Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

מודל עכבר in vivo של הרדמה תוך ורידית כוללת במהלך ניתוח כריתת סרטן

Published: June 8, 2021 doi: 10.3791/62747

Summary

מאמר זה מתאר שיטה למידול הרדמה תוך ורידית כוללת (TIVA) במהלך ניתוח כריתת סרטן בעכברים. המטרה היא לשכפל תכונות מרכזיות של אספקת הרדמה לחולים עם סרטן. השיטה מאפשרת לחקור כיצד טכניקת ההרדמה משפיעה על הישנות הסרטן לאחר ניתוח כריתה.

Abstract

הרדמה היא מרכיב שגרתי בטיפול בסרטן המשמש להליכי אבחון וטיפול. טכניקת ההרדמה מעורבת לאחרונה בהשפעה על תוצאות סרטן ארוכות טווח, אולי באמצעות אפנון של תגובות אדרנרגיות-דלקתיות המשפיעות על התנהגות התאים הסרטניים ועל תפקוד תאי מערכת החיסון. עדויות חדשות מצביעות על כך שהרדמה תוך ורידית כוללת מבוססת פרופופול (TIVA) עשויה להועיל לתוצאות סרטן ארוכות טווח בהשוואה להרדמה נדיפה בשאיפה. עם זאת, הממצאים הקליניים הזמינים אינם עקביים. מחקרים פרה-קליניים המזהים את המנגנונים הבסיסיים המעורבים נחוצים באופן קריטי כדי להנחות את התכנון של מחקרים קליניים שיזרזו תובנות. רוב המודלים הפרה-קליניים של הרדמה הושפעו משימוש בהרדמה במחקר in vivo ואינם מתוכננים באופן אופטימלי לחקור את השפעת ההרדמה עצמה כנקודת הקצה העיקרית. מאמר זה מתאר שיטה להרדמה של פרופופול-TIVA במודל עכברי של כריתת סרטן השד, המשכפל היבטים מרכזיים של העברה קלינית בחולות סרטן. המודל יכול לשמש לחקר מנגנוני הפעולה של הרדמה על תוצאות סרטן בסוגי סרטן מגוונים וניתן לבצע אקסטרפולציה לתחומים אחרים שאינם סרטניים של מחקר הרדמה פרה-קליני.

Introduction

יותר מ -60% מהחולים עם סרטן מקבלים הרדמה לכריתה כירורגית1. נכון לעכשיו, אין הנחיות קליניות ספציפיות הקובעות את הבחירה של הרדמה בשימוש בחולי סרטן. סקרים של מרדימים מצביעים על העדפה להרדמה נדיפה, כולל במהלך ניתוח סרטן 2,3. עם זאת, יש יותר ויותר עדויות לכך ששימוש בהרדמה תוך ורידית כוללת מבוססת פרופופול (TIVA) במהלך ניתוח סרטן עשוי להיות קשור לתוצאות משופרות לאחר הניתוח (הישרדות ללא התקדמות, הישרדות כוללת) בהשוואה להרדמה נדיפה4. מחקרים קליניים מאוחרים יותר ממשיכים לדווח על תוצאות סותרות 5,6,7,8. ממצאים אלה תומכים בצורך במחקרים פרה-קליניים כדי להבין טוב יותר את ההשפעות המכניסטיות של חומרי הרדמה שונים על תוצאות הקשורות לסרטן.

עם זאת, מחקרי in vivo המדגימים ניתוח סרטן, הרדמה היא לעתים קרובות חלק מקרי של ההליך. הרציונל לבחירת ההרדמה הוא לעתים קרובות לא המוקד של תכנון הניסוי, והשפעתו על נקודות קצה הקשורות לסרטן עשויה שלא להיות מוערכת. לדוגמה, מחקרי in vivo הדורשים תחזוקה של הרדמה לניתוחי סרטן משתמשים בדרך כלל בהרדמה נדיפה בשאיפה9. כאשר נעשה שימוש בפרופופול במחקרי in vivo , הוא נמסר על ידי מינון בולוס יחיד עם אספקה תוך-צפקית, שאינה משכפלת פרוטוקולים קליניים של הרדמה אונקו-הרדמה10. גישה זו של מתן פרופופול גורמת להרדמה קלה המתאימה להליכים מהירים. עם זאת, הוא אינו מאפשר תחזוקה של הרדמה הנדרשת לניתוח כריתת סרטן אשר עשוי להיות ממושך. יתר על כן, קינטיקה הקליטה של אספקה תוך-צפקית נבדלת משיטות הניהול הקליניות.

