Summary
本プロトコルは、茶園のPA産生雑草からの茶サンプル中のピロリジジンアルカロイド(PA)の汚染について説明しています。
Abstract
有毒なピロリジジンアルカロイド(PA)はお茶のサンプルに含まれており、人間の健康に脅威をもたらします。しかし、茶サンプル中のPA汚染の原因と経路は不明のままです。本研究では、UPLC-MS/MSと組み合わせた吸着剤法を開発し、雑草Ageratum conyzoides L.、A. conyzoides 根粒球土壌、新鮮な茶葉、および乾燥茶サンプル中の15のPAを測定しました。平均回収率は78%〜111%の範囲であり、相対標準偏差は0.33%〜14.8%であった。中国安徽省の金寨茶園から15組のコニゾイデスとコニゾイデスの根圏土壌サンプル60枚を採取し、15個のPAについて分析しました。インターメジン-N-オキシド(ImNO)とセネシオニン(Sn)を除いて、15のPAすべてが新鮮な茶葉で検出されたわけではありません。ImNO(34.7μg/kg)の含有量はSn(9.69μg/kg)よりも多かった。また,ImNOとSnはいずれも茶樹の若葉に集中していたが,その含有量は古い葉では低かった。その結果,茶園ではPA生成雑草-土壌-生茶葉の経路を通って茶類中のPAが移動することが示された。
Introduction
二次代謝産物として、ピロリジジンアルカロイド(PA)は草食動物、昆虫、および病原体から植物を保護します1,2。これまでに、異なる構造を持つ660を超えるPAおよびPA-N酸化物(PANO)が、世界中の6,000を超える植物種で発見されています3,4。PA生産植物は、主にキク科、ボラギナ科、ブナ科、およびキク科5,6に見られます。PAは不安定なデヒドロピロリジジンアルカロイドに容易に酸化され、強い求電子性を持ち、DNAやタンパク質などの求核剤を攻撃し、肝細胞の壊死、静脈閉塞、肝硬変、腹水、およびその他の症状を引き起こす可能性があります7,8。PA毒性の主な標的器官は肝臓です。PAはまた、肺、腎臓、およびその他の臓器毒性および変異原性、発がん性、および発生毒性を引き起こす可能性があります9,10。
PAを含む伝統的なハーブ、サプリメント、お茶の摂取、または牛乳、蜂蜜、肉などの食品の間接的な汚染(PAを含む放牧の摂取による毒性)から、人間と動物の中毒の症例が多くの国で報告されています11,12,13。欧州食品安全機関(EFSA)の調査結果は、(ハーブ)ティーなどの物質がPA / PANOへの人間の曝露の重要な原因であることを示しています14。茶サンプルはPAを生成しませんが、PA産生植物は茶園で一般的に見られます(例:エミリアソンチフォリア、セネシオアングラタス、およびアゲラタムコニゾイデス)15。以前は、お茶がピッキングおよび加工中に生産工場からのPAで汚染されている可能性があると疑われていました。しかし、PAはいくつかの手摘み茶葉(すなわち、PA生産プラントがない)でも検出され、他の経路または汚染源があるに違いないことを示唆しています16。ラグワート(セネシオ・ジャコバエア)とメリッサ(メリッサ・オフィシナリス)、ペパーミント(ハッカ・ピペリタ)、パセリ(ペトロセリナム・クリスプム)、カモミール(マトリカリア・レキューティタ)、キンレンカ(トロパエオラム・マジュス)の共栽培実験を行い、その結果、これらすべての植物でPAが検出されました17。PAは実際に土壌18,19を介して生きている植物間で移動および交換されることが確認されています。Van Wykら20は、ルイボスティー(Aspalathus linearis)が雑草が豊富な場所でひどく汚染されており、同じ種類と比率のPAを含んでいることを発見しました。しかし、雑草のない場所のルイボスティーからPAは検出されませんでした。
現在、高い選択性と感度を備えた超高速液体クロマトグラフィータンデム質量分析(UPLC-MS / MS)は、農産物および食品中のPAの定性的および定量的分析に広く使用されています21,22。サンプル処理方法は通常、固相抽出(SPE)または複雑な食品マトリックス抽出物のQuEChERS(クイックイージーで安価で効果的な頑丈な安全)クリーンアップのいずれかで構成され、可能な限り最高の感度を得ることができます12,19。しかし、土壌、雑草、新鮮な茶葉などの複雑なマトリックス中のPAの検出と定量を可能にする堅牢な分析方法はまだ不足しています。
本研究では、乾燥茶試料、生茶葉、雑草、雑草根圏土壌試料中の15種類のPAを、UPLC-MS/MSと吸着剤精製法を組み合わせて分析した。さらに、中国安徽省金寨茶園の5つのサンプリングサイトから15対の雑草および雑草根圏土壌サンプル15ペアと60生茶葉サンプルを収集し、15のPAについて分析しました。これらの結果は、お茶の品質と安全性を確保するために、お茶のサンプル中のPA(汚染)の発生源と経路に関する調査方法といくつかの情報を提供することができます。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
