्त्रता के कारण चरम ऊतक प्रतिक्रिया दिखाई। फॉलो-अप में, ऊतक निष्कर्षण के बाद चुंबक अनुनाद एंजियोग्राफी (चित्रा 3) और मैक्रोस्कोपिक निरीक्षण द्वारा धमनीविस्फार पैटेंसी की पुष्टि की गई थी (चित्रा 4)। द्विभाजन धमनीविस्फार के अपवाद के लिए जो सर्जरी के दौरान पहले से ही थ्रोम्बोसिस था, सभी एन्यूरिज्म अभी भी अनुवर्ती समापन बिंदु पर पेटेंट थे। इसके परिणामस्वरूप 90% (10 में से 9) की पैटेंसी दर हुई।

नमूना लेने के बाद एन्यूरिज्म का मैक्रोस्कोपिक निरीक्षण और माप 5.4 मिमी x 2.4 मिमी x 2.3 मिमी ± 1 मिमी x 0.6 मिमी x 0.3 मिमी और 4.5 मिमी x 3.1 मिमी x 2.5 मिमी ± 1.5 मिमी x 0.9 मिमी एक्स 0 मिमी के औसत आकार के साथ सभी एन्यूरिज्म की वृद्धि दिखाता है; और 3.4 मिमी x 2 मिमी x 2.1 मिमी ± निर्माण के समय 0.6 मिमी x 1 मिमी x 0.4 मिमी और विभाजन धमनीविस्फार के लिए कटाई के समय 3.8 मिमी x 2.8 मिमी x 2.6 मिमी ± 1.2 मिमी x 0.3 मिमी x 0.6 मिमी। दिलचस्प बात यह है कि विभाजन एन्यूरिज्म स्टंप एन्यूरिज्म से अधिक बढ़ गया, जिसमें निर्माण के समय 14.4 मिमी3 ±3.5 मिमी 3 की औसत मात्रा और निष्कर्षण (अनुपात 1.9) पर 28.6 मिमी 3 ± 16.4 मिमी3 बनाम 30.8 मिमी3 ± 15 मिमी 3 और 34.9 मिमी 3 ± निष्कर्षण पर 24.1 मिमी3 (अनुपात 1.1) के निर्माण पर मात्रा थी।

Figure 1
चित्र 1: सर्जरी के चरण। (ए) दाईं सीसीए पर 2 अस्थायी क्लिप का अनुप्रयोग: पहला ब्राचियोसेफेलिक ट्रंक से इसकी उत्पत्ति पर और दूसरा ~ 2 सेमी डिस्टल से पहले तक। तारांकन 22 जी अंतःशिरा कैथेटर (IV-कैथेटर) के साथ धमनीटॉमी के स्थानीयकरण को इंगित करता है। (बी) 4-0 लिगेचर के साथ आईवी-कैथेटर के सम्मिलन और निर्धारण के बाद, खंड को हेपरिनाइज्ड एनएसीएल (500 यू / 100 एमएल 0.9% खारा) के साथ फ्लश करें, और 0.1-0.2 एमएल इलास्टेस इंजेक्ट करें (100 यू पहले टीआरआईएस बफर के 5 एमएल में भंग हो गया था)। (सी) 2 गैर-पुनर्जीवित लिगेचर (6-0) लागू करें: पहला एक समीपस्थ क्लिप के लिए 5 मिमी डिस्टल और दूसरा धमनीटॉमी के नीचे समीपस्थ रूप से। (डी) स्टंप एन्यूरिज्म और द्विभाजन धमनीविस्फार के लिए ऑटोलॉगस ग्राफ्ट बनाने के लिए लिगेटर्स के ऊपर पोत ~ 3 मिमी काटें। (ई) द्विभाजन धमनीविस्फार बनाने के लिए दाएं सीसीए का एनास्टोमोसिस और बाएं सीसीए पर ऑटोलॉगस ग्राफ्ट। (एफ) दाईं ओर स्टंप एन्यूरिज्म और बाईं ओर द्विभाजन धमनीविस्फार के साथ अंतिम परिणाम। संक्षेप: सीसीए = सामान्य कैरोटिड धमनी; IV = अंतःशिरा। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