מודל של TIVA מבוסס פרופופול לניתוח כריתת סרטן פותח כדי לענות על צורך זה. פרוטוקול לתחזוקה מתמשכת של הרדמה עם טיטרציה של חומר ההרדמה כדי לאפשר תגובה לגירוי הניתוחי פותח כדי לשכפל היבטים מרכזיים של מתן הרדמה לחולים שעברו ניתוח סרטן. הפרוטוקול המתקבל משמש עם מודל עכבר של סרטן כדי לספק TIVA במהלך ניתוח כריתת סרטן. ההשפעה על תוצאות הקשורות לסרטן בטווח הקצר והארוך מוערכת.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

כל המחקרים בבעלי חיים נערכו באישור הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים באוניברסיטת מונאש. במחקר זה נעשה שימוש בנקבות עכברי Balb/c בגילאי 6-8 שבועות.

1. הכן תאים סרטניים

  1. תרבית תאי גידול במדיום. תרבית 66cl4 תאי סרטן החלב מורין באלפא-MEM המכילים 10% FBS ו-200 מ"מ גלוטמין. תאים צריכים טקסט שלילי עבור mycoplasma. אופציונלי: השתמש בתאים שעברו התמרה יציבה כדי לבטא לוציפראז גחלילית להדמיית ביולומינסנציה כדי לאפשר ניטור הישנות סרטן לאחר ניתוח כריתה11 (ראה שלב 4).
    הערה: קו התאים והמדיום שהוזכרו לעיל שימשו במחקר זה.
  2. לגדל תאים ב-37 מעלות צלזיוס עם 5% CO2. מעבר תאים באופן אספטי במכסה המנוע במפגש של <80%. השתמש בתאים בעלי מעבר נמוך בשלב הגדילה הלוגריתמי לקבלת תוצאות in vivo מיטביות.
  3. הרם את התאים הדבקים עם 0.5 מ"ג/מ"ל של טריפסין ב- PBS עם 10 mM EDTA; 2 מ"ל עבור בקבוק T75. כאשר מורמים, יש להוסיף טריפסין בינוני להשבתה, ולשטוף את התאים ב-PBS.
  4. לספור את התאים באמצעות hemocytometer. לדלל את התאים ב- PBS להזרקה. עבור 66cl4 תאי סרטן החלב, להזריק 1 x 105 תאים ב 20 μL של PBS לכל עכבר.
  5. מניחים את התאים על קרח לפני ההזרקה.

2. צור מודל עכבר של סרטן השד

  1. השתמש 4% isoflurane כדי להרדים את העכבר בתא אינדוקציה. לאחר מכן, לשמור על הרדמה עם 2%-3% isoflurane באמצעות חרוט האף. אשר הרדמה נכונה על ידי חוסר תגובה לצביטת הבוהן.
  2. הכן את אתר ההזרקה על ידי ניגוב אזור השומן השמאלי הרביעי של החלב באמצעות ספוגית אלכוהול חד פעמית.
  3. שאבו תאי גידול (ראו שלב 1.4) לתוך מזרק המילטון 25 μL המחובר למחט היפודרמית סטרילית של 27 גרם.
  4. להזריק את התאים לתוך הפטפד הרביעי השמאלי של החלב. השתמש מלקחיים כדי לאבטח ולהרים את העור. מזריקים כ-1 מ"מ מהפטמה.
  5. אופציונלי: אם תאים מתויגים עם לוציפראז, אשר הזרקה מוצלחת של תאי הגידול על ידי הדמיה bioluminescence. הזרקת 100 μL של 150 מ"ג/ק"ג D-לוציפרין לווריד הזנב הצדדי של העכברים המרדימים באמצעות מזרק אינסולין של 0.5 מ"ל עם מחט היפודרמית של 30 גרם.
  6. אופציונלי: הנח את העכבר במערכת הדמיה ביולומינסנציה כאשר משטח השומן של החלב פונה כלפי מעלה. המתן 2 דקות מהזרקת לוציפרין לספיגת רקמות אופטימלית של לוציפרין, ולאחר מכן תמונה במשך 10 שניות.
  7. הניחו את העכבר בכלוב נקי ואפשרו לו להתאושש מההרדמה.
  8. המשך לעקוב אחר רווחת בעלי החיים בהתאם להנחיות האתיקה המוסדיות של בעלי חיים.

