Abstract
인간의 염증성 장 질환 (IBD), 자신의 장점과 단점 각각의 발병 기전을 연구에 사용할 수 많은 다른 동물 모델이 있습니다. 우리는 여기에서 T 및 B 세포 결핍 마우스에게 수신자 동계 비장 CD4 + T CD45RB 높은 세포의 대체 전송에 의해 개시되는 실험적 대장염 모델을 설명한다. 나이브 크게 이펙터 세포로 구성되어 CD4 + T CD45RB 높은 세포군 밀접 인간 IBD의 주요 측면을 닮은, 만성 장염을 유도 할 수있다. 이 방법은 질병의 발병과 진행의 측면을 연구하기 위해 조작 할 수 있습니다. 또한 그것은 장내 염증 즉, 타고난, 적응의 기능 및 규제 면역 세포 인구, 환경 노출의 역할, 미생물을 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 이 문서에서 우리는 단계별 프로토콜 대장염을 유도하는 방법을 설명한다. 이 INCludes 성공적 연구 목적 대장염이 실험 쥐 모델을 개발하기 위해 필요한 키의 기술적 측면에 비디오 데모.
Protocol
참고 : 모든 동물의 프로토콜에 의해 실험 동물의 관리 및 사용을위한 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC) 규정 및 국가 연구위원회의 가이드를 준수 승인되어 있는지 확인합니다. 기증자 마우스는 남성 또는 여성이 될 수 있지만,받는 사람 마우스는 남성이어야한다. 여성 수신자가 사용되는 경우, 도너 5 암컷 쥐이어야한다. 따라서, 마우스 5,6의 대장염 표현형을 이러한 장내 미생물에 영향을 미칠 수 있으므로, 정기적으로, 비 살균 침구 및 비 산성화 된 물을 사용하여 식민지를 유지합니다.
1. 실험 준비
- 얼음처럼 차가운 미디어와 버퍼를 사용합니다. 실험을하는 동안 얼음에 세포를 보관하십시오.
- 멸균 기술을 사용하여 멸균 생물 학적 후드에서 실험을 수행합니다.
비장 T 세포의 격리 2.
- 기증자 마우스 / CO에 마우스 자궁 dislocatio에 의해 2 챔버 따라 안락사N. 70 % 에탄올로 복부 스프레이.
- 복부에 수평 절개를하고 복막을 노출 피부를 벗겨. 멀리 집게와 내부 장기에서 복막 잡고 노출과 비장을 절제하는 왼쪽 복부 복막에 절개를합니다.
- 페트리 접시에 전체 미디어 10ml에 비장를 놓습니다. 제거하고 비장에서 초과 조직을 폐기합니다.
- 분쇄 및 단일 세포 현탁액에 비장 떨어져 애타게 2 멸균 유리 슬라이드를 사용합니다. 필터 셀 50 ML 원뿔 튜브에 70 μm의 여과기를 통해 서스펜션과 전체 미디어의 5 ml로 여과기를 씻어. 한 50 ML 원뿔 튜브에 5 비장까지 놓습니다.
- 7 분 450 XG에 원심 분리기 세포. 쏟아 또는 폐기물 용기에 진공 흡입에 의해 상층 액을 제거한다.
- 조심스럽게 10 분 동안 실온에서 적혈구를 용해하는 용해 완충액 비장 당 5 ml의 세포를 재현 탁. 튜브 전체 미디어 동량 (비장 당 5 ㎖)를 첨가.
- 부드럽게 라벨링 완충액 10ml에 세포를 재현 탁.
- 트리 판 블루 배제하여 세포를 계산합니다.
- 세포 현탁액의 20 μl를 제거하고 미세 원심 튜브에 180 μL 트리 판 블루에 추가하고 잘 혼합. 5 분 후, 혈구와 현미경이 아닌 파란색 셀을 계산하는 세포를 표지 10 μl를 추가합니다. 가능한 세포의 수를 결정합니다. 세포 / 트리 판 블루 믹스를 폐기하십시오.