Figure 2
चित्रा 2: परिणामों के इंट्राऑपरेटिव फोटो प्रलेखन। पीली बिंदीदार रेखा कपाल और पुच्छल दिशाओं के संकेत के साथ मध्य रेखा का प्रतिनिधित्व करती है। (ए) गर्दन के दाईं ओर स्टंप एन्यूरिज्म का दृश्य। एससीईएम को पोत लूप (नीले रंग में) के माध्यम से वापस ले लिया जाता है। (बी) गर्दन के बाईं ओर द्विभाजन धमनीविस्फार का दृश्य। संक्षेप: एससीईएम = स्टर्नोसेफेलिकस मांसपेशी; एसए = स्टंप एन्यूरिज्म; जेवी = जुगुलर नस; आरसीसीए: सही आम कैरोटिड धमनी; एलसीसीए = बाएं आम कैरोटिड धमनी; Tr = श्वासनली; * = आवर्तक या लारेंजियल शाखा; बीए = द्विभाजन धमनीविस्फार। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

Figure 3
चित्रा 3: अनुवर्ती में चुंबकीय अनुनाद एंजियोग्राफी के परिणाम। गर्दन की धमनियों पर केंद्रित 3 टेस्ला एमआरआई के साथ प्राप्त तीन आयामी टीओएफ अनुक्रमों की छवियां। (ए) दाएं सबक्लेवियन धमनी पर स्टंप एन्यूरिज्म (पीला तीर)। (बी) द्विभाजन धमनीविस्फार (पीला तीर) बाईं ओर दाएं सीसीए को एनास्टोमोसिस करके बनाया गया है। संक्षेप: टीओएफ = उड़ान का समय; एमआरआई = चुंबकीय अनुनाद इमेजिंग; सीसीए = सामान्य कैरोटिड धमनी। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

Figure 4
चित्रा 4: ऊतक निष्कर्षण के बाद मैक्रोस्कोपिक फोटो प्रलेखन। क्लिप पर प्रमुख खांचे (2 डिवीजन) 1 मिमी और (एक डिवीजन) के बीच में मामूली खांचे 0.5 मिमी का संकेत देते हैं। (बी) बाईं ओर दाएं सीसीए को एनास्टोमोसिस करके बनाए गए विभाजन पर द्विभाजन धमनीविस्फार। संक्षेप: एसए = स्टंप एन्यूरिज्म; बीसीटी = ब्राचियोसेफेलिक ट्रंक; आरएससी = दाएं सबक्लेवियन धमनी; बीए = द्विभाजन धमनीविस्फार; सीसीए = सामान्य कैरोटिड धमनी; आरसीसीए = सही सीसीए; एलसीसीए = बाएं सीसीए। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

Figure 5
चित्रा 5: स्टंप और द्विभाजन धमनीविस्फार के हिस्टोलॉजिकल निष्कर्ष। हेमेटॉक्सिलिन-ईओसिन (2 गुना आवर्धन) से सना नमूना। (ए) ब्रैचियोसेफेलिक ट्रंक (बी) और दाईं सबक्लेवियन धमनी (सी) के साथ स्टंप एन्यूरिज्म (ए) का सूक्ष्म अवलोकन। (*) रक्त प्रवाह की दिशा को इंगित करता है। (बी) समीपस्थ बाएं सीसीए (बी), डिस्टल लेफ्ट सीसीए (सी), और डिस्टल राइट सीसीए (डी) के साथ द्विभाजन एन्यूरिज्म (ए) का सूक्ष्म अवलोकन। (*) रक्त प्रवाह की दिशा को इंगित करता है। (ए) और (बी) में इनसेट में, I) एन्यूरिज्म दीवार के ट्यूनिका इंटिमा का प्रतिनिधित्व करता है, II) ट्यूनिका मीडिया, और III) ट्यूनिका एक्सटर्ना (20 गुना आवर्धन)। संक्षेप: सीसीए = सामान्य कैरोटिड धमनी। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

अनुपूरक फाइल। कृपया इस फ़ाइल को डाउनलोड करने के लिए यहाँ क्लिक करें.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

