Summary
כאן, אנו מציגים פרוטוקול הוכחת כמודל הלם hemorrhagic החזירים המשתמשת סגר אבי העורקים כגשר סופית טיפול בטראומה. מודל זה כולל יישום בדיקות מגוון רחב של אסטרטגיות טיפוליות כירורגיות תרופתי.
Abstract
דימום נשאר הגורם המוביל של מקרי מוות למניעה בטראומה. Endovascular ניהול של פלג הגוף העליון שאינה דחוסה דימום כבר בחוד החנית של טראומה טיפול בשנים האחרונות. מאז סגר אבי העורקים מלאה מציג חששות, הרעיון של חלקי סגר אבי העורקים צבר של תשומת לב גוברת. כאן, אנו מציגים מודל בעלי חיים גדולים של הלם hemorrhagic כדי לחקור את ההשפעות של קטטר סגר הרומן בלון אבי העורקים חלקית ולהשוות אותם עם קטטר זה עובד על העקרונות של סגר מוחלט של אבי העורקים. החזירים הם מרדימים מספקים על מנת לנהל מבוקרת בנפח קבוע דימום ו מנוטרים פרמטרי והמודינמיקה ופיזיולוגיים. בעקבות דימום, אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים מוכנס, מנופח באבי העורקים supraceliac עבור 60 דקות, במהלכן החיות מקבלים החייאה דם כמו 20% נפח הדם הכולל (TBV). בעקבות בלון דפלציה, החיות מנוטרים באווירה לטיפול נמרץ במשך 4 שעות, במהלכן הם מקבלים vasopressors ומטפלים נוזלים כנדרש. חסימה חלקית בלון אבי העורקים הפגינו שיפור דיסטלי רשע עורקי לחצים (מפות) בתקופת האינפלציה בלון, ירד סמנים של איסכמיה, ירד החייאה נוזל ושימוש vasopressor עוצמה. כמו חזיר פיזיולוגיה ותגובות homeostatic בעקבות דימום היו מתועדים היטב הם כאלה בבני אדם, חזיר hemorrhagic הלם מודל ניתן לבחון אסטרטגיות טיפול שונים. בנוסף מטפלים דימום, אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים הפך פופולרי על התפקיד שמילאו לדום לב וכלי ניתוח, בסיכון גבוה בחירה ניתוחים אחרים.
Introduction
דימום ממשיכה להיות הגורם הדומיננטי של מקרי מוות למניעה בקרב חולים שעברו אירועים טראומטיים, הנהלת חשבונות עבור 90% של מקרי מוות הקשורים לטראומה בהגדרת צבאי ו- 40% של מקרי מוות פוסט טראומטית בקרב האוכלוסייה האזרחית של1, 2. למרות לחץ ישיר יכול להתייחס דימום דחוסה, דימום שאינה דחוסה פלג הגוף העליון נשאר קשה לטיפול, יכול להיות קטלני ללא שליטה hemostatic בקש. הגישה ההיסטורית של ניקור חזה resuscitative או פתיחת בטן עם אבי העורקים קרוס-מחבר חובק למעקה הוכיח את עצמו מאוד פולשנית3,4. התערבות זו דורש גם באלגוריתם בחירה מורכב כדי לקבוע את מועמדותם של חולים שעברו טראומה עלבונות5.
בשנים האחרונות, חלה תחייתו של עניין בגישה שתואר לעיל — resuscitative endovascular סגר בלון של אבי העורקים (REBOA)6,7,8. למרות REBOA העניקו לו היתרונות הישרדות לטווח קצר של דימום, סגר מוחלט ממושך של אבי העורקים במהלך בלון האינפלציה מהווה חששות הכוללים סוף בלתי הפיך-איבר איסכמיה9,10. בניסיון להתגבר על תחלואה פוטנציאלית זו, הם להיות המציאו endovascular חלופי אסטרטגיות לניהול דימום. אסטרטגיה אחת כזו שראתה תשומת לב גוברת הוא סגר חלקית אבי העורקים11,12. הרעיון של הבלון אבי העורקים חלקית סגר מעניק את זלוף דיסטלי לאתר של סגר, משופרת הפיזיולוגיות מפות אבי העורקים הפרוקסימלית ו צמצום afterload הדרגתית בעקבות דפלציה בלון את כלי הדם מיטות. אלה שינויים בפרמטרים הם השינויים הרצויים מאפיינים פיזיולוגיים של חיה מדמם. לפני התרגום של שיטה זו על בני אדם, להשלים, חלקית אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים נבדקו בכבדות החזירים דגמים של הלם hemorrhagic11,12,13.
