Author Produced

في الموقع المستقيمة البطنية عرضية عضلي جلدي رفرف: نموذج الفئران من الاصابة ضخه الإسكيمية عضلي جلدي

Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

يعمل نقل الأنسجة الحرة على نطاق واسع في الجراحة الترميمية لاستعادة الشكل والوظيفة بعد استئصال الأورام والصدمات النفسية. شروط مسبقة هذا النسيج قبل الجراحة قد يحسن النتيجة. توضح هذه المقالة

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Edmunds, M. C., Wigmore, S., Kluth, D. In situ Transverse Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A Rat Model of Myocutaneous Ischemia Reperfusion Injury. J. Vis. Exp. (76), e50473, doi:10.3791/50473 (2013).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

نقل الأنسجة الحرة هي معيار الذهب من الجراحة الترميمية لإصلاح العيوب المعقدة غير قابلة للخيارات المحلية أو تلك التي تتطلب الأنسجة المركبة. نقص التروية الاصابة ضخه (IRI) هو سبب معروف من فشل جزئي رفرف مجانا وليس له علاج فعال. يمكن إنشاء نموذج مختبر من هذا الضرر يكون مكلفا ماليا كما تستخدم تقليديا أكبر الثدييات والخبرة المطلوبة من صعوبة التقنية لهذه الإجراءات عادة ما يتطلب استخدام وmicrosurgeon ذوي الخبرة. هذا المنشور والفيديو شرح استخدام الفعال لنموذج IRI في الفئران التي لا تتطلب خبرة المجهرية. هذا الإجراء هو نموذج الموقع من عضلي جلدي البطنية المستعرضة (الترام) رفرف حيث تستخدم المشابك ارضحي إعادة إنشاء إصابة نقص التروية-ضخه المرتبطة بهذه الجراحة في. يتم توظيف دوبلر التصوير (LDI) الماسح الضوئي ليزر لتقييم نضح رفرف ومعالجة الصور softwaإعادة، J صورة لتقييم نسبة بقاء منطقة الجلد كإجراء النتيجة الأولية من الإصابة.

Introduction

والهدف من هذا البروتوكول هو ليبرهن على وجود نموذج موثوق بها وقابلة للتكرار وقوع الضرر نقص تروية-ضخه لوحظ في نقل الأنسجة حرة لتمكين الاستراتيجيات التدخلية للتحقيق معهم.

يتم تعريف نقل الأنسجة مجانا كما مفرزة الأوعية الدموية من كتلة من الأنسجة المعزولة تليها زرع ذاتي من أن الأنسجة مع مفاغرة السفن رفرف في مقطوع على السفن الأم في موقع المتلقي. ومن المعروف أن الإجراء وFTT والأنسجة نقله ويشار إلى أن رفرف مجانا.

نقل الأنسجة الحرة هي نهج معيار الذهب لتصحيح، وعيوب المركبة المعقدة حيث الخيارات المحلية غير مناسبة أو غير متوفر. 1-4 الإسكيمية الاصابة ضخه (IRI) أمر لا مفر منه في نقل الأنسجة الحرة، ويسهم في فشل رفرف 5،6 وليس لديها العلاج الفعال. طبيعة العمليات الجراحية الاختيارية رفرف مجانية تسمح إدارة pharmacologiوكلاء كال إلى شرط مسبق ضد IRI.

النتائج IRI في تدفق من خلال ضعف دوران الأوعية الدقيقة من قبل التنشيط البطانية وضعف التمثيل الغذائي، 7 زيادة نفاذية الشعيرات الدموية وذمة لاحقة الخلالي تدفق الخلايا الالتهابية، 8 الافراج عن وسطاء التهابات، وأنواع الاكسجين التفاعلية (9) وترسب مكملا 10 هذه العملية المعقدة من نقص الأكسجة والاصابة ضخه اللاحقة يؤدي في النهاية إلى موت الخلية. نموذج للعضلي جلدي IRI تمكن فعالية استراتيجيات شروط مسبقة على النتائج السريرية ليتم تقييمها. العمل الأخيرة قد صادق على استخدام نماذج حيوانية من دراسات المعهد الجمهوري الدولي كبديل للIRI الإنسان من خلال مقارنة التغيرات الجزيئية التي لوحظت في البشر والحيوان البيانات الموجودة. 10،11

الفئران عرضية المستقيمة البطنية عضلي جلدي (الترام) رفرف وقد وصفت لأول مرة في عام 1987 في 12 و الألمانية في عام 199313 في اللغة الإنجليزية. هذا النموذج اكتسب شعبية واسعة 13-25 كنموذج رخيصة وقوية للتحقيق استراتيجيات مختلفة للحد من IRI المرتبطة نقل الأنسجة الحرة. وقد صممت 14،17-22 غالبية هذه الدراسات واللوحات الترام unipedicled على أساس عميق، أقل شأنا، معقد شرسوفي الأوعية الدموية عنيق 15-18،20-22 مقارنة البيانات من هذه الدراسات من خلال استخدام الجزر الجلدي مختلفة الحجم (10،5 حتي 30 سم 2). وأطوال مختلفة من المتابعة بعد العملية الجراحية (2-10 يوما). ويبلغ متوسط ​​مساحة بلغت نسبة نخر رفرف في ذراع التحكم من هذه الدراسات هو 69 ± 6.2٪ (يعني ± SEM). وتجدر الإشارة إلى أن هذه الأوراق ستة توظيف جميع العضلات المستقيمة البطنية باعتبارها الناقل للعنيق الأوعية الدموية ولكن لا تعرض، وتقسيم microanastomose أو تضييق الأوعية. تشانغ وآخرون وقد وصفت 23 صحيح، مجانا الفئران رفرف الترام على أساس سفن شرسوفي متفوقة فيها ووأثيرت فات، سفن مقسمة ورفرف عضلي جلدي نقل وmicroanastomosed في الأوعية الفخذ. هذه التقنية الصعبة المطلوبة للمفاغرة مكروية من ،45-،5 مم السفن العيار. أجريت فقط خمسة عشر وهذه 67٪ نجا 23 نموذج صفها تشانغ وآخرون. 23 هو نموذج ممتاز للإنسان رفرف الترام مجانا كما أنه يعكس حقا الإصابة المتكبدة خلال FTT. نماذج أخرى نشرت من رفرف الترام الفئران تعكس بدقة أكبر الإصابات المتكبدة خلال ترام pedicled الإنسان، ولكن لا تعكس بدقة IRI لأن هذه رفرف في لا الخضوع لفترة الدماغية تليها ضخه كما عنيق الأوعية الدموية لا يتم فرضت أو تقسيم و إجراء مفاغرة مكروية. هذا البروتوكول والفيديو وصف نموذج جديد للنقل الأنسجة مجانا باستخدام الترام في الفئران التي يتم نسخ IRI باستخدام microclamps. هذا يعيد أكثر بأمانة IRI من سبقوه الترام عنيق لكن هو أسهل من الناحية التقنية من performiنانوغرام مفاغرة مكروية. وقد استخدمت على نطاق واسع Microclamps من قبل الباحثين لإعادة زرع IRI المرتبطة زرع الأعضاء الصلبة؛ 26-33 ومع ذلك، هذه هي المرة الأولى التي وصفت ذلك في رفرف الترام الفئران.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

يتم تنفيذ كل عملية جراحية وفقا للمبادئ التوجيهية التي وضعتها وزارة الداخلية في المملكة المتحدة وجامعة قسم الخدمات البيطرية في أدنبرة.