एन्यूरिज्म निर्माण के लिए सबसे आम तकनीक में सही सीसीए की उत्पत्ति पर स्टंप एन्यूरिज्म का निर्माण शामिल है, या तो एक खुली या एंडोवास्कुलर विधि के माध्यम से। मॉडल को एक स्थिर गैर-बढ़ते एन्यूरिज्म के रूप में मान्य किया गया है जोसमय 20,21 के साथ खुला रहता है। दूसरी संभावित तकनीक में बाईं ओर दाएं सीसीए को एनास्टोमोसिस करके और द्विभाजन 14,22,23 पर एक धमनीविस्फार थैली को जोड़कर धमनी विभाजन धमनीविस्फार का माइक्रोसर्जिकल निर्माण शामिल है। यद्यपि दोनों विधियों ने एंडोवास्कुलर उपकरणों के परीक्षण और पैथोफिज़ियोलॉजी का अध्ययन करने के लिए उपयुक्तता दिखाई है, एन्यूरिज्म आकृति विज्ञान और इस प्रकार, इसमें शामिल हेमोडायनामिक बल और प्रवाह विशेषताएं काफी भिन्न हैं। यह देखते हुए कि मौजूदा मॉडल प्रति जानवर केवल एक धमनीविस्फार प्रकार के निर्माण की अनुमति देते हैं, स्टंप प्रकार के लोगों के साथ द्विभाजन प्रकार से एन्यूरिज्म के प्राकृतिक पाठ्यक्रम के बीच सीधी तुलना वर्तमान में मुश्किल है।

दरअसल, जानवरों के बीच शारीरिक अंतर (जैसे रक्तचाप या वाहिका की दीवार की सटीक कोलेजन सामग्री) को हमेशा एक प्रयोगात्मक सेटिंग में पूरी तरह से नियंत्रित नहीं किया जा सकता है और एन्यूरिज्म जीव विज्ञान और प्राकृतिक पाठ्यक्रम को प्रभावित कर सकता है। यह अध्ययन एक ही जानवर (या एक ही जानवर में) में स्टंप और द्विभाजन हेमोडायनामिक और विकृत दीवार स्थितियों दोनों के साथ एक खरगोश मॉडल बनाने की व्यवहार्यता को दर्शाता है। इस तकनीक ने कम रुग्णता और मृत्यु दर और उच्च पैटेंसी दर (90%) के साथ प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य धमनीविस्फार का उत्पादन किया। इस पद्धति का मुख्य दोष शास्त्रीय स्टंप या द्विभाजन मॉडल के निर्माण के लिए समान है- परिष्कृत प्रयोगशाला उपकरण और विशिष्ट माइक्रोसर्जिकल कौशल की आवश्यकता।

इस सर्जरी के दौरान विशेष रूप से दो चरणों को महत्वपूर्ण माना गया था: पहला सही सीसीए का विच्छेदन और जोखिम है जब तक कि इसकी उत्पत्ति ब्राचियोसेफेलिक ट्रंक में नहीं होती है। इस दृष्टिकोण के दौरान निम्नलिखित महत्वपूर्ण संरचनाएं विशेष रूप से जोखिम में हो सकती हैं: श्वासनली, जुगुलर नस और लारेंजियल तंत्रिका। चूंकि श्वासनली हेरफेर श्वसन को खराब कर सकता है, पिछला इंटुबैशन वायुमार्ग की स्थिरता सुनिश्चित करता है। इसके अलावा, सर्जरी लंबी और महत्वपूर्ण संरचनाओं के आसपास के क्षेत्र में होने के कारण, किसी भी शारीरिक विचलन को तुरंत पहचानने के लिए पूर्ण निगरानी सहायक होती है। सर्जन को श्वासनली पर प्रत्यक्ष दबाव या अत्यधिक कर्षण से बचने के लिए भी ध्यान देना चाहिए। जुगुलर नस सीधे कैरोटिड के बगल में चलती है और, कुछ मामलों में, इसका पालन करती है। किसी भी घाव से बचने के लिए अत्यधिक देखभाल की आवश्यकता होती है। हम गीले स्वैब के आवेदन से नस की रक्षा करने और इसे गीला रखने की सलाह देते हैं।

