Summary
このプロトコルは、放射性標識アミノ酸取り込みアッセイを提示し、初代細胞または単離された骨のいずれかにおけるアミノ酸消費を評価するのに役立ちます。
Abstract
骨の発達と恒常性は、骨形成骨芽細胞の分化と活性に依存します。骨芽細胞の分化は、増殖とそれに続くタンパク質合成、そして最終的には骨基質分泌によって順次特徴付けられる。増殖およびタンパク質合成はアミノ酸の一定の供給を必要とする。それにもかかわらず、骨芽細胞におけるアミノ酸消費についてはほとんど知られていない。ここでは、放射性標識アミノ酸を使用してアミノ酸消費量を測定するように設計された非常に感度の高いプロトコルについて説明します。この方法は、骨芽細胞の増殖または分化、薬物または成長因子の治療、またはさまざまな遺伝子操作に関連するアミノ酸取り込みの変化を定量化するために最適化されています。重要なことに、この方法は、インビ トロ または単離された骨シャフトエクス ビボで培養細胞株または初代細胞におけるアミノ酸消費を定量化するために互換的に使用することができる。最後に、我々の方法は、グルコースおよび他の放射性標識栄養素と同様に、任意のアミノ酸の輸送を測定するために容易に適合させることができる。
Introduction
アミノ酸は、各アミノ酸に特異的な可変側鎖を有するアミノ(−NH2)およびカルボキシル(−COOH)官能基を含む有機化合物である。一般に、タンパク質の基本構成成分としてアミノ酸がよく知られている。最近では、アミノ酸の新たな用途や機能が解明されています。例えば、個々のアミノ酸を代謝して、生体エネルギーに寄与する中間代謝産物を生成し、酵素補因子として機能し、活性酸素種を調節し、または他のアミノ酸を合成するために使用される1,2,3,4,5,6,7,8,9,10 .多くの研究は、アミノ酸代謝が様々な状況における細胞の多能性、増殖、および分化に重要であることを示しています3、6、11、12、13、14、15、16、17。
骨芽細胞は、コラーゲン1型に富む細胞外骨基質を産生および分泌する分泌細胞です。骨形成中に高いタンパク質合成速度を維持するために、骨芽細胞はアミノ酸の一定の供給を必要とします。この需要を満たすために、骨芽細胞は積極的にアミノ酸を獲得しなければなりません。これと一致して、最近の研究は、骨芽細胞活動および骨形成におけるアミノ酸の取り込みおよび代謝の重要性を明らかにしている15、16、17、18、19、20。
骨芽細胞は、細胞外環境、細胞内タンパク質分解、de novoアミノ酸生合成の3つの主要なソースから細胞アミノ酸を獲得します。このプロトコルは、細胞外環境からのアミノ酸取り込みの評価に焦点を当てます。アミノ酸の取り込みを測定する最も一般的な方法は、放射性標識(例えば、3Hまたは14C)または重同位体標識(例えば、13C)アミノ酸のいずれかに依存する。重同位体アッセイは、アミノ酸の取り込みおよび代謝をより徹底的かつ安全に分析することができるが、サンプルの調製および誘導体化に1日かかり、サンプル数に応じて質量分析計で分析するのに数日かかるため、完了するまでに数日かかるため、より時間がかかる21,22。比較すると、放射性標識アミノ酸取り込みアッセイは、下流代謝について有益ではありませんが、安価で比較的迅速であり、実験の開始から2〜3時間以内に完了することができます23,24。ここでは、in vitroで培養された初代細胞または細胞株または個々の骨軸における放射性標識アミノ酸の取り込みを評価するために設計された、容易に変更可能な基本プロトコルについて説明します。これら2つのプロトコルの適用は、他の放射性標識アミノ酸および他の骨関連細胞型および組織に拡張することができる。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
本明細書に記載されているすべてのマウス手順は、ダラスのテキサス大学サウスウェスタン医療センターの動物研究委員会によって承認されました。放射線プロトコルは、ダラスのテキサス大学サウスウェスタン医療センターの放射線安全諮問委員会によって承認されました。
1. 細胞内におけるアミノ酸の取り込み(プロトコルI)
- プレート5 x 104 ST2細胞を12ウェル組織培養プレートの各ウェルに入れる。10%FBS、100 U/mLペニシリンおよび0.1 μg/mLストレプトマイシン(ペン/ストレプトマイシン)を含むα-MEMのプレート細胞。細胞の余分なウェルをプレートして、ステップ1.12での正規化のための条件ごとの細胞数を定量化する。加湿した細胞培養インキュベーター内で細胞を37°C、5%CO2でインキュベートします。
- コンフルエントになるまで細胞を2〜3日間培養します。
- 実験当日、以下の溶液を調製する:1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)、pH 7.4およびクレブスリンガーHEPES(KRH)緩衝液、pH 8.0:(120mM NaCl、5mM KCl、2mM CaCl2、1mM MgCl2、NaHCO3、5mM HEPES、1mM D-グルコース)。37°Cに予熱します。
