Summary

厚脑切片使用高尔基考克斯方法中成像神经元

Published: April 18, 2017
doi:

Summary

我们提出了一个协议,用于使用所述高尔基体考克斯染色法在厚的脑切片中,为了可视化与包含单个组织样品中的树突状长树木神经元。此协议的两种变型还提出涉及甲酚紫复染,和未加工的大脑进行长期存储的冻结。

Abstract

神经细胞染色的高尔基 – 考克斯方法已使用超过两百年的脑组织样本中推进我们的神经元形态的理解。虽然它是从实用的观点考虑,优选以制备在最大厚度可能脑切片中,为了提高识别被完全包含单个区段内染色的神经元的概率,该方法是从由高工作距离技术的角度有限-magnification显微镜物镜。我们在这里报告的协议使用在小鼠脑切片的高尔基体考克斯方法,其是在500米微米厚的切割染色的神经元,并使用配有高分辨率30X 1.05 NA硅氧烷直立显微镜遍及这些区段的深度可视化的神经元油浸物镜,其具有800μm的工作距离。我们还报告这个协议可用于复染的表面的两个有用的变体安装的脑切片用甲酚紫染色尼斯尔,或以切片和最后的处理之前,冻结长期储存整个大脑。的主要协议和它的两个变体产生染色的厚的脑切片,在整个这充分神经元的树突树和枝晶棘可以可靠地可视化和量化。

Introduction

单个神经元的组织样本中的可视化允许的神经元形态特征的原位分析,已显著提高了我们的大脑的理解,以及如何可以通过内源性疾病或外生环境因素的影响。高尔基-考克斯染色方法是在大脑中的神经元染色的随机样本的具有成本效益的,相对简单的装置。首先通过高尔基1在19世纪开发并由考克斯2改性,研究人员已经进一步改进这种技术多年来,以产生清晰,染色的神经元可被用于可视化和量化两者树突树形态和棘密度3,4 5,6,7,8,9

对于染色的神经元的脑切片中的可视化的一个主要技术考虑是最大的切片厚度,这是由可用高倍率/高分辨率显微镜物镜的工作距离的限制。在60共同油浸物镜 – 100X范围上提供优异的分辨率,但他们的工作距离是通常不超过200微米的更大的限制。在200微米范围内切脑切片可能是足够的可视化可以被包含在此切片厚度内的某些神经元类型,在大脑皮质10,11,12,在的CA1区锥体细胞的浅层示例锥体神经元海马13,14,和颗粒细胞在海马15的齿状脑回。相对较长的神经元树突树,如大脑皮层的深层内锥体神经元,对于鼠标可以从细胞体16延伸大于800μm,提供了更大的挑战,因为大脑将需要在一个完美的角度被分段以包含整个树突树在200倍微米的切片。这甚至可能不是可行的,如果枝晶或任何其分支在延髓或尾方向延伸。虽然可以通过跟踪在多个相邻的脑切片中的神经元,以解决此限制,这种方法引入了在准确对准部分用于跟踪17显著的技术挑战。一个更实际的方法是可视化包含被以更大的厚度切脑切片内整个神经元。

我们在这里报告的技术染色400元以内 – 使用高尔基 – 考克斯方法小鼠的500微米厚的脑切片,并以可视化的MOrphology使用具有800微米的工作距离的高分辨率硅油浸物镜。我们描述了高尔基体考克斯浸渍和处理协议从最引用的现代协议之一在文献6改性。我们的与厚的脑切片方法提供了增加的标识被完全包含在节中的任何类型的神经元的概率的优点。除了主协议中,我们还提供独特的优点本两个变化:(1)高尔基体考克斯染色具有安装部分的表面上的甲酚紫染液中,为了限定脑区的边界,并确定的层大脑皮层,和(2)高尔基体考克斯染色与之前切片和最后的处理浸渍整个大脑的长期存储的中间冷冻步骤。

Protocol

成年雌性CD1系小鼠在本研究中使用。类似的染色可以在不同的年龄段使用两种性别来完成。实验动物照顾根据原则和加拿大动物保护协会的指导方针,以及实验方案经圭尔夫大学动物保护委员会的大学。 1.高尔基考克斯染色 脑的高尔基-考克斯浸渍 由重铬酸钾和铬酸钾成高品质的水分别溶解使1%的高尔基体考克斯溶液(W / V)的重铬酸钾,0.8%(W /…

Representative Results

此高尔基体考克斯染色方案和它的两个描述可选的变体可以被采用以400个内可视化的单个神经元 – 500微米厚的脑切片。使用10X物镜和在Z轴5层微米的步骤捕获的二维Z-突起的代表性图像的蒙太奇显示在图1:A1 – C1为冠状脑切片的大面积,其包括前扣带回皮层区域1和次级运动皮层18。切片在500微米切割。需要注意的是,其包括甲酚紫染色的协议?…

Discussion

我们在这里介绍一个高尔基考克斯染色协议了两个有用的变种沿着厚的脑切片中神经元的可视化。正如代表结果所示,使用具有长800μm的工作距离的高分辨率目标的允许整个神经元在整个500μm的切割脑切片的深度可靠可视化。比较厚的脑切片的这项研究增加了任何类型的神经元染色完全包含切片,这是长而复杂的顶端树突树锥体神经元是特别重要内的概率。例如,在啮齿动物的脑中的冠状切片,?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作是由一个发现格兰特CDCB从自然科学和加拿大(NSERC)工程研究理事会,加拿大创新基金会(CFI项目编号30381),约翰·R·埃文斯领导基金研究基础设施补助金CDCB,并支持发现格兰特NJM从NSERC。 ELL是由安大略研究生奖学金和安大略兽医学院的奖学金OVC圭尔夫大学的支持。 CDS是由NSERC本科生助研支持。 ALM是由NSERC亚历山大·格雷厄姆·贝尔奖学金和安大略兽医学院在圭尔夫大学的奖学金OVC支持。

Materials

potassium dichromate Fisher Scientific P188-100 Hazardous
potassium chromate Fisher Scientific P220-100 Hazardous
mercuric chloride Fisher Scientific S25423 Hazardous
Whatman grade 1 filter paper Fisher Scientific 1001-185
isoflurane Pharmaceutical Partners of Canada CP0406V2
20 mL scintillation vial Fisher Scientific 03-337-4
sucrose Bioshop Canada SUC700.1
sodium phosphate monobasic Sigma Aldrich S5011-500G
sodium phosphate dibasic Sigma Aldrich S9390-500G
50 mL conical tube Fisher Scientific 12-565-271
isopentane Fisher Scientific AC126470010 also known as 2-methylbutane. Hazardous
agar Sigma Aldrich A1296-100G
small weigh dish Fisher Scientific 02-202-100
vibratome Leica VT1000 S
6 well tissue culture plates Fisher Scientific 08-772-1b
mesh bottom tissue culture inserts Fisher Scientific 07-200-214
paraformadelhyde, 16% Electron Microscope Sciences 15710-S Hazardous
ammonium hydroxide Fisher Scientific A669S-500 Hazardous
Kodak Fixative A Sigma Aldrich P7542
superfrost plus slides Fisher Scientific 12-550-15
CitroSolv clearing agent Fisher Scientific 22-143-975
anhydrous ethyl alcohol Commercial Alcohols N/A
cresyl violet Sigma Aldrich C1791
permount Fisher Scientific SP15-100
upright microscope Olympus BX53 model
colour camera, 12 bit MBF Biosciences DV-47d QImaging part 01-MBF-2000R-F-CLR-12
three-dimensional motorized microscope stage, controller and enoders MBF Biosciences N/A Supplied and integrated with microscope by MBF Biosciences
4x microscope objective Olympus 4x 0.16 N.A. UplanSApo
10x microscope objective Olympus 10x 0.3 N.A. UPlan FL N 
30x microscope objective Olympus 30x 1.05 N.A. UPlanSApo 
60x microscope objective Olympus 60x 1.42 N.A. PlanAPO N
silicone immersion oil Olympus Z-81114
Neurolucida software MBF Biosciences Version 10
ImageJ software U. S. National Institutes of Health Current version With the OME Bio-Formats plugin installed
Photoshop software Adobe version CS6

References

  1. Golgi, C. Sulla struttura della sostanza grigia del cervello. Gazzetta Medica Italiana. Lombardia. 33, 244-246 (1873).
  2. Cox, W. H. Imprägnation des centralen Nervensystems mit Quecksilbersalzen. Archiv f. mikrosk. Anat. 37, 16-21 (1891).
  3. Zaqout, S., Kaindl, A. M. Golgi-Cox Staining Step by Step. Front Neuroanat. 10, 38 (2016).
  4. Levine, N. D., et al. Advances in thin tissue Golgi-Cox impregnation: fast, reliable methods for multi-assay analyses in rodent and non-human primate brain. J Neurosci Methods. 213 (2), 214-227 (2013).
  5. Ranjan, A., Mallick, B. N. A modified method for consistent and reliable Golgi-Cox staining in significantly reduced time. Front Neurosci. 1, 157 (2010).
  6. Gibb, R., Kolb, B. A method for vibratome sectioning of Golgi-Cox stained whole rat brain. J Neurosci Methods. 79 (1), 1-4 (1998).
  7. Friedland, D. R., Los, J. G., Ryugo, D. K. A modified Golgi staining protocol for use in the human brain stem and cerebellum. J Neurosci Methods. 150 (1), 90-95 (2006).
  8. Narayanan, S. N., et al. Appraisal of the effect of brain impregnation duration on neuronal staining and morphology in a modified Golgi-Cox method. J Neurosci Methods. 235, 193-207 (2014).
  9. Das, G., Reuhl, K., Zhou, R. The Golgi-Cox method. Methods Mol Biol. 1018, 313-321 (2013).
  10. Sutherland, R., Gibb, R., Kolb, B. The hippocampus makes a significant contribution to experience-dependent neocortical plasticity. Behav Brain Res. 214 (1), 121-124 (2010).
  11. Hamilton, G. F., Whitcher, L. T., Klintsova, A. Y. Postnatal binge-like alcohol exposure decreases dendritic complexity while increasing the density of mature spines in mPFC Layer II/III pyramidal neurons. Synapse. 64 (2), 127-135 (2010).
  12. Nashed, M. G., Seidlitz, E. P., Frey, B. N., Singh, G. Depressive-like behaviours and decreased dendritic branching in the medial prefrontal cortex of mice with tumors: A novel validated model of cancer-induced depression. Behav Brain Res. 294, 25-35 (2015).
  13. Frauenknecht, K., et al. Mice with experimental antiphospholipid syndrome display hippocampal dysfunction and a reduction of dendritic complexity in hippocampal CA1 neurones. Neuropathol Appl Neurobiol. 41 (5), 657-671 (2015).
  14. Camacho-Abrego, I., et al. Rearrangement of the dendritic morphology of the neurons from prefrontal cortex and hippocampus after subthalamic lesion in Sprague-Dawley rats. Synapse. 68 (3), 114-126 (2014).
  15. Redila, V. A., Christie, B. R. Exercise-induced changes in dendritic structure and complexity in the adult hippocampal dentate gyrus. Neuroscience. 137 (4), 1299-1307 (2006).
  16. Bailey, C. D., Alves, N. C., Nashmi, R., De Biasi, M., Lambe, E. K. Nicotinic alpha5 subunits drive developmental changes in the activation and morphology of prefrontal cortex layer VI neurons. Biol Psychiatry. 71 (2), 120-128 (2012).
  17. Lytton, W. W. . From computer to brain : foundations of computational neuroscience. , (2002).
  18. Paxinos, G., Franklin, K. B. J. . The mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2001).
  19. Ha, H. A modified Golgi-Cox method with counterstain for the study of synapses. Anat Rec. 155 (1), 59-64 (1966).
  20. Swanson, L. W. The locus coeruleus: a cytoarchitectonic, Golgi and immunohistochemical study in the albino rat. Brain Res. 110 (1), 39-56 (1976).
  21. Pilati, N., Barker, M., Panteleimonitis, S., Donga, R., Hamann, M. A rapid method combining Golgi and Nissl staining to study neuronal morphology and cytoarchitecture. J Histochem Cytochem. 56 (6), 539-550 (2008).

Play Video

Cite This Article
Louth, E. L., Sutton, C. D., Mendell, A. L., MacLusky, N. J., Bailey, C. D. Imaging Neurons within Thick Brain Sections Using the Golgi-Cox Method. J. Vis. Exp. (122), e55358, doi:10.3791/55358 (2017).

View Video