- 7 분 450 XG에 라벨링 버퍼 10 ㎖의 원심 분리기 세포. 쏟아 또는 폐기물 용기에 진공 흡입에 의해 상층 액을 제거한다.
CD4 + T 세포의 보충 3.
참고 :이 섹션에서 사용되는 특정 제품에 대한 제조업체의 지침을 따르십시오.
- 부드럽게 감기 레이블 20 × 106 세포 / ㎖ 단일 세포 현탁액으로 세포를 재현 탁ING 버퍼.
- 바이오틴 CD4 T 세포 농축 항체의 1 × 10 6 세포 당 5 μl를 추가합니다. 시료를 얼음에서 15 분 동안 세포를 배양한다.
- 라벨링 버퍼의 10 배 볼륨을 추가합니다. 7 분 동안 450 × g에서 원심 분리기 세포. 조심스럽게 폐기물 용기에 진공 흡입을 사용하여 모든 뜨는을 대기음.
- 철저하게 스트렙 타비 딘 - 복합 자성 입자를 소용돌이. 1 × 10 6 세포 당 입자의 5 μl를 추가합니다.
- 철저하게 조심스럽게 섞는다. 30 분 동안 6-12 ℃에서 혼합 보관하십시오.
- 20-80 × 106 세포 / ml의 농도로 라벨링 버퍼를 추가한다. 12 X 75mm 환저 시험관 당 세포 표지를 1.0ml까지 이동 ( "포지티브 분획 튜브"라고 함).
- 6-8 분 동안 자석의 각 포지티브 분수 튜브를 놓습니다.
- 자석에 여전히 긍정적 인 분율 튜브, 신중 (새로운 멸균 50 ML 원뿔 튜브에 유리 파스퇴르 피펫으로 포지티브 분수 관에서 referre을 뜨는 전송"풍부한 부분") 등을 개발. 이 농축 분획은 CD4 + T 세포가 포함되어 있습니다. 자석에 매력을 표지 세포를 방해하지 않도록주의하십시오.
- 재현 탁 된 세포를 피펫 팅 다운 격렬함으로써 단계 3.6과 같이 레이블링 완충액 동일한 체적 분률 포지티브 튜브에 남아. 6-8 분 동안 다시 자석에 긍정적 - 분수 튜브를 놓습니다.
- 자석에 여전히 긍정적 인 분율 튜브,주의 깊게 자석에 부착 된 세포를 방해하지 않고 50 ㎖를 단계 3.8에서 원뿔 튜브를 멸균하기 위해 유리 파스퇴르 피펫으로 포지티브 분수 관에서 상층 액 (농축 분수, CD4 +)를 전송합니다.
- 반복하여 얻은 CD4 + T 세포의 수율을 증가시키는 단계를 3.9-3.10. 농축 분획 (CD4 + 세포)를 사용하여 프로토콜을 계속합니다.
4. 라벨링 및 정렬 셀 (7)
- 원심 분리기는 7 분 동안 450 XG에 세포를 농축. 또는 진공 suct을 부어 상층 액을 제거한다폐기물 용기에 이온.
- 레이블 버퍼 1 ㎖에 재현 탁 세포. 계산하는 단계 2.9에서와 같이 트리 판 블루 배제에 의해 세포 생존 능력에 대해 평가하기 위해 세포의 나누어지는을 제거합니다.
- 10 × 106 세포 / ml로 라벨링 완충액 볼륨을 추가; 세포가 이미있는 경우 <10 × 10 (6), 7 분 450 XG에 원심 분리기는, 폐기물 용기에 쏟아 또는 진공 흡입에 의해 상층 액을 버린다, 10 × 10 6 세포 / ㎖로 라벨링 버퍼의 볼륨을 추가합니다.