अंत में, पिछले अध्ययनों ने पहले से ही लारेंजियल नसों को संरक्षित करने के महत्व का वर्णन किया है। इन नसों पर कोई भी घाव पोस्टऑपरेटिव रूप से एक स्ट्रिडर की उपस्थिति का कारण बनता है जिसमें लगातार बिगड़ा हुआ श्वास और जानवर की मृत्यु की उच्च संभावना होती है। नसों के आयनोजेनिक घाव को रोकने के लिए, सीसीए विच्छेदन को धमनी के चारों ओर ऊतकों के कर्षण से बचना चाहिए। हम उन्हें विचलित करने के बजाय पालन करने वाले ऊतकों को काटने के लिए कैंची के उपयोग की सलाह देते हैं। सर्जरी के दौरान उन्हें दृश्य नियंत्रण में रखने के लिए मांसपेशियों के वापसी के बाद नसों को जल्द से जल्द पहचाना जाना चाहिए। दूसरा महत्वपूर्ण कदम इलास्टेस-पचने वाले एन्यूरिज्म के साथ एक तनाव रहित माइक्रो-एनास्टोमोसिस का निर्माण है। यह धमनीविस्फार इसकी दीवार संरचना का एक उच्च अध: पतन प्रस्तुत करता है, जो ऊतकों के हेरफेर में बाधा डालता है। इसके लिए अच्छे माइक्रोसर्जिकल कौशल की आवश्यकता होती है, और एक सीखने की अवस्था की उम्मीद की जानी चाहिए।

इसके अलावा, हम गर्दन के वाहिकाओं के सही आकार की गारंटी देने के लिए कम से कम 4.0 किलोग्राम (25 (±5) सप्ताह की औसत आयु) वजन वाले खरगोशों का चयन करने की सलाह देते हैं। शास्त्रीय एकल-स्टंप एन्यूरिज्म मॉडल में, साहित्य में मुख्य रिपोर्ट की गई जटिलता दाहिने सीसीए से उत्पन्न होने वाली ट्रेकियोओसोफेगल धमनियों के कारण इलास्टेस के आवेदन के बाद श्वासनली परिगलन थी। समस्या से बचने के लिए तकनीकों के कई संशोधनों का सुझाव पहले ही दिया जा चुका है 13,24,25,26। यह दृष्टिकोण इलास्टेस समाधान के किसी भी बहिर्वाह और इसी तरह की जटिलताओं से बचने के लिए इलास्टेस आवेदन से पहले इन शाखाओं और उनके जमावट की आसान पहचान की अनुमति देता है।

सर्जरी के दौरान लागू एंटीकोग्यूलेशन शासन में दाएं सीसीए पर पहले क्लिप आवेदन से पहले और क्लिप को हटाने के साथ-साथ बाएं सीसीए में परिसंचरण बहाल करने से पहले हेपरिन आवेदन होता है। यह अस्थायी प्रवाह रुकावट और पोत हेरफेर के कारण थ्रोम्बस गठन को प्रभावी ढंग से रोक सकता है। इसके अलावा, सीवन सामग्री और इलास्टेस के थ्रोम्बोजेनिक प्रभाव के कारण थ्रोम्बस गठन को रोकने के लिए सर्जरी के अंत के तुरंत बाद एस्पिरिन (10 मिलीग्राम / किग्रा IV) की एक अनूठी खुराक दी जाती है। यह प्रोटोकॉल थ्रोम्बोजेनिक घटनाओं के नियंत्रण और रक्तस्राव जटिलताओं को बढ़ाए बिना एन्यूरिज्म पैटेंसी सुनिश्चित करने की अनुमति देता है।

स्टंप मॉडल सबसे आम सैकुलर एन्यूरिज्म खरगोश मॉडल है और पहले से ही एंडोवास्कुलर थेरेपी के ट्रांसलेशनल अध्ययन के लिए कई बार उपयोग किया गया है। द्विभाजन मॉडल भी साहित्य में अच्छी तरह से वर्णित है और एन्यूरिज्म पैथोफिज़ियोलॉजी के अध्ययन और नई चिकित्सीय रणनीतियों के परीक्षण के लिए उपयुक्त है। हालांकि, दोनों मॉडल अलग-अलग आकृति विज्ञान दिखाते हैं, जो अलग-अलग हेमोडायनामिक विशेषताओं को इंगित करता है। यह ज्ञात है कि एन्यूरिज्म अधिमानतः द्विभाजन पर दिखाई देते हैं और यह वृद्धि दीवार कतरनी तनाव27,28 पर निर्भर है। पिछले प्रकाशनों ने द्विभाजन29 की तुलना में शल्य चिकित्सा द्वारा बनाए गए साइडवॉल एन्यूरिज्म में उच्च सहज घनास्त्रता और अन्य अधिक जटिल मॉडल8 की तुलना में प्रवाह विचलन के बाद स्टंप एन्यूरिज्म की उच्च रोड़ा दर को भी दिखाया; हालांकि, तुलना हमेशा दो अलग-अलग जानवरों के बीच थी।