3. גרום הרדמה יציבה עם אספקה תוך ורידית של פרופופול

  1. עקוב אחר צמיחת הגידול הראשוני באמצעות מדידת קליפר וחשב את נפח הגידול באמצעות המשוואה: נפח (מ"מ3) = (אורך x (רוחב)2 ÷ 2 ).
  2. בצע ניתוח כריתת גידול בעכברים כאשר הגידול הראשוני מגיע לנפח הנדרש (כאן, 80-90 מ"מ3).
  3. הגדירו משאבת מזרק אוטומטית עם מזרק אינסולין 30 G 1 מ"ל המכיל נוסחת פרופופול (2% ליפורו פרופופול) (איור 1A).
  4. השרה הרדמה של העכבר בתא אינדוקציה עם 3% sevoflurane או isoflurane.
    הערה: כאן, sevoflurane שימש כמו זה נדיף השולט בשימוש קליני.
  5. מעבירים את העכבר למשטח חימום בטמפרטורה של 37°C למשך הניתוח. שמור לזמן קצר על הרדמה עם 2%-3% sevoflurane באמצעות חרוט האף.
  6. יש למרוח חומר סיכה מימי על העיניים כדי למנוע התייבשות.
  7. להזריק 0.05 מ"ג / ק"ג של buprenorphine תת עורית עבור משכך כאבים.
  8. כדי להתכונן לניתוח, לגלח את הבטן ולהכין את העור לניתוח עם פתרון יוד-פובידון. נגבו את העור באמצעות אלכוהול או מגבון סטרילי.
  9. כדי לספק TIVA מבוסס פרופופול, cannulate את וריד הזנב לרוחב באמצעות מחט היפודרמית סטרילית 30 G המחוברת לקטטר פוליאוריתן סטרילי. אשרו את המיקום הנכון באמצעות פלאשבק דם לתוך הקטטר (איור 1B). התאם את אספקת sevoflurane כנדרש במהלך קנולציה תוך ורידית כדי לשמור על עומק יציב של הרדמה המודגם על ידי אובדן של קרנית רפלקס הדוושה, וקצב הנשימה < 100 נשימות לדקה.
  10. יש להתחיל את השימוש בפרופופול-TIVA על ידי מתן 2% פרופופול כבולוס ראשוני של 27 מ"ג/ק"ג למשך למעלה מדקה אחת. להפסיק את ניהול sevoflurane.
  11. המשך את העירוי של פרופופול בקצב תחזוקה של 2.2-4.0 מ"ג/ק"ג/דקה כדי לשמור על עומק הרדמה יציב למשך הניתוח (איור 1C).

4. כריתת הגידול הראשוני

  1. בצע חתך ישר של 1 ס"מ נחות מהגידול באזור של השומן הרביעי השמאלי של החלב. בזהירות לכרות את הגידול ואת הצומת הלימפה המפשעה השמאלית באמצעות דיסקציה עם מלקחיים קהים.
  2. אופציונלי: אם אתה משתמש בתאי גידול המתויגים על-ידי לוציפראז, השתמש בהדמיית ביולומינסנציה כדי לאשר שולי ניתוח ברורים. יש להזריק 150 מ"ג/ק"ג D-לוציפרין לווריד הזנב הלטרלי, להמתין 2 דקות ולאחר מכן לצלם במשך 60 שניות באמצעות מערכת הדמיה ביולומינסנציה. אם מזוהה גידול שיורי, כריתת רקמה נוספת ממשטח השומן של החלב ותמונה מחדש כדי להשיג שוליים ברורים.
  3. ודא hemostasis באתר כירורגי ולסגור את העור באמצעות 5-0 תפרים ניילון. ודא כי הפרווה אינה נכנסת לאתר הניתוח.
  4. בסיום ניתוח כריתה, להפסיק הרדמה. הניחו את העכבר בכלוב נקי על כרית חימום של 37 מעלות צלזיוס ואפשרו לו להתאושש מההרדמה.
  5. עקוב כל 15 דקות לאחר ההרדמה עד שהעכבר חזר לערנות רגילה. לאחר מכן, עקוב אחר העכבר כל 12 שעות במשך 48 שעות לאחר הניתוח.
  6. לתת 0.05 מ"ג / ק"ג של buprenorphine תת עורית כל 12 שעות במשך 48 שעות לאחר הניתוח.
  7. לאחר 7-10 ימים, יש להסיר את התפרים באמצעות חותכי תפרים מעוקלים סטריליים בהרדמה קצרה של סבופלוראן או איזופלוראן.