本研究では、次の雑草種が収集されました:Ludwigia prostrata Roxb.、Murdannia triquetra (Wall. ex C. B. Clarke)Bruckn.、Ageratum conyzoides L.、Chenopodium ambrosioides、Trachelospermum jasminoide(L.) Lem.、Ageratum conyzoides L.、Emilia sonchifolia (L.) DC、Ageratum conyzoides L.、およびCrassocephalum crepidioides (ベンス)S.ムーア。生茶葉は龍井43#茶樹の品種から摘み取られ、乾燥茶サンプルは緑茶製造プロセスに従って加工された市販の茶でした(材料表を参照)。
1. サンプル収集
- 40個の実際のサンプルを収集します。
- 複数の茶園から10個の雑草、10個の土壌、10個の新鮮な茶葉をランダムに収集します。
注:本研究では、土壌を20cmの深さでサンプル量200gでサンプリングしました。 - スーパーマーケットから10個の乾燥茶製品(250 g)をランダムに収集します。
- 複数の茶園から10個の雑草、10個の土壌、10個の新鮮な茶葉をランダムに収集します。
- 雑草、土壌、新鮮な茶葉のサンプルを収集して、お茶中のPAの汚染源を調査します。
- 同じ茶園に5つのサンプリングポイントを設定し、各ポイントに3つの反復を行います。
- 茶園で一般的に見られる最高のPA含有量を持つ Ageratum conyzoides L.雑草サンプルを収集します。
注:本研究のサンプル量は250gであった。 - 土壌サンプルを収集します。
注:土壌サンプルは、深さ20 cmの A.コニゾイデス根 圏土壌で、サンプル量は200 gでした。 - 2枚の葉を持つ1つの芽、3枚の葉を持つ1つの芽、4枚の葉を持つ1つの芽、および成熟した葉を含む、茶樹のさまざまな部分から新鮮な茶葉を収集します。
注:サンプル量は250gでした。
2.サンプル処理
- 以下の手順に従ってサンプルを前処理します。
- 乾燥したお茶と土壌のサンプルをグラインダーで粉砕し、粉砕したサンプルを200メッシュのふるいに通し、-20°Cで保管します。
注:乾燥茶は市販の茶製品( 材料表を参照)であったため、直接粉砕してふるいにかけ、保管しました。土壌試料(200g)を暗所の換気された場所に置き、約1週間風乾した。 - 雑草と新鮮な茶葉をホモジナイザーで均質化し、-20°Cで保存します。
- 乾燥したお茶と土壌のサンプルをグラインダーで粉砕し、粉砕したサンプルを200メッシュのふるいに通し、-20°Cで保管します。
- 乾燥茶製品、生茶葉、雑草のサンプル処理を行います。
- 各サンプル(乾燥茶製品、新鮮な茶葉、雑草)を1.00 g量り、50 mLの遠沈管に入れます。
- 10 mLの0.1 mol/L硫酸溶液とボルテックスを固相抽出(SPEカートリッジを使用、 材料表を参照)に2分間、吸着剤精製に1分間加えます。超音波抽出23 を15分間行い、次いで室温で9,390 x g の速度で10分間遠心分離する。
注:超音波発振器の電力は290W、発振周波数は35kHz、温度は30°Cに設定しました。 - 上清をプラスチックチップスポイト付きの50 mL遠沈管に移します。
- 上記の手順に従って、抽出を一度繰り返します。2つの上清を混ぜ合わせる。
- 5 mLのメタノールと5 mLの脱イオン水でSPEカートリッジをアクティブにします。10 mLの上清を事前にアクティブ化したカートリッジに追加し、サンプルクリーンアップを実行します。
- サンプル溶液のレベルがカートリッジの上層に達したら、5 mLの1%ギ酸溶液と5 mLのメタノールで分析種を溶出します。溶出液は廃棄してください。
- 5 mLのメタノール(0.5%アンモニア水を含む)で溶出し、溶出液を0.22 μmのメンブレンフィルターでろ過し、UPLC-MS/MSで分析します( 材料表を参照)。
- 吸着剤を使用してサンプルクリーンアップを実行します。
- 2 mLの上清(ステップ2.2.4)をGCB:PSA:C18(10 mg:20 mg:15 mg、 材料表を参照)の吸着剤で満たされた10 mLの遠沈管に入れ、ボルテックスで1分間、室温で9,390 x g で8分間遠心分離します。
- UPLC-MS/MSで分析する前に、1 mLの上清を0.22 μmのメンブレンフィルターに通します。
- 土壌サンプルの処理を行います。