- 培地を吸引し、1 mLの1x PBS、pH 7.4で細胞を2回洗浄します。
注:このプロトコルは、非コンフルエントセルを急速に分割する場合にも適しています。この場合、放射能を絶対細胞数またはDNA含有量のいずれかに正規化することが重要です。さらに、培養プレートまたはフラスコのサイズを大きくして、全体的な細胞数とcpm値を増やすことを検討してください。これは、個別に経験的に決定することが重要です。 - 1x PBSを吸引し、1 mL KRHで細胞を1回洗浄します。
- KRH 1 mLあたり 4 μL の [1 μCi μL-1] L-[3,4-3H]-グルタミンストックを希釈して、4 μCi/mL L-[3,4-3H]-グルタミン作動培地を作成します。
注:放射性物質を使用する前に、所属機関の放射線安全室に連絡して承認を取得してください。放射線に関連するすべての手順は、プレキシガラスシールドの後ろで実行する必要があります。 - 4 μCi/mL L-[3,4-3H]-グルタミン作動培地を含む0.5 mLのKRHで細胞を5分間インキュベートします。
- 放射性媒体を収集し、廃液容器に分注します。細胞を氷冷したKRHで3回短時間洗浄し、反応を終了します。放射性液体廃棄物容器内のすべての洗浄を収集して廃棄します。
- 各ウェルに1 mLの1% SDSを加え、10倍に粉砕して細胞を溶解およびホモジナイズします。細胞ライセートを1.5 mLチューブに移します。細胞培養プレート、血清学的ピペット、およびピペットチップは、固体放射性廃棄物容器に廃棄してください。
- >10,000 x g で10分間遠心分離します。上清を8mLのシンチレーション溶液を含むシンチレーションバイアルに移します。シンチレーションバイアルを激しく振って混合する。チューブとピペットチップは固形放射性廃棄物容器に廃棄してください。
- シンチレーションカウンターを使用して、放射能を1分あたりのカウント(cpm)で読み取ります。シンチレーションバイアルはシンチレーションバイアル廃棄物容器に廃棄します。
- トリプシン処理、再懸濁、および残りの非放射性細胞のプレートから細胞をカウントし(ステップ1.1を参照)、溶解した放射性培養液中の細胞数を推定します。血球計算盤を用いて、実験条件ごとに非放射性ウェル当たりの細胞数をカウントする。ステップ1.11のcpmを非放射性プレートからの推定細胞数に正規化します。
- 実験終了後、細胞培養フード、ベンチ、およびすべての器具を放射能除染剤スプレーで除染します。最後に、ワイプテストを実行して、作業領域が放射線を含まないことを確認します。
2.新たに分離された骨組織におけるアミノ酸の取り込み(プロトコルII)
- KRHを37°Cに予熱します。
- 生後3日のマウスを安楽死させ、腕の皮膚を取り除きます。ハサミを使用して肩から上腕骨を解剖し、両方の上腕骨を解剖します。メスと鉗子を使用してすべての即時組織を取り除きます。骨端を骨から取り除きます。
注:上腕骨に加えて、このプロトコルは、新生児の大腿骨、脛骨、頭蓋骨、および2か月齢および4か月齢のマウスから分離された上腕骨、大腿骨、脛骨に適合させることができます(未発表データ)。 - 骨から骨髄を洗い流し、ステップ2.14で正常化するために骨シャフトの重量を量ります。
- 上腕骨の1本を1x PBSで100°Cで10分間煮沸し、骨を脱細胞化します。脱細胞化された煮骨は陰性対照として使用されます。
注:品質管理として、パラフィンは組織学的染色のために沸騰した骨と沸騰していない骨を埋め込み、沸騰が骨の脱細胞化に効果的であることを視覚的に確認します。 - 両上腕骨を1 mLのKRH中で37°Cの細胞培養インキュベーター内で30分間平衡化します。
- 1 mL KRHあたり4 μLの1μCi/μL L-[2,3,4-3H]-アルギニンストックを希釈することにより、KRH中の4 μCi/mL L-[2,3,4-3H]-アルギニンの作業溶液を作ります。
注:このプロトコルは、選択された放射性標識栄養素の取り込みを評価するのに適しています。L-[2,3,4-3H]-グルタミン、L-[14CU]-アラニン、およびL-[2,3-3 H]-プロリンも同様の結果でテストされています。アルギニンデータは、このプロトコルの有用性を強調するために示されています。
注意: 放射線を使用するすべての手順は、適切な個人用保護具(PPE)を使用しながら、プレキシガラスシールドの後ろで実行する必要があります。 - 実験用対照骨と煮沸対照骨の両方を、4 μCi/mL L-[2,3,4-3H]-アルギニンを含むKRH中で37°Cで最大90分間インキュベートします。