5. עקוב אחר הישנות סרטן באמצעות הדמיית in vivo

  1. השתמש בהדמיית ביולומינסנציה כדי לעקוב אחר הישנות סרטן לאחר ניתוח כריתה באופן לא פולשני. השתמש במערכת הדמיה bioluminescence כדי לנטר את העכברים פעם בשבוע כדי להעיד על הישנות הגידול הראשוני או הישנות מרוחקת, החל מהשבוע שלאחר הניתוח.
  2. לגרום הרדמה של העכבר בתא אינדוקציה עם 4% isoflurane. לאחר מכן, העבר את העכבר לכרית חימום של 37 מעלות צלזיוס למשך ההרדמה ושמור על הרדמה עם 2%-4% איזופלוראן באמצעות חרוט אף.
  3. יש למרוח חומר סיכה מימי על העיניים כדי למנוע התייבשות.
  4. להזריק D-לוציפרין 150 מ"ג/ק"ג לווריד הזנב הצדדי. המתן 2 דקות, ולאחר מכן מדוד bioluminescence על פני חשיפה של 60 שניות כדי לזהות הישנות של הגידול הראשוני או גרורות מרוחקות.
  5. אם הגידול הראשוני חוזר והופך מוחשי, התחל במעקב אחר צמיחת הגידול באמצעות מדידות קליפר.
  6. בסוף הניסוי, הורגים את העכברים באופן אנושי על פי הפרוטוקול המאושר. כאן, CO2 שימש, ואחריו נקע צוואר הרחם.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

שיטה זו מתארת מודל של הרדמה תוך ורידית כוללת (TIVA) עם פרופופול במהלך ניתוח כריתת סרטן בעכברים. פרופופול מועבר במודל עכבר זה דרך קטטר תוך ורידי באמצעות משאבת מזרק (איור 1A,B) כדי לשכפל את העברת TIVA בסביבה הקלינית של הרדמה לניתוח סרטן. השימוש במשאבת המזרק ממזער את החשיפה להרדמה נדיפה בכך שהוא מאפשר המרה מהירה מאינדוקציה ראשונית על ידי הרדמה אינהלציונית להעברה תוך ורידית.

לאחר שהושגה הרדמה יציבה על ידי TIVA מבוסס פרופופול, נכרת גידול החלב הראשוני. נעשה שימוש בהדמיית ביולומינסנציה in vivo כדי לאשר כריתה מלאה של הגידול הראשוני (איור 2). ניטור קבוע של עכברים על-ידי הדמיה לא פולשנית של in vivo bioluminescence זיהה הישנות מרוחקת על-ידי תאי גידול המתויגים על-ידי לוציפראז בריאה (איור 2). שיטה זו מתאימה גם למעקב אחר הישנות מקומית בפטפד החלב.

בנוסף למעקב אחר אירועים ארוכי טווח כגון הישנות, המודל עשוי לשמש להערכת אירועים המתרחשים במהלך התקופה הפריאופרטיבית. אירועים מוקדמים אלה עשויים לספק תובנה מכניסטית לגבי ההשפעות של הרדמה וגורמים כירורגיים אחרים על תוצאות הקשורות לסרטן. עשרים וארבע שעות לאחר ניתוח הסרטן תחת פרופופול, נעשה שימוש בבדיקה חיסונית הקשורה לאנזים מולטיפלקס כדי לכמת ציטוקינים במחזור הדם (איור 3). ציטוקינים הוערכו ב-7 עכברים; גודל הקבוצה המתאים יושפע מגודל ההשפעה של נקודת הקצה.

Figure 1
איור 1: מערך ניסיוני עבור TIVA מבוסס פרופופול. (A) משאבת מזרק משמשת כדי להבטיח אספקה מבוקרת של פרופופול ממזרק אינסולין של 1 מ"ל. (B) פרופופול מועבר לווריד הזנב הלטרלי על ידי קטטר תוך ורידי, המחובר למשאבת מזרק, באמצעות מחט של 30 גרם. הכוכבית מציגה את נקודת החדרת המחט. (C) סכמטית הממחישה את ריכוז הפרופופול בפלזמה המושג על ידי מתן רציף של בולוס ואחריו עירוי קבוע באמצעות משאבת המזרק, בהשוואה להעברה על ידי בולוס או עירוי בלבד. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.

