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Methodenartikel

Optische Cross-sectional Muskel Bereich Bestimmung von Drosophila Melanogaster Erwachsenen indirekten Flugmuskeln

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DOI:

10.3791/56179

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31. März 2018

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir berichten über eine Methode, um Muskelgebiet, zu quantifizieren, ist eine indirekte Methode Muskelmasse bei Drosophila Erwachsenen bestimmen. Wir demonstrieren die Anwendung unserer Methode durch die Analyse des indirekten Flugs in einem Drosophila -Modell myotonische Dystrophie Krankheit Muskeln.

Zusammenfassung

Muskelmasse zu verlieren, ist bekannt als Muskelatrophie, einen gemeinsamen Phänotyp in Drosophila -Modellen der neuromuskulären Erkrankungen. Wir haben die indirekten Flugmuskeln (Schnittstellenmodule) fliegen, speziell der dorsal-Längsmuskeln (DLM), als die experimentelle gegen die verwendet, die atrophische Phänotyp durch unterschiedliche genetische Ursachen herbeigeführt. In diesem Protokoll beschreiben wir fliegen Thorax Muskeln für halb dünn schneiden einbetten, das einen guten Kontrast zwischen Muskel und das umgebende Gewebe zu erhalten und das optische Mikroskopbilder für halbautomatische Erfassung von quantifizierbaren Daten verarbeiten und Analyse. Wir beschreiben drei spezifische Anwendungen der methodischen Pipeline. Zunächst zeigen wir, wie die Methode angewendet werden kann, um Muskeldegeneration in einem myotonische Dystrophie Fly Modell zu quantifizieren; Zweitens helfen Messung der Muskel Querschnittsfläche, um Gene zu identifizieren, die entweder zu fördern oder zu, Muskelatrophie und/oder Muskeldegeneration verhindern; Drittens kann dieses Protokoll angewendet werden, um festzustellen, ob eine Kandidatenverbindung in der Lage, einen bestimmten atrophischen Phänotyp, induziert durch eine ursächliche Mutation wesentlich zu ändern istoder durch ein Umwelt-Trigger.

Einleitung

Der Thorax der Fruchtfliege enthält zwei verschiedene Klassen von Flugmuskeln, die funktionell, physiologisch und anatomisch unterscheiden. Diese Muskeln sind: die indirekten Flugmuskeln (IFM), die von dorsal längs (DLM) und dorsal-Ventral (DVM) Muskeln (Abbildung 1) und die synchrone Flug bestehen Steuern Muskeln1,2. Diese Muskeln erzeugen zusammen die erhöhte mechanische Leistung für Flug benötigt. Die Größe, Verteilung und Rostro-kaudalen Disposition der die Schnittstellenmodule ermöglichen eine einfache Orientierung für transversale Stationspunkte3 (Abbildun....

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Protokoll

(1) Fixierung und Harz einbetten

  1. Die fliegen mit Kohlendioxid (CO2) oder via Hypothermie mit einem Eisblock zu betäuben. Verwenden Sie einen sezierenden Mikroskop (mit geringer Vergrößerung zu sehen, die ganze Fliege) und Schere um zu entfernen, die Beine, Flügel, Kopf und terminal Teil des Abdomens, das Eindringen der Fixativ zu erleichtern. Schonung der Kadaver ist erforderlich bei diesem Schritt um die Verformung des Brustkorbs zu vermeiden.
    Hinweis: Starten Sie mit mindestens 12 fliegen pro Genotyp um eine ausreichende Anzahl von richtig verarbeitete Individuen am Ende des Verfahrens.
  2. Übertragen Sie die Kadaver auf eine 1,5 mL-Tub....

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Ergebnisse

Um zu bestimmen ob die Überexpression von MblC oder die Verwaltung von Abp1 keine Wirkung in der atrophischen Phänotyp des Modells myotonische Dystrophie fliegen hatte konzentrierten wir uns auf die DLMs, die Schnittstellenmodule (Abbildung 1) gehören. Wir festgestellt, dass das Modell fliegt die express 250 nicht-kodierenden CTG Wiederholungen in der Muskulatur, angetrieben durch den Projektträger Myosin Heavy Chain (Mhc),-Gal4, hatte eine Ermäßigun.......

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Diskussion

Es hat sich gezeigt, dass Drosophila Melanogaster eine nützliche Modell zur menschlichen neuromuskulären Erkrankungen7,10,11, einschließlich myotonische Dystrophien, charakterisiert durch das Auftreten von Muskelatrophie. Das Protokoll hier vorgestellten ist ein nützliches Instrument zur Quantifizierung der Muskeldegeneration durch das auftreten oder Fortschreiten einer bestimmten Krankheit in einem Fly Modell verursach.......

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Offenlegungen

Keine Interessenkonflikte erklärt.

Danksagungen

Die Autoren möchten Mitglieder der translationalen Genomik-Gruppe und Kathryn J Hanson für die Rückmeldung und die Verbesserungen auf dieses Protokoll zu danken. Dieses Projekt erfolgte mit Forschungsstipendium SAF2015-64500-R, die europäischen Fonds für regionale Entwicklung, verliehen durch das Ministerio de Economia y Competitividad R.A umfasst.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Image-J SoftwareNational Institutes of Healthhttps://imagej.nih.gov/ij/
UltramikrotomLeicaLeica UC6
MikroskopLeicaLeica MZ6Hellfeldtechnik.
RasierklingenElektronenmikroskopie Wissenschaften71970Es gibt mehrere alternative Anbieter.
SchereWorld Precision World14003Es gibt mehrere alternative Anbieter.
EinbettformenElektronenmikroskopie Wissenschaften70900Es gibt mehrere alternative Anbieter.
GlutaraldehydFluka (Sigma)49624Giftig.
OsO4Polyscience0972AExtrem giftig.
PropylenoxidSigma Aldrich82320-250MLExtrem giftig.
Harz (Durcupan)Sigma Aldrich44611-44614Karzinogen, wenn es nicht polymerisiert ist.
ToluidinblauPanreac251176Giftig.
Eindeckmittel (DPX)Sigma Aldrich44581Gefährlich.
ParaformaldehydSigma AldrichP6148-500Ggesundheitsschädlich.
Na2HPO4Panreac1225070,2 M Verdünnung.
NaH2PO4Panreac1216770,2 M Verdünnung.
BoraxPanreac3052Giftig.

Referenzen

  1. Fernandes, J., Bate, M., Vijayraghavan, K. Development of the indirect flight muscles of Drosophila. Development. 113, 67-77 (1991).
  2. Fernandes, J. J., Keshishian, H. Patterning the dorsal longitudinal flight muscles (DLM) of Drosophila: ins....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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