- 미세 원심 튜브에 이소 염색, 흠, 및 단일 염색 대조군 세포에 대해 약 5 ~ 10 × 10 5 세포 각각의 별도의 분취 량을 설정합니다.
- 세포에 5 ㎍ / ㎖의 CD4-FITC와 1 ㎍ / ㎖의 CD45RB-PE를 추가합니다. 미세 원심 튜브에 분주 적절한 동일한 농도로 이소 제어 얼룩과 하나의 얼룩을 추가합니다. 물론 조심스럽게 혼합하고 30 분 동안 빛으로부터 보호 얼음에 품어.
- 세포 및 제어 라벨링 버퍼의 10 배 볼륨을 추가의. 7 분 동안 원심 분리기 450 XG. 폐기물 용기에 진공 흡입하여 상층 액을 버린다.
- 4.5 단계에서 볼륨 레이블 버퍼에 재현 탁. 7 분 동안 원심 분리기 450 XG. 폐기물 용기에 진공 흡입하여 상층 액을 버린다.
- 10 × 106 세포 / ml로 재현 탁 완충액 라벨링. FACS 튜브에 70 μm의 스트레이너를 통해 세포를 전달합니다. FACS를 위해 준비 될 때까지 빛으로부터 보호 얼음에 보관하십시오.
- 설정하고 흠없는 세포와 단일 얼룩진 컨트롤 셀 소터에 대한 적절한 보상을 결정합니다.
- 정방향 및 측면 산란 게이트 (그림 1A)와 생존 할 세포를 제외합니다. 이소 염색 컨트롤 CD4 +와 CD45RB + 세포 게이팅 설정합니다. CD4 + 인구에 게이트 셀.
- 전체 미디어 2 ㎖와 튜브에 PE-염색 된 세포에 대한 간단한 히스토그램을 사용하여 높은 CD45RB 및 CD45RB 낮은 집단으로 분류 CD4 + 세포. 높은 CD45RB + CD4 + 세포 CD45RB (높은 CD45RB)의 최고 40 %를 나타내고, 낮은 인구 CD45RB + CD4 + 세포의 CD45RB 최저 20 % (저 CD45RB도 1B).
그림 1 : FACS 분석 중 CD4 + CD45RB T 세포 인구의 플롯 세포 계측법 대표 흐름 (A - C) FITC CD4- 및 PE에 FACS으로 분류 된 기증자 C57BL / 6 마우스의 비장 세포를 CD45RB가 묻은 CD4 + CD45RB 높은 CD4 +. CD45RB 낮은 T 세포 인구. (A) 이중선 이벤트는 앞으로 산포도에서 제외 하였다. (B) 림프구는 전방 및 측면 산란 음모에 문이되었다. (C) CD4 + (D) CD4 + CD45RB + T 세포 대 PE 이벤트 히스토그램 플롯 하였다. 낮은 CD4 + 세포 CD45RB CD45RB + 낮은 세포의 20 %로 간주 하였다. CD4 + 세포는 높은 CD45RB CD45RB + 세포의 최고 40 %로 정의 하였다.
- 인구의 순도를 평가하기 위해 FACS 시스템에서 각 셀 인구의 나누어지는을 실행합니다.
- 원심 분리기는 7 분 동안 450 XG에 세포를 분류. 1 ml의 PBS에 재현 탁. 계산하는 단계 2.9에서와 같이 트리 판 블루 배제에 의해 세포 생존 능력에 대해 평가하기 위해 세포의 나누어지는을 제거합니다.
받는 사람으로 세포의 5. 주입
- 재현 탁 4 × 106 세포 / ㎖ (CD45RB 높음) 또는 PBS에 2 × 106 세포 / ㎖ (낮은 CD45RB)에 셀을 정렬.
- 새로운 멸균 튜브에받는 사람 당 CD45RB 높은 세포 100 μl를 전송합니다. PBS의 당 100 μl를 추가이 튜브에받는 사람. 따라서, 동물 당 총 주입량 200 μL, 그리고받는 사람 당 세포의 총량은 4 × 10 5 CD4 + CD45RB 고 나이브 T 세포이다.