החזירים השתמשו במחקרים פרוגרמה הלם hemorrhagic במשך שנים רבות. רוב של הבנת הפתופיזיולוגיה של הלם hemorrhagic הנוכחי נגזר מחקרים נעזרו מודלים בבעלי חיים, כולל החזירים. שלהם פיזיולוגיה ותגובות homeostatic בסביבה של דלדול פיפטות אמצעי האחסון הבאים לדימום מוחי, במיוחד אלה הנוגעים תגובות קרישת דם, לב וכלי דם דם, היו מתועדים היטב, כמו אלה בני14. החזירים מודלים של הלם hemorrhagic גם לספק הזדמנויות לחקור אסטרטגיות טיפול הלם hemorrhagic ופציעות טראומטיות אחרות.
במחקר זה, נדגים מודל ריאליסטי קלינית של הלם hemorrhagic ב החזירים כדי להעריך את אסטרטגיות טיפול endovascular, לרבות חסימה מלאה או חלקית בלון אבי העורקים. אנו משערים כי חסימה חלקית של אבי העורקים גורמת כדאי הפיזיולוגיות, מעבדה פרופיל בהשוואה סגר מוחלט של אבי העורקים של החזירים שעברו דימום תת-בנפח קבוע מבוקרת.
כיוונו כדי להשוות את ההשפעות הפיזיולוגיות של סגר אבי העורקים חלקית לטיפול הלם hemorrhagic במודל של החזירים. סגר אבי העורקים חלקי הושג באמצעות סגר בלון אבי העורקים סלקטיבי של טראומה (SABOT) קטטר (איור 1). הקטטר SABOT היא מערכת שני-בלון המאפשרת זרימת דם אינטרה-luminal, ובכך מספק זרם אבי העורקים חלקית כדי דיסטלי כדי סגר המיטות כלי הדם. סגר אבי העורקים מלאה הושג באמצעות קטטר חד-בלון סגר אבי העורקים (למשל,CODA) (איור 1). קבוצות הטיפול חולקו באופן אקראי לעבור סגר אבי העורקים resuscitative עם מלאה או עם חלקי אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים (n = 2/קבוצה).
הצעדים העיקריים של המודל כוללים את תנאי הגיוס של צנרור והרדמה, שמירה על הרדמה, מכשור, דימום TBV 35% (סה כ 20 דקות; חצי מעל הראשון 7 דקות, וחצי מעל שאר 13 דקות), בלון ותיני סגר, החייאה דם (60 דקות של סגר; 20% החייאה דם במהלך 20 דקות האחרונות של סגר), טיפול קריטיים ניטור (240 דקות) עם תצפית והמודינמיקה, המתת חסד עם רקמת קציר. איור 2 מדגים את המודל מנוצל בניסוי זה.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
בעריכת תחקירים באמצעות בעלי חיים, החוקרים דבקה לתקנות חוק רווחת בעלי חיים, חוקים פדרליים אחרים הנוגעים חיות וניסויים המערבות בעלי חיים ואת העקרונות שנקבעו בגירסה הנוכחית של המדריך לשימוש טיפול של חיות מעבדה של המועצה הלאומית למחקר. פרוטוקול מחקר זה אושרה על ידי אוניברסיטת מישיגן אכפת חיה מוסדיים ועל שימוש הוועדה (IACUC). הניסויים נערכו בהתאם כל תקנות והנחיות בנושא רווחת בעלי חיים במחקר.
1. בעלי חיים מבחר, להתאקלמות
- שימוש הנשי יורקשייר-צמחי תרבות מסורתיים crossbred החזירים (n = 2/קבוצה, טווח גילאים: 5-6 חודשים, משקל טווח: 40-60 ק ג) לניסוי.
- לאחר הגעתם במתקן, בית החיות בנפרד בכלובים אבל לוודא כי יש בשפע האינטראקציה בין החיות שכנות כלובים.
- בית החיות לפחות 5 d כך הם הם לגמרי שאמבטיה לפני ביצוע הניסוי. במהלך תקופה זו, להאכיל את בעלי החיים עם תזונה רגילה ולבחון אותם כדי לוודא שהם במצב טוב לבריאות.
- לשמור את בעלי החיים לאכול ולשתות אחרי חצות לפני הניתוח כדי למנוע את הסיכון של השאיפה במהלך צנרור.
2. והרדמה צנרור
- לסמם את החיה עם 5 מ"ג/ק"ג tiletamine/zolazepam נתן intramuscularly (IM) לתוך שריר העכוז בעוד החיה נמצאת באזור מגורים. במקביל, לתת אטרופין 0.05 מ"ג/ק"ג IM כסוכן אנטיכולינרגיות כדי למזער את הפרשות במהלך צנרור.
- להעביר את החיה מן האזור דיור לחדר הניתוח ולמקם אותו במצב פרקדן על שולחן הניתוחים.
- השתמש איזופלוריין בשאיפה (2% - 5%) כדי לגרום הרדמה. השתמש 21% חמצן (0.4 L/min) מעורבת עם האוויר (4 L/דקה) כמו גזים הספק לספק גז הרדמה נשאפים.
- בזמן להיות מושגת העומק הרצוי של הרדמה, למקם 20 גרם היקפיים תוך ורידי (IV) צנתר בווריד האוזן המנהל הרביעי של נוזלים, תרופות או הרדמה, לפי הצורך.
- כמו החיה רוכשת את העומק הרצוי של הרדמה, לשטוף בעדינות את כל פסולת, פסולת מן האתרים פעיל, כולל את האזורים מפשעי ישר ושמאלה, השמאלי והימני של הצוואר, והבטן. השתמש קוצץ שיער חשמלי כדי להסיר את כל השיער מן האתרים פעיל. להעריך את עומק ההרדמה צובט את האיבר האחוריות של בעל החיים, התבוננות תגובתה (חוסר).
- אבטח את החיה לשולחן הניתוחים באמצעות חבלים כותנה כירורגי סביב כל הגפיים, לפני צנרור.
- השתמש חתיכת חבל כותנה כירורגי קצר כדי להרים את הלסת התחתונה יחד עם הלשון כדי לפתוח את פתח הפה. השתמש עוד פיסת צמר גפן חבל למשוך את הלסת העליונה כלפי מטה. למקרה הרפיה הלסת אינה מספיקה או שפתות הקול מכווצות, להעלות את רמת איזופלוריין בקצרה, חזור על שלב זה.
- השתמש היד האחרת לאחוז בידית של laryngoscope המקובלת מצויד עם 12 בבלייד מילר מואר. עוברים את קצה הלהב מילר ללוע התחתון. תרגלו בזהירות כדי לשמר את השיניים ואת האוראלית תוך תמרון הלהב בחלל הפה. באיטיות, את קצה הלהב עד הגרון ניתן לאבחן בבירור ולהתקדם מעבר לים בגרון. בעזרת כף היד, הרם את הלהב, מעליות האפיגלוטיס, כך מתקבל תצוגה ברורה של הגרון.
- לפני 6.5 Fr או 7 Fr אנדוטרכאליות ברכבת התחתית (ETT) עם stylet בין שפתות הקול לתוך קנה הנשימה. במקרה של עווית בית הקול עקב גירוי ברירית האף, לידוקאין 2% למרוח את שפתות הקול ואת השדה glosso-epiglottic החציוני, להעריך מחדש.
- הסר את stylet לפני במלואו לקידום הצינור למטה קנה הנשימה תוך שמירה על אחיזה חזקה על המרקע. לנפח את השרוול בלון עם 10-15 ס מ3 אוויר כדי למנוע כל דליפת אוויר סביב שהקפל ושאיפה של תוכן קיבה.
- לחבר את ETT שמכונת ההנשמה דרך פילטר נשימה (מחליף חום ולחות). אבטח את ETT על ידי קשירת בקלטת כותנה סביב החוטם (הלסת העליונה).
- במקרה צנרור שנכשלו, תן את oxygenate בעלי חיים ותאוורר בקצרה לפני כל ניסיונות נוספים.
- להבטיח את ההגדרות המתאימות שמכונת ההנשמה: תערובת של 21% חמצן ואוויר; נפח ענק של 7-10 מ"ל/ק"ג משקל גוף; קצב הנשימה של 10-15 נשימות לדקה כדי לשמור על קצה-גאות pCO2 מ מ כספית ± 2 מ מ כספית 40.
- במקום אוקסימטר על האוזן, הלשון, או זנב כדי למדוד את חמצון הדם ואת קצב הלב. מראש בדיקה רקטלית דרך כגדולים אנאלי לניטור רציף טמפרטורה.
הערה: הטמפרטורה של החיה הוא להישמר בין 38 ° C עד 40 מעלות צלסיוס באמצעות שולחן הניתוחים מוסדר טמפרטורה מחוממת, השטיח חום, או חימום שמיכה. - השתמש איזופלוריין (1% - 3%) לשם קיום הרדמה לאורך כל ההליך. במהלך תקופה זו, להעריך את עומק הרדמה על ידי בדיקת רפלקסים כאב באמצעות צביטה הגפיים האחוריות. בנוסף, לנטר את קצב הנשימה על ההנשמה כדי לראות אם הוא תואם את קצב ההנשמה מתוכנתים.
הערה: נשימה יתר מציינת את עומק לקוי של הרדמה.
3. באתר ניתוחי עיקור (הכנה, כורכת)
- הכינו את האתרים החתך, כמו גם על שטח נרחב הסובבים אותם ההליכים ניסיוני. האתרים החתך לניסוי כוללים אזורים מפשעי דו צדדיים, בצוואר דו צדדיים בבטן התחתונה. לחטא את האתרים פעיל על-ידי לקרצף אותם עם כמות שופע של povidone יוד במשך 5 דקות.
- להשתמש גזה יבשה, סטרילי כדי להסיר את הסבון povidone יוד מן העור.
- במקום מגבות כירורגי סטרילי סביב האתרים פעיל כדי לשמר את השדות כירורגי סטרילי. להשתמש מלקחיים מגבת כדי לאבטח את המגבות במקום. מכסים את החיה עם תלוי סטרילי כדי למנוע כל זיהום של האתרים כירורגי.
4. תעלות
-
עורק הירך ואת הווריד תעלות
הערה: מבוצע על תעלות של עורק, הירך הימני, עורק הירך השמאלי, וריד הירך השמאלית. עורק הירך הנכון הוא לצינוריות באמצעות נדן 14 Fr ההכנסה להכנסה קטטר סגר הבלון אבי העורקים. עורק הירך השמאלי הוא לצינוריות באמצעות צנתר Fr 5 לניטור מפה דיסטלי. קטטר Fr 8 מונחת בווריד הירך השמאלי להסגתם המינהל ודם נוזל. הטכניקה Seldinger פתוח הוא מועסק כדי לגשת לכלי הדם cannulations כל15.- לפני ביצוע החתך, להעריך את עומק הרדמה על ידי צובט את האיבר האחוריות של החיה.
- באמצעות אזמל מצויד עם להב כירורגי סטרילי מספר 10, לעשות חתך אנכי 8 ס מ המתאים אשכים 4 ס מ מעל ו- 4 ס מ מתחת הקמט נכון במפשעה.
- לנתח דרך עורית שריר ולהשתמש רטרקטורים Weitlaner שני להשגת חשיפה נכונה. להשתמש את המדחק צבאית של הכחשה נוספת במידת הצורך.
- השתמש Mixter מאונכים מלקחיים electrocautery לנתח דרך רקמות החיבור עד נחשף בבירור הצרור נוירו-וסקולריים.
- בזהירות לנתח את העורק. לשמר את העצב, המהווה מבנה רוחבי ביותר.
- בזהירות לנתח את הווריד, הנמצא ביותר medially, הרחק העורק.
- להשיג שליטה הפרוקסימלית ואת הדיסטלי של העורק באמצעות קשרים משי 2-0.
- שימוש במחט introducer בזווית 20 גרם ניקוב העורק. להבטיח עמדה ראויה ב לומן כלי השיט על ידי התבוננות על פועמת דם זורם דרך הקצה השני של המחט.
- מראש של 0.35 לסיבוב משופעת ב guidewire דרך לומן של המחט בזווית.
- לשלוף את המחט מעל guidewire. ודא אין העברה של guidewire על-ידי החזקת את זה במקום.
- העבר מרחיב Fr 10 guidewire להתרחב הפתח בעורק. הסר את מרחיב Fr 10. הכנס נדן ההכנסה Fr 14 מעל guidewire.
- הסר בזהירות את מרחיב מהנדן הכניסה יחד עם guidewire, שומר את הצינורית בתוך העורק.
- ריקון נדן ההכנסה כדי להבטיח את מיקומו בתוך כלי לומן.
- הבטיחו לסוף המשפט מקום suture polyglactin 3-0.