- 1.00 gの土壌サンプルの重量を量ります。それを50 mLの遠沈管に入れ、0.1 mLの0.1 mol / Lクエン酸三ナトリウム溶液( 材料の表を参照)を加えて、土壌のpH値を6.0に調整します。
- 2分間放置し、10mLの0.1mol / L硫酸メタノール溶液を加え、2分間ボルテックスし、30分間振とうしてから、超音波抽出を30分間実行します。
- 9,390 x g で10分間遠心分離し、上清をプラスチックチップスポイト付きの50 mL遠沈管に移します。
- 上記の手順に従って抽出を繰り返し、上清を2回混ぜ合わせます。
注:精製方法は、ステップ2.2.5.1およびステップ2.2.5.2と同じでした。
3.機器分析
- 市販の UPLC-MS/MS システム (2.1 mm x 100 mm、1.8 μm) を使用して、乾燥茶サンプル、生茶葉、雑草、土壌 (ステップ 2 のサンプル) 中の 15 PA を検出します ( 材料表を参照)。
- カラム温度を40°C、流速を0.250 mL/min、注入量を3 μLに設定します。
- 移動相A:メタノール(0.1%ギ酸+1mmol/Lギ酸アンモニウム含有)、移動相B:水(0.1%ギ酸+1mmol/Lギ酸アンモニウム含有)をセットします。
- グラジエント溶出手順を設定します:0.0分から0.25分まで10%A、0.25分から6.0分まで10%-30%A、6.0分から9.0分まで30%-40%A、9.0分から9.01分まで1.9分間保持された40%-98%A、11.0分から11.1分まで2.9分間保持された98%-100%A。
- 質量分析計のパラメータを設定します:イオン化モード、エレクトロスプレー陽イオン源(ESI +)。アトマイザー圧力、7.0バール;毛細管電圧、4.0kV;テーパー穴バックブローフロー、150 L / h;溶媒ガス流量、800 L/h;溶解温度、400°C;衝撃ガス流量、0.25 mL/分。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
乾燥茶試料、生茶葉、雑草、土壌中の15 PAの最適化された吸着剤精製および分析方法を確立し、SPEカートリッジを使用した一般的に使用されている精製方法と比較しました。その結果、SPEカートリッジを使用した乾燥茶サンプル、雑草、および新鮮な茶葉中の15のPAの回収率は72%〜120%であり、吸着剤精製を使用した場合の回収率は78%〜98%でした(図1)。吸着剤精製を用いた土壌中の15個のPAの回収率は79%〜111%でした(図1)。40個の実際のサンプルを無作為に収集してPAの含有量を検出し、2つのクリーンアップ方法を比較しました(補足表1〜7)。ヘリオトリン(He)は、吸着剤法を用いて1.3-22μg/kgの乾燥茶試料全10種で検出されたが、SPEカートリッジを用いた乾燥茶試料3種では1.8-24.6μg/kgの含有量しか検出されなかった(補足表3-4)。
吸着剤精製法(GCB:PSA:C18)は、茶園システムの雑草、雑草根圏土壌、および新鮮な茶葉中のPAを検出するために選択されました。金寨の1つの茶園で5つのサンプリングサイトが選ばれました。雑草A . conyzoidesからは,ジャコビン(Jb),セネシフィリン(Sp),セネシフィリンN-オキシド(SpNO),センキルキン(Sk)の他に合計11個のPAが検出され,そのうちインターメジン(Im)(2,006-2,970μg/kg),ヘリオトリンN-オキシド(HeNO)(2,446-2,731μg/kg),インターメジンN-オキシド(ImNO)(13,535-17,345μg/kg)が最も多く含まれていた(表1)。土壌中では、サンプリングサイト5でImNOのみが検出され、含有量は6.05 μg/kgでした(補足表8)。5つのサンプリングサイトの新鮮な茶葉からImNOとSnが検出されました(図2)。ImNOは茶樹のさまざまな部分で検出され、その含有量は4.36-26.5 μg/kgの範囲であり、サンプリングサイト1とサンプリングサイト2の成熟葉ではSnが検出されなかったことを除いて、Snよりも多かった。他のサンプリングサイトの茶樹のさまざまな部分でSnが検出され、含有量は1.0〜3.14μg/ kgの範囲でした(図2)。
採取場所5では、雑草、雑草根圏土壌、生茶葉の間でPAsの移動現象が示された(図3)。11のPAs雑草のうち、土壌中には6.05μg/kgのImNOのみが検出され、茶樹の異なる部分からImNOとSnが検出された。2枚の葉を持つ1つの芽のImNO含量は最も高く、12.6 μg/kgでした(図3)。