注:タイムコースを行うことにより、マウスの年齢、さまざまな骨格要素、放射性標識アミノ酸の種類など、さまざまな条件のインキュベーション時間を経験的に決定することが重要です。飽和は主に約3〜4時間後に起こります。取り込みは、取り込みの線形怒りの時点で評価する必要があります。 - 放射性媒体を取り出し、液体放射性廃棄物容器に廃棄します。氷冷1mLのKRHを使用して上腕骨を3回洗浄し、反応を終了させます。液体放射性廃棄物容器内のすべての洗浄物を廃棄します。
- 各骨を1.5 mLチューブに移します。500 μLのRIPAバッファー[150 mM NaCl; 5 mM EDTA; 50 mM トリス (pH 8.0); 0.5% NP40 (v/v); 0.5% DOX (w/v); 0.1% SDS (w/v)]を加える。培養プレート、血清学的ピペット、およびピペットチップは、放射性固形廃棄物容器に入れて廃棄します。
- RIPAバッファーでハサミで100回刻んで上腕骨を均質化します。
- 超音波処理(振幅:35%、パルス1秒)得られた均質化された骨を10秒間。
注:超音波処理はエアロゾルを生成することも知られています。超音波処理ステップは、生物学的安全キャビネットで実行できます。エアロゾルの形成を減らすには、チューブを過剰に充填しないことが重要です。少量のサンプルの超音波処理は、不完全な超音波処理または発泡によるサンプル損失をもたらすことができます。発泡が発生した場合は、サンプルを5分間遠心分離して沈降させます。 - 室温で >10,000 x g で 10 分間遠心分離することにより、ライセートを清澄化します。200 μLの上清を8 mLのシンチレーション溶液を含むシンチレーションバイアルに移します。シンチレーションバイアルを激しく振って混合する。すべての固体放射性廃棄物(使用済みチューブ、ピペットチップ、プレートなど)を固体放射性廃棄物容器に廃棄します。
- シンチレーションカウンターを使用して放射能(cpm)を読み取ります。使用済みのシンチレーションバイアルは、シンチレーションバイアル用に指定された放射性廃棄物容器に廃棄してください。
- 実験骨のcpmから茹で骨のcpm(基礎値)を引く。ステップ2.3の骨重量で放射能を正規化します。
- 細胞培養フード、器具、およびベンチに放射能除染剤をスプレーします。ワイプテストを実行して、作業領域が放射線フリーであることを確認します。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
アミノ酸輸送は、基質特異性、動態、イオンおよびpH依存性を含む多数の特性に基づいて異なる輸送システムに分類されている多くの膜結合アミノ酸トランスポーターによって調節されています25。例えば、グルタミンの取り込みは、Na+依存性輸送系A、ASC、γ+LおよびN、またはNa+非依存性系Lによって媒介され得る。Na+依存系は、Na+(系N)をLi+に置き換える能力、またはアミノ酸アナログの2-(メチルアミノ)イソ酪酸(MeAIB)(系A)に対する感受性によって区別されます。この実験の目的は、各輸送システムに起因するグルタミン消費量を定義することでした。L-[3,4-3H]グルタミンの取り込みは、120 mM NaClを含む正常KRH、120 mM塩化コリンを含むNa+遊離KRH、5 mM MeAIBを含む正常KRH、または120 mM LiClを含むNa+遊離KRHのコンフルエントST2細胞で測定されました。総放射能(1分間当たりのカウント)は細胞数に対して正規化した。Na+の除去により、グルタミンの取り込みが90%減少しました。これは、システムLがグルタミン取り込みの10%を占めるのに対し、ST2細胞ではグルタミン取り込みの90%がNa+依存性であることを示しています(図2)。Li+の存在は、Na+遊離条件と比較してグルタミン取り込みを2%増加させただけでしたが、5 mM MEAIBはグルタミン取り込みに影響を与えませんでした。これらのデータは、グルタミン取り込みの大部分がシステムASCおよびγ+Lによって媒介され、システムNおよびシステムAがそれぞれNa+依存性グルタミン取り込みの約2%および0%に関与していることを示しています。
プロトコルIを修正して、ex vivoでの骨軸でのアミノ酸取り込みを特徴付けました。この実験では、プロトコルIIに従って、3日齢(p3)マウスから分離された長骨のアルギニン取り込み動態を特徴付けました。これを行うために、我々は最初にp3マウスから両方の上腕骨を解剖した。骨端を取り除き、骨髄をスピンアウトし、正常化のために各上腕骨の重量を測定しました。反対側の上腕骨は陰性対照に指定され、細胞活動を殺すために煮沸されました。次に、実験的で煮沸した上腕骨を、放射性標識された4μCi / mL L-[2,3,4-3H]-アルギニンで最大2時間インキュベートしました。アルギニンの取り込みは、この実験の過程で直線的に増加した(図3A)。比較のために、茹でた上腕骨は、この実験ではアルギニン取り込みの動的増加を示さず、むしろ骨基質へのプローブの吸着に起因する基礎放射能を有していた。正規化および補正されたアルギニン取り込みを図3Bに示す。