- T 조절 세포를 수신 한 실험군이 요구된다면, 새로운 멸균 튜브에 수신자 당 CD45RB 높은 세포 100 ㎕를 전송. 같은 튜브에받는 사람 당 CD45RB 낮은 세포의 100 μl를 추가합니다. 동물 당 총 주입 부피는 200 μL이다; CD45RB 높은 비율 : CD45RB 낮은 세포는 2 : 1입니다.
- 고 / CD45RB 낮은 CD4 + 세포 복강 각받는 사람의 복부 (200 μL의 총)의 오른쪽과 왼쪽에 CD45RB 높거나 CD45RB 100 ㎕를 주입한다.
받는 사람 동물에서 질병 진행의 6. 모니터링
- 받는 사람 동물의 임상 상태를 평가하고 다음 paramete 집계 임상 점수를 할당하려면주사의 날에 RS 8 주간 이후, 희생의 시간 :
- 체중 감량을 측정하여 낭비 결정 : 0 - 아니 체중 감소; 1 - 초기 체중의 0.1 ~ 10 %의 손실; 2 - 초기 체중 (도 2A)의 10 % 이상 손실.
그림 2 : 염증의 임상 및 병리학 적 징후 Rag1에 야생 형 CD4 + CD45RB 높은 T 세포의 이동 이후에 발생하는 - / - 11 (A) NRDKO받는 사람 (5)에 의해 초기 체중의 평균 10 %에 손실 NRDKO받는 사람 마우스.이 주 전송 이후, Rag1 반면,- / -받는 사람은이 시간에 질병의 임상 증상을 나타내지 않았다. 각 점은 SEM ± 코호트에 대한 초기 체중의 평균 비율을 나타냅니다. **, P <0.005. 직장 탈출증의 존재에 의해 입증되는 바와 같이 (B) 몇몇 마우스는 장내 심한 염증을 개발했다. 이 NRDKO받는 사람 마우스에서 직장 탈출증의 대표적인 사진입니다. (C) 육안에서 콜론 모두 Rag1 - / - 및 NRDKO받는 사람 마우스 Rag1에서 콜론에 비해 두꺼워 짧게 - / - 및 T 세포 입양 전송하지 않고 NRDKO 마우스. NRDKO받는 사람 마우스의 콜론은 심한 염증 증가 대장 무게 (데이터가 표시되지 않음)를 보여줍니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
- 이 사라질 때까지 깨끗한 용기에 동물을 배치하여 대변의 질을 결정의자 : 0 - 없음; 1 - 부드러운 의자; 2 - 물 및 / 또는 혈변.
- 질병의 다음 증상의 존재에 의해 동물의 건강을 결정하지 : 0 - 더 웅크 리고 자세를, 모피, 또는 피부 병변을 곤두; 1 - 다음 현재의 어느 한 웅크 자세, 모피, 또는 피부 병변을 곤두.
- 직장 탈출증의 존재 결정 : 0 - 결석을; 1 - 현재 (그림 2B).
- 그들의 초기 체중의 20 %를 손실 또는 제 도래 원하는 시점에서 CO 때 의해 경추 탈구이어서이 흡입을 희생이. 임상 질환은 주 5 사후 충만에서 시작 일반적으로 알 수있다.
- 이전 5,7 설명 된대로 질병 심각도 평가합니다.
- 단계 6.1 8과 임상 점수를 할당합니다.
- 대장의 길이와 무게 (그림 2C)를 측정한다.
- 염증의 조직 학적 분석을 수행5.
- 장 조직 절편 배양 9 자연 사이토 카인의 발현을 결정, 장간막 림프절은 10 노드, 및 / 또는 혈청 (11).