वर्तमान अध्ययन में, 2-4 मिमी व्यास के मानक एन्यूरिज्म बनाए गए थे, जैसा कि पहले वर्णित 14,22,29,30,31,32,33,34,35,36 था। हमने तुलना के लिए द्विभाजन धमनीविस्फार के समान आकार के साथ एक स्टंप एन्यूरिज्म बनाने का लक्ष्य रखा। इस प्रकार, वर्तमान मात्रा कुछ छोटी है जैसा कि 5,8,10,11,13,21 बताया गया है। हालांकि दोनों एन्यूरिज्म ने 1 महीने के फॉलो-अप पर बढ़ने की प्रवृत्ति दिखाई। इस प्रकार, एक लंबी अनुवर्ती अवधि अधिक मात्रा के साथ धमनीविस्फार गठन को प्रेरित कर सकती है, जो मनुष्यों में एन्यूरिज्म के साथ बेहतर दीर्घकालिक तुलना की अनुमति देगी। इसके अतिरिक्त, हेमेटॉक्सिलिन-ईओसिन धुंधला होने के आधार पर ये हिस्टोलॉजिकल निष्कर्ष, एक सेलुलर धमनीविस्फार की दीवार और एक रैखिक या अव्यवस्थित पैटर्न में चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं की उपस्थिति दिखाते हैं, साथ ही लोचदार तंतुओं का विघटन (चित्रा 5)। ये परिणाम वर्तमान निष्कर्षों के साथ सहसंबंधित हैं जो मनुष्यों में खरगोश इलास्टेस-प्रेरित एन्यूरिज्म और इंट्राक्रैनील एन्यूरिज्म के बीच हिस्टोलॉजिकल समानताएं दिखाते हैं 11,32,37,38,39,40,41।

परिणाम एक ही सर्जिकल दृष्टिकोण का उपयोग करके स्टंप और द्विभाजन धमनीविस्फार दोनों बनाने की तकनीकी व्यवहार्यता दिखाते हैं। इस अध्ययन की सीमा छोटा नमूना आकार है, जो सांख्यिकीय विश्लेषण या स्टंप और द्विभाजन धमनीविस्फार के बीच हिस्टोलॉजिकल अंतर की वास्तविक तुलना की अनुमति नहीं देता है। फिर भी, यह मॉडल दोनों प्रकार के एन्यूरिज्म के फायदे और विशेषताओं को ठीक से निर्धारित करने के लिए भविष्य के प्रयोगों में विकास, टूटना, सहज रोड़ा और हिस्टोलॉजिकल परिवर्तनों के संदर्भ में दोनों एन्यूरिज्म के बीच अंतर की जांच करने की संभावना प्रदान करता है। इसके अतिरिक्त, यह नया सर्जिकल मॉडल एक जानवर में दो अलग-अलग विन्यास और प्रवाह स्थितियों में एंडोवास्कुलर उपकरणों के आवेदन की अनुमति देता है, साथ ही साथ एक अनूठी प्रक्रिया के दौरान भी। यह आवश्यक जानवरों की संख्या को कम करता है और संभावित रूप से प्रीक्लिनिकल परीक्षणों की दक्षता को बढ़ाता है।

निष्कर्ष निकालने के लिए, यह अध्ययन एक एकल जानवर के भीतर अलग-अलग प्रवाह स्थितियों और अत्यधिक विकृत दीवारों के साथ 2 एन्यूरिज्म बनाने के लिए एक प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य विधि का वर्णन करता है। प्रस्तावित मॉडल हेमोडायनामिक्स की भूमिका के संबंध में सैक्यूलर एन्यूरिज्म के प्राकृतिक पाठ्यक्रम और एंडोवास्कुलर उपचारों के प्रभावों की सीधी तुलना करने की अनुमति देता है। अंत में, यह एक कुशल मॉडल प्रदान करता है जो उपयोग किए गए जानवरों और समग्र प्रयोगात्मक लागतों को कम करने में योगदान देता है।