1. مجموعة المتابعة العملية الجراحية ملاحظات

  1. تغيير في الدعك نظيفة الجراحية، ثوب، وكأب وفرك القناع. تنظيف جميع الأسطح من غرفة العمليات بما في ذلك المعدات بالكلورهيكسيدين 2٪ في ايزوبروبيل 70٪.
  2. قبل الجراحة، الأوتوكلاف جميع المستلزمات والأدوات التي سيتم استخدامها في العملية الجراحية. ينبغي حزم معقمة لكل عملية تشمل ما يلي: 3 الستائر والشاش وتطبيقها طرف القطن، والأغطية سيليكون والأدوات الجراحية، راجع الجدول من مواد جراحية محددة وأدوات والشكل 1. وزن الفئران وقياس من حجم مناسب من البوبرينورفين (0.04 ملجم / كجم) على أن تدار تحت الجلد 1 ساعة قبل إتمام الإجراء. وضع؛ 3 × 1 مل المحاقن لإدارة السوائل تحت الجلد خلال سورغريها، 2 × 6-0 ​​الغرز VICRYL، 1 × 5-0 الغرز Ethilon، علامة العقيمة مع الحاكم ومشرط المتاح 10 شفرة، 4-5 أزواج من القفازات المعقمة وحدة الكي باليد.
  3. المكان 4 × 10 مل العقيمة، 0.9٪ قارورة المياه المالحة في حمام مائي تحسنت إلى 37 درجة مئوية. سيتم استخدام هذا لاستبدال السوائل تحت الجلد (1 مل / كجم / ساعة)، وشطف موقع الجراحية. إعداد بطانية homeothermic، المستقيم التحقيق، مصباح الحرارة، مجهر جراحي ومخدر تلاعب. بدوره على الليزر وبرمجياتها، مجموعة المتابعة تلاعب مخدر آخر، ووضع وسادة الحرارة تحت حصيرة سوداء على الحيوان الذي سيضع أثناء الفحص.
  4. استخدام الذكور والفئران وزنها 250-300 ز لويس. يتم تنفيذ الفئران منزل لمدة 7 أيام مع الغذاء والماء بالمال وبالشهرة أيضا الإعلانية مع 12 ساعة الدوائر السوداء الخفيفة قبل أي عملية جراحية.

2. التخدير وتحضير الجلد

  1. وضع فأر في غرفة تحريض تلاعب مخدر وتدير 4٪ isoflurane ومع 1L/min O 2 لل2-3 دقيقة للحث على التخدير. إزالة الفئران تخدير من الغرفة ووضعه مستلق على حصيرة نظيفة، ساخنة. الحفاظ على isoflurane وبنسبة 1.5٪ باستخدام مخروط الأنف. تطبيق عامل lacrilube أو ما شابه ذلك لمنع تآكل القرنية أثناء العملية. إجراء اختبار قرصة القدم وسادة لضمان الحيوان هو تخدير كاف قبل المتابعة. كرر هذه التجربة الاخيرة قبل كل خطوة رئيسية في إجراء وضبط تركيز مخدر الاستنشاق وفقا لذلك.
  2. حلاقة عن كثب الأمامي البطن باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية بحيث يتعرض سطح البطن بأكمله. تطبيق السماط الكريم لمدة موصى بها من قبل المورد. إزالة كريم وشطف جيدا الجلد مع ملحي معقم تحسنت إلى إزالة كل آثار من القشدة. تطبيق الكلورهكسيدين 2٪ في ايزوبروبيل 70٪ على الجلد والسماح ليجف قبل المتابعة. هذا هو إعداد الجلد القياسية في وحدتنا على أساس الأدلة الحالية للعدوى موضع الجراحة. فضلك د 34iscuss مع قسم الطب البيطري الخاص ما هو الإجراء القياسي في وحدتك قبل انتخاب بروتوكول إعداد الجلد.
  3. مكان 2 ستائر جانبي الفئران والحرص على الاحتفاظ بها العقيمة. وضعت على قفازات معقمة وبمساعدة مساعد فتح علب معقمة. وضع جميع الصكوك على الستارة واحد وخياطة الجروح، والشاش، القطن تطبيقها، والأغطية سيليكون وعلامة من ركلة جزاء العقيمة مع حاكم من ناحية أخرى.
  4. تحديد خط الوسط باستخدام xiphisternum والذيل كنقاط مرجعية. جعل خط الوسط. قياس 0.8 سم تحت xiphisternum وبمناسبة هذه النقطة. رسم خط عمودي على خط الوسط من هذه النقطة. اتخاذ خط الوسط كمركز للعلامة رفرف من 1 سم و 2 سم إلى اليسار واليمين من خط الوسط. رسم خطوط عمودية متوازية على خط الوسط من النقاط. قياس 4 سم تحت الخط الأفقي الأصلي ورسم آخر مواز له. باتباع هذه التعليمات ويرسم على 4 × 4 سم رفرف ينقسم إلى 4 شرائح متساوية(انظر الشكل 2).

3. دوبلر الليزر التصوير

  1. تحرك بحذر الفئران على مخروط الأنف من الثانية تلاعب مخدر في الماسح الضوئي LDI. يستمر التخدير عند 1.5٪ isoflurane و، 1L/min O 2. بدوره على الليزر واتبع إرشادات الشركة المصنعة لبدء المسح الضوئي. بعد حفظ الملف الممسوح ضوئيا عودة الفئران عودة إلى تلاعب الأولى وإعادة إدراج التحقيق المستقيم من بطانية homeothermic باستخدام البارافين الأبيض الطري ومواد التشحيم.

