Summary

연속 흐름 처리를 사용하여 수행 반응의 실시간 모니터링 : 예를 들어 3 Acetylcoumarin의 제조

Published: November 18, 2015
doi:

Summary

실시간 모니터링은 연속 흐름 처리를 수행하여 빠른 반응의 최적화를 허용한다. 여기 -3- acetylcoumarin의 제조는 예로서 사용된다. 반응을 최적화하는데 필요한 단계는 다음과 같이 인 시츄 라만 모니터링을 수행하기위한 장치가 설명된다.

Abstract

인라인 모니터링을 이용하여, 간단하고 신속하게 연속 흐름 처리를 수행하여 반응을 최적화하는 것이 가능하다. 그것은이 기술을 이용하여 시간에 걸쳐 일관된 제품 품질을 보장​​하는 것도 가능하다. 우리는 여기에 라만 분광기로 시판 흐름 장치를 인터페이스하는 방법을 보여줍니다. 라만 플로우 셀은 대기압에서 작동 될 수 있음을 의미 배압 조절기 뒤에 배치된다. 또한, 상기 생성물 스트림은 플로우 셀에 들어가기 전에 튜빙의 길이를 통과한다는 사실 재료 RT에 있다는 것을 의미한다. 이는 라만 신호 강도는 온도에 의존하기 때문에 스펙트럼 등온 조건 하에서 획득하는 것이 중요하다. 장치를 조립하는 데, 우리는 다음의 화학 반응을 모니터링하는 방법을 보여, 살리 실 알데히드, 에틸 아세토 아세테이트로부터 3 acetylcoumarin 피 페리 딘의 합성 촉매는 예로서 사용된다. 흐름 속도를 반응물 범위에서 수행 될 수있다D 온도, 인 시츄 모니터링 도구는 간단하고 용이하게 조건을 최적화하기 위해 사용된다.

Introduction

연속 흐름 처리를 사용함으로써, 화학자들은 안전하게 효과적으로 용이성 1,2-로 화학 반응을 수행 할 수있는 범위에 있음을 발견하고있다. 그 결과, 흐름 화학 장비는 교육 기관에서 산업 설정에 모두 반응뿐만 아니라 연구소를 실행하기위한 필수적인 도구가되고있다. 합성 화학 변환의 다양한 유동 반응기는 3,4-에서 수행되었다. 선택의 경우, 일괄 적으로 동작하지 않는 반응은 연속 흐름 조건 하에서 5 순조롭게 진행하는 것으로 나타났다. 반응 최적화 및 품질 제어 모두, 인라인 반응물 흐름 프로세싱 모니터링 혼입은 상당한 이점을 제공한다. 인라인 모니터링 실제 샘플 조건에 실시간 응답에 연속 분석을 제공한다. 이 빠르며, 유사한 오프라인 기술보다 어떤 경우에는,보다 신뢰성. 인 – 라인 분석 기법의 수는 F와 인터페이스 된낮은 원자로 7. 예를 들면 적외선 등이 8,9, UV-NMR 가시 12,13, 14,15 라만 분광법 및 질량 분석법 16,17, 10,11.

우리의 연구 그룹은 과학적 마이크로파 (18)와 라만 분광기 인터페이싱있다. 이 사용의 반응 범위는 모두 19 질적 및 양적 20 관점에서 모니터링 하였다. 이러한 성공을 바탕으로, 우리는 최근 지속적인 흐름 단위 중 하나로 우리 라만 분광 인터페이스와 키 의약 관련 유기 변형 다수의 인라인 반응 모니터링을 채용 하였다. (21)가 모니터링 할 수 있었다 각 경우에 반응과 같은 일 예시에서, 검량선을 이용하여, 우리는 라만 분광 데이터로부터 제품 전환을 결정할 수있다. 여기에서 우리는 장치를 설치하고 반응을 모니터하는 데 사용하는 방법을 설명한다. 우리는 3-AC의 피 페리 딘 촉매 합성을 사용etylcoumarin (1) 여기에 모델 반응으로 에틸 아세토 아세테이트 (그림 1)과 살리 실에서.