図1:放射性標識アミノ酸取り込みアッセイのワークフロー。 インビトロ(プロトコルI)および骨エクスビボ(プロトコルII)でのアミノ酸取り込みアッセイの概略概要。この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図2:in vitroでのST2におけるL-[3,4-3H]-グルタミン取り込みの速度論的特性。 (A)ST2細胞におけるナトリウム(Na+)、MeAIBまたはリチウム(Li+)の存在下(+)または非存在下(-)で行われるL-[3,4-3H]-グルタミン取り込みアッセイ。(B)グルタミンの取り込みに対するシステムA、N、L、またはASCおよびγ + Lの推定寄与の割合。この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図3:新生児上腕骨におけるEx vivo L-[2,3,4-3H]-アルギニン取り込み。 (a)L-[2,3,4-3H]-アルギニン取り込みを、3日齢のC57BL/6マウスから単離した生上腕骨および煮上腕骨において2時間の経時変化にわたって行った。(B)茹でた上腕骨による正規化されたL-[2,3,4-3H]-アルギニンの取り込み。この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
本明細書に記載されるプロトコルは、インビトロまたはエクスビボのいずれかの様々な実験的順列に応答してアミノ酸取り込みを評価するための迅速で高感度なアプローチを提供する。市販のキット(例えば、グルタミンおよびグルタミン酸測定キット)と比較すると、この方法は、はるかに感度が高く、迅速で、労働集約的ではない16、17、25。私たちのプロトコルでは、クレブスリンガーHEPESバッファーへの取り込みを評価します。この培地は、アミノ酸の取り込みを特徴付けるための多様な条件をテストするための迅速かつ容易な変更を可能にする基礎処方であるため、利用しています。例えば, 輸送系がNa+依存性であるかどうかをテストするには, NaClを塩化コリンに置き換えるだけで、Na+遊離KRHを作ることができます.この柔軟性は、個々のアミノ酸の取り込みを媒介する様々な輸送系を調査するのに有利である。α-MEMなどの基礎増殖培地もこのアッセイに適しています。この場合、我々は通常、問題の個々のアミノ酸を欠くα-MEMを購入し、実験のために放射性標識アミノ酸に置き換えられる。例えば、グルタミン取り込みを評価するために、初代骨髄間質細胞におけるグルタミンフリーα−MEMを使用する15。KRHは構成がシンプルなため、いくつかの制限があります。KRHは、シンポーターやアンチポーターなどの二次アクティブトランスポートシステムを研究することが目標である場合、理想的なオプションではありません。例えば、Slc7a5 / Slc3a2を介したロイシンの取り込みは、グルタミンと引き換えに起こります。この場合、KRHにグルタミンがないため、ロイシンの取り込みが過小評価される可能性があります。むしろ、この場合、ロイシンを含まないα−MEM培地の使用が好ましいであろう。同位体3Hを扱う場合、ガイガーカウンターの使用は必須ではないことに注意することも重要です。ただし、放射線を扱っていることを人々に警告するための礼儀として、ガイガーカウンターをオンのままにしておくことをお勧めします。
2番目のプロトコルの重要かつ必須の制御は、対側骨の沸騰です。これは、骨基質が骨細胞による促進された輸送とは無関係に放射性アミノ酸を吸収することができるので必要である。骨を脱細胞化することにより、骨基質によって捕捉された放射線の量を推定し、それを取り込みを正常化するためのベースライン放射能として使用できます。別の重要なコントロールは、骨端と骨髄を取り除いた後に骨の重さを量ることです。骨の重量は、骨軸のサイズに対する取り込みを正規化するために使用されます。骨のサイズは、骨端の除去中の変動性から成長に影響を与える遺伝子変異に至るまでの多くの要因によって変化する可能性があるため、これは重要です。別の方法は、正規化のために骨シャフトのDNA含有量を定量することです。私たちの経験では、DNA含有量の正規化は骨重量に匹敵しますが、放射性物質を扱う手順が追加されます。したがって、骨重量に正規化することを好みます。
これらのプロトコルは、ATDC5、MC3T3、293などの細胞株、または頭蓋骨芽細胞、軟骨細胞、骨髄間質細胞、骨髄マクロファージ、破骨細胞などの他の初代細胞に適合させることができます。さらに、プロトコルは、他の放射性同位元素( 14Cや 35Sなど)や、アミノ酸、グルコース、脂肪酸などのさまざまな栄養素を評価するために簡単に適応できます。さらに、プロトコルIIは、成体骨およびペレット培養物にも適合させることができ、インキュベーション時間への調整を考慮することができる。このプロトコルは適応性が高いですが、実験を行う前に、新しい同位体標識分子または新しい細胞株の動態を特徴付けることが重要です。輸送速度論は、異なる分子、異なる同位体、または異なる細胞タイプ間で大幅に異なる場合があります。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
著者には開示がありません。
Acknowledgments
Karnerラボは、国立衛生研究所R01助成金(AR076325およびAR071967)によってC.M.K.にサポートされています。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.25% trypsin | Gibco | 25200 | |
| 12-well plate | Corning | 3513 | |
| 1 mL syringe | BD precision | 309628 | |
| 30G Needle | BD precision | 305106 | |
| Arginine Monohydrochloride L-[2,3,4-3H]-, 1mCi | PerkinElmer | NET1123001MC | |
| Beckman LS6500 scintillation counter | |||
| Calcium chloride | Sigma | C1016 | |
| Choline chloride | Sigma | C7077 | |
| D-(+)-Glucose solution | Sigma | G8769 | |
| Dissection Tool | Forceps, scissors, scapels | ||
| DPBS | Gibco | 14190 | |
| Ethylenediaminetetraacetic acid | Sigma | E9884 | |
| HEPES(1M) | Gibco | 15630 | |
| L-[3,4-3H(N)]-Glutamine | PerkinElmer | NET551250UC | |
| Liquid scintilation vials | Sigma | Z190535 | |
| Lithium chloride solution, 8M | Sigma | L7026 | |
| Magnesium chloride | Sigma | M8266 | |
| MEMα | Gibco | 12561 | |
| Microcentrifuge tube, 15mL | Biotix | 89511-256 | |
| NP-40 | Sigma | 492016 | |
| Potassium chloride | Sigma | P3911 | |
| Sodium bicarbonate | Sigma | S6014 | |
| Sodium chloride | Sigma | S9888 | |
| Sodium Deoxycholate | Sigma | D6750 | |
| Sodium dodecyl sulfate | Sigma | 436143 | |
| Sonicator | Sonic&Materials | VCX130 | |
| Tris Base | Sigma | 648311 | |
| Ultima Gold (Scintillation solution) | PerkinElmer | 6013329 | |
| α-(Methylamino)isobutyric acid | Sigma | M2383 |
References
- Xiao, M., et al. Inhibition of α-KG-dependent histone and DNA demethylases by fumarate and succinate that are accumulated in mutations of FH and SDH tumor suppressors. Genes & Development. 26 (12), 1326-1338 (2012).
- Altman, B. J., Stine, Z. E., Dang, C. V. From Krebs to clinic: glutamine metabolism to cancer therapy. Nature Reviews Cancer. 16 (10), 619-634 (2016).
- Karner, C. M., Long, F. Wnt signaling and cellular metabolism in osteoblasts. Cell and Molecular Life Sciences. 74 (9), 1649-1657 (2017).
- Zarse, K., et al. Impaired insulin/IGF1 signaling extends life span by promoting mitochondrial L-proline catabolism to induce a transient ROS signal. Cell Metabolism. 15 (4), 451-465 (2012).
- Nagano, T., et al. Proline dehydrogenase promotes senescence through the generation of reactive oxygen species. Journal of Cell Science. 130 (8), 1413-1420 (2017).
- Comes, S., et al. L-Proline induces a mesenchymal-like invasive program in embryonic stem cells by remodeling H3K9 and H3K36 methylation. Stem Cell Reports. 1 (4), 307-321 (2013).
- Fan, J., et al. Glutamine-driven oxidative phosphorylation is a major ATP source in transformed mammalian cells in both normoxia and hypoxia. Molecular Systems Biology. 9, 712 (2013).
- Hosios, A. M., et al. Amino acids rather than glucose account for the majority of cell mass in proliferating mammalian cells. Developmental Cell. 36 (5), 540-549 (2016).
- Welbourne, T. C. Ammonia production and glutamine incorporation into glutathione in the functioning rat kidney. Canadian Journal of Biochemistry. 57 (3), 233-237 (1979).
- Sullivan, L. B., et al. Supporting aspartate biosynthesis is an essential function of respiration in proliferating cells. Cell. 162 (3), 552-563 (2015).
- Nelsen, C. J., et al. Amino acids regulate hepatocyte proliferation through modulation of cyclin D1 expression. The Journal of Biological Chemistry. 278 (28), 25853-25858 (2003).
- Krall, A. S., Xu, S., Graeber, T. G., Braas, D., Christofk, H. R. Asparagine promotes cancer cell proliferation through use as an amino acid exchange factor. Nature Communications. 7, 11457 (2016).
- Green, C. R., et al. Branched-chain amino acid catabolism fuels adipocyte differentiation and lipogenesis. Nature Chemical Biology. 12 (1), 15-21 (2016).
- Shiraki, N., et al. Methionine metabolism regulates maintenance and differentiation of human pluripotent stem cells. Cell Metabolism. 19 (5), 780-794 (2014).
- Yu, Y., et al. Glutamine metabolism regulates proliferation and lineage allocation in skeletal stem cells. Cell Metabolism. 29 (4), 966-978 (2019).
- Shen, L., Sharma, D., Yu, Y., Long, F., Karner, C. M. Biphasic regulation of glutamine consumption by WNT during osteoblast differentiation. Journal of Cell Science. 134 (1), (2021).
- Karner, C. M., Esen, E., Okunade, A. L., Patterson, B. W., Long, F. Increased glutamine catabolism mediates bone anabolism in response to WNT signaling. Journal of Clinical Investigation. 125 (2), 551-562 (2015).
- Hu, G., et al. The amino acid sensor Eif2ak4/GCN2 is required for proliferation of osteoblast progenitors in mice. Journal of Bone and Mineral Research. 35 (10), 2004-2014 (2020).
- Rached, M. T., et al. FoxO1 is a positive regulator of bone formation by favoring protein synthesis and resistance to oxidative stress in osteoblasts. Cell Metabolism. 11 (2), 147-160 (2010).
- Elefteriou, F., et al. ATF4 mediation of NF1 functions in osteoblast reveals a nutritional basis for congenital skeletal dysplasiae. Cell Metabolism. 4 (6), 441-451 (2006).
- Maleknia, S. D., Johnson, R. Mass spectrometry of amino acids and proteins. Amino Acids, Peptides and Proteins in Organic Chemistry. , 1-50 (2011).
- Rennie, M. J. An introduction to the use of tracers in nutrition and metabolism. The Proceedings of the Nutrition Society. 58 (4), 935-944 (1999).
- Hahn, T. J., Downing, S. J., Phang, J. M. Amino acid transport in adult diaphyseal bone: contrast with amino acid transport mechanisms in fetal membranous bone. Biochimica Biophysica Acta. 183 (1), 194-203 (1969).
- Rosenbusch, J. P., Flanagan, B., Nichols, G. Active transport of amino acids into bone cells. Biochimica Biophysica Acta. 135 (4), 732-740 (1967).
- Kandasamy, P., Gyimesi, G., Kanai, Y., Hediger, M. A. Amino acid transporters revisited: New views in health and disease. Trends in Biochemical Sciences. 43 (10), 752-789 (2018).