図1:リカバリの比較。 吸着剤(スパイクレベル= 0.02 mg / kg)およびSPEカートリッジ(混合陽イオン交換固相抽出カラム、スパイクレベル= 0.01 mg / kg)によるクリーンアップ時の(A)生茶葉、(B)乾燥茶サンプル、(C)雑草、および(D)土壌サンプルからの抽出物中の15 PA(ピロリジジンアルカロイド)の回収率の比較。誤差バーは標準偏差を示し、有意性検定は分散分析によって実行されました。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図2:5つのサンプリングサイトから収集された茶樹のさまざまな部分のPA(ピロリジジンアルカロイド)の含有量と種類 。 (A)サンプリングサイト1。(B)サンプリングサイト2。(C)サンプリングサイト3。(D)サンプリングサイト4。(E)サンプリングサイト5。誤差バーは標準偏差を示し、有意性検定は分散分析によって実行されました。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
図3:雑草に含まれるPAとその土壌および生茶葉への移動 。 (A)雑草、土壌、生茶葉から検出されたPA(ピロリジジンアルカロイド)の含有量と種類。(B)雑草で検出されたPAの含有量と種類。誤差バーは標準偏差を示し、有意性検定は分散分析によって実行されました。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。
| サンプリングサイト | 単一PAの平均含有量(±相対標準偏差)、μg/kg | 総PAの含有量(μg/kg) | |||||||||||||||||||||||||||
| 彼 | ヘノ | イム | イムノ | ティッカー | JbNO | 再 | リノ | スン | SnNO | ティッカー | ティッカー いいえ |
エウ | ユーノ | ティッカー | |||||||||||||||
| 1 | 97.4 (2.43) | 2731.1 (2.04) | 2424.9 (1.84) | 13754 (0.56) | ティッカー | 1.92 (1.54) | 21.2 (10.45) | 4.01 (5.72) | 58.4 (2.52) | 17.2 (9.03) | ティッカー | ティッカー | 224.0 (1.75) | 6.9 (2.02) | ティッカー | 19341.03 | |||||||||||||
| 2 | 83.9 (1.21) | 2518.6 (0.81) | 2476.5 (1.15) | 13945 (0.30) | ティッカー | 2.60 (2.52) | 28.8 (1.51) | 4.82 (3.66) | 63.7 (3.52) | 19.8 (10.2) | ティッカー | ティッカー | 248.6 (1.48) | 7.0 (1.58) | ティッカー | 19399.32 | |||||||||||||
| 3 | 96.6 (1.67) | 2470.4 (1.08) | 2969.7 (1.02) | 16829 (0.36) | ティッカー | 2.12 (1.08) | 20.9 (9.30) | 2.94 (1.08) | 51.0 (7.50) | 14.9 (8.25) | ティッカー | ティッカー | 252.1 (3.17) | 5.91 (0.35) | ティッカー | 22715.57 | |||||||||||||
| 4 | 91.4 (1.98) | 2638.6 (2.75) | 2882.4 (1.98) | 17345 (0.76) | ティッカー | 2.42 (10.59) | 15.4 (6.99) | 2.67 (10.59) | 51.6 (6.73) | 15.0 (0.92) | ティッカー | ティッカー | 281.3 (2.36) | 6.78 (2.15) | ティッカー | 23332.57 | |||||||||||||
| 5 | 83.4 (3.79) | 2446.7 (6.0) | 2005.5 (3.79) | 13535 (1.96) | ティッカー | 1.68 (4.94) | 15.2 (0.91) | 2.70 (4.94) | 49.4 (8.78) | 16.9 (10.7) | ティッカー | ティッカー | 215.2 (2.47) | 5.99 (3.76) | ティッカー | 18377.67 | |||||||||||||
表1:5つのサンプリングサイトにおける雑草の単一および総PA(ピロリジジンアルカロイド)の含有量。 ND は検出されないことを表します。