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

लेखक ों ने हितों के टकराव की घोषणा नहीं की है।

Acknowledgments

लेखक प्रोफेसर हैंस रुडोल्फ विडमर, डॉ लुका रेमंडा और प्रोफेसर जेवियर फैंडिनो को इस काम में उनके वैज्ञानिक समर्थन और तकनीकी योगदान के लिए धन्यवाद देते हैं। प्रक्रियाओं के दौरान उनकी सलाह के लिए ओल्गिका बेस्लैक और उनकी सहायता के लिए के नेटटेलबेक को विशेष धन्यवाद। इसके अलावा, हम डेनिएला कैसोनी डीवीएम, पीएचडी और मेड पशु चिकित्सक को धन्यवाद देते हैं। लुइसाना गार्सिया, पीडी डॉ एलेसेंड्रा बर्गाडानो, और डॉ कार्लोटा डेटो अपने समर्पित पशु चिकित्सा समर्थन के लिए।

Materials

Name Company Catalog Number Comments
4-0 resorbable suture Ethicon Inc., USA VCP292ZH
4-0 resorbable suture Ethicon Inc., USA VCP304H
6-0 non absorbable suture B. Braun, Germany C0766070
9-0 non absorbable suture B. Braun, Germany G1111140
Adrenaline Amino AG 1445419 any generic
Amiodarone Helvepharm AG 5078567 any generic
Anesthesia machine Dräger any other
Aspirin Sanofi-Aventis (Suisse) SA 622693 any generic
Atropine Labatec Pharma SA 6577083 any generic
Bandpass filter blue Thorlabs FD1B any other
Bandpass filter green Thorlabs FGV9 any other
Biemer vessel clip (2x) B. Braun Medical AG, Aesculap, Switzerland FD560R any other
Bipolar forceps any other
Bispectral index (neonatal) any other
Blood pressure cuff (neonatal) any other
Bycilces spotlight any other
Clamoxyl GlaxoSmithKline AG 758808 any generic
Dexmedetomidine Ever Pharma 136740-1 any generic
Elastase Sigma Aldrich E7885
Electrocardiogram electrodes
Ephedrine Amino AG 1435734
Esmolol OrPha Swiss GmbH 3284044
Fentanyl (intravenous use) Janssen-Cilag AG 98683
Fentanyl (transdermal) Mepha Pharma AG 4008286
Fluoresceine Curatis AG 5030376
Fragmin Pfizer PFE Switzerland GmbH 1906725
Heating pad or heating forced-air warming system
Isotonic sodium chloride solution (0.9%) Fresenius KABI 336769
Ketamine Pfizer PFE Switzerland GmbH 342261
lid retractor Approach
Lidocaine Streuli Pharma AG 747466
Longuettes
Metacam Boehringer Ingelheim P7626406 Medication
Methadone Streuli Pharma AG 1084546 Sedaton
Micro-forceps  curved Ulrich Swiss, Switzerland U52-015-15
Micro-forceps  straight 2x Ulrich Swiss, Switzerland U52-010-15
Microscissors Ulrich Swiss , Switzerland U52-327-15
Midazolam Accord Healthcare AG 7752484
Needle 23 G arteriotomy
Needle holder
O2-Face mask
Operation microscope Wild Heerbrugg
Papaverin Bichsel topical application
Povidone iodine Mundipharma Medical Company any generic
Prilocaine-lidocaine creme Emla
Propofol B. Braun Medical AG, Switzerland General anesthesia
Pulse oxymeter
Rectal temperature probe (neonatal)
Ringer Lactate Bioren Sintetica SA Infusion
Ropivacain Aspen Pharma Schweiz GmbH 1882249 Local anesthesia
Scalpell Swann-Morton 210
Small animal shaver
Soft tissue forceps
Soft tissue spreader
Stainless steel sponge bowls
Sterile micro swabs
Stethoscope
Surgery drape
Surgical scissors
Syringes 1 mL, 2 mL, and 5 mL
Tris-Buffer Sigma Aldrich 93302 Elastase solution
Vascular clip applicator B. Braun, Germany FT495T
Vein and arterial catheter 22 G
vessel loop Approach
video camera or smartphone
Vitarubin Streuli Pharma AG 6847559
Yasargil titan standard clip (2x) B. Braun Medical AG, Aesculap, Switzerland FT242T