Figure 2
איור 2: התקדמות הסרטן לאחר כריתה כירורגית של גידול החלב הראשוני תחת TIVA מבוסס פרופופול. נעשה שימוש בהדמיית ביולומינסנציה לא פולשנית של תאי גידול המתויגים על ידי לוציפראז כדי לעקוב אחר הצמיחה הראשונית של צמיחת הגידול הראשונית, כריתה כירורגית מוצלחת, והישנות מרוחקת לאחר מכן לריאה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.

Figure 3
איור 3: רמות ציטוקינים במחזור הדם שנמדדו לאחר כריתת סרטן תחת TIVA מבוסס פרופופול. בדיקה חיסונית הקשורה לאנזים מולטיפלקס שימשה לכימות ציטוקינים בפלזמה 24 שעות לאחר הניתוח. כל נקודת נתונים מייצגת נתונים מעכבר אחד. קווים מציגים ממוצע ושגיאת תקן (N = 4-7). אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

מחקר זה מדווח על פרוטוקול למתן הרדמה תוך ורידית כוללת (TIVA) עם פרופופול במודל עכברי של סרטן השד המשכפל היבטים מרכזיים של הפרקטיקה הקלינית עבור TIVA בחולות הזקוקות לניתוח סרטן. הפרוטוקול מאפשר לחקור הן תוצאות רלוונטיות מבחינה קלינית לטווח הקצר והן לטווח הארוך לאחר ניתוח סרטן במודל עכברי של התקדמות הסרטן, כולל מדידת רמות הציטוקינים והישנות הסרטן (איור 2, ואיור 3). המתודולוגיה תהיה שימושית להערכת ההשפעות של TIVA על תוצאות הקשורות לסרטן והשוואתה עם טכניקות הרדמה אחרות כגון הרדמה נדיפה.

בניגוד לפרוטוקולים קיימים המספקים בולוס תוך-צפקי יחיד של פרופופול להרגעה במהלך התערבויות קלות כגון מתן דגימת דם10, פרוטוקול זה מאפשר אספקה תוך ורידית ממושכת של פרופופול לשמירה על הרדמה במהלך התערבויות גדולות כגון ניתוח. הן מינון האינדוקציה והן מינון התחזוקה של פרופופול טופלו בקפידה כדי לייעל את עומק ההרדמה המתאים להתערבויות כירורגיות גדולות תוך מזעור התמותה מתת לחץ דם או דום לב. נמצא כי ניתן להימנע מיתר לחץ דם על ידי שימוש במינון אינדוקציה קפדני של 27 מ"ג/ק"ג הניתן מעל 60 שניות, עם טיטרציה בו-זמנית והפסקת ה-sevoflurane בשאיפה. התחזוקה הושגה באמצעות עירוי של פרופופול במינון 2.2-4.0 מ"ג/ק"ג/דקה. במהלך התערבויות כירורגיות גדולות, כגון כריתת סרטן, טיטרציה בטווח זה הייתה חשובה כדי להגיב ולטשטש את גודל הגירוי הניתוחי. זה משכפל את הפרקטיקה הקלינית ומונע הרדמה במינון יתר, שעלולה לגרום ליתר לחץ דם או למוות, או מינון חסר, מה שעלול לגרום להופעת הרדמה, תנועה או לחץ כירורגי.

מגבלה של המודל היא שימוש קצר בהרדמה נדיפה כדי לגרום להרדמה לפני ההרדמה. גישה זו נבחרה בגלל הקלות של cannulation לאחר אינדוקציה של הרדמה, המאפשר משלוח מהיר של מנה טיפולית של פרופופול להמשיך הרדמה. בנוסף, עכברים הורדו לזמן קצר בהרדמה נדיפה לחיסון תאי גידול, להסרת תפרים ולהדמיה. Sevoflurane שימש להרדמה נדיפה במהלך ניתוח כריתה כפי שהוא משמש לעתים קרובות בפועל קליני. עם זאת, isoflurane משמש גם בפועל קליני. מחקרים עתידיים עשויים להשתמש בסוכן יחיד לכל פרקי ההרדמה באינהלציה. עם ניסיון, פחות מ -2 דקות חלפו מאובדן רפלקס ימין בתגובה לחשיפה להרדמה נדיפה לתחילת מינון פרופופול. עם זאת, עבור ניתוחים שמתכוונים להשוות בין TIVA המבוסס על פרופופול לבין טכניקות הרדמה נדיפה בשאיפה, הפרשנות עשויה להתבלבל אפילו על ידי שימוש קצר בהרדמה נדיפה.