4 في الموقع رفرف الترام - نموذج عضلي جلدي من IRI

  1. الأيدي إعادة فرك وضعت على قفازات معقمة جديدة. قطع على دائرة قطرها 5 سم في وسط وثنى العقيمة المتبقية ووضع هذا على البطن يتعرض لإنشاء رايات العقيمة الميدان.
  2. إجراء شق على الناحية اليسرى الجانبية حافة ملحوظ (الشكل 3A وباء). تحقيق الارقاء. جعل شقوق مماثلة أسفل خطوط أفقيةإلى اليسار من خط الوسط. تحقيق الارقاء.
  3. المغطي الدهون يجب أن يكون اليسار السفلي غمد المستقيمة مرئية. باستخدام ملقط ومقص القزحية غرامة بعناية تحصل تحت هذه الدهون. والحرص على عدم تلف الثاقبة القادمة من خلال الجهة اليسرى الأمامية غمد المستقيمة. الطائرة التي تتيحها مثل تشريح هو أن مباشرة فوق البطن الأمامي اللفافة الجدار. يواصل تشريح في هذه الطائرة حول الهوامش المرسومة. في الحفرة الحرقفية اليسرى تكمن الكبيرة، وسطحية المنعطف الحرقفي السفن هذه يمكن أن تكون مرتبطة أو أكتوي. ثم توسيع تشريح إعلامي بحذر وفقط بقدر الهامش الجانبي للعضلة المستقيمة اليسرى. هناك تغير لونها واضح في هذه النقطة من الوردي إلى الأبيض بالقرب من (الشكل 3C). ري بعناية المنطقة مع ملحي معقم وتحقق من أن الارقاء قد تحقق قبل وضع الشاش الرطب على المنطقة.
  4. كرر الإجراء على الجانب المقابل ولكن هذه المرة تمديد ريا لينيا ألبا (منتصف خط). الحرص على تحديد ويكوي كل الثاقبة العضلي الجلدي الناشئة في وسط الحق المستقيمة البطنية العضلات (الشكل 3D). إذا لم يتم ذلك بشكل صحيح فإنه يمكن أن يؤدي إلى ورم دموي بعد العملية الجراحية والنتائج زائفة. وبالمثل تحقيق الإرقاء، لري ووضع الشاش الرطب على رفرف المثارة.
  5. العودة إلى الهامش السفلي للالمستقيمة الأمامية اليسرى (الشكل 3E و F). يكوي ثقب معظم أدنى ينظر إليها. انتقل إلى خفض نافذة صغيرة (حوالي 0.6 سم × 0.6 سم) في غمد المستقيمة الأمامية باستخدام microscissors وأشار منحني ملقط Graeffe. بلانت تشريح ببطء إلى أسفل الهامش الجانبي للعضلة حتى يخفف العضلات خارج ولكن قبل أن يتم اختراق غمد الخلفي. ثم تناوب على ملقط وتخفف من حدة تشريح إعلامي حتى البطن من العضلات هو فوق الحافة المنحنية من ملقط ونصائح أحرار في الهامش وسطي. إطعام تقريبيLY 6 سم من 5-0 Ethilon في فكي ملقط وربط قبالة غمد المستقيمة السفلية. عند الانتهاء من هذه الخطوة هو عزل رفرف عضلي جلدي على واحد مهيمن سفينة الأوعية شرسوفي متفوقة عميق. تغطية مع الشاش رطبة.
  6. قطع الأغطية سيليكون في الأشكال البيضاوية مع زوايا على نحو سلس، (الشكل 3G). وينبغي لهذه أن تكون كبيرة بما يكفي لتغطية معظم المنطقة المعرضة تحت الأجزاء fasciocutaneous من رفرف. ومع ذلك، يجب اتخاذ الحذر لضمان أن حافة الجلد يمكن أن تكون مغلقة دون أي توتر ومنحنى الإنسي للبيضاوي قد تضطر إلى أن تقرن مرة أخرى لمنعها تدفق إضعاف من خلال الثاقبة المتبقية. ثم تتم خياطة هذه في مكان مع 6-0 VICRYL (الشكل 3H). تغطي بشاش رطبة.
  7. استخدام بسيطة المقاطعة 'ربط خارج' 5-0 الغرز Ethilon رفرف لتخفيض درجة الحرارة وفقدان الماء (الشكل 3I). تغطية مع الشاش رطبة.
  8. تمديد الجرح متفوق على يسارxiphisternum (الشكل 3I). خياطة هذا إلى الربع العلوي الأيسر لتحسين من رأي الميدان.
  9. قطع بعيدا أي الدهون المغطي للكشف عن متفوقة، اليسار، الأمامي غمد المستقيمة. قطع (0.6 سم × 0.6 سم) نافذة صغيرة في هذا غمد (الشكل 3J). تمديد الجرح بشكل إعلامي حتى تغيير في مسار الألياف العضلية من العمودي إلى وينظر منحرف والاتساق من معبأة بإحكام لييفات فضفاضة.
  10. إدراج ملقط المنحني بعناية بين هذه العضلات واثنين من فتح الطائرة من قبل تشريح حادة. قطع بعناية أسفل فقط بقدر السطح العلوي من هذه ملقط المنحني قطع طريق البطن من العضلات المستقيمة البطنية اليسرى لكشف الكامنة العميقة، متفوقة الشريان والوريد الشرسوفي (الشكل 3K).
  11. باستخدام الأدوات الدقيقة وعالية الطاقة على المجهر التشغيل، فصل بعناية الشريان والوريد وتجريدها من أي الدهون المحيطة بها.
  12. تطبيق المشابك أكلاند ارضحي إلى أحدrtery والوريد (B-1، "V" نوع) وبدء موقت العد التنازلي لفترة 30 دقيقة الدماغية. ري فرضت عنيق، وتغطي بشاش. ونحن لم تستخدم الموسعات السفينة مثل فيراباميل أو pabavarine لكن ينبغي أن يكون تشنج الأوعية مشكلة، وينبغي النظر في هذه الأدوية.
  13. إدارة البوبرينورفين (0.04 ملغ / كلغ) وتحسنت، ملحي معقم (1 مل / كغ / ساعة).
  14. بدءا من الزاوية اليسرى العليا، خياطة رفرف في مكان مع الغرز 6-0 تحت البشرة VICRYL وقف وربط قبالة في xiphisternum.
  15. عندما يوجد وقت الدماغية 30 قد انتهت، وإزالة بعناية والمشابك، ولري عنيق مع المياه المالحة حرارة. تأكد من أن تم إعادة تأسيس تدفق. يرجى ملاحظة أن هذه المرة الدماغية نص عليه المملكة المتحدة الرئيسية هيئة مكتب. الباحثين العاملين في السلطات الأخرى قد تكون قادرة على توسيع نطاق هذا الوقت. سوف تمديد الوقت الدماغية قد يؤدي إلى نتائج سريرية أسوأ.
  16. خياطة حواف قطع من المستقيمة إلى مكانه مرة أخرى مع 6-0 VICRYL.والحرص على عدم تطبيق الكثير من التوتر لأن ذلك يمكن أن يؤدي إلى مجعد من السفن.
  17. إكمال خياطة تحت الجلد مع الحرص على دفن كل عقدة تحت الجلد (الشكل 3K).
  18. تنظيف منطقة الجرح واتركه حتى يجف. إعادة رسم المناطق على رفرف.
  19. إعادة فحص الحيوان للحصول على صورة ما بعد الجراحة.
  20. إعادة تطبيق lacrilube لعيون الحيوان ومكان في حاضنة حرارة (37 درجة مئوية) لمدة 1 ساعة لاستعادة قبل أن يعود إلى وحدة تربية.

الخطوات الحاسمة في إطار بروتوكول

جوهر هذا الإجراء هو في تحديد العميق، سفن شرسوفي متفوقة. ويظهر هذا بوضوح في الفيلم المرافق له. وباختصار، هو قطع نافذة في غمد المستقيمة الأمامية لفضح الألياف العضلية الأساسية التي سيقوم بتشغيل طوليا. من خلال توسيع تشريح سطحي من غمد المستقيمة الأمامية بشكل إعلامي تغييرا في مسار الألياف العضلية لوحظ جمعةROM طولية لمنحرف. إدراج فظة انتهت، المنحنية، ملقط Graeffe (أو ما شابه) عند تقاطع هذه حزم من الألياف العضلية اثنين. بلانت تشريح أفقيا. خفض، وذلك باستخدام المقص الصغير، على السطح العلوي للملقط المنحني الذي عقد في هذه الطائرة بين حزم الألياف العضلية. على إزالة Graeffe ملقط الشريان الشرسوفي عميق، متفوقة وسيراعى الوريد في منتصف من الجسم البطنية العضلات المستقيمة. تجريدها من المغطي الدهون في الأوعية باستخدام الأدوات الدقيقة وتطبيق المشابك.

