Summary

マウスの肝内膵島移植中の注入後門脈静脈出血の最小化

Published: May 10, 2021
doi:

Summary

ここでは、マウスにおける門脈内膵島移植(臨床的には関連性はあるが技術的に困難な外科的処置)を成功裏に実施するための洗練された外科的処置を提示する。

Abstract

肝臓は現在、臨床現場でヒト膵島の主要な移植部位として受け入れられているが、膵島はほとんどのげっ歯類の前臨床膵島移植研究において腎臓カプセルの下に移植される。このモデルは、マウスの肝内膵島移植が技術的に困難であり、高い割合のマウスが外科的合併症、特に移植後の注射部位からの出血で死亡する可能性があるため、一般的に使用される。この研究では、注入後の門脈出血の発生率を最小限に抑えることができる2つの手順が実証されている。第1の方法は、吸収性止血ゼラチンスポンジを注射部位に適用し、第2の方法は、脂肪組織を出血を止めるための物理的障壁として使用することによって、まず脂肪組織を通って膵島注射針を貫通し、次いで門脈に浸透させることを含む。どちらの方法も、出血誘発マウスの死を効果的に防止することができた。肝内膵島移植の代表的な特徴である膵島分布と移植後の膵島血栓症の証拠を示す全肝臓切片が提示された。これらの改善されたプロトコルは、肝内膵島移植手順を改良し、実験室が前臨床環境で膵島の生存と機能を研究するための手順を設定するのに役立つ可能性がある。

Introduction

門脈を介した門脈内膵島移植(IIT)は、臨床現場でヒト膵島移植に最も一般的に使用される方法である。マウスIITモデルは、膵島移植を研究し、膵島移植の有効性を高めることができる有望な介入アプローチをテストする絶好の機会を提供します1。IITは1970年代に初めて記載され、いくつかのグループ12345によって使用されました。それは20006,7年にヒト膵島移植のブレークスルーの後に人気を取り戻しましたしかし、ほとんどの膵島移植研究は、その容易な成功のために実験的な膵島移植のための好ましい部位として腎臓カプセルを使用した。それどころか、IITはより技術的に困難であり、膵島移植研究にはあまり使用されていません8,9。しかし、IITとは異なり、腎臓カプセルの下に移植された膵島は、血栓症、炎症、および肝組織虚血を特徴とする即時の血液媒介性炎症反応に罹患しないため、肝臓に移植された膵島よりも優れた機能を有する。したがって、腎臓カプセルモデルは、ヒト膵島移植において膵島が遭遇するストレスを完全に模倣していない可能性がある10,11,12

マウスにおけるIITの主な合併症の1つは、移植後の注射部位からの出血であり、これは異なるマウス系統間で死亡率の10〜30%を引き起こす可能性がある12。この論文では、出血をより迅速かつ確実に止め、IIT後のマウスの死亡率を減らすために、2つの洗練されたアプローチが開発されました。これらの洗練された詳細を視覚的に実証することは、研究者がこの技術的に困難な手順の重要なステップを特定するのに役立ちます。さらに、レシピエントの肝臓における膵島移植片の位置は、移植膵島を有するヘマトキシリンおよびエオジン(H&E)染色肝臓組織(全切片)の組織学的検査によって決定された。

Protocol

すべての手順は、サウスカロライナ医科大学とチャールストンのラルフHジョンソン医療センターの施設動物ケアおよび使用委員会の承認を得て実施されました。 1. ストレプトゾトシン(STZ)を用いた糖尿病誘導 レシピエントマウス調製: すべてのマウスを個別に計量する。 グルコメーターを用いて尾静脈血サンプルから血糖値を確認する。 <…

Representative Results

我々は、門脈を介して同系および異系膵島移植を行った。膵島移植機能は、両方の膵島移植モデルにおいて用量依存的に観察された。C57BL/6マウスを用いた同系膵島移植モデルでは、250匹の膵島を移植すると、マウスが高血糖に戻る前に一過性正常血糖が生じた。500膵島を受けたマウスは、移植後30日を超えて正常血糖に達し、維持した(図2A)。両群のマウスは体重の増加…

Discussion

この研究では、出血を予防し、マウスIIT中のマウス死亡率を低下させる可能性のある2つの改善された手順が実証されている。この研究により、研究者は、移植後の即時血液媒介性炎症反応を研究する上でユニークな膵島移植モデルを視覚化することができます。IITモデルは、膵島移植に応答した膵島細胞の生存と肝虚血傷害を研究するための特徴的なモデルです19。ここで?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、退役軍人省(VA-ORD BLR&D Merit I01BX004536)と国立衛生研究所がHWに#1R01DK105183、DK120394、DK118529を助成した。言語編集のマイケル・リー氏とリンゼイ・スワビー氏に感謝します。

Materials

10% Neutral buffered formalin v/v Fisher Scientific 23426796
1 mL Syringe with needle AHS AH01T
20 mL Syringe BD 301031
25G x 5/8" hypodermic needles BD 305122
Alcohol prep pads, sterile Fisher Scientific 22-363-750
Animal Anesthesia system VetEquip, Inc. 901806
Buprenorphine hydrochloride, injection Par Sterile Products, LLC NDC 42023-179-05
Centrifuge tubes, 15 mL Fisher Scientific 0553859A
CMRL-1066 Corning 15110CV
DMEM Corning 10013CV
Ethanol, absolute (200 proof), molecular biology grade Fisher Scientific BP2818500
Extra fine Micro Dissecting scissors 4” straight sharp Roboz Surgical Instrument Co. RS-5882
Fetal bovine serum (FBS) Corning 35011CV
FreeStyle  Glucose meter Abbott Lite
FreeStyle Blood Glucose test strips Abbott Lite
Gelfoam (absorbable gelatin sponge, USP) Pharmacia & Upjohn Company 34201
Graefe forceps 4” extra delicate tip Roboz Surgical Instrument Co. RS-5136
Heated pad Amazon B07HMKMBKM
Hegar-Baumgartner Needle Holder 5.25” Roboz Surgical Instrument Co. RS-7850
Insulin syringe with 27-gauge needle BD 879588
Iodine prep pads Fisher Scientific 19-027048
Isoflurane Piramal Critical Care NDC 66794-017-25
Penicillin/streptomycin (P/S) HyClone SV30010
Polypropylene Suture 4-0 Med-Vet International MV-8683
Polypropylene Suture 5-0 Med-Vet International MV-8661
Sodium chloride, 0.9% intravenous solution VWR 2B1322Q
Streptozocin (STZ) Sigma S0130
Surgical drape, sterile Med-Vet International DR1826
Tissue Cassette Fisher Scientific 22-272416

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Cite This Article
Gou, W., Cui, W., Cui, Y., Wang, H. Minimizing Post-Infusion Portal Vein Bleeding during Intrahepatic Islet Transplantation in Mice. J. Vis. Exp. (171), e62530, doi:10.3791/62530 (2021).

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