- 간단히, 이식편 문화 9, 길이 방향으로 개방, 희생 후 콜론을 제거하고 PBS와 깨끗한. 실온에서 30 분 동안 완전 배지에서 250 rpm으로 설정 한 궤도 진탕 기에서 인큐베이션 콜론.
- 작은 조각으로 조직을 잘라 24 시간 동안 전체 미디어에 37 ° C에서 배양. 상층 액을 수집하고 ELISA 100 mg의 조직 당 사이토 카인의 정량을 위해 사용합니다.
- T 세포 표현형 및 / 또는 기능 (10)의 생체 특성을 수행합니다.
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Representative Results
약 성체 C57BL / 6 마우스 공여체 비장에서 10 내지 10 × 106 CD4 + CD45RB 높은 T 세포를 확실하게 분리된다. 이 숫자는 나이와 변형 기증자 마우스 및 연구자의 능력에 따라 달라집니다. 때 4 × 6 CD4 + CD45RB 높은 T 세포는 C57BL / 6 Rag1로 전송됩니다 / 10 5 C57BL - / -받는 사람 마우스, 질병의 임상 증상은 주 5 사후 충만 주위에 등장 또는 마우스 (더 심각한 질병에 유 전적으로 취약 빨리 경우 도 2, 3) (11, 12). - / - CD3 + T 세포는 Rag1의 콜론에 축적 볼 수 있습니다받는 사람을 일찍 삼주 (그림 3A) 12.
그림 3 : 야생 형 CD4의 전송 + Rag1에 CD45RB 높은 T 세포 - / - 및 RKO / δ의 KD받는 만성 장염 (12)을 유도 (A) (원래 배율 10 배, H & E 및 CD3의 면역 조직 화학).. - / - 수신자 H & E 염색 (상단 패널) 상피 세포의 증식, 염증 세포의 침윤 및 RKO / δ의 KD받는 사람에 존재하는 토굴 농양 (화살표)하지만 Rag1을 보여줍니다. - / -받는 사람 RKO / δ KD받는 사람 마우스의 콜론 Rag1에서 콜론에 비해 CD3 IHC (아래 패널)에서 CD3 + T 세포의 현저한 축적을 보여 주었다. 콜론의 FR에 비해 (B) 콜론 RKO로부터 / δ의 KD는 수신자 생쥐보다 심한 염증을 입증OM Rag1 - / - 조직 학적 점수에 의해 결정되는받는 마우스. (C, D)에서 결장 절편 문화를보다 적은 IL-10 (C) 분비 RKO / δ KD받는 사람 마우스보다 IL-12p40 (D)에서 대장 이식편 문화 Rag1 - / -.받는 사람 쥐 를 보려면 여기를 클릭하십시오 이 그림의 더 큰 버전.
- / - / Rag1 - / - 더블 녹아웃받는 사람 (NRDKO가) Rag1에 비해 더 심한 대장염을 개발 - 우리는 이전에 Nfil3에 입양 T 세포 전송이 있음을 출판 / -받는 사람 마우스 (그림 2) 11. NFIL3 부정적인 독립적으로 IL-10 유도 효과 뮤린 결장 (13)의 대 식세포에서 IL-12p40을 조절한다. IL-12p40 및 IL-10의 조절 장애는 경로에 연루되어인간의 ogenesis IBD 1. 따라서, 체중 감소 (도 2a)에 의해 도시 된 바와 같이 더 빠른 질환 진행의 대체 송금 NDRKO받는 마우스 결과, 검사되지 않은 IL-12p40 생산. 일부 NRDKO받는 사람 마우스는 직장 탈출증 (그림 2B)의 결과로 심각한 질병을 개발했다. - / - 생쥐 수신자 (도 2c)에 비해 심하게 Rag1, NRDKO받는 마우스에서 콜론 육화되고 결장 내로 염증 세포 유입을 나타내는 큰 짧게.