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Grasso, G., Alafaci, C., Macdonald, R. L. Management of aneurysmal subarachnoid hemorrhage: State of the art and future perspectives. Surgical Neurology International. 8, 11 (2017).
  2. Raymond, J., et al. Long-term angiographic recurrences after selective endovascular treatment of aneurysms with detachable coils. Stroke. 34 (6), 1398-1403 (2003).
  3. Marbacher, S., Niemela, M., Hernesniemi, J., Frosen, J. Recurrence of endovascularly and microsurgically treated intracranial aneurysms-review of the putative role of aneurysm wall biology. Neurosurgical Review. 42 (1), 49-58 (2019).
  4. Thompson, J. W., et al. In vivo cerebral aneurysm models. Neurosurgical Focus. 47 (1), 20 (2019).
  5. Bouzeghrane, F., et al. In vivo experimental intracranial aneurysm models: a systematic review. American Journal of Neuroradiology. 31 (3), 418-423 (2010).
  6. Strange, F., Gruter, B. E., Fandino, J., Marbacher, S. Preclinical intracranial aneurysm models: a systematic review. Brain Sciences. 10 (3), 134 (2020).
  7. Marbacher, S., Strange, F., Frosen, J., Fandino, J. Preclinical extracranial aneurysm models for the study and treatment of brain aneurysms: A systematic review. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 40 (5), 922-938 (2020).
  8. Fahed, R., et al. Testing flow diversion in animal models: a systematic review. Neuroradiology. 58 (4), 375-382 (2016).
  9. Zeng, Z., et al. Hemodynamics and anatomy of elastase-induced rabbit aneurysm models: similarity to human cerebral aneurysms. American Journal of Neuroradiology. 32 (3), 595-601 (2011).
  10. Ding, Y. H., et al. Long-term patency of elastase-induced aneurysm model in rabbits. American Journal of Neuroradiology. 27 (1), 139-141 (2006).
  11. Short, J. G., et al. Elastase-induced saccular aneurysms in rabbits: comparison of geometric features with those of human aneurysms. American Journal of Neuroradiology. 22 (10), 1833-1837 (2001).
  12. Andereggen, L., et al. Three-dimensional visualization of aneurysm wall calcification by cerebral angiography: Technical case report. Journal of Clinical Neuroscience. 73, 290-293 (2020).
  13. Hoh, B. L., Rabinov, J. D., Pryor, J. C., Ogilvy, C. S. A modified technique for using elastase to create saccular aneurysms in animals that histologically and hemodynamically resemble aneurysms in human. Acta Neurochirurgica. 146 (7), 705-711 (2004).
  14. Wanderer, S., et al. Arterial pouch microsurgical bifurcation aneurysm model in the rabbit. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (159), e61157 (2020).
  15. Percie du Sert, N., et al. Reporting animal research: Explanation and elaboration for the ARRIVE guidelines 2.0. PLoS Biology. 18 (7), 3000411 (2020).
  16. Prescott, M. J., Lidster, K. Improving quality of science through better animal welfare: the NC3Rs strategy. Lab Animal. 46 (4), 152-156 (2017).
  17. Portier, K., Ida, K. K. The ASA Physical Status Classification: What is the evidence for recommending its use in veterinary anesthesia?-A systematic review. Frontiers in Veterinary Science. 5, 204 (2018).
  18. Gruter, B. E., et al. Fluorescence video angiography for evaluation of dynamic perfusion status in an aneurysm preclinical experimental setting. Operative Neurosurgery. 17 (4), 432-438 (2019).
  19. Strange, F., et al. Fluorescence angiography for evaluation of aneurysm perfusion and parent artery patency in rat and rabbit aneurysm models. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (149), e59782 (2019).
  20. Altes, T. A., et al. 1999 ARRS Executive Council Award. Creation of saccular aneurysms in the rabbit: a model suitable for testing endovascular devices. American Journal of Roentgenology. 174 (2), 349-354 (2000).
  21. Brinjikji, W., Ding, Y. H., Kallmes, D. F., Kadirvel, R. From bench to bedside: utility of the rabbit elastase aneurysm model in preclinical studies of intracranial aneurysm treatment. Journal of NeuroInterventional Surgery. 8 (5), 521-525 (2016).
  22. Sherif, C., Marbacher, S., Erhardt, S., Fandino, J. Improved microsurgical creation of venous pouch arterial bifurcation aneurysms in rabbits. American Journal of Neuroradiology. 32 (1), 165-169 (2011).