גישה חלופית להשראת הרדמה נדיפה היא לתמרן את וריד הזנב הצדדי של עכבר ער. אמנם זה לא מתאים לכל המצבים, אבל זה עשוי לספק חלופה אינדוקציה על ידי הרדמה בשאיפה. עם זאת, תנועה של העכבר ער עלולה לגרום לניתוק הצינורית, מה שיוביל לכישלון אינדוקציה של הרדמה. בנוסף, תנועה של המחט יכולה לגרום extravasation של propofol מן הווריד, אשר מעמיד את הזנב בסיכון של נמק רקמות. יש לכך השלכות רווחה על העכבר, וכל הפעלה אדרנרגית הקשורה כתוצאה מלחץ פיזיולוגי עלולה להשפיע על תוקפן של התוצאות הנצפות11.

מגבלה פוטנציאלית נוספת היא השימוש בבופרנורפרין כמשכך כאבים לאחר הניתוח. אופיואידים עשויים לווסת תגובות דלקתיות וחיסוניות לאחר הניתוח12,13. Buprenorphine נבחר עבור משכך כאבים כמו ההשפעות שלה על התגובה החיסונית הם פחות מאשר עבור אופיאטיםאחרים 13. עם זאת, מחקרים עתידיים עשויים לשקול שימוש בחומרים משככי כאבים שאינם אופיואידים.

למרות ההתקדמות בטיפול האונקולוגי, הישנות סרטן מקומית ומרוחקת יכולה להתרחש לאחר ניתוח ונשארת גורם דומיננטי לתמותה בחולי סרטן. מטופלים רבים ייחשפו להרדמה, לעיתים פעמים רבות, במהלך הליכים ניתוחיים אבחוניים וטיפוליים. גוף הולך וגדל של עדויות ממחקרי in vivo ו - in vitro מרמז על חומרי הרדמה בוויסות התגובה הפריאופרטיבית לניתוח והשפעה על היבטים מגוונים של ביולוגיה של תאי הגידול14. כדי להבין טוב יותר את ההשפעה של חומרי הרדמה על התקדמות הסרטן, המודל של הרדמה תוך ורידית של פרופופול שפותח כאן יהיה חשוב במחקר פרה-קליני מכניסטי עתידי. מודל זה עשוי לשמש כדי לחקור את המנגנונים העומדים בבסיס ההשפעות של חומרי הרדמה על אימונומודולציה, תגובה דלקתית פריאופרטיבית וצמיחה ופלישה של תאי גידול. יתר על כן, מודל זה יכול להיות אקסטרפולציה לשימוש במחקרים שאינם ניתוחי סרטן שבהם חומרי הרדמה עשויים להשפיע על מערכות אחרות, כגון ניתוחי לב, מחקר טראומה או מחלה קריטית (למשל, אלח דם) שכן פרופופול הוא הרגעה נפוצה המשמשת ביחידות לטיפול נמרץ.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

המחברים מצהירים כי אין אינטרסים כלכליים מתחרים.

Acknowledgments

המחברים מבקשים להודות לחברי המעבדה העצבית-חיסונית לסרטן ולד"ר קמרון נוול במכון מונאש למדעי הרוקחות, אוניברסיטת מונאש, פארקוויל. עבודה זו נתמכה על ידי מענקים מהמועצה הלאומית לבריאות ומחקר רפואי 1147498, הקרן הלאומית לסרטן השד IIRS-20-025, המכללה האוסטרלית והניו זילנדית להרדמה (ANZCA), Perpetual ו- CTC לטיפול בסרטן.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.9% saline Fresnius Kabi AUST R 197198
Artery forceps Proscitech TS1322-140
Buprenorphine Temgesic TEMG I
Heated surgical mat Custom -
Hypodermic needle (30 G, 1 mL insulin syringe) Terumo NN3013R
IVIS Lumina PerkinElmer 126274
Luciferin Promega P1041/2/3
Polyurethane catheter Intramedic 427401
Povidone Iodine Betadine AUST R 29562
Propofol Lipuro, 2% Braun 3521490
Sevoflurane Baxter ANZ2L9117
Sevoflurane vaporiser Vetquip VQ1334
Sterile gauze Multigate Medical Products 11-600A
Surgical scissors Proscitech TS1044
Sutures, 5-0 nylon Dynek V504
Syringe pump Harvard Apparatus 70-4500
Syringes (1 mL) Terumo SS+01T