비교적, Rag1에 - / - 비 림프구 인구에서 작동하지 PI3K 촉매 서브 유닛 p110δ (RKO / δ의 KD), CD4 + CD45RB 높은 T 세포 충만이 NRDKO 마우스에 비해 질병의 유사 신속하고 심한 임상 경과를 유도 쥐 (그림 3) 12. 삼주에서 조직 학적 분석은 대장 조직의 비대, inflamma을 보여줍니다토리 세포 침윤 및 토굴 농양 Rag1에 비해 RKO / δ의 KD받는 사람에 (화살표) - / - 수신자 (그림 3A). 이 실험에서받는 마우스는 그들의 초기 체중의 20 %를 잃은 상당수 3 주째에 안락사시켰다. 실험 그룹에 눈이 멀어 우리 실험실 (12)에서 개발 된 특정 기준에 따라 병리학 자에 의해 결정되는 조직 학적 점수, Rag1에 비해 RKO / δ KD받는 생쥐에서 더 높았다 - / -받는 사람 마우스 (그림 3B). 또한, 대장 이식편 문화 자연 사이토 카인의 생산을 증명 Rag1에 비해 RKO / δ KD받는 사람 마우스에 의해 IL-10 및 향상된 IL-12p40 생산 감소 - / -받는 사람 마우스 (그림 3C, D) (12). 다시 말하지만, IL-12p40 증가 및 IL-10 생산은 인간의 병인 IBD 일에 연루되어 감소했다.
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Discussion
여기에서 우리는 면역 결핍 쥐에 CD4 + CD45RB + T 세포의 입양 전송에 의해 쥐에서 대장 염증을 유발하는 단계별 프로토콜을 설명합니다. 받는 사람 마우스 다른 균주 있지만 (예를 들어, BALB / C, 129S6 / SvEv, 비만이 아닌 당뇨병 (NOD)) 면역 결핍과 유전 적 모델 (예를 들어, SCID, Rag2 - / - 우리는 C57BL / 6 기증자 비장과 동계 Rag1을 사용 - / -)도 4,14-16 사용될 수있다. 그것은 잘 배경 변형 쥐 1의 실험 성 대장염의 중증도에 영향을 미치는 것으로 설정됩니다. 또한, 쥐 인구의 장내 미생물은 심지어 같은 기관 6,17 내에서 그 사이에, 시설 사이에 널리 다릅니다. 그림 2와 3은 Rag1에 대장염의 개발을 표시하지 않지만 - / - 사주 전송 이후에 마우스, 우리와 다른 사람의 경험 Rag1에 - / -받는 사람은 CLI 개발CD4 + CD45RB 높은 T 세포 18-23의 전송 후 6과 구주 사이 nical 질병. 인트라 및 인터 - 실험 불일치를 최소화하기위한 실험적 대장염 모델을 설정할 때 임상 경과 질병 발현의 변동이 고려되어야한다.
이 실험의 재현성을위한 중요한 단계 잔여 활성화 / 메모리 / 규제 T 세포없이 CD4 + CD45RB 높은 세포의 순수한 인구의 FACS 격리입니다. 이 유동 세포 계측법의 실력 이해를 포함한다. 먼저 부정적인 비 실행 가능하고 CD4- 셀을 선택하는 것이 중요합니다. 이어서, CD45RB-PE 전지용 단순한 히스토그램을 사용하여, CD45RB 높은 T 세포 및 CD45RB 낮은 T 세포로서 최저 20 %를 나타내는 세포의 최고 40 %를 선택한다. 다른 마커, CD62L와 CD25는 순진한 CD4 + T 세포의 분리를 위해 아르 사용을 고려하는 높은 우리의 경험 CD45RB에서 비록 낮은 분리는 충분하고 5 재현. 또한, 질병 표현형 조절 T 세포 집단의 효과를 연구하기 위해 수신자에 옮기고 낮은 T 세포를 고 CD45RB CD45RB의 비율을 변화시킬 수있다. 미래의 실험에서 해당 프로토콜을 사용하여 다음 FACS 프로토콜을 설정하고 초기에 유동 세포 계측법에 익숙한 사람과 함께 작업 할 수 있습니다. 또한, 상당한 변동이 프로토콜에 영향을 줄 수있는 결과를받는 단계는 생쥐에 T 세포의 복강 내 주사이다. 여기서, 인트라 - 및 인터 - 실험자 변동이 크게 실험의 결과에 영향을 미칠 수있다. 이는 적응 적 전송 세포의 질과 양의 변동성을 최소화하기 위해이 단계를 수행하는 사람이 취급 쥐 및 주입 기술에 편안 것을 제안한다. 또한, 바늘이 무디게의 효능에 영향을 미칠 수 있으므로, 마우스 바늘 사이를 변경하는 것이 중요복강 내 주사.
라벨링 및 정렬 셀 : CD4 + T 세포와 제 4의 심화 : 최적화를 필요로하는 프로토콜의 단계 3 절을 포함한다. CD4 + T 세포 농축의 최적화에 사용되는 자기 체제에 따라 다릅니다 및 제조업체의 지침을 따라야합니다. 자기 세포 분리 시스템에 대한 옵션은 특정 시약 / 장비의 표에 나열되어 있습니다. 그것은 직접적 세포의 표현형에 영향을 미칠 수있는이 인구 라벨, 음의 선택에 의한 CD4 + T 세포에 대한 풍부하게하는 것이 좋습니다. FACS에 대한 세포 레이블을 사용할 수있는 여러 가지 항체 클론이 있습니다. 항체 농도 (단계 4.4) 특정 염색을 보장하고 FACS 동안 CD4 + CD45RB T 세포 개체군의 적절한 분리를 얻기 위해 최적화되어야한다.
이 프로토콜의 개발은 문제 해결을 요구할 수있다. 각 실험 먼저, 성공연구자의 능력에 따라 이러한 방법의 개선 된 기술로 증가 할 것이다. 그러나 입양 전송을위한 T 세포의 지속적 확보 낮은 번호, 격리하는 동안 얼음에 세포를 유지 너무 적극적으로 원심 분리하여 세포를 재 부유, 또는 작은 비장 젊은 마우스의 비장 세포를 사용하지 않음으로써 발생할 수 있습니다. 또한, (상기 참조) 결핍 또는 비특이적 세포 얼룩을 방지하기 위해 염색 항 CD4 및 안티 CD45RB 라벨링 된 항체의 농도를 최적화한다. 받는 사람이 장내 염증의 매우 다양한 학위를 개발하는 경우, 원인은 부정확 한 복강 내 주입 기술이다. 이 연습을 개선해야하며,받는 사람 쥐의 장내 CD3 + 세포의 신경 섬유 염색으로 모니터링 할 수 있습니다. 고려해야 할 추가 일들이 기증자와받는 사람 마우스 및 질병 침투 정상 변화의 성별을 포함한다. 수신자 수컷 마우스를 사용하는 경우, 남성 또는 여성 도너 생쥐 중 어느 하나를 아르ppropriate. 수신자 암컷 마우스가 사용되어야하는 경우에는, 도너 5 암컷 쥐이어야한다. 우리와 다른 사람들의 경험에서,이 모델에서 질병의 침투 85-90% 5입니다. 따라서 일부 마우스는 장내 염증을 개발하지 않을 것으로 예상된다, 질병의 중증도에 현저한 변동의 주어진 다른 원인을 배제되었다. 쥐의 위장 미생물 및 미생물 6,17에 영향을 미치는 행위와 관련이 조직 내에서 시설 사이의 표현형에 현저한 변화가 그것 밖에 염두에 두십시오. 따라서, 표현형 Rag1 질병의 역학의 견고성은 - / -받는 사람 마우스 널리 하나의 위치에 따라 달라질 수 있습니다. 따라서, 각각의 설비로부터 얻어진 타임 라인과 결과들에 기초하여이 실험을위한 최선의 파라미터를 결정하는 것이 중요하다.