الأجزاء fasciocutaneous من رفرف الترام الفئران هي رقيقة بما فيه الكفاية للسماح للرفرف لاتخاذ كعضو كامل سماكة الجلد الكسب غير المشروع. لمنع هذا، وضمان أن هذا هو نموذج صحيح من IRI رقيقة، يتم وضع ورقة السيليكون مرنة تحت الأجزاء fasciocutaneous من رفرف. اعتمد 35 هذه الخطوة من قبل الباحثين الآخرين بإجراء نماذج الترام الفئران. 17،21،25

الفئران مضغه throuعقدة GH لذلك تأكد من جميع الغرز هي تحت البشرة ويتم دفن كل عقدة. في الاضطلاع الدقيق autocannabilism خياطة من اللوحات كما ذكرت من قبل الباحثين الآخرين يمكن تجنبها. 24

بعد إدارة البوبرينورفين لحد التخدير الصيانة إلى 1٪ isoflurane و(1L/min O 2).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

نماذج الفئران هي أكثر اقتصادا من الحيوانات أكبر النماذج، 36 هي مقاومة للمرض في الطبيعة، ويمكن التلاعب بها وراثيا. ويعتقد أن الحيوانات البشرة فضفاضة، مثل القوارض، أن يكون لها ترتيب مختلف من إمدادات الدم الجلدي بالمقارنة مع الحيوانات البشرة الثابتة مثل البشر والخنازير. في الحيوانات البشرة فضفاضة، ويتم تزويد الجلد في المقام الأول عن طريق الأوعية الدموية الجلدية المباشرة التي تمر عبر الدهون تحت الجلد إلى الجلد المغطي (الشكل 4) وعلى النقيض، ثابتة الحيوانات البشرة تستمد إمدادات الدم من خلال الأوعية الجلدية التي بالطبع من خلال عضلات الكامنة لتزويد إهاب المغطي عبر الثاقبة العضلي الجلدي (الشكل 4). ونتيجة لذلك كانت هناك مخاوف سواء الحيوانات فضفاض البشرة يمكن استخدامها في البحوث رفرف. ومع ذلك، أظهرت تايلور العمل على angiosomes أن هناك مجالات حصيف من الجلد الفئران التي يتم توفيرها بطريقة مماثلة كبشر عبر الثاقبة العضلي الجلدي. الجدار البطن الأمامي على الذي عضلي جلدي المستقيمة عرضية (الترام) ويستند رفرف هي واحدة مثل هذه المنطقة. 37،36،15

تشريح ذات الصلة

ومتفوقة، وعميق، سفن شرسوفي هي الأوعية الدموية المهيمنة عنيق في الفئران وستة الى عشرة الثاقبة تمر عبر غمد المستقيمة الأمامية لتزويد إهاب الفوقية. 13،15 الأوعية شرسوفي العميقة متفوقة في الفئران أدخل العضلات المستقيمة البطنية على المستوى من الخنجري والاستمرار، وتناقص في العيار، نحو العانة. يتم توفير الهوامش الجانبية من البطن الأمامي من سطحية أدنى وأعلى الأوعية الحرقفية شرسوفي والمنعطف 37 وهناك تداخل الفسيولوجية بين الأراضي التي قدمتها هذه الفروع الجلدي المباشر وتلك المناطق من إهاب التي قدمتها الثاقبة العضلي الجلدي عبر السفن الاختناق. هذا 38 يتسق مع الأراضي الأوعية الدموية التشريحية والفسيولوجيةموضح في الإنسان، وإن كان في الإنسان الأوعية الدموية المهيمنة عنيق هو أدنى بدلا من الشريان الشرسوفي متفوقة. 39

عرضية المستقيمة البطنية عضلي جلدي (الترام) رفرف

وقد وصفت عرضية المستقيمة البطنية رفرف الأولى لإعادة الإعمار بعد استئصال جذري لسرطان الثدي في عام 1974. 40 ويستند هذا رفرف عضلي جلدي على الأوعية الدموية العميقة شرسوفي ويشتمل على جزء من العضلات المستقيمة البطنية وإهاب الفوقية. خلال هذه المقالة سيتم تقسيم رفرف الترام إلى أربع مناطق متساوية تسمى المناطق. يتم ترقيم أنها I-IV حسب Schlefen آخرون مثل ما يلي: المنطقة الأولى (ZI) هو إهاب المغطي العضلات المستقيمة البطنية الموردة مباشرة من قبل عنيق الأوعية الدموية؛ المنطقة الثانية (ZII) يصف إهاب تغمر المستقيمة البطنية المقابل؛ المنطقة. III (ZIII) منطقة الجانبي إلى المنطقة الأولى، والمنطقة الرابعة (ZIV) منطقة الجانبي إلى المنطقة الثانية (انظر 41

الليزر دوبلر التصوير تقييم نضح الدم

يوفر دوبلر الليزر التصوير وسيلة غير الغازية لتقييم تدفق الدم في رفرف. 42-45 ينبعث مصدر الضوء أحادي اللون من الرأس الليزر. يتم إزاحة هذا الضوء الساقط (الأزرق في الشكل 6) عن طريق كريات الدم الحمراء داخل الأنسجة. ويرتبط درجة التحول إلى سرعة من الكريات الحمراء. تم الكشف عن ضوء تحول (الأخضر في الشكل 6) من كاشف الصورة داخل الرأس الماسح الضوئي وتحويلها إلى قياس التروية. وترد هذه في وحدات التعسفي، ووحدات نضح (PU)، وتم تصنيف البيانات المحولة إلى صورة تشبه إلى حد ما خريطة الطقس نضح فيه من الأعلى إلى الأقل كل قيمة وتعيين لون (الشكل 7). على خريطة ملونة ولدت يوضح نضح النسبية بين مناطق مختلفة من رفرف. يتم معايرة كل آلة بعناية سوCH أن المقارنات يمكن أن يكون أدلى بين الموضوعات عندما يعمل نفس الماسح الضوئي

خضع الفئران دوبلر الليزر التصوير نضح باستخدام LD12 مور (مور الادوات، إسكس، المملكة المتحدة) الماسح الضوئي قبل الجراحة، فورا بعد العمل الجراحي وعند 24 و 48 ساعة بعد الجراحة.

باستخدام البرمجيات التي يتم توفيرها مع الماسحة الضوئية LDI يمكن فرضه المنطقة ذات الاهتمام (ROI) على صورة LDI ومتوسط ​​نضح من تلك المنطقة المحسوبة (الشكل 7).

تحليل الصور J من قياس النتيجة نخر الابتدائي منطقة مئوية

صورة J هو مفتوح وصول معالجة الصور مجاملة البرنامج من المعاهد الوطنية للHealth.46 هذا يمكن أن تستخدم لقياس المجالات وبعد ذلك حساب مساحة الجلد النسبة المئوية لكل منطقة وهذا هو العادي أو necrosed تماما في كل نقطة زمنية (الشكل 8) .

تقييم الإصابة

التم العثور على أعلى معدلات نخر الجلد في منطقة IV (انظر بيانات تمثيلية في أرقام 9 و 10) بما يتفق مع الدراسات الأخرى. 16،22،24،25،47 هذه النتائج تتوافق مع نمط نخر ذكرت سريريا في اللوحات الترام الإنسان تؤكد أن هذا هو تمثيل المؤمنين من مشكلة سريرية. 14 وكانت المنطقة النسبة الإجمالية نخر رفرف 37.86 ± 5.4٪ (يعني ± SEM).

التغييرات في الدم الجلد

كان يعمل LDI الارواء المسح لتقييم تدفق الدم في نموذج رفرف الترام. هذا هو، وسائل بسيطة غير الغازية وقابلة للتكرار لتقييم نضح (أرقام 9 و 11). انخفضت نضح إلى 58.4 ± 0.49٪ (ن = 10، يعني ± SEM) فورا بعد العمل الجراحي، 56.98 ± 0.41٪ في 24 ساعة و 92.4 ± 0.6٪ مقارنة القيم قبل العملية للرفرف كله. مجالات رفرف واي ال أقل نضح في فوري التفحص ساعة بعد العملية الجراحية و 24 تشير إلى المناطق التي تنخر ستطور لاحقا في 48 ساعة (انظر الشكل 9).

الشكل 1
الشكل 1. معدات انشاء. وينظر الى تلاعب مخدر مع غرفة تحريض الأحمر وراء مكتب. الفئران هو الكذب مستلق مع الحفاظ على التخدير عن طريق الأنف مخروط. يعمل مصباح الحرارة إلى زيادة درجة الحرارة المحيطة. فوق الفئران هي المجهر التشغيل. إلى اليسار من الفئران هو ثنى العقيمة مع الشاش، الخ الغرز إلى اليمين من الفئران هو ثنى العقيمة مع الأدوات الجراحية. يتم الحفاظ على درجة الحرارة الأساسية باستخدام بطانية homeothermic (تحت الفئران) ومسبار المستقيم تعلق على جهاز جهاز هارفارد (الصندوق الأسود أمام بن الأدوات الحادة).

/ 50473/50473fig3.jpg "بديل =" الشكل 3 "/>
الشكل 2. ترسيم حدود رفرف والمناطق. يتم وضع الفئران نزعه مستلق. يتم التعرف على خط الوسط ووضع علامة (الأزرق خط متقطع). ويتميز خط عمودي على خط الوسط 0.8 سم تحت xiphisternum. يتم رسمها 4 خطوط متوازية إلى خط الوسط، 1 سم عن بعضها البعض. يتم رسم خط آخر مواز و4 سم تحت الخط الثاني لإكمال مربع. انقر هنا لعرض أكبر شخصية .

الشكل 4
الشكل (3). خطوة بخطوة النهج الجراحية. ويرد بيان رفرف كما هو موضح سابقا (3A). هو قطعي الهامش الجانبي الأيسر (3B) واستمرت تشريح إعلامي في ررانو سطحية على الفور إلى البطن الأمامي اللفافة الجدار إلى الهامش الجانبي للالمستقيمة اليسرى (3C). ويتم إجراء نفس الخطوات على الجانب المقابل لكنها استمرت تشريح إعلامي إلى الخط الأبيض (خط الوسط)، (3D). يكوي الثاقبة العضلي الجلدي الناشئة عن مركز الحق المستقيمة البطنية العضلات. يتم قطع نافذة صغيرة في الجانب السفلي من غمد المستقيمة اليسرى (3E) والمستقيمة السفلية تعادل خارج (3F). ثم يتم قطع ألواح السيليكون وتخاط في مكان تحت الأجزاء fasciocutaneous من رفرف (3G H). رفرف ثم يتم 'مربوط' للخروج (3-I). خطوات (3G وأنا) لا يمكن أن يؤديها قبل أو بعد خطوات (3E و F). يتم قطع نافذة صغيرة في الجانب متفوقة من الناحية اليسرى غمد المستقيمة الأمامي (3-J). العضلة يتعرض هو ثمدرست بعناية. سيتم شهدت تغيرا في مسار الألياف العضلية من موازية لمنحرف ومعبأة بإحكام على الألياف معبأة فضفاضة بشكل إعلامي. تمرير ملقط المنحني Graeffe بين الطائرات العضلات وتخفف من حدة هذه تشريح أفقيا. خفض على مغلقة، السطح العلوي من هذه ملقط لفضح عنيق الأوعية الدموية. إزالة الدهون المحيطة وفضح السفن للقط. وضع المشابك أكلاند على الشريان والوريد (3K) والعد التنازلي الفترة الزمنية الدماغية. بدء خياطة تحت البشرة مغادرة المنطقة على الفور فوق المشابك حتى آخر. إزالة المشابك بعد الفترة المخصصة وappose نهايات خالية من العضلات المستقيمة البطنية اليسرى. استكمال الغرز تحت البشرة (3L).

الرقم 5
الشكل 4. إمدادات الدم الجلدي في الحيوانات البشرة الثابتة وفضفاضة. إمدادات الدم الجلدية في لوسه الثدييات البشرة مثل الفئران هي في الغالب عن طريق فروع الجلدي المباشر بدلا من ثاقبات العضلي الجلدي كما في الثدييات الجلد الثابتة مثل البشر والخنازير. لهذا السبب لم تاريخيا فضلت الفئران للبحوث الجراحية البلاستيكية. وقد تبين هذا أن يكون فكرة خارج مؤرخة ومناطق معينة من الفئران مثل جدار البطن الأمامي يتم توفيره من قبل الثاقبة العضلي الجلدي وبالتالي فهي مناطق مناسبة للاستخدام لنماذج رفرف. انقر هنا لعرض أكبر شخصية .

الشكل (6)
الشكل 5. مناطق من عرضية البطنية رفرف عضلي جلدي كما وصفها Schlefen وآخرون. في عام 1983. السهم الأحمر يشير إلى الأوعية الدموية عنيق (في هذه الحالة اليسار، متفوقة، وسفن شرسوفي العميقة). الأرقام الرومانية الأزرق تظهر خميسكان 4 مناطق مرقمة I-IV على أساس موقفهم بالنسبة إلى الأوعية الدموية عنيق مثل ما يلي: المنطقة الأولى (ZI) هو إهاب المغطي العضلات المستقيمة البطنية الموردة مباشرة من قبل عنيق الأوعية الدموية؛ المنطقة الثانية (ZII) يصف إهاب تغمر المقابل المستقيمة البطنية؛ المنطقة III (ZIII) منطقة الجانبي إلى المنطقة الأولى، والمنطقة الرابعة (ZIV) الجانبي لمنطقة II.

الرقم 7
الشكل (6). الليزر دوبلر التصوير الماسح الضوئي. مور LD12 الماسح الضوئي يقيم نضح عن طريق إرسال ضوء أحادي اللون (الأسهم الزرقاء) مصادر التي يتم إزاحة من قبل كريات الدم الحمراء تتحرك داخل الجلد. ويرتبط درجة التحول إلى سرعة من الكريات الحمراء. تم الكشف عن هذا ضوء تحول (الأسهم الخضراء) من خلال الصورة الماسح الضوئي ونضح في هذا المجال المحسوبة. مرآة ثم ينتقل شعاع بطريقة متسلسلة بحيث جدار البطن الأمامي كله يمكن أن يكون مسحها في حوالي 7 دقائق.