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Sullivan, R., et al. Global cancer surgery: delivering safe, affordable, and timely cancer surgery. Lancet Oncology. 16 (11), 1193-1224 (2015).
  2. Lim, J. A., et al. The effect of propofol and sevoflurane on cancer cell, natural killer cell, and cytotoxic T lymphocyte function in patients undergoing breast cancer surgery: an in vitro analysis. BMC Cancer. 18 (1), 159 (2018).
  3. Pandit, J. J., et al. 5th National Audit Project (NAP5) on accidental awareness during general anesthesia: protocol, methods, and analysis of data. British Journal of Anaesthesia. 113 (4), 540-548 (2014).
  4. Yap, A., Lopez-Olivo, M. A., Dubowitz, J., Hiller, J., Riedel, B. Anesthetic technique and cancer outcomes: a meta-analysis of total intravenous versus volatile anesthesia. Canadian Journal of Anesthesia. 66 (5), 546-561 (2019).
  5. Makito, K., Matsui, H., Fushimi, K., Yasunaga, H. Volatile versus total intravenous anesthesia for cancer prognosis in patients having digestive cancer surgery. Anesthesiology. 133 (4), 764-773 (2020).
  6. Oh, T. K., Kim, H. H., Jeon, Y. T. Retrospective analysis of 1-year mortality after gastric cancer surgery: Total intravenous anesthesia versus volatile anesthesia. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 63 (9), 1169-1177 (2019).
  7. Lai, H. C., et al. Propofol-based total intravenous anesthesia is associated with better survival than desflurane anesthesia in hepatectomy for hepatocellular carcinoma: a retrospective cohort study. British Journal of Anaesthesia. 123 (2), 151-160 (2019).
  8. Hong, B., et al. Anesthetics and long-term survival after cancer surgery-total intravenous versus volatile anesthesia: a retrospective study. BMC Anesthesiology. 19 (1), 233 (2019).
  9. Flecknell, P. Special Techniques. Laboratory Animal Anaesthesia. Fourth edition. , Elsevier. Chapter 3 (2015).
  10. Cicero, L., Fazzotta, S., Palumbo, V. D., Cassata, G., Lo Monte, A. I. Anesthesia protocols in laboratory animals used for scientific purposes. Acta Biomedica. 89 (3), 337-342 (2018).
  11. Sloan, E. K., et al. The sympathetic nervous system induces a metastatic switch in primary breast cancer. Cancer Research. 70 (18), 7042-7052 (2010).
  12. Al-Hashimi, M., Scott, S. W. M., Thompson, J. P., Lambert, D. G. Opioids and immune modulation: more questions than answers. British Journal of Anaesthesia. 111 (1), 80-88 (2013).
  13. DeMarco, G. J., Nunamaker, E. A. A Review of the effects of pain and analgesia on immune system function and inflammation: relevance for preclinical studies. Comparative Medicine. 69 (6), 520-534 (2019).
  14. Hiller, J. G., Perry, N. J., Poulogiannis, G., Riedel, B., Sloan, E. K. Perioperative events influence cancer recurrence risk after surgery. Nature Reviews Clinical Oncology. 15 (4), 205-218 (2018).

Tags

רפואה גיליון 172
מודל עכבר <em>in vivo</em> של הרדמה תוך ורידית כוללת במהלך ניתוח כריתת סרטן
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Dubowitz, J. A., Jost-Brinkmann, F., More

Dubowitz, J. A., Jost-Brinkmann, F., Ziegler, A. I., Gillis, R. D., Riedel, B., Sloan, E. K. An In Vivo Mouse Model of Total Intravenous Anesthesia During Cancer Resection Surgery. J. Vis. Exp. (172), e62747, doi:10.3791/62747 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter