Summary

झिल्ली के गुण मापना 3D-संरचित रोशनी माइक्रोस्कोपी (3D-SIM) का उपयोग करके अक्षतंतु प्रारंभिक खंड का आवधिक कंकाल

Published: February 11, 2022
doi:

Summary

वर्तमान प्रोटोकॉल सुसंस्कृत चूहे हिप्पोकैम्पल न्यूरॉन्स और 3 डी-संरचित रोशनी माइक्रोस्कोपी (3 डी-सिम) का उपयोग करके अक्षतंतु प्रारंभिक खंड के झिल्ली आवधिक कंकाल के एक्टिन रिंग्स और झिल्ली आवधिक कंकाल के अन्य घटकों की कल्पना और मापने के लिए एक विधि का वर्णन करता है।

Abstract

अक्षतंतु प्रारंभिक खंड (एआईएस) वह साइट है जिस पर एक्शन पोटेंशियल शुरू होती है और एक परिवहन फिल्टर और प्रसार बाधा का गठन करती है जो सोमाटो-डेंड्रिटिक कार्गो को छंटाई करके न्यूरोनल ध्रुवीयता के रखरखाव में योगदान करती है। एक झिल्ली आवधिक कंकाल (एमपीएस) जिसमें आवधिक एक्टिन के छल्ले शामिल होते हैं, संरचनात्मक प्रोटीन और विभिन्न आयन चैनलों सहित विभिन्न एआईएस प्रोटीन को लंगर डालने के लिए एक पाड़ प्रदान करता है। हालांकि हाल ही में प्रोटिओमिक दृष्टिकोणों ने उपन्यास एआईएस घटकों की काफी संख्या की पहचान की है, एमपीएस की संरचना और इसके व्यक्तिगत घटकों की भूमिकाओं के विवरण की कमी है। एमपीएस (~ 190 एनएम) में व्यक्तिगत एक्टिन रिंगों के बीच की दूरी को एमपीएस के संरचनात्मक विवरणों को हल करने के लिए सुपर-रिज़ॉल्यूशन माइक्रोस्कोपी तकनीकों के रोजगार की आवश्यकता होती है। यह प्रोटोकॉल 3 डी-संरचित रोशनी माइक्रोस्कोपी (3 डी-सिम) का उपयोग करके उप-झिल्लीदार एक्टिन रिंग्स के सापेक्ष एमपीएस में एआईएस प्रोटीन के सटीक स्थानीयकरण की जांच करने के लिए सुसंस्कृत चूहे हिप्पोकैम्पल न्यूरॉन्स का उपयोग करने के लिए एक विधि का वर्णन करता है। इसके अलावा, व्यक्तिगत घटकों की आवधिकता और एक्टिन के छल्ले के सापेक्ष उनकी स्थिति का मात्रात्मक रूप से आकलन करने के लिए एक विश्लेषणात्मक दृष्टिकोण का भी वर्णन किया गया है।

Introduction

अक्षतंतु प्रारंभिक खंड (एआईएस) कशेरुक न्यूरॉन्स 1 के समीपस्थ अक्षतंतु का एक छोटा, विशिष्ट रूप से विशिष्ट क्षेत्र है। एआईएस में एक परिवहन फिल्टर और प्रसार बाधा शामिल है जो सोमाटो-डेंड्राइटिक कार्गो 2,3,4,5,6,7 को छँटाई करके न्यूरोनल ध्रुवीयता को बनाए रखने में आवश्यक है इसके अलावा, एआईएस की अद्वितीय संरचना इसे वोल्टेज-गेटेड आयन चैनलों के समूहों को समायोजित करने की अनुमति देती है जो कार्रवाई संभावित दीक्षा की साइट के रूप में इसके कार्य को सुविधाजनक बनाते हैं। एक अत्यधिक स्थिर संरचनात्मक परिसर एआईएस के अद्वितीय कार्यों को रेखांकित करता है। पिछले दशक के भीतर अनुसंधान ने एक झिल्ली आवधिक कंकाल (एमपीएस) की उपस्थिति का खुलासा किया है जिसमें स्पेक्ट्रिन द्वारा जुड़े एक्टिन के छल्ले होते हैं और विभिन्न एआईएस प्रोटीन 9,10 को लंगर डालने के लिए एक पाड़ प्रदान करते हैं

एमपीएस (~ 190 एनएम) 9,10 में एक्टिन के छल्ले के बीच की दूरी पारंपरिक प्रकाश माइक्रोस्कोपी की संकल्प सीमा के तहत है। एमपीएस की कल्पना करने के लिए इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी का उपयोग करने के शुरुआती प्रयास सफल नहीं थे, क्योंकि इसमें शामिल कठोर तैयारी प्रक्रियाएं एमपीएस की संरचना को संरक्षित करने में विफल रही थीं। इस प्रकार, सुपर-रिज़ॉल्यूशन माइक्रोस्कोपी तकनीकों ने एमपीएस 11 के कुछ संरचनात्मक विवरणों को स्पष्ट करने में अमूल्य साबित किया है। हालांकि, एआईएस संरचनात्मक परिसर की समझ, इसके घटकों की पहचान और कार्य, और इसके स्पैटिओटेम्पोरल विनियमन अभी भी अधूरे हैं। हाल के प्रोटिओमिक अध्ययन प्रोटीन की एक बड़ी सूची बनाने में सफल रहे जो एआईएस 12,13 के संरचनात्मक घटकों के करीब एआईएस के लिए स्थानीयकृत होते हैं। फिर भी, एआईएस परिसर में उनके कार्य और सटीक स्थान के विवरण की कमी है। इस प्रकार, सुपर-रिज़ॉल्यूशन माइक्रोस्कोपी तकनीकें अन्य एमपीएस घटकों के सापेक्ष इन प्रोटीनों की सटीक स्थिति की जांच करने और उनके कार्यों की जांच करने के लिए एक आवश्यक उपकरण के रूप में कार्य करती हैं। कई प्रकाश माइक्रोस्कोपी तकनीकें प्रकाश की विवर्तन सीमा से अधिक रिज़ॉल्यूशन प्राप्त कर सकती हैं, कुछ एकल अणुओं को स्थानीयकृत करने में भी सक्षम हैं। हालांकि, इनमें से कई तकनीकों को आमतौर पर विशेष फ्लोरोफोरस या इमेजिंग बफर की आवश्यकता होती है, और छवि अधिग्रहण अक्सर समय-गहन होता है।

3 डी संरचित रोशनी माइक्रोस्कोपी (3 डी-सिम), उपयोग में आसानी और सरल नमूना तैयारी आवश्यकताओं के कारण, इमेजिंग या नमूना तैयारी के लिए कोई विशेष अभिकर्मकों की आवश्यकता नहीं होती है, फ्लोरोफोरस और नमूनों की एक विस्तृत सरणी के साथ अच्छी तरह से काम करता है, कई रंगों में आसानी से लागू किया जा सकता है, और लाइव-सेल इमेजिंग 15 में सक्षम है। जबकि सबसे अच्छा संभव रिज़ॉल्यूशन सिम प्रदान करता है (~ 120 एनएम) कई अन्य सुपर-रिज़ॉल्यूशन तकनीकों की तुलना में कम है, यह कई अनुप्रयोगों के लिए पर्याप्त है (उदाहरण के लिए, न्यूरॉन्स में एमपीएस के घटकों को हल करने के लिए)। इस प्रकार, यह निर्धारित करने के लिए विशिष्ट अनुप्रयोगों की आवश्यकता पर विचार करना महत्वपूर्ण है कि क्या सिम एक उपयुक्त विकल्प है या यदि एक उच्च रिज़ॉल्यूशन आवश्यक है। यहां, सुसंस्कृत हिप्पोकैम्पल न्यूरॉन्स और 3 डी-संरचित रोशनी माइक्रोस्कोपी (3 डी-सिम) का उपयोग करने के लिए एक प्रोटोकॉल का वर्णन किया गया है ताकि एमपीएस में एक्टिन के छल्ले के सापेक्ष एआईएस प्रोटीन की स्थिति और संगठन की जांच की जा सके, जैसा कि Abouelezz et al.16 में लागू किया गया है।

Protocol

इन प्रयोगों में उपयोग किए जाने वाले प्राथमिक हिप्पोकैम्पस न्यूरॉन्स को हेलसिंकी विश्वविद्यालय और फिनिश कानून के नैतिक दिशानिर्देशों के तहत भ्रूण दिवस 17 विस्टार चूहा भ्रूण से काटा गया था। …

Representative Results

सुसंस्कृत चूहे हिप्पोकैम्पल न्यूरॉन्स और 3 डी-सिम का उपयोग करते हुए, एआईएस में एक्टिन रिंग्स और एमपीएस के अन्य घटकों की कल्पना करने और मापने के लिए एक प्रोटोकॉल का वर्णन किया गया है। छवि स्टैक के पुनर्न…

Discussion

यहां वर्णित प्रोटोकॉल सुपर-रिज़ॉल्यूशन तकनीक का उपयोग करके एमपीएस प्रोटीन को विज़ुअलाइज़ करने और मापने के लिए एक विधि प्रदान करता है। चूंकि एक्टिन रिंग्स और अन्य एमपीएस घटक ~ 190 nm9,10 की आवधि…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

डॉ Pirta Hotulainen उसकी महत्वपूर्ण टिप्पणियों के लिए स्वीकार किया जाता है, इस पांडुलिपि को तैयार करने के लिए अमूल्य. डॉ Rimante Minkeviciene मूल प्रयोगों के लिए इस्तेमाल न्यूरोनल संस्कृतियों को तैयार करने में उसकी मदद के लिए स्वीकार किया जाता है। सभी इमेजिंग बायोमेडिकम इमेजिंग यूनिट में किया गया था। इस काम को फिनलैंड की अकादमी (डी.M, एसए 266351) और डॉक्टरेट प्रोग्राम ब्रेन एंड माइंड (ए.ए.) द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

24-well plates Corning 3524
4% Paraformaldehyde
Alexa-488 Phalloidin ThermoFisher A12379
Alexa-647 anti-mouse ThermoFisher A31571
Anti-Ankyrin G antibody UC Davis/NIH NeuroMab Facility, Clone 106/36 75-146
Anti-MAP2 antibody Merck Millipore AB5543
B-27 Invitrogen 17504044
Bovine Serum Albumin (BSA) BioWest P6154
Deltavision OMX SR GE Healthcare Life Sciences N/A
Fiji software package ImageJ
GNU Octave GNU
High performance coverslips Marienfeld 117530
Immersion Oil Calculator Cytiva Life Sciences https://tinyurl.com/ImmersionOilCalculator
L-Glutamine VWR ICNA1680149
MATLAB R2020a Mathworks
Neurobasal media Invitrogen 21103049
OMX SR Delta Vision OMX
Primocin InvivoGen ant-pm-1
ProLong Gold mounting media Invitrogen P10144
softWoRx Deconvolution Cytiva Life Sciences
Superfrost Slides Epredia ISO 8037/1
TetraSpeck microspheres 0.1 µm ThermoFisher T7279
Triton-X Sigma X100

References

  1. Leterrier, C. The Axon initial segment, 50 years later: A nexus for neuronal organization and function. Current Topics in Membranes. 77, 185-233 (2016).
  2. Leterrier, C., Dargent, B. No pasaran! Role of the axon initial segment in the regulation of protein transport and the maintenance of axonal identity. Seminars in Cell & Developmental Biology. 27, 44-51 (2014).
  3. Brachet, A., et al. Ankyrin G restricts ion channel diffusion at the axonal initial segment before the establishment of the diffusion barrier. Journal of Cell Biology. 191 (2), 383-395 (2010).
  4. Nakada, C., et al. Accumulation of anchored proteins forms membrane diffusion barriers during neuronal polarization. Nature Cell Biology. 5 (7), 626-632 (2003).
  5. Song, A. H., et al. A selective filter for cytoplasmic transport at the axon initial segment. Cell. 136 (6), 1148-1160 (2009).
  6. Sun, X., et al. Selective filtering defect at the axon initial segment in Alzheimer’s disease mouse models. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (39), 14271-14276 (2014).
  7. Winckler, B., Forscher, P., Mellman, I. A diffusion barrier maintains distribution of membrane proteins in polarized neurons. Nature. 397 (6721), 698-701 (1999).
  8. Kole, M. H., et al. Action potential generation requires a high sodium channel density in the axon initial segment. Nature Neuroscience. 11 (2), 178-186 (2008).
  9. Xu, K., Zhong, G., Zhuang, X. Actin, spectrin, and associated proteins form a periodic cytoskeletal structure in axons. Science. 339 (6118), 452-456 (2013).
  10. Leterrier, C., et al. Nanoscale architecture of the axon initial segment reveals an organized and robust scaffold. Cell Reports. 13 (12), 2781-2793 (2015).
  11. Leterrier, C. The axon initial segment: An updated viewpoint. The Journal of Neuroscience. 38 (9), 2135-2145 (2018).
  12. Hamdan, H., et al. Mapping axon initial segment structure and function by multiplexed proximity biotinylation. Nature Communications. 11 (1), 100 (2020).
  13. Zhou, R., et al. Proteomic and functional analyses of the periodic membrane skeleton in neurons. bioRxiv. , (2020).
  14. Valli, J., et al. Seeing beyond the limit: A guide to choosing the right super-resolution microscopy technique. Journal of Biological Chemistry. 297 (1), 100791 (2021).
  15. Wang, T., et al. Radial contractility of actomyosin rings facilitates axonal trafficking and structural stability. Journal of Cell Biology. 219 (5), 201902001 (2020).
  16. Abouelezz, A., Stefen, H., Segerstråle, M., Micinski, D., Minkeviciene, R., Lahti, L., Hardeman, E., Gunning, P., Hoogenraad, C., Taira, T., Fath, T., Hotulainen, P. Tropomyosin Tpm3.1 is required to maintain the structure and function of the axon initial segment. iScience. 23 (5), 101053 (2020).
  17. Muller, M., Monkemoller, V., Hennig, S., Hubner, W., Huser, T. Open-source image reconstruction of super-resolution structured illumination microscopy data in ImageJ. Nature Communications. 7, 10980 (2016).
  18. Ball, G., et al. SIMcheck: a toolbox for successful super-resolution structured illumination microscopy. Scientific Reports. 5, 15915 (2015).
  19. Stauffer, W., Sheng, H., Lim, H. N. EzColocalization: An ImageJ plugin for visualizing and measuring colocalization in cells and organisms. Scientific Reports. 8 (1), 15764 (2018).
  20. Dunn, K. W., Kamocka, M. M., McDonald, J. H. A practical guide to evaluating colocalization in biological microscopy. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 300 (4), 723-742 (2011).
  21. Lahti, L. Data analysis supplement to the research article Abouelezz, Stefen, Segerstråle, Micinski, Minkeviciene, Lahti, Hardeman, Gunning, Hoogenraad, Taira, Fath, & Hotulainen. Tropomyosin Tpm3.1 Is Required to Maintain the Structure and Function of the Axon Initial Segment. , (2021).
  22. Abouelezz, A., Micinski, D., Lipponen, A., Hotulainen, P. Sub-membranous actin rings in the axon initial segment are resistant to the action of latrunculin. Journal of Biological Chemistry. 400 (9), 1141-1146 (2019).

Play Video

Cite This Article
Micinski, D., Lahti, L., Abouelezz, A. Measuring Properties of the Membrane Periodic Skeleton of the Axon Initial Segment using 3D-Structured Illumination Microscopy (3D-SIM). J. Vis. Exp. (180), e63327, doi:10.3791/63327 (2022).

View Video