그림 1
그림 1. 자료 (1). 3 acetylcoumarin을 얻었다 살리 실 알데히드와 에틸 아세토 아세테이트 사이의 축합 반응을 촉매 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Protocol

1. 반응 모니터링에 적합한 신호를 찾기 모든 출발 물질 및 제품에 대한 라만 스펙트럼을 얻습니다. 스펙트럼 오버레이 및 제품에 고유 한 강렬한 밴드를 식별합니다. 반응의 진행을 모니터하기 위해 라만 밴드를 사용한다. 1,608cm에서 밴드는 -1이 경우 선정되었다. 2. 플로우 셀을 설정 적절한 흐름 세포를 얻습니다. 6.5 mm의 폭, 20mm?…

Representative Results

3 acetylcoumarin의 연속 흐름 준비가 인라인 모니터링을위한 대표적인 반응으로 선택되었다. 용매로서 아세트산 에틸을 사용할 때 일괄 적으로, 반응이 충분히 진행한다. 그러나, 제품 (1)을 실온에서 완전히 용해되지. 배압 조절기의 전위 막힘을 방지뿐만 아니라, 신호 포착을 교란 할 플로우 셀에 고체 입자를 갖는 위험을 완화하기 위해, 우리는 우리가 다른 반응 (22)에 대해 이?…

Discussion

라만 분광기는 유동 장치와 인터페이스 할 수있는 용이성 반응 모니터링에 유용한이 인라인 기술한다. 반응 변수의 수는 사용자가 빠른 오프라인 방법을 사용할 때보다 최적의 반응 조건에 도달 할 수 있도록 신속하게 탐색 할 수있다. 또한 본원에 설명 된 기술의 애플리케이션은 적합한 대역이 발견 될 수있다 가정하면, 부 생성물의 형성을 모니터링 할 수있다. 조건은 또한 불순물의 양이 낮은 …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Financial support provided by National Science Foundation (CAREER award CHE-0847262. We thank Vapourtec Ltd and Enwave Optronics for equipment support, and Daniel Daleb of the University of Connecticut for his assistance in construction of the flow cell apparatus.

Materials

Salicylaldehyde Sigma-Aldrich S356 Reagent Grade, 98%
Ethyl acetoacetate Acros Organics 117970010 99%
Piperidine Sigma-Aldrich 104094 Reagent Plus, 99%
Hydrochloric acid Sigma-Aldrich 320331 ACS Reagent, 37%
Ethyl acetate Sigma-Aldrich 34858 CHROMASOLV, for HPLC, >99.7%
Acetone Sigma-Aldrich 650501 CHROMASOLV, for HPLC, >99.9%
Flow cell Starna Cells 583.65.65-Q-5/Z20
Flow unit Vapourtec E-series system
Raman spectrometer Enwave Optronics Inc Model EZRaman-L

References

  1. Wiles, C., Watts, P. . Micro Reaction Technology in Organic Synthesis. , (2011).
  2. van den Broek, S. A. M. W., et al. Continuous Flow Production of Thermally Unstable Intermediates in a Microreactor with Inline IR-Analysis: Controlled Vilsmeier–Haack Formylation of Electron-Rich Arenes. Org. Process Res. Dev. 16 (5), 934-938 (2012).
  3. Baxendale, I. R. The integration of flow reactors into synthetic organic chemistry. J. Chem. Technol. Biotechnol. 88 (4), 519-552 (2013).
  4. Malet-Sanz, L., Susanne, F. Continuous Flow Synthesis. A Pharma Perspective J. Med. Chem. 55 (9), 4062-4098 (2012).
  5. Hartwig, J., Metternich, J. B., Nikzad, N., Kirschning, A., Ley, S. V. Continuous flow chemistry: a discovery tool for new chemical reactivity patterns. Org. Biomol. Chem. 12 (22), 3611-3615 (2014).
  6. De Beer, T., et al. Near infrared and Raman spectroscopy for the in-process monitoring of pharmaceutical production processes. Int. J. Pharm. 417, 32-47 (2001).
  7. McMullen, J. P., Jensen, K. F. Integrated microreactors for reaction automation: New approaches to reaction development. Annu. Rev. Anal. Chem. 3, 19-42 (2010).
  8. Moore, J. S., Jensen, K. F. Automated multitrajectory method for reaction optimization in a microfluidic system using online IR analysis. Org. Process Res. Dev. 16 (8), 1409-1415 (2012).
  9. Carter, C. F., et al. ReactIR Flow Cell: A New Analytical Tool for Continuous Flow Chemical Processing. Org. Process Res. Dev. 14 (2), 393-404 (2010).
  10. Ferstl, W., et al. Inline Analysis in Microreaction Technology: A Suitable Tool for Process Screening and Optimization. Chem. Eng. Technol. 30 (3), 370-378 (2007).
  11. Benito-Lopez, F., et al. Optical fiber-based on-line UV/Vis spectroscopic monitoring of chemical reaction kinetics under high pressure in a capillary microreactor. Chem. Commun. (22), 2857-2859 (2005).
  12. Gökay, O., Albert, K. From single to multiple microcoil flow probe NMR and related capillary techniques: a review. Anal. Bioanal. Chem. 402 (2), 647-669 (2012).
  13. Jones, C. J., Larive, C. K. Could smaller really be better? Current and future trends in high-resolution microcoil NMR spectroscopy. Anal. Bioanal. Chem. 402 (1), 61-68 (2012).
  14. Mozharov, S., et al. Improved Method for Kinetic Studies in Microreactors Using Flow Manipulation and Noninvasive Raman Spectrometry. J. Am. Chem. Soc. 133 (10), 3601-3608 (2011).
  15. Chaplain, G., Haswell, S. J., Fletcher, P. D. I., Kelly, S. M., Mansfield, A. Development and evaluation of a Raman flow cell for monitoring continuous flow reactions. Aust. J. Chem. 66 (2), 208-212 (2013).
  16. Browne, D. L., et al. Continuous flow reaction monitoring using an on-line miniature mass spectrometer. Rapid Comm. Mass. Spectrosc. 26 (17), (1999).
  17. Koster, S., Verpoorte, E. A decade of microfluidic analysis coupled with electrospray mass spectrometry: An overview. Lab Chip. 7 (11), 1394-1412 (2007).
  18. Leadbeater, N. E., Schmink, J. R., Hamlin, T. A., de la Hoz, A., Loupy, A. Tools for Monitoring Reactions Performed Using Microwave Heating. Microwaves in Organic Synthesis. 1, 327-376 (2012).
  19. Leadbeater, N. E., Schmink, J. R. Use of Raman spectroscopy as a tool for in situ. monitoring of microwave-promoted reactions. Nature Protoc. 3 (1), 1-7 (2008).
  20. Schmink, J. R., Holcomb, J. L., Leadbeater, N. E. Use of Raman spectroscopy as an In Situ. Tool to Obtain Kinetic Data for Organic Transformations. Chem. Eur. J. 14 (32), 9943-9950 (2008).
  21. Hamlin, T. A., Leadbeater, N. E. Raman spectroscopy as a tool for monitoring mesoscale continuous-flow organic synthesis: Equipment interface and assessment in four medicinally-relevant reactions. Beilstein J. Org. Chem. 9, 1843-1852 (2013).
  22. Kelly, C. B., Lee, C., Leadbeater, N. E. An approach for continuous-flow processing of reactions that involve the in situ. formation of organic products. Tetrahedron Lett. 52 (2), 263-265 (2011).
  23. Wren, S. N., Donaldson, D. J. Glancing-angle Raman spectroscopic probe for reaction kinetics at water surfaces. Phys. Chem. Chem. Phys. 12, 2648-2654 (2010).
  24. Leadbeater, N. E., Smith, R. J. Real-Time Monitoring of Microwave-Promoted Suzuki Coupling Reactions Using in Situ. Raman Spectroscopy. Org. Lett. 8 (20), 4589-4591 (2006).
check_url/52393?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hamlin, T. A., Leadbeater, N. E. Real-time Monitoring of Reactions Performed Using Continuous-flow Processing: The Preparation of 3-Acetylcoumarin as an Example. J. Vis. Exp. (105), e52393, doi:10.3791/52393 (2015).

View Video