الشكل 2
الرقم 7. تقييم متوسط ​​نضح باستخدام البرمجيات LDI. حدد رمز المضلع من شريط الأدوات (السهم الأحمر) ثم المنطقة ذات الاهتمام (ROI) أداة التحديد (مستطيل مع الصليب الأزرق، 2 الرموز على يمين أداة المضلع). باستخدام الماوس رسم حول العائد على الاستثمار، في هذا الرقم وتتميز جميع المناطق 4. قبل أن ينتقل إلى ROI التالي اضغط على المستطيل مع مربع أزرق مرة أخرى. مرة واحدة يتم تحديد كافة رويس المطلوب الضغط على أيقونة الإحصائيات في وسط شريط الأدوات (رمز من نوتة مع أرقام على ذلك) وإحصاءات نضح المتوسط ​​لكل ROI سينبثق في نافذة جديدة كما هو موضح.

الرقم 8. صورة J تحليل.

> الشكل 8-1
الشكل 8-1. صورة J-SELECT أداة خط مستقيم. حدد أداة الخط المستقيم، رسم خط أسفل وسط رفرف كما هو مبين. انقر هنا لعرض أكبر شخصية .

الشكل 8-2
الشكل 8-2. صورة J-تعيين نطاق 1. حدد تحليل من شريط الأدوات ومن القائمة المنسدلة حدد نطاق تعيين. انقر هنا لعرض أكبر شخصية .

upload/50473/50473fig8-3.jpg "بديل =" الشكل 8-3 "FO: محتوى العرض =" 5IN "FO: SRC =" / files/ftp_upload/50473/50473fig8-3highres.jpg "/>
الشكل 8-3. صورة J-تعيين نطاق 2. في النافذة المنبثقة تعيين المقياس إلى 4 سم. انقر هنا لعرض أكبر شخصية .

الشكل 8-4
الشكل 8-4. صورة J-حدد أداة المضلع ومنطقة الخطوط العريضة للاهتمام. حدد أداة المضلع (رمز الضوء) والخطوط العريضة للمنطقة من الفائدة. ويرد محيط مجموعه المنطقة الرابعة في هذا المثال. انقر هنا لعرض أكبر شخصية .

lways "> الشكل 8-5
الشكل 8-5. صورة منطقة J-قياس 1. حدد تحليل من شريط الأدوات وعلى القائمة المنسدلة حدد قياس. انقر هنا لعرض أكبر شخصية .

الشكل 8-6
الشكل 8-6. صورة منطقة J-قياس 2. سيتم عرض منطقة في نافذة النتائج منفصلة. انقر هنا لعرض أكبر شخصية .

خريج "بديل =" الشكل 8-7 "FO: محتوى العرض =" 5IN "FO: SRC =" / files/ftp_upload/50473/50473fig8-7highres.jpg "/>
الشكل 8-7. صورة J-كرر لمنطقة من نخر كامل. كرر الخطوات السابقة 2 ولكن هذه المرة الخطوط العريضة لمنطقة necrosed فقط. يوضح هذا المثال نخر كامل في منطقة IV المبينة. لحساب مساحة نسبة نخر كامل تقسيم قيمة هذه الأخيرة من السابق وضرب من قبل 100. اضغط هنا لعرض أكبر شخصية .

الرقم 9
الشكل 9. مونتاج للصور ممثل هذا الإجراء التسمية التوضيحية:. كل صف يمثل موضوع مختلف. وتظهر الصور (يسار) والمقابلة صورة LDI (الحق) في 4 نقاط زمنية مختلفة (من Leقدم إلى اليمين: مرحلة ما قبل الجراحة، بعد العمل الجراحي، على مدار 24 ساعة وعلى 48 ساعة بعد الجراحة). فمن الواضح أن نخر يحدث باستمرار في مناطق ZIV والثالث. مقياس اللون على الجزء السفلي يبين حق الألوان والوحدات نضح يناظرها. نضح أحمر عالية، نضح الأزرق منخفض). انقر هنا لعرض أكبر شخصية .

الرقم 10
الشكل 10. وأعرب ممثل نخر الجلد النتائج كنسبة مئوية من إجمالي مساحة رفرف في 48 ساعة التسمية التوضيحية: النسبة المئوية منطقة نخر كامل للرفرف تقييمها طبيا وقياسها باستخدام البرمجيات J صورة في 48 ساعة. يعني وSEM أظهرت، ن = 10.

الرقم 11
الشكل 11. ممثلالنتائج الليزر resentative دوبلر التصوير التسمية التوضيحية:. دوبلر الليزر التصوير لإظهار نضح المتوسط ​​في وحدات قياس نضح من رفرف في الضابطة قبل الجراحة، بعد العمل الجراحي، في 24 و 48 ساعة. يعني وSEM أظهرت، ن = 10.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

التعديلات ومعرفة الخلل

بروتوكول المعروضة هنا يستنسخ IRI ينظر في نقل الأنسجة الحرة في نظام تجريبي تمكين مزيد من الفهم لتلك العملية ويوفر وسيلة لتحقيق وسائل تخفيف IRI وتحسين النتيجة. يمكن بسهولة أن يتم تعديل هذا لإنتاج إصابة أكثر شدة إذا ما أعتمد على غير المهيمنة، عميق، أدنى شرسوفي عنيق أو إذا تم زيادة الوقت اللازم الدماغية.

القيود المفروضة على تقنية

جدار البطن الأمامي من الفئران لديها أقل بكثير من الدهون تحت الجلد من جدار البطن الأمامي من معظم النساء خضوعه لعملية جراحية رفرف الترام لاعادة بناء الثدي. تم تصميم نموذج المبين في هذا النص تحديدا كنموذج للنقص التروية الاصابة ضخه في اللوحات عضلي جلدي حتى أن آثار العلاجات شروط مسبقة يمكن تقييمها باستخدام نخر الجلد ونضح ومقاييس النتائج. الالإجراء بالتفصيل في هذه المقالة لا على وجه التحديد المشاكل نموذج مثل نخر الدهون التي يتم تكبدها في اللوحات الترام الإنسان عندما يتم حصاد اللوحات مع مكونات الدهون كبيرة عمدا لخلق الإسقاط لإعادة بناء الثدي كبير.

لا تظاهر المباشر المراقبة في الجسم الحي من دوران الأوعية الدقيقة في هذا البروتوكول ولكن تم وصفها في نموذج العضلات المشمرة 48 و في رفرف osteomyocutaneous. 7،49-51 النموذج الترام نموذج رفرف عضلي جلدي، إذا الباحثون مهتمون بشكل خاص في اللوحات osteomyocutaneous هذا النموذج غير مناسب ولكن وصفت نموذجا بديلا في الأدب. 50

أهمية فيما يتعلق بأساليب أخرى

نماذج الترام الفئران نشرت معظم استخدام المستقيمة البطنية العضلات المحيطة الأوعية الدموية اختار عنيق باعتبارها الناقل للعنيق الأوعية الدموية. 13-22،24،25 انهم لا ACCتعكس urately المعهد الجمهوري الدولي كما رفرف أبدا يخضع لفترة الحقيقية لنقص التروية تليها ضخه. لذلك، مقارنة هذه الأوراق على نموذج مفصل في هذا البروتوكول يعطي للتكرار، عضلي جلدي IRI للرقابة. الباحثون أدوا أيضا هذا بمثابة رفرف تتردد في الأوعية الفخذ 23 ولكن هذا هو شاقة للغاية من الناحية الفنية كما العميقة متفوقة، الشريان الشرسوفي وقياس الوريد 0.45 و 0.5 ملم على التوالي. يمثل هذا البروتوكول نموذج أبسط.