  23. Bavinzski, G., et al. Experimental bifurcation aneurysm: a model for in vivo evaluation of endovascular techniques. Minimally Invasive Neurosurgery. 41 (3), 129-132 (1998).
  24. Lewis, D. A., et al. Morbidity and mortality associated with creation of elastase-induced saccular aneurysms in a rabbit model. American Journal of Neuroradiology. 30 (1), 91-94 (2009).
  25. Wang, K., et al. Neck injury is critical to elastase-induced aneurysm model. American Journal of Neuroradiology. 30 (9), 1685-1687 (2009).
  26. Cesar, L., et al. Neurological deficits associated with the elastase-induced aneurysm model in rabbits. Neurological Research. 31 (4), 414-419 (2009).
  27. Aoki, T., Nishimura, M. The development and the use of experimental animal models to study the underlying mechanisms of CA formation. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 535921 (2011).
  28. Frosen, J., Cebral, J., Robertson, A. M., Aoki, T. Flow-induced, inflammation-mediated arterial wall remodeling in the formation and progression of intracranial aneurysms. Neurosurgical Focus. 47 (1), 21 (2019).
  29. Gruter, B. E., et al. Comparison of aneurysm patency and mural inflammation in an arterial rabbit sidewall and bifurcation aneurysm model under consideration of different wall conditions. Brain Sciences. 10 (4), 197 (2020).
  30. Marbacher, S., et al. The Helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (92), e51071 (2014).
  31. Marbacher, S., et al. Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. American Journal of Neuroradiology. 32 (4), 772-777 (2011).
  32. Marbacher, S., et al. Loss of mural cells leads to wall degeneration, aneurysm growth, and eventual rupture in a rat aneurysm model. Stroke. 45 (1), 248-254 (2014).
  33. Gruter, B. E., et al. Testing bioresorbable stent feasibility in a rat aneurysm model. Journal of Neurointerventional Surgery. 11 (10), 1050-1054 (2019).
  34. Nevzati, E., et al. Biodegradable magnesium stent treatment of saccular aneurysms in a rat model - Introduction of the surgical technique. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (128), e56359 (2017).
  35. Gruter, B. E., et al. Patterns of neointima formation after coil or stent treatment in a rat saccular sidewall aneurysm model. Stroke. 52 (3), 1043-1052 (2021).
  36. Wanderer, S., et al. Aspirin treatment prevents inflammation in experimental bifurcation aneurysms in New Zealand White rabbits. Journal of NeuroInterventional Surgery. , (2021).
  37. Lyu, Y., et al. An effective and simple way to establish eastase-induced middle carotid artery fusiform aneurysms in rabbits. Biomed Research International. 2020 (10), 1-12 (2020).
  38. Wang, S., et al. Rabbit aneurysm models mimic histologic wall types identified in human intracranial aneurysms. Journal of NeuroInterventional Surgery. 10 (4), 411-415 (2018).
  39. Kang, W., et al. A modified technique improved histology similarity to human intracranial aneurysm in rabbit aneurysm model. Neuroradiology Journal. 23 (5), 616-621 (2010).
  40. Frosen, J., et al. Remodeling of saccular cerebral artery aneurysm wall is associated with rupture: histological analysis of 24 unruptured and 42 ruptured cases. Stroke. 35 (10), 2287-2293 (2004).
  41. Frosen, J., et al. Growth factor receptor expression and remodeling of saccular cerebral artery aneurysm walls: implications for biological therapy preventing rupture. Neurosurgery. 58 (3), 534-541 (2006).

Tags

चिकित्सा अंक 170 एन्यूरिज्म एक्स्ट्राक्रेनियल सैक्यूलर एन्यूरिज्म द्विभाजन एन्यूरिज्म स्टंप एन्यूरिज्म पशु मॉडल खरगोश इलास्टेस
एक खरगोश में अलग-अलग हेमोडायनामिक्स के साथ दो सैकुलर इलास्टेस-डाइजेस्टेड एन्यूरिज्म का निर्माण
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Boillat, G., Franssen, T.,… More

Boillat, G., Franssen, T., Grüter, B., Wanderer, S., Catalano, K., Casoni, D., Andereggen, L., Marbacher, S. Creation of Two Saccular Elastase-Digested Aneurysms with Different Hemodynamics in One Rabbit. J. Vis. Exp. (170), e62518, doi:10.3791/62518 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter