Summary

Utveckling av en IFN-γ ELISpot analys för att bedöma varicella zoster-cellmedierad immunitet virusspecifika Efter navelsträngsblod Transplantation

Published: July 09, 2014
doi:

Summary

Nya generationer av funktionella analysmetoder såsom gamma-interferon (IFN-γ) ELISpot, som upptäcker cytokinproduktion på enskild cellnivå och ger både kvantitativ och kvalitativ karakterisering av T-cellsvar kan användas för att bedöma cellmedierade immunsvar mot varicella zoster virus (VZV).

Abstract

Varicella zoster-virus (VZV) är en betydande orsak till morbiditet och mortalitet efter navelsträngsblod transplantation (UCBT). Därför är antiherpetic profylax administreras systematiskt till pediatriska UCBT mottagare för att undvika komplikationer i samband med VZV-infektion, men det finns inga starka, evidensbaserad samsyn som definierar dess optimala behandlingstiden. Eftersom T-cellmedierad immunitet är ansvarig för kontroll av VZV-infektion, bedöma beredning av VZV specifika T-cellsvar efter UCBT skulle kunna ge indikationer om huruvida profylax bör behållas eller kan avbrytas. För detta ändamål har en VZV-specifik gammainterferon (IFN-γ) enzymkopplad immunospot (ELISpot)-analys utvecklades för att karakterisera IFN-γ-produktion genom T-lymfocyter som svar på stimulering in vitro med bestrålade levande försvagat VZV-vaccin. Denna analys ger en snabb, reproducerbar och känslig mätning av VZV specifik cell medierad immunitet lämplig för övervakning av beredning av VZV specifik immunitet i en klinisk miljö och bedöma immunförsvar till VZV-antigen.

Introduction

Först utfördes 1989 och är UCBT alltmer används som en del i behandling av olika neoplastiska och icke-neoplastisk blodsjukdomar hos barn 1. VZV är ett cytopatiskt mänsklig alfaherpesvirus som orsakar två olika sjukdomar, varicella (efter primärinfektion) och herpes zoster (efter reaktivering). Efter primärinfektionen, kvarstår VZV under hela livet i värd skyddad inom sensoriska nerver av dorsala rotganglier. En av de mest hotande infektiösa komplikationer efter UCBT förknippas med VZV 2-4. I vår kliniska center, i avsaknad av VZV profylax, den kumulativa incidensen av VZV sjukdom VZV sjukdomen på 3 år postUCBT var 46% 2. Hos dessa patienter är de novo infektion eller reaktivering av VZV ofta förknippade med visceral spridning till centrala nervsystemet, lungor och lever 5-7. Som ett resultat, aciklovir, valacyclovir eller famciklovir profylax är allmänt administreras till UBCT mottagare 8,9. Men denna behandlingsstrategi inte hänsyn till den skyddande potentialen hos VZV-specifika T-lymfocyter eller kinetiken för upplösning av VZV-specifika T-cellsvar. Potentiella problem i samband med den ökade användningen av långsiktiga antiherpetic profylax inkluderar a) patienten överbehandling; b) utveckling av antiviral resistens 10,11; och c) nedskrivningar av VZV specifikt immun beredning 12,13. Eftersom detektering av funktionella VZV specifika T-lymfocyter korrelerar med förekomsten av långsiktigt skydd mot VZV infektion och förbättrat kliniskt resultat 4,14,15, övervaka cellmedierade immunsvar mot VZV under perioden efter kan leda till en mer rationell användning av antivirala behandling genom att möjliggöra läkare för att skilja patienter som skulle ha nytta av VZV profylax från dem vars immunsystem kan styra VZV replikering 4,13.

I IFN-γ ELISpot analysen används ofta för övervakning cellmedierade immunsvar i olika experimentella system och kliniska tillstånd. Ställen genereras vid klyvning av ett kromogent substrat, vilket genererar en synlig och stabil fällning vid platsen för reaktionen. Varje enskild plats representerar därmed fotavtryck av en individuell cytokin-producerande celler. IFN-γ ELISpot mäter inte enbart förmågan hos individuella celler ex vivo för att producera IFN-γ som svar på stimulering in vitro med motsvarande antigen, men det ger också en uppskattning av frekvensen för svarande celler i en given cellpopulation 16,17. Förutom sin höga känslighet, är IFN-γ ELISpot enkelt att utföra, vilket gör dess användning möjlig i samband med personlig kliniska protokoll som syftar till att styra initiering eller upphörande av antiviral behandling. Det förfarande som beskrivs nedan som beskriveres en ELISpot analys som är särskilt utformad för att upptäcka och mäta produktionen av IFN-γ från perifera mononukleära blodceller efter in vitro stimulering med VZV härledda antigener.

Protocol

Denna forskning protokoll godkändes av Institutional etikprövningsnämnden i CHU Sainte-Justine, Montreal, Quebec, Kanada, där studien genomfördes. Informerat samtycke söktes och erhölls från alla studiedeltagare, deras föräldrar eller vårdnadshavare. Alla procedurer utförs på dag 1 och 2 skall utföras under sterila förhållanden (dvs. under ett laminärt flöde huva). Standard säkerhetsrutiner för hantering av mänskligt blod bör följas noga. 1. Beläggning av platt…

Representative Results

Den IFN-γ ELISpot protokoll i detalj ovan har utvecklats och optimerats i vårt laboratorium för att mäta storleken och kvaliteten av cellmedierade immunsvar riktade mot VZV 4. Olika källor av VZV-antigen kan användas för stimulering steget. Dessa inkluderar: a) kommersiellt tillgängliga rengöringsmedel inaktiverade utdrag från VZV infekterade Vero-celler 18; b) pooler av överlappande syntetiska peptider från specifika VZV kodade proteinerna, inklusive IE63 15 och ORF4 19…

Discussion

Modifikationer och felsökning: IFN-γ ELISPOT-analyser har använts för att undersöka cellförmedlade immunsvar som riktas mot en mångfald patogena mikroorganismer, däribland humant immunbristvirus typ 1 (HIV-1) 24,25, hepatit C-virus (HCV) 26, 27, och Mycobacterium tuberculosis 28,29, bara för att nämna några. Här beskrev vi utvecklingen av en IFN-γ ELISpot analys för att mäta cellulär immunitet mot, med hopp om att definiera korrelat av VZV specifikt immun beredni…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka studiedeltagarna och deras föräldrar. Vi vill också tacka Dr Réjean Lapointe (CHUM Notre-Dame, Montreal, Kanada) för att få tillgång till sin ELISpot läsare, Dr Lubo Alexandrov för statistisk analys, och Denis Blais, Sandra Caron, Silvie Valois och Martine Caty för sakkunnig teknisk hjälp. Finansierats med bidrag från le Fonds d'opération pour les Projets de Recherche Clinique et d'Evalution des teknik (CHU Sainte-Justine) till HS och PO, av la Fondation Centre de cancérologie Charles-Bruneau, och av leukemi och lymfom Society of Kanada. ISF stöddes av stipendier från la Fondation CHU Sainte-Justine och le Fonds de la recherche du Québec-santé (FRQS). AJG var mottagare av stipendier från institutionen för mikrobiologi, Infectiology & Immunology, Université de Montréal (Gabriel-Marquis stipendium), FRQS, och den kanadensiska Institutes of Health RORSKNING (CIHR). NM stöddes av la Fondation CHU Sainte-Justine, Cole stiftelsen, och FRQS.

Materials

Leucocep tube VWR 89048-936/89048-932 12 ml or 50 ml tubes may be used depending on the volume of blood. 
Ficoll-Paque GE Healthcare 17-1440-02 Protect from light.
Benzonase nuclease Novagen 70746-3 Keep at -20 C.
MultiScreenHTS-IP Filter Plate Millipore MSIPS4W10 Sterile with pore size of 0.45 µm. 
Mouse anti-human IFN-γ capture antibody BD Biosciences 551221 NIB42 clone. 
Pepmix VZV IE63  JPT Peptide Technologies PM-VZV-IE63 Dissolve contents of one vial in 40 μL of DMSO. Use within 6 months.
Biotin-conjugated anti-IFN-γ monoclonal antibody BD Biosciences 554550 4SB3 clone.
Streptavidin conjugated with alkaline phosphatase  Bio-Rad Life Science 170-3554 Dilute for use on the same day.
BCIP/NBT Bio-Rad Life Science 170-6432 Protect from light.

References

  1. Ballen, K. K., et al. Umbilical cord blood transplantation: the first 25 years and beyond. Blood. 122 (4), 491-498 (2013).
  2. Vandenbosch, K., et al. Varicella-zoster virus disease is more frequent after cord blood than after bone marrow transplantation. Biol. Blood Marrow Transplant. 14 (8), 867-871 (2008).
  3. Barker, J. N., et al. Serious infections after unrelated donor transplantation in 136 children: impact of stem cell source. Biol. Blood Marrow Transplant. 11 (5), 362-370 (2005).
  4. Merindol, N., et al. Reconstitution of protective immune responses against cytomegalovirus and varicella zoster virus does not require disease development in pediatric recipients of umbilical cord blood transplantation. J. Immunol. 189 (10), 5016-5028 (2012).
  5. Feldman, S., et al. Varicella in children with cancer: Seventy-seven cases. Pediatrics. 56 (3), 388-397 (1975).
  6. Arvin, A. M. Varicella-Zoster virus: pathogenesis, immunity, and clinical management in hematopoietic cell transplant recipients. Biol. Blood Marrow Transplant. 6 (3), 219-230 (2000).
  7. Wiegering, V., et al. Varicella-zoster virus infections in immunocompromised patients – a single centre 6-years analysis. BMC Pediatr. 11, 31 (2011).
  8. Boeckh, M., et al. Long-term acyclovir for prevention of varicella zoster virus disease after allogeneic hematopoietic cell transplantation–a randomized double-blind placebo-controlled study. Blood. 107 (5), 1800-1805 (2006).
  9. Boeckh, M. Prevention of VZV infection in immunosuppressed patients using antiviral agents. Herpes. 13 (3), 60-65 (2006).
  10. Tomblyn, M., et al. Guidelines for preventing infectious complications among hematopoietic cell transplantation recipients: a global perspective. Biol. Blood Marrow Transplant. 15 (10), 1143-1238 (2009).
  11. Ljungman, P., et al. Long-term acyclovir prophylaxis in bone marrow transplant recipients and lymphocyte proliferation responses to herpes virus antigens in vitro. Bone Marrow Transplant. 1 (2), 185-192 (1986).
  12. Selby, P. J., et al. The prophylactic role of intravenous and long-term oral acyclovir after allogeneic bone marrow transplantation. Br. J. Cancer. 59 (3), 434-438 (1989).
  13. Distler, E., et al. Recovery of varicella-zoster virus-specific T cell immunity after T cell-depleted allogeneic transplantation requires symptomatic virus reactivation. Biol. Blood Marrow Transplant. 14 (12), 1417-1424 (2008).
  14. Levin, M. J., et al. Decline in varicella-zoster virus (VZV)-specific cell-mediated immunity with increasing age and boosting with a high-dose VZV vaccine. J. Infect. Dis. 188 (9), 1336-1344 (2003).
  15. Jones, L., et al. Phenotypic analysis of human CD4+ T cells specific for immediate-early 63 protein of varicella-zoster virus. Eur. J. Immunol. 37 (12), 3393-3403 (2007).
  16. Czerkinsky, C., et al. Reverse ELISPOT assay for clonal analysis of cytokine production. I. Enumeration of gamma-interferon-secreting cells. J. Immunol. Methods. 110 (1), 29-36 (1988).
  17. Hutchings, P. R., et al. The detection and enumeration of cytokine-secreting cells in mice and man and the clinical application of these assays. J. Immunol. Methods. 120 (1), 1-8 (1989).
  18. De Castro, N., et al. Varicella-zoster virus-specific cell-mediated immune responses in HIV-infected adults. AIDS Res. Hum. Retroviruses. 27 (10), 1089-1097 (2011).
  19. Jones, L., et al. Persistent high frequencies of varicella-zoster virus ORF4 protein-specific CD4+ T cells after primary infection. J. Virol. 80 (19), 9772-9778 (2006).
  20. Malavige, G. N., et al. Viral load, clinical disease severity and cellular immune responses in primary varicella zoster virus infection in Sri Lanka. PLoS One. 3 (11), (2008).
  21. Sadaoka, K., et al. Measurement of varicella-zoster virus (VZV)-specific cell-mediated immunity: comparison between VZV skin test and interferon-gamma enzyme-linked immunospot assay. J. Infect. Dis. 198 (9), 1327-1333 (2008).
  22. Smith, J. G., et al. Development and validation of a gamma interferon ELISPOT assay for quantitation of cellular immune responses to varicella-zoster virus. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 8 (5), 871-879 (2001).
  23. Ouwendijk, W. J., et al. T-cell immunity to human alphaherpesviruses. Curr. Opin. Virol. 3 (4), 452-460 (2013).
  24. Rowland-Jones, S. L., et al. Cytotoxic T cell responses to multiple conserved HIV epitopes in HIV-resistant prostitutes in Nairobi. J. Clin. Invest. 102 (9), 1758-1765 (1998).
  25. Alter, G., et al. Human immunodeficiency virus (HIV)-specific effector CD8 T cell activity in patients with primary HIV infection. J. Infect. Dis. 185 (6), 755-765 (2002).
  26. Lechner, F., et al. Analysis of successful immune responses in persons infected with hepatitis C virus. J. Exp. Med. 191 (9), 1499-1512 (2000).
  27. Fournillier, A., et al. A heterologous prime/boost vaccination strategy enhances the immunogenicity of therapeutic vaccines for hepatitis C virus. J. Infect. Dis. 208 (6), 1008-1019 (2013).
  28. Adetifa, I. M., et al. Interferon-γ ELISPOT as a biomarker of treatment efficacy in latent tuberculosis infection: a clinical trial. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 187 (4), 439-445 (2013).
  29. Lalvani, A., Pareek, M. A 100 year update on diagnosis of tuberculosis infection. Br. Med. Bull. 93, 69-84 (2010).
  30. Berger, R., et al. A dose-response study of a live attenuated varicella-zoster virus (Oka strain) vaccine administered to adults 55 years of age and older. J. Infect. Dis. 178 Suppl. 1, (1998).
  31. Trannoy, E., et al. Vaccination of immunocompetent elderly subjects with a live attenuated Oka strain of varicella zoster virus: a randomized, controlled, dose-response trial. Vaccine. 18 (16), 1700-1706 (2000).
  32. Brunner, K. T., et al. Quantitative assay of the lytic action of immune lymphoid cells on 51-Cr-labelled allogeneic target cells in vitro; inhibition by isoantibody and by drugs. Immunology. 14 (2), 181-196 (1968).
  33. Moretta, A., et al. Quantitative assessment of the pool size and subset distribution of cytolytic T lymphocytes within human resting or alloactivated peripheral blood T cell populations. J. Exp. Med. 158 (2), 571-585 (1983).
  34. Jung, T., et al. Detection of intracellular cytokines by flow cytometry. J. Immunol. Methods. 159 (1-2), 197-207 (1993).
  35. Maecker, H. T., et al. Standardization of cytokine flow cytometry assays. BMC Immunol. 6, 13 (2005).
  36. Nomura, L., et al. Standardization and optimization of multiparameter intracellular cytokine staining. Cytometry A. 73 (11), 984-991 (2008).
  37. Letsch, A., Scheibenbogen, C. Quantification and characterization of specific T-cells by antigen-specific cytokine production using ELISPOT assay or intracellular cytokine staining. Methods. 31 (2), 143-149 (2003).
  38. Merindol, N., et al. Umbilical cord blood T cells respond against the Melan-A/MART-1 tumor antigen and exhibit reduced alloreactivity as compared with adult blood-derived T cells. J. Immunol. 185 (2), 856-866 (2010).
  39. Altman, J. D., et al. Phenotypic analysis of antigen-specific T lymphocytes. Science. 274 (5284), 94-96 (1996).
  40. Scriba, T. J., et al. Ultrasensitive detection and phenotyping of CD4+ T cells with optimized HLA class II tetramer staining. J. Immunol. 175 (10), 6334-6343 (2005).
  41. Stone, J. D., et al. Interaction of streptavidin-based peptide-MHC oligomers (tetramers) with cell-surface TCRs. J. Immunol. 187 (12), 6281-6290 (2011).
  42. Pantaleo, G., et al. Evidence for rapid disappearance of initially expanded HIV-specific CD8+ T cell clones during primary HIV infection. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 94 (18), 9848-9853 (1997).
  43. Wherry, E. J. T cell exhaustion. Nat. Immunol. 12 (6), 492-499 (2011).
  44. Boulet, S., et al. A dual color ELISPOT method for the simultaneous detection of IL-2 and IFN-gamma HIV-specific immune responses. J. Immunol. Methods. 320 (1-2), 18-29 (2007).
  45. Ahlborg, N., Axelsson, B. Dual- and triple-color fluorospot. Methods Mol. Biol. 792, 77-85 (2012).
  46. Precopio, M. L., et al. Immunization with vaccinia virus induces polyfunctional and phenotypically distinctive CD8(+) T cell responses. J. Exp. Med. 204 (6), 405-1416 (2007).
  47. Sadzot-Delvaux, C., et al. Recognition of the latency-associated immediate early protein IE63 of varicella-zoster virus by human memory T lymphocytes. J. Immunol. 159 (6), 2802-2806 (1997).
  48. Malavige, G. N., et al. IE63-specific T-cell responses associate with control of subclinical varicella zoster virus reactivation in individuals with malignancies. Br. J. Cancer. 102 (4), 727-730 (2010).

Play Video

Cite This Article
Salem Fourati, I., Grenier, A., Jolette, É., Merindol, N., Ovetchkine, P., Soudeyns, H. Development of an IFN-γ ELISpot Assay to Assess Varicella-Zoster Virus-specific Cell-mediated Immunity Following Umbilical Cord Blood Transplantation. J. Vis. Exp. (89), e51643, doi:10.3791/51643 (2014).

View Video