여기에서 우리는 잘 특성화 적응 전송 쥐의 방법론을 설명인간의 IBD 5 유사한 만성 소장과 대장 염증의 모델입니다. 이 단계별 프로토콜은 연구 목적이 방법의 성공적인 개발을위한 주요 기술을 도시한다. 그것은 다양한 세포 집단의 질환의 동기화 및 조작을 허용 이것은 인간 IBD의 특히 유용한 동물 모델이다. 그러나, 면역 결핍받는 사람 마우스는 유전자 가능성이 다운 스트림 질병의 결과에 영향을 미치는, 성숙한 적응 면역 세포없이 개발하기 위해 수정됩니다. 그럼에도 불구하고, 여기에 기재된 방법은 인간 IBD의 발병 장용성 미생물, 선천성 면역 세포 및 적응성 면역 조절 세포의 영향을 결정하는 장래의 연구에 매우 유용 할 것이다.
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Acknowledgments
이 작품은 미국 소화기 학회 (AGA) 연구 학자 상과 크론과 미국 (CCFA) (ECS에) (SZS에) 경력 개발 상, NIH NIDDK의 F30의 DK089692의 대장염 재단과 위장 생물 노스 캐롤라이나 센터의 대학에 의해 지원되었다 과 질병 부여 P30의 DK34987 (조직학 코어). UNC 유동 세포 계측법 핵심 시설은 UNC Lineberger 종합 암 센터 NCI 센터 코어 지원 그랜트 (P30CA016086)에 의해 부분적으로 지원됩니다. 우리는 조직 병리학 적 분석과 면역 조직 화학 그의 도움을 동물 용 의약품의 노스 캐롤라이나 주립 대학에서 누가 B. BORST 감사합니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Name of Reagent/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
| 10x PBS | Gibco | 14200075 | |
| 12 mm x 75 mm round-bottom tube | Falcon | 352052 | |
| 15 ml conical | Corning | 430790 | |
| 26 G x 3/8 Needle | BD Biosciences | 305110 | |
| 50 ml conical | Corning | 430828 | |
| 70 μm Cell Strainer | Fisherbrand | 22363548 | |
| BD IMagnet | BD Biosciences | 552311 | |
| β-mercaptoethanol | Thermo Scientific | 35602 | |
| CD4-FITC IgG2b | eBioscience | 11-0041 | |
| CD45RB-PE IgG2a | BD Pharminogen | 553101 | |
| Complete Media | RPMI-1640, 1% Pen/Strep, 10% FBS, 0.0004% β-ME | ||
| FACS tube + strainer | BD Falcon | 352235 | |
| Glass Microscope Slides | Fisherbrand | 12550A3 | |
| Heat-inactivated FBS | Gemini | 100-106 | |
| Labeling Buffer | 1x PBS, 0.5% BSA, 2 mM EDTA | ||
| Lysis Buffer | 0.08% NH4Cl, 0.1% KHCO3, 1 mM EDTA | ||
| MoFlo XDP | Beckman Coulter | ||
| Mouse CD4 T lymphocyte Enrichment Set - DM | BD Biosciences | 558131 | |
| Mouse IgG2a-PE | BD Pharminogen | 553457 | |
| Mouse IgG2b-FITC | eBioscience | 11-4732 | |
| Pasteur pipet | Fisherbrand | 13-678-20D | |
| Penicillin-Streptomycin Solution, 100X | Corning Cellgro | 30-002-CI |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Petri Dish | Fisherbrand | 875713 | |
| Pure Ethanol 200 Proof | Decon Labs | 2705-HC | |
| RPMI-1640 | Gibco | 11-875-093 | |
| Syringe | BD Biosciences | 309597 | |
| Trypan blue | Corning Cellgro | 25-900-CI | |
| Wash Media | RPMI-1640, 1% Pen/Strep, 0.0004% β-ME |
References
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