- להשתמש בתפר ניילון 3-0 כדי לבצע סגר פועל זמנית של העור שמעליה.
- חזור על השלבים הנ ל תעלות עורק הירך השמאלי באמצעות צנתר Fr 5 (לא ראשוני). לבודד את וריד הירך השמאלי באופן דומה, נקרר אותו באמצעות קטטר 8 של Fr. להשתמש בתפר ניילון 3-0 כדי לבצע סגר פועל זמנית של העור שמעליה.
-
. העורק הראשי, תעלות עורק הצוואר
הערה: מבוצע על תעלות של דו-צדדי לורידים וריד הצוואר חיצוני, עורק תרדמני השמאלי. צנתר Fr 5 ימוקם את השמאלי עורק תרדמני לניטור מפה הפרוקסימלית ו של קטטר Fr 8 ב שמאלי חיצוני ומוחלף על גישה ורידי מרכזי נוספות עבור ניהול נוזלים, אינפוזיה vasopressor עוצמה. צנתר Fr 9 ימוקם ומוחלף על נכון חיצוני עבור צנתור עורק הריאה עם עורק הריאה (למשל, ברבור-גנץ) קטטר, בזמן בדיקה הזרימה בעורק הראש ממוקמת סביב העורק תרדמני ממש נפוץ עבור קצב הזרימה בעורק הראש ניטור. הגישה Seldinger משמש כדי לגשת לכלי הדם עבור כל cannulations.- באמצעות אזמל, פסיכולוגית, לבצע חתך אנכי 6 ס מ בערך 2 ס מ לרוחב האמצע בצד שמאל של הצוואר.
- השתמש electrocautery לנתח דרך עורית עד שריר שריר הצוואר (SCM) חשוף.
- רטרקטורים המקום Weitlaner על ההיבטים הפרוקסימלית ו דיסטלי של חתך הכחשה מלאה.
- לנתח לאורך הגבול הלטראלי של שריר SCM לחשוף ומוחלף חיצוני על שמאל.
- תעלות כלי יכולה להיות מושגת על ידי ביצוע שלבים 4.1.8 - 4.1.14. להוסיף, להוריד, מאובטחים הצנתר Fr 8 את תקחי.
- לחשיפה השמאלי נפוץ העורק הראשי, לנתח את הקצה המדיאלי של שריר SCM. במקום מפסק Weitlaner כדי לשפר את החשיפה.
- לנתח דרך רקמת החיבור longitudinally לאורך הגבול הלטראלי של חוליות הצוואר. לשמר את בלוטות התימוס אם הם הם נתקלו.
- חושפים את המשולש העורק, אשר מכיל את העורק הפנימי, ווריד הצוואר, התועה. ימשש את עורק תרדמני כדי לקבוע את המסלול שלו.
- בזהירות לנתח את עורק תרדמני מן הווריד של העצב.
- לבצע את תעלות העורק על ידי ביצוע שלבים 4.1.8 - 4.1.14. להוסיף, להוריד, ולאבטח צנתר Fr 5 בעורק כפי שתואר לעיל.
- חזור על שלבים 4.1. עבור ניתוח ובידוד של ממש חיצוני ומוחלף, נכון עורק תרדמני.
- במקום בדיקה זרימה העורק 4 מ מ סביב עורק תרדמני ממש. החל מתמר ג'ל בין החללית זרימת כלי הקיבול. של זרימה אופטימלי איתות, ללכוד.
- בעקבות 4.1.8-4.1.14 צעדים, נקרר ומוחלף על נכון חיצוני באמצעות נדן introducer Fr 9. ועצירה של מאובטחים הצנתר במקום. להשתמש בתפר ניילון 3-0 כדי לבצע סגר פועל זמנית של העור שמעליה.
5. הרשות הפלסטינית קטטר ההכנסה
- ריקון הנמל הזרקת הנמל צינתור, הנמל דיסטלי של הקטטר עם תמיסת מלח (NS) ולקשר אותם אל הצנרת מתמר. הנמל דיסטלי מיועדת כמו הנמל עורק הריאה (PA), בעוד הנמל proximal מיועדת כמו הנמל לחץ ורידי מרכזי (CVP).
- בדוק לעקיבה החפץ על המסך על-ידי העברת הצנתר. זה נעשה כדי לוודא כי הצנתר פועלת.
- מראש הרשות קטטר דרך השרוול סטרילי.
- באמצעות מזרק3 3 