補足表1:吸着剤法で精製した生茶葉中の単一および総PAの含有量。ND は検出されないことを表します。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足表2:SPEによって精製された新鮮な茶葉中の単一および総PAの含有量。ND は検出されないことを表します。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足表3:吸着剤法で精製した乾燥茶中の単一および全PAの含有量。ND は検出されないことを表します。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足表4:SPEによって精製された乾燥茶中の単一および総PAの含有量。 ND は検出されないことを表します。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足表5:吸着剤法で精製した雑草中の単一および総PAの含有量。 ND は検出されないことを表します。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足表6:SPEによって精製された雑草中の単一および総PAの含有量。 ND は検出されないことを表します。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足表7:吸着剤法で精製された土壌中の単一および総PAの含有量。 ND は検出されないことを表します。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足表8:5つのサンプリングサイトにおける土壌の単一および総PAの含有量。 ND は検出されないことを表します。 この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
本研究は、茶類試料中のPAの汚染経路と発生源、および茶樹のさまざまな部分におけるPAの分布を探索するための効果的で高感度な方法を開発するために設計されました。しかし、この研究では、クロマトグラフィーカラムで正常に分離されたPAは15個のみであり、植物種のアルカロイドの数が多いのに比べて非常に少ない数です3,4。これは、カラム自体の充填特性だけでなく、検査されたお茶サンプルの複雑なマトリックスにも関連していました。したがって、マルチPAを検出するためのより優れた分離および精製方法には、さらに調査が必要です。
SPEカートリッジと吸着剤法は、さまざまなサンプルマトリックス中のマルチPAを検出するために適用されてきましたが、茶の複合マトリックスでは、吸着剤法は報告されていません24。そこで、本研究ではGCB:PSA:C18(10 mg:20 mg:15 mg)の比率の吸着剤法を開発し、15 PAの回収率は異なるサンプルマトリックス中のPAの検出要件を満たしました。対照的に、ImNO、Eu、およびReの回収率は、SPEカートリッジでクリーンアップした場合の乾燥茶でそれぞれ平均119%、120%、および115%であり、有意なマトリックス効果を示しました。さらに、SPEカートリッジと比較して、吸着剤(GCB:PSA:C18)法は、PA分析のためのサンプル処理時間が短く、コストが低く、回収率が向上しました(図1B)。乾燥茶試料、生茶葉、雑草、土壌中の15種類のPAの検出法を確立することで、茶試料中のPAの汚染源を探索するための効果的な検出方法が提供されました。さらに、現在の知見によれば、土壌中のマルチPA検出法は、この研究で初めて確立されました。
茶畑システムにおけるPAの移動経路が検討された。その結果,A. conyzoidesは金寨茶園でPA総含量が最も高い雑草の一つであり,茶樹のそばで生育していたことが分かった。そこで,錦寨市の1つの茶園の5つの採取地点からA. conyzoides,A. conyzoidesの根圏土壌,および生茶葉の異なる部分を採取し,15のPAを分析した。 図3は、A. conyzoidesで産生された11のPAのうち、A. conyzoidesの根圏土壌ではImNOのみが検出され、新鮮な茶葉ではImNOとSnが検出されたことを示しています。これは、A. conyzoidesで生産されたPAのすべての含有量が土壌培地を介して茶樹に輸送できるわけではないことを示しています。土壌に移動したPAの一部の含有量は、土壌微生物によって分解される可能性があります。
ImNOとSnは主に2葉1芽と3葉1芽に分布していたが、成熟葉のPA含量は比較的低かった。採取部位4では,2枚の葉を有する1つの芽のImNO含量は26.5μg/kgに達したが,茶樹の他の部分の含量は7.14-10.4μg/kgの範囲であった。採取部位1および採取部位2の成熟葉ではSnは検出されなかった。これは、茶樹中のPAの濃縮部分は主に若葉に集中しており、欧州連合によって設定された茶サンプル中のPAの最大残留限界(成人は150μg/kg、乳幼児は75μg/kg)をはるかに下回っていたことを示しています25。その結果、茶類中のPAは、茶園のPA産生雑草が土壌 を介して 発生する可能性があることが明らかになりました。さらに、結果は植物間のPAの移動と交換を確認します17。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
著者は開示するものは何もありません。
Acknowledgments
この研究は、中国国家自然科学財団(32102244)、国家農産物の品質と安全性およびリスク評価プロジェクト(GJFP2021001)、安徽省自然科学財団(19252002)、およびUSDA(HAW05020H)の支援を受けました。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acetonitrile (99.9%) | Tedia Company,Inc. | 21115197 | CAS No:75-05-8 |
| Ammonia (25%-28%) | Wuxi Zhanwang Chemical Reagent Co., Ltd. | 181210 | CAS No:1336-21-6 |
| Ammonium formate (97.0%) | Anpel Laboratory Technoiogies (shanghai) | G0860050 | CAS No:540-69-2 |
| Carbon-GCB | CNW | B7760030 | 120-400 MESH, 10g. per box |
| Centrifuge Z 36 HK | HERMLE | Z36HK | 30000 rpm (min:10 rpm), Dimensions (W x H x D): 71.5 cm× 42 cm × 51 cm |
| Commercially available tea product | Lvming, Qingshan, Luyuchun, Changling, Huixing, Wuyunjian, Heshengchun | loose tea | Green tea |
| Europine N-oxid (EuNO) (98.0%) | BioCrick | 323256 | CAS No:65582-53-8 |
| Europine (Eu) (98.0%) | BioCrick | 98222 | CAS No:570-19-4 |
| Formate (98.0%) | Aladdin | E2022005 | CAS No:64-18-6 |
| HC-C18 | CNW | D2110060 | 40-63 μm,100g.per box |
| Heliotrine (He) (98.0%) | BioCrick | 906426 | CAS No:303-33-3 |
| Heliotrine-N-oxide (HeNO) (98.0%) | BioCrick | 22581 | CAS No:6209-65-0 |
| High speed centrifuge TG16-WS | cence | 203158000 | Max:16000 r/min, 330 × 390 × 300 mm (L × W × H), Capacity: 6 × 50 mL |
| HSS T3 column | Waters | 186004976 | ACQUITY UPLC HSS T3 (2.1 × 100 mm 1.8 μm) |
| Intermedine (Im) (98.0%) | BioCrick | 114843 | CAS No:10285-06-0 |
| Intermedine-N-oxide (ImNO) (98.0%) | BioCrick | 340066 | CAS No:95462-14-9 |
| Jacobine (Jb) (98.0%) | BioCrick | 132282048 | CAS No:6870-67-3 |
| Jacobine-N-oxide (JbNO) (98.0%) | ChemFaces | CFN00461 | CAS No:38710-25-7 |
| Methyl Alcohol (99.9%) | Tedia Company,Inc. | 21115100 | CAS No:67-56-1 |
| PSA | Agela | P19-00833 | 40-60 μm, 60 Å 100g.per box |
| Retrorsine (Re) (98.0%) | BioCrick | 5281743 | CAS No:480-54-6 |
| Retrorsine-N-oxide (ReNO) (98.0%) | BioCrick | 5281734 | CAS No:15503-86-3 |
| Senecionine (Sc) (98.0%) | BioCrick | 5280906 | CAS No:130-01-8 |
| Senecionine-N-oxide (ScNO) (98.0%) | BioCrick | 5380876 | CAS No:13268-67-2 |
| Seneciphylline N-oxid (SpNO) (98.0%) | BioCrick | 6442619 | CAS No:38710-26-8 |
| Seneciphylline (Sp) (98.0%) | BioCrick | 5281750 | CAS No:480-81-9 |
| Senkirkine (Sk) (98.0%) | BioCrick | 5281752 | CAS No:2318-18-5 |
| SPE PCX | Agilent Technologies | 12108206 | Cation Mixed Mode, 6 mL |
| Sulfuric acid (97%) | Wuxi Zhanwang Chemical Reagent Co., Ltd. | 1003019 | CAS No:7664-93-9 |
| Trisodium citrate | Sinpharm Chemical Reagent Co., Ltd. | 20121009 | CAS No:6132-04-3 |
| Ultrasonic cleaner | Supmile | KQ-600B | Inner slot size: 500 × 300 × 150 mm; Capacity: 22.5 L |
| UPLC-xevoTQMS | Waters | ZPLYY-003 | Triple four-stage rod mass analyzer, Waters Alliance 2695/Waters ACQUITY UPLC Liquid Phase System |
| Water bath thermostat oscillator | Guoyu instrument | SHY-2AHS | Oscillation times: 60-300 times/min, Constant temperature range: room temperature to 100 °C |
References
- Schramm, S., Kohler, N., Rozhon, W. Pyrrolizidine alkaloids: Biosynthesis, biological activities and occurrence in crop plants. Molecules. 24 (3), 498 (2019).
- EFSA Panel on Contaminants in the Food Chain (CONTAM). Scientific opinion on pyrrolizidine alkaloids in food and feed. EFSA Journal. 9 (11), 134 (2011).
- Ma, C., et al. Determination and regulation of hepatotoxic pyrrolizidine alkaloids in food: A critical review of recent research. Food and Chemical Toxicology. 119, 50-60 (2018).
- Keuth, O., Humpf, H. U., Fürst, P. Pyrrolizidine Alkaloids: Analytical Challenges. Encyclopedia of Food Chemistry. Melton, L., Shahidi, F., Varelis, P. 1, Elsevier. 348-355 (2019).
- Huang, D. Y., et al. Pyrrolizidine alkaloids and its source analysis in tea. Journal of Food Safety & Quality. 9 (2), 229-236 (2018).
- Liang, A. H., Ye, Z. G. General situation of the toxicity researches on Senecio. China Journal of Chinese Materia Medica. 31 (2), 93-97 (2006).
- Li, Y. H., et al. Proteomic study of pyrrolizidine alkaloid-induced hepatic sinusoidal obstruction syndrome in rats. Chemical Research in Toxicology. 28 (9), 1715-1727 (2015).
- Jia, Z. J., et al. Catalytic enantioselective synthesis of a pyrrolizidine-alkaloid-inspired compound collection with antiplasmodial activity. The Journal of Organic Chemistry. 83, 7033-7041 (2018).
- Yang, M., et al. First evidence of pyrrolizidine alkaloid N-oxide-induced hepatic sinusoidal obstruction syndrome in humans. Archives of Toxicology. 91 (12), 3913-3925 (2017).
- Chen, Z., Huo, J. R. Hepatic veno-occlusive disease associated with toxicity of pyrrolizidine alkaloids in herbal preparations. Netherlands Journal of Medicine. 68 (6), 252-260 (2010).
- Mattocks, A. R. Chemistry and Toxicology of Pyrrolizidine Alkaloid. , Academic Press. London, UK. (1986).
- Picron, J. F., Herman, M., Van Hoeck, E., Goscinny, S. Analytical strategies for the determination of pyrrolizidine alkaloids in plant based food and examination of the transfer rate during the infusion process. Food Chemistry. 266, 514-523 (2018).
- Kowalczyk, E., Kwiatek, K. Application of the sum parameter method for the determination of pyrrolizidine alkaloids in teas. Food Additives & Contaminants: Part A. 37 (4), 622-633 (2020).
- EFSA Panel on Contaminants in the Food Chain (CONTAM). Risks for human health related to the presence of pyrrolizidine alkaloids in honey, tea, herbal infusions and food supplements. EFSA Journal. 15 (7), 04908 (2017).
- Han, H., et al. Pyrrolizidine alkaloids in tea: A review of analytical methods, contamination levels and health risk. Food Science. 42 (17), 255-266 (2021).
- Nowak, M., et al. Interspecific transfer of pyrrolizidine alkaloids: An unconsidered source of contaminations of phytopharmaceuticals and plant derived commodities. Food Chemistry. 213, 163-168 (2016).
- Selmar, D., et al. Transfer of pyrrolizidine alkaloids between living plants: A disregarded source of contaminations. Environmental Pollution. 248, 456-461 (2019).
- Izcara, S., et al. Miniaturized and modified QuEChERS method with mesostructured silica as clean-up sorbent for pyrrolizidine alkaloids determination in aromatic herbs. Food Chemistry. 380, 132189 (2022).
- Izcara, S., Casado, N., Morante-Zarcero, S., Sierra, I. A miniaturized QuEChERS method combined with ultrahigh liquid chromatography coupled to tandem mass spectrometry for the analysis of pyrrolizidine alkaloids in oregano samples. Foods. 9 (9), 1319 (2020).
- Van Wyk, B. E., Stander, M. A., Long, H. S. Senecio angustifolius as the major source of pyrrolizidine alkaloid contamination of rooibos tea (Aspalathus linearis). South African Journal of Botany. 110, 124-131 (2017).
- Johnson, A. E., Molyneux, R. J., Merrill, G. B. Chemistry of toxic range plants. Variation in pyrrolizidine alkaloid content of Senecio, Amsinckia, and Crotalaria species. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 33 (1), 50-55 (1985).
- Vrieling, K., de Vos, H., van Wijk, C. A. M. Genetic analysis of the concentrations of pyrrolizidine alkaloids in Senecio jacobaea. Phytochemistry. 32 (5), 1141-1144 (1993).
- Han, H. L., et al. Development, optimization, validation and application of ultra high performance liquid chromatography tandem mass spectrometry for the analysis of pyrrolizidine alkaloids and pyrrolizidine alkaloid N-oxides in teas and weeds. Food control. 132, 108518 (2022).
- Bodi, D., et al. Determination of pyrrolizidine alkaloids in tea, herbal drugs and honey. Food Additives & Contaminants: Part A. 31 (11), 1886-1895 (2014).
- European Union Commission. Commission Regulation (EU) 2020/2040 of 11 December 2020 amending Regulation (EC) No 1881/2006 as regards maximum levels of pyrrolizidine alkaloids in certain foodstuffs. Official Journal of the European Union. 14 (12), 1-4 (2020).