التطبيقات المستقبلية

وقد ركزت البحوث في تحسين النتيجة في نقل الأنسجة الحرة في المقام الأول على استراتيجيات شروط مسبقة. وتستخدم هذه الاستراتيجيات أو شرع قبل الجراحة بهدف 'تدريب' الأنسجة نقل على الصمود بشكل أفضل جراحة نقل الأنسجة الحرة وهذه النتيجة تحسين. هناك طريقتان رئيسيتان يمكن من خلالها تحقيق ذلك:. شروط مسبقة الدوائية أو نقص تروية 52 وهناك الكثير من هذا العمل لديهاأجريت على الخنازير التي هي أكثر تكلفة إلى منزل وأكثر صعوبة للعمل مع من الفئران. بروتوكول الموصوفة في هذه الورقة يمكن استخدامها لاختبار هذه الاستراتيجيات في حيوان المختبر والتي من السهل إلى منزل والعمل مع والتي يوجد فيها إمكانية للعمل مع الحيوانات التلاعب بها وراثيا.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

ليس لدينا الإفصاحات.

Acknowledgements

وقد تم تمويل هذا العمل من قبل مجلس البحوث الطبية المنحة G1000299.

فإن مؤلف كتاب المقابلة أود أن أشكر غاري BORTHWICK، جامعة أدنبرة، عن مساعدة أثناء الجراحة.

فإن الكتاب أود أن أنوه المشورة من هيلين دوغلاس وإيان ماكاي والسماح لنا أن نلاحظ شرسوفي الوضيعين العميق (ديب) إجراء رفرف (Canniesburn وحدة جراحة التجميل، غلاسكو مستشفى رويال، 84 شارع القلعة، غلاسكو G4 0SF، المملكة المتحدة).

فإن الكتاب أود أيضا أن أشكر غاري بلاكي في جامعة ادنبره لمساعدته في انتاج الفيديو على هذا المقال.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Moor LD12 laser doppler imaging scanner http://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8
Complete homeothermic blanket system with flexible probe. Small. 230 VAC, 50 Hz 507221F www.harvardapparatus.com
Graeffe forceps 0.8 mm tips curved 11052-10 2, http://www.finescience.de
Acland clamps 00398 V B-1 ’V’ pattern clamps used on both artery and vein. http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
Clamp applicator CAF-4 http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
Gemini cautery unit 726067 www.harvardapparatus.com
Micro-vessel dilators 11 cm 0.3 mm tips 00124 D-5a.2 http://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers Forceps 11cm angulated 00109 JFA-5b http://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers Forceps 11 cm straight 00108 JF-5 http://www.merciansurgical.com
Acland Single Clamps B-1V (Pair) 396 http://www.merciansurgical.com
Micro Scissors Round Handles 15 cm Straight 67 http://www.merciansurgical.com
Iris Scissors 11.5 cm Curves EASY-CUT EA7613-11 http://www.merciansurgical.com
Mayo Scissors 14 cm Straight Chamfered Blades EASY-CUT EA7652-14 http://www.merciansurgical.com
Derf Needle Holders 12 cm TC 703DE12 http://www.merciansurgical.com
Ethilon 5-0 W1618 http://www.farlamedical.co.uk/
Vicryl rapide 6-0 W9913 http://www.millermedicalsupplies.com/
Instrapac - Adson Toothed Forceps (Extra Fine) 7973 http://www.millermedicalsupplies.com/
Castroviejo needle holders 12565-14 http://s-and-t.ne
Heat Lamp http://www.chicken-house.co.uk
Silicone sheeting 0.3 mm translucent http://www.silex.co.uk/
Image J software http://rsbweb.nih.gov/ij/
Zeiss OPMI pico http://www.zeiss.co.uk/
Operating microscope
Vet tech solution isofluorane rig http://www.vet-tech.co.uk/
Vet tech solution isofluorane rig http://www.vet-tech.co.uk/

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Wang, X., et al. Free anterolateral thigh adipofascial flap for hemifacial atrophy. Ann. Plast. Surg. 55, (6), 617-622 (2005).
  2. Eckardt, A., Fokas, K. Microsurgical reconstruction in the head and neck region: An 18-year experience with 500 consecutive cases. J. Cranio. Maxill. Surg. 31, (4), 197-201 (2003).
  3. Yazar, S., et al. Safety and reliability of microsurgical free tissue transfers in paediatric head and neck reconstruction - a report of 72 cases. J. Plast. Reconstr. Aes. 61, (7), 767-771 (2008).
  4. Blondeel, P. N., Landuyt, K. H. V., Monstrey, S. J. Surgical-technical aspects of the free diep flap for breast reconstruction. Operat. Tech. Plast. Reconstr. Surg. 6, (1), 27-37 (1999).
  5. Siemonow, M., Arslan, E. Ischaemia/reperfusion injury: A review in relation to free tissue transfers. Microsurgery. 24, 468-475 (2004).
  6. Wang, W. Z. Investigation of reperfusion injury and ischaemic preconditioning in microsurgery. Microsurgery. 29, 72-79 (2009).
  7. Rucker, M., et al. Reduction of inflammatory response in composite flap transfer by local stress conditioning-induced heat-shock protein 32. Surgery. 129, (3), 292-301 (2001).
  8. Cetinkale, O., et al. Involvement of neutrophils in ischemia-reperfusion injury of inguinal island skin flaps in rats. Plast. Reconstr. Surg. 102, (1), 153-160 (1998).
  9. Korthuis, R. J., Granger, D. N., Townsley, M. I., Taylor, A. E. The role of oxygen-derived free radicals in ischemia-induced increases in canine skeletal muscle vascular permeability. Circ. Res. 57, (4), 599-609 (1985).
  10. Eisenhardt, S. U., et al. Monitoring molecular changes induced by ischemia/reperfusion in human free muscle flap tissue samples. Ann. Plast. Surg. 68, (2), 202-208 (2012).
  11. Dragu, A., et al. Gene expression analysis of ischaemia and reperfusion in human microsurgical free muscle tissue transfer. J. Cell. Mol. Med. 15, (4), 983-993 (2011).
  12. Tilgner, A., Herrberger, U. [myocutaneous flap models in the rat. Anatomy, histology and preparation technic of the myocutaneous rectus abdominis flap]. Z. Versuchstierkd. 29, (5-6), 231-236 (1987).
  13. Dunn, R. M., Huff, W., Mancoll, J. The rat rectus abdominis myocutaneous flap: A true myocutaneous flap model. Ann. Plast. Surg. 31, (4), 352-357 (1993).
  14. Clugston, P. A., Perry, L. C., Fisher, J., Maxwell, G. P. A rat transverse rectus abdominis musculocutaneous flap model: Effects of pharmacological manipulation. Ann. Plast. Surg. 34, (2), 154-161 (1995).
  15. Ozgentas, H. E., Shenaq, S., Spira, M. Development of a tram flap model in the rat and study of vascular dominance. Plast. Reconstr. Surg. 94, (7), 1012-1017 (1994).
  16. Doncatto, L. F., da Silva, J. B., da Silva, V. D., Martins, P. D. Cutaneous viability in a rat pedicled tram flap model. Plast. Reconstr. Surg. 119, (5), 1425-1430 (2007).
  17. Lineaweaver, W. C., et al. Vascular endothelium growth factor, surgical delay, and skin flap survival. Ann. Surg. 239, (6), 866-873 (2004).
  18. Rezende, F. C., et al. Electroporation of vascular endothelial growth factor gene in a unipedicle transverse rectus abdominis myocutaneous flap reduces necrosis. Ann. Plast. Surg. 64, (2), 242-246 (2010).
  19. Zacchigna, S., et al. Improved survival of ischemic cutaneous and musculocutaneous flaps after vascular endothelial growth factor gene transfer using adeno-associated virus vectors. Am. J. Pathol. 167, (4), 981-991 (2005).
  20. Zhang, F., et al. Improvement of skin paddle survival by application of vascular endothelial growth factor in a rat tram flap model. Ann. Plast. Surg. 46, 314-319 (2010).
  21. Hijjawi, J., et al. Platelet-derived growth factor β, but not fibroblast growth factor 2, plasmid DNA improves survival of ischemic myocutaneous flaps. Arch. Surg. 139, (2), 142-147 (2004).
  22. Wong, M. S., et al. Basic fibroblast growth factor expression following surgical delay of rat transverse rectus abdominis myocutaneous flaps. Plast. Reconstr. Surg. 113, (7), 2030-2036 (2004).
  23. Zhang, F., et al. Microvascular transfer of the rectus abdominis muscle and myocutaneous flap in rats. Microsurgery. 14, (6), 420-423 (1993).
  24. Hallock, G. G., Rice, D. C. Comparison of tram and diep flap physiology in a rat model. Plast Reconstr Surg. 114, (5), 1179-1184 (2004).
  25. Qiao, Q., et al. Patterns of flap loss related to arterial and venous insufficiency in the rat pedicled tram flap. Annals of Plastic Surgery. 43, (2), 171 (1999).
  26. Persy, V. P., Verhulst, A., Ysebaert, D. K., De Greef, K. E., De Broe, M. E. Reduced postischemic macrophage infiltration and interstitial fibrosis in osteopontin knockout mice. Kidney Int. 63, (2), 543-553 (2003).
  27. Li, Y., et al. Overexpression of cgmp-dependent protein kinase i (pkg-i) attenuates ischemia-reperfusion-induced kidney injury. Am. J. Physiol. Ren. Physiol. 302, (5), 561-570 (2012).
  28. Hunter, J. P., et al. Effects of hydrogen sulphide in an experimental model of renal ischaemia-reperfusion injury. Brit. J. Surg. 99, (12), 1665-1671 (2012).
  29. Hamada, T., Fondevila, C., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Metalloproteinase-9 deficiency protects against hepatic ischemia/reperfusion injury. Hepatology. 47, (1), 186-198 (2008).
  30. Duarte, S., Hamada, T., Kuriyama, N., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Timp-1 deficiency leads to lethal partial hepatic ischemia and reperfusion injury. Hepatology. 56, (3), 1074-1085 (2012).
  31. Shen, X. D., et al. Cd154-cd40 t-cell costimulation pathway is required in the mechanism of hepatic ischemia/reperfusion injury, and its blockade facilitates and depends on heme oxygenase-1 mediated cytoprotection. Transplantation. 74, (3), 315-319 (2002).
  32. Liu, J., et al. Endoplasmic reticulum stress modulates liver inflammatory immune response in the pathogenesis of liver ischemia and reperfusion injury. Transplantation. 94, (3), 211-217 (2012).
  33. Pan, G. Z., et al. Bone marrow mesenchymal stem cells ameliorate hepatic ischemia/reperfusion injuries via inactivation of the mek/erk signaling pathway in rats. J. Surg. Res. 178, (2), 935-948 (2012).
  34. Darouiche, R. O., et al. Chlorhexidine-alcohol versus povidone-iodine for surgical-site antisepsis. New. Engl. J. Med. 362, (1), 18-26 (2010).
  35. Fukui, A., Inada, Y., Murata, K., Tamai, S. Plasmatic imbibition" in the rabbit flow-through venus flap, using horseradish peroxidase and fluoroscein. J. Reconstr. Mirosurg. 11, 255-264 (1995).
  36. Dunn, R. M., Mancoll, J. Flap models in the rat: A review and and reappraisal. Plast. Reconstr. Surg. 90, (2), 319-328 (1992).
  37. Taylor, G., Minabe, T. The angiosomes of the mammals and other vertebrates. Plast. Reconstr. Surg. 89, (2), 181-215 (1992).
  38. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The versatile deep inferior epigastric (inferior rectus abdominis) flap. Brit. J. Plast. Surg. 37, (3), 330-350 (1984).
  39. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The extended deep inferior epigastric flap: A clinical technique. Plast. Reconstr. Surg. 72, (6), 751-765 (1983).
  40. Tai, Y., Hasegawa, H. A tranverse abdominal flap for reconstruction after radical operations for recurrent breast cancer. Plast. Reconstr. Surg. 53, (1), 52-54 (1974).
  41. Scheflan, M., Dinner, M. I. The transverse abdominal island flap: Part i. Indications, contraindications, results, and complications. Ann. Plast. Surg. 10, 24-35 (1983).
  42. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Pripp, A. H., Tonseth, K. A. Monitoring microcirculatory changes in the deep inferior epigastric artery perforator flap with laser doppler perfusion imaging. Ann. Plast. Surg. 67, (2), 139-142 (2011).
  43. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Tonseth, K. A. Microcirculatory evaluation of deep inferior epigastric artery perforator flaps with laser doppler perfusion imaging in breast reconstruction. J. Plast. Surg. Hand. Surg. 45, (3), 143-147 (2011).
  44. Booi, D. I., Debats, I. B. J. G., Boeckx, W. D., van der Hulsi, R. R. W. J. A study of perfusion of the distal free-tram flap using laser doppler flowmetry. J. Plast. Reconstr. Aes. 61, 282-288 (2008).
  45. Hallock, G. G. Physiological studies using laser doppler flowmetry to compare blood flow to the zones of the free tram flap. Ann. Plast .Surg. 47, (3), 229-233 (2001).
  46. Collin, T. Image j for microscopy. Biotechniques. Suppl. 43, (1), 25-30 (2007).
  47. Hallock, G., Rice, D. Physiologic superiority of the anatomic dominant pedicle of the tram flap in a rat model. Plast. Reconstr. Surg. 96, 111-118 (1995).
  48. Ozmen, S., Ayhan, S., Demir, Y., Siemionow, M., Atabay, K. Impact of gradual blood flow increase on ischaemia-reperfusion injury in the rat cremaster microcirculation model. J. Plast. Reconstr. Aes. 61, (8), 939-948 (2008).
  49. Rucker, M., Vollmar, B., Roesken, F., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Microvascular transfer-related abrogation of capillary flow motion in critically reperfused composite flaps. Brit. J. Plast Surg. 55, (2), 129-135 (2002).
  50. Rucker, M., Kadirogullari, B., Vollmar, B., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Improvement of nutritive perfusion after free tissue transfer by local heat shock-priming-induced preservation of capillary flowmotion. J. Surg. Res. 123, 102-108 (2005).
  51. Rucker, M., et al. New model for in vivo quantification of microvascular embolization, thrombus formation, and recanalization in composite flaps. J. Surg. Res. 108, (1), 129-137 (2002).
  52. Wang, W. Z., Baynosa, R. C., Zamboni, W. A. Update on ischemia-reperfusion injury for the plastic surgeon. Plast. Reconstr. Surg. 128, (6), 685e-692e (2011).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics