Summary

इन विट्रो जिंक ट्रांसपोर्ट परख का उपयोग करके स्तनधारी जस्ता ट्रांसपोर्टरों की विशेषता

Published: June 02, 2023
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Summary

जिंक परिवहन प्रोटीन फ़ंक्शन और कम अस्थायी संकल्प के लिए कमजोर कारण लिंक के कारण मापने के लिए चुनौतीपूर्ण साबित हुआ है। यह प्रोटोकॉल उच्च अस्थायी रिज़ॉल्यूशन के साथ, Zn2+ संवेदनशील फ्लोरोसेंट डाई का उपयोग करके जीवित कोशिकाओं से Zn 2+ एक्सट्रूज़न की निगरानी के लिए एक विधि का वर्णन करता है, इस प्रकार Zn2+ एफ्लक्स का प्रत्यक्ष माप प्रदान करता है।

Abstract

Zn2+ आयनों जैसे संक्रमण धातुओं को उनकी सेलुलर विषाक्तता के कारण कसकर विनियमित किया जाना चाहिए। पहले, Zn 2+ ट्रांसपोर्टरों की गतिविधि को अप्रत्यक्ष रूप से Zn2+ की विभिन्न सांद्रता के तहत ट्रांसपोर्टर के अभिव्यक्ति स्तर को निर्धारित करके मापा गया था। यह इम्यूनोहिस्टोकेमिस्ट्री का उपयोग करके, ऊतक में एमआरएनए को मापकर, या सेलुलर जेडएन2 + स्तरों का निर्धारण करके किया गया था। इंट्रासेल्युलर जेडएन 2 + सेंसर के विकास के साथ, जस्ता ट्रांसपोर्टरों की गतिविधियों को वर्तमान में मुख्य रूप से इंट्रासेल्युलर जेडएन 2 + में परिवर्तनों को सहसंबंधित करके निर्धारित किया जाता है, जो फ्लोरोसेंट जांच का उपयोग करके जेडएन2 + ट्रांसपोर्टरों की अभिव्यक्ति के साथ पता लगाया जाता है। हालांकि, आज भी, केवल कुछ प्रयोगशालाएं इंट्रासेल्युलर जेडएन2 + में गतिशील परिवर्तनों की निगरानी करती हैं और इसका उपयोग सीधे जस्ता ट्रांसपोर्टरों की गतिविधि को मापने के लिए करती हैं। समस्या का एक हिस्सा यह है कि ZnT परिवार के 10 जस्ता ट्रांसपोर्टरों में से, ZnT10 (मैंगनीज का परिवहन) को छोड़कर, केवल जस्ता ट्रांसपोर्टर 1 (ZnT1) प्लाज्मा झिल्ली पर स्थानीयकृत है। इसलिए, इंट्रासेल्युलर जेडएन2 + एकाग्रता में परिवर्तन के लिए परिवहन गतिविधि को जोड़ना कठिन है। यह लेख जस्ता-विशिष्ट फ्लोरोसेंट डाई, फ्लुओज़िन -3 पर आधारित परख का उपयोग करके जस्ता परिवहन कैनेटीक्स को निर्धारित करने का एक सीधा तरीका बताता है। यह डाई अपने एस्टर रूप में स्तनधारी कोशिकाओं में लोड होती है और फिर सेलुलर डि-एस्टरेज़ गतिविधि के कारण साइटोसोल में फंस जाती है। कोशिकाओं को Zn 2+ आयोनोफोर पाइरिथियोन का उपयोग करके Zn2+ के साथ लोड किया जाता है। सेल वॉशआउट के बाद प्रतिदीप्ति में कमी के रैखिक भाग से ZnT1 गतिविधि का आकलन किया जाता है। 470 एनएम की उत्तेजना और 520 एनएम के उत्सर्जन पर मापा गया प्रतिदीप्ति मुक्त इंट्रासेल्युलर जेडएन2 + के आनुपातिक है। एमचेरी फ्लोरोफोरे के साथ टैग किए गए ZnT1 को व्यक्त करने वाली कोशिकाओं का चयन करने से केवल ट्रांसपोर्टर को व्यक्त करने वाली कोशिकाओं की निगरानी की अनुमति मिलती है। इस परख का उपयोग मानव ZnT1 के परिवहन तंत्र में ZnT1 प्रोटीन के विभिन्न डोमेन के योगदान की जांच करने के लिए किया जाता है, एक यूकेरियोटिक ट्रांसमेम्ब्रेन प्रोटीन जो कोशिका से अतिरिक्त जस्ता को बाहर निकालता है।

Introduction

जस्ता सेलुलर वातावरण में एक आवश्यक ट्रेस तत्व है। यह सभी प्रोटीनों का एक तिहाई शामिल करता है और विभिन्न सेलुलर प्रक्रियाओं में शामिल होता है, जैसे कि उत्प्रेरण1, प्रतिलेखन2, और संरचनात्मक रूपांकन3। हालांकि, रेडॉक्स-निष्क्रिय होने के बावजूद, उच्च जस्ता सांद्रता कोशिका के लिए विषाक्त है, यही कारण है कि कोई भी स्तनधारी जीव जस्ता होमियोस्टैसिस को विनियमित करने वाले तंत्र की उपस्थिति के बिना जीवित नहीं है। स्तनधारियों में, इस प्रक्रिया के लिए तीन तंत्र जिम्मेदार हैं: (1) मेटलोथियोनिन, जो साइटोसोलिक सिस्टीन युक्त प्रोटीन हैं जो जस्ता को उच्च आत्मीयता पर बांधते हैं, इस प्रकार अतिरिक्त मुक्त साइटोसोलिक जस्ता4 को रोकते हैं; (2) जेडआरटी / आईआरटी जैसे प्रोटीन (ज़िप), जो प्लाज्मा झिल्ली के माध्यम से या इंट्रासेल्युलर ऑर्गेनेल 4,5,6,7,8 से साइटोसोल में जस्ता प्रवाह के लिए जिम्मेदार जस्ता ट्रांसपोर्टर हैं; और (3) जेडएनटी, जो सर्वव्यापी केशन डिफ्यूजन फैसिलिटेटर (सीडीएफ) परिवार का एक स्तनधारी उप-समूह हैं और जस्ता ट्रांसपोर्टर हैं, क्योंकि वे प्लाज्मा झिल्ली के पार साइटोसोल से या इंट्रासेल्युलर ऑर्गेनेल 4,5,6,7,8,9 में जस्ता निकालते हैं। सेलुलर चयापचय के लिए जस्ता के महत्व के कारण, सेलुलर जस्ता गतिशीलता को समझना महत्वपूर्ण है।

जस्ता गतिशीलता का आकलन करने के पिछले तरीके विभिन्न जस्ता स्थितियों के तहत एमआरएनए के अभिव्यक्ति स्तर का आकलन करने पर निर्भर करते थे, उन्हें निश्चित ऊतकों या कोशिकाओं के सेलुलर जस्ता माप के साथ सहसंबंध करके10,11,12। इन विधियों में रासायनिक पहचान और इम्यूनोहिस्टोकेमिस्ट्री धुंधला होना शामिल है। हालांकि, ये विधियां केवल अप्रत्यक्ष उपाय उत्पन्न करती हैं और इस प्रकार, इंट्रासेल्युलर जस्ता एकाग्रता और जस्ता ट्रांसपोर्टरों की अभिव्यक्ति के बीच केवल एक ऑफ़लाइन सहसंबंध निर्धारित करती हैं। नतीजतन, ये विधियां उच्च अस्थायी संकल्प की आवश्यकता वाले किसी भी पैरामीटर का अनुमान नहीं लगा सकती हैं।

Zn2+ परिवहन का एक अधिक प्रत्यक्ष माप जस्ता13 के रेडियोधर्मी आइसोटोप का उपयोग करता है। यह विधि जस्ता परिवहन और इसके कैनेटीक्स की निगरानी के लिए रेडियोलेबल जेडएन2 + के माप पर निर्भर करती है। हालांकि, सेलुलर होमियोस्टैसिस के लिए जस्ता के महत्व के कारण, कई सेलुलर प्रक्रियाएं इंट्रासेल्युलर जस्ता एकाग्रता को नियंत्रित करती हैं। इनमें बाह्य बंधन और कई परिवहन प्रणालियां हैं जो इंट्रासेल्युलर जेडएन2 + स्तरों के कड़े नियंत्रण को बनाए रखने के लिए मिलकर काम करती हैं। इन प्रक्रियाओं का संयोजन काफी पृष्ठभूमि शोर पैदा करता है, जिससे व्यक्तिगत जस्ता से संबंधित परिवहन कार्यों का परीक्षण करना मुश्किल हो जाता है।

यह लेख जस्ता-विशिष्ट फ्लोरोसेंट डाई, फ्लुओज़िन -3 का उपयोग करके इंट्रासेल्युलर मुक्त जस्ता एकाग्रता को मापकर जस्ता परिवहन दर की सीधे निगरानी करने की एक विधि प्रदर्शित करता है। डाई में Zn2+ के लिए उच्च विशिष्टता है और कैल्शियम जैसे अन्य द्विसंयोजक पिंजरों से थोड़ा हस्तक्षेप है। इसके अलावा, अपने एस्टर रूप में, यह नॉनआयनिक प्रसार द्वारा कोशिकाओं में प्रवेश करता है और फिर इंट्रासेल्युलर डि-एस्टरेज़ की गतिविधि के कारण फंस जाता है। इस प्रकार, इसकी प्रतिदीप्ति मुख्य रूप से मुक्त साइटोसोलिक जस्ता एकाग्रता के साथ सहसंबद्ध है। ये प्रयोग जेडएनटी परिवार के सदस्य जिंक ट्रांसपोर्टर 1 (जेडएनटी 1) की संरचना-कार्य संबंध का अध्ययन करने के लिए आयोजित किए गए थे।

Protocol

1. सेल अभिकर्मक डलबेकको के संशोधित ईगल माध्यम (डीएमईएम) में कल्चर HEK293T कोशिकाओं को 10% भ्रूण गोजातीय सीरम (एफबीएस), 2 एमएम एल-ग्लूटामाइन, और 1 एक्स पेनिसिलिन / स्ट्रेप्टोमाइसिन (सामग्री की तालिका</s…

Representative Results

ZnT1 एक स्तनधारी जस्ता ट्रांसपोर्टर है जो कोशिका प्लाज्मा झिल्ली13 पर स्थित है। यह केशन डिफ्यूजन फैसिलिटेटर (सीडीएफ) प्रोटीन परिवार का एक सदस्य है जो साइटोसोल से जिंक को बाह्य मिलावट14 म?…

Discussion

उपरोक्त वर्णित विधि उच्च अस्थायी संकल्प के साथ इंट्रासेल्युलर जस्ता एकाग्रता के प्रत्यक्ष माप की अनुमति देती है। अन्य तरीकों की तुलना में, इंट्रासेल्युलर जेडएन2 + में परिवर्तन की निगरानी से जुड़?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

राज ज़रीवाच इज़राइल साइंस फाउंडेशन (अनुदान संख्या 163/22) द्वारा समर्थित है। टोमर एली बेन योसेफ और एरी मोरन को इज़राइल साइंस फाउंडेशन (अनुदान संख्या 2047/20) द्वारा समर्थित किया जाता है। हम डैनियल गिटलर और बेन-गुरियन विश्वविद्यालय में उनके समूह को उनके सहयोग, समर्थन और विशेषज्ञता के लिए धन्यवाद देना चाहते हैं।

Materials

10 cm plate greiner bio-one 664160
12-well cell culture plate greiner bio-one 665180
13 mm coverslips Superior Marienfeld 111530
22 mm cover slides Superior Marienfeld 101050
6-well culture plate greiner bio-one 657160
Bovine serum albumin bioWorld 22070008
Calcium chloride anhydrous, granular Sigma Aldrich C1016 Concentration in Ringer solution: 1 mM
D-(+)-Glucose Glentham Life Science GC6947 Concentration in Ringer solution: 10 mM
Dubelco’s Modified Eagle Media (DMEM)  Sartorius 01-055-1A
Eclipse Ti inverted microscope Nikon TI-DH Discontinued. Replaced by Eclipse Ti2
Fetal Bovine Serum (FBS) Cytiva SH30088.03
Fine tweezers Dumont 0203-55-PS
Fluozin-3AM Invitrogen F24195
HyClone Penicillin-Streptomycin 100x solution Cytiva SV30010 
LED illumination system CoolLED pE-4000
L-glutamine Biological Industries 03-020-1B
Magnesium chloride hexahydrate Merck 1.05833 Concentration in Ringer solution: 0.8 mM
N[2-Hydroxyethyl]piperazine-N'-[2-ethanesulfonic acid] (HEPES) Formedium HEPES10 Concentration in Ringer solution: 10 mM
Neo 5.5 sCMOS camera ANDOR DC-152Q-FI
NIS-Elements imaging software Nikon AR
Pluronic acid F-127 Millipore 540025
Pottasium chloride Bio-Lab 163823 Concentration in Ringer solution: 5.4 mM
Pyrithione Sigma Aldrich H3261 Concentration in Ringer zinc solution: 7 μM
Silicone Grease Kit Warner Instruments W4 64-0378
Sodium chloride Bio-Lab 190305 Concentration in Ringer solution: 120 mM
Zinc sulfate Concentration in Ringer zinc solution: 7 μM
Sigma Aldrich 31665

References

  1. Lindskog, S. Structure and mechanism of carbonic anhydrase. Pharmacology & Therapeutics. 74 (1), 1-20 (1997).
  2. Rutherford, J. C., Bird, A. J. Metal-responsive transcription factors that regulate iron, zinc, and copper homeostasis in eukaryotic cells. Eukaryotic Cell. 3 (1), 1-13 (2004).
  3. Maret, W. Zinc Biochemistry: From a single zinc enzyme to a key element of life. Advances in Nutrition. 4 (1), 82-91 (2013).
  4. Kimura, T., Kambe, T. The functions of metallothionein and ZIP and ZnT transporters: An overview and perspective. International Journal of Molecular Sciences. 17 (3), 336 (2016).
  5. Kambe, T., Hashimoto, A., Fujimoto, S. Current understanding of ZIP and ZnT zinc transporters in human health and diseases. Cellular and Molecular Life Sciences. 71 (17), 3281-3295 (2014).
  6. Kambe, T., Tsuji, T., Hashimoto, A., Itsumura, N. The physiological, biochemical, and molecular roles of zinc transporters in zinc homeostasis and metabolism. Physiological Reviews. 95 (3), 749-784 (2015).
  7. Hara, T., Yoshigai, E., Ohashi, T., Fukada, T. Zinc transporters as potential therapeutic targets: An updated review. Journal of Pharmacological Sciences. 148 (2), 221-228 (2022).
  8. Kambe, T., Taylor, K. M., Fu, D. Zinc transporters and their functional integration in mammalian cells. Journal of Biological Chemistry. 296, 100320 (2021).
  9. Huang, L., Tepaamorndech, S. The SLC30 family of zinc transporters – A review of current understanding of their biological and pathophysiological roles. Molecular Aspects of Medicine. 34 (2), 548-560 (2013).
  10. Lovell, M. A., Smith, J. L., Xiong, S., Markesbery, W. R. Alterations in zinc transporter protein-1 (ZnT-1) in the brain of subjects with mild cognitive impairment, early, and late-stage Alzheimer’s disease. Neurotoxicity Research. 7 (4), 265-271 (2005).
  11. Lyubartseva, G., Smith, J. L., Markesbery, W. R., Lovell, M. A. Alterations of zinc transporter proteins ZnT-1, ZnT-4 and ZnT-6 in preclinical Alzheimer’s disease brain. Brain Pathology. 20 (2), 343-350 (2010).
  12. Tsuda, M., et al. Expression of zinc transporter gene, ZnT-1, is induced after transient forebrain ischemia in the gerbil. The Journal of Neuroscience. 17 (17), 6678-6684 (1997).
  13. Palmiter, R. d., Findley, S. d. Cloning and functional characterization of a mammalian zinc transporter that confers resistance to zinc. The EMBO Journal. 14 (4), 639-649 (1995).
  14. Cotrim, C. A., Jarrott, R. J., Martin, J. L., Drew, D. A structural overview of the zinc transporters in the cation diffusion facilitator family. Acta Crystallographica Section D Structural Biology. 75 (4), 357-367 (2019).
  15. Shapiro, S. S., Wilk, M. B. An analysis of variance test for normality (complete samples). Biometrika. 52 (3-4), 591-611 (1965).
  16. Mann, H. B., Whitney, D. R. On a test of whether one of two random variables is stochastically larger than the other. The Annals of Mathematical Statistics. 18 (1), 50-60 (1947).
  17. Darling, D. A. The Kolmogorov-Smirnov, Cramer-von Mises tests. The Annals of Mathematical Statistics. 28 (4), 823-838 (1957).
  18. Zhao, J., Bertoglio, B. A., Gee, K. R., Kay, A. R. The zinc indicator FluoZin-3 is not perturbed significantly by physiological levels of calcium or magnesium. Cell Calcium. 44 (4), 422-426 (2008).
  19. Gee, K. R., Zhou, Z. -. L., Ton-That, D., Sensi, S. L., Weiss, J. H. Measuring zinc in living cells.: A new generation of sensitive and selective fluorescent probes. Cell Calcium. 31 (5), 245-251 (2002).
  20. Sensi, S. L., Ton-That, D., Weiss, J. H., Rothe, A., Gee, K. R. A new mitochondrial fluorescent zinc sensor. Cell Calcium. 34 (3), 281-284 (2003).
  21. Hessels, A. M., et al. eZinCh-2: A versatile, genetically encoded FRET sensor for cytosolic and intraorganelle Zn2+ imaging. ACS Chemical Biology. 10 (9), 2126-2134 (2015).
  22. Sánchez-Martín, R. M., Cuttle, M., Mittoo, S., Bradley, M. Microsphere-based real-time calcium sensing. Angewandte Chemie International Edition. 45 (33), 5472-5474 (2006).
  23. Namdarghanbari, M. A., et al. Reaction of the zinc sensor FluoZin-3 with Zn7-metallothionein: Inquiry into the existence of a proposed weak binding site. Journal of Inorganic Biochemistry. 104 (3), 224-231 (2010).
  24. Devinney, M. J., Reynolds, I. J., Dineley, K. E. Simultaneous detection of intracellular free calcium and zinc using fura-2FF and FluoZin-3. Cell Calcium. 37 (3), 225-232 (2005).
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Ben Yosef, T. E., Zarivach, R., Moran, A. Characterizing Mammalian Zinc Transporters Using an In Vitro Zinc Transport Assay. J. Vis. Exp. (196), e65217, doi:10.3791/65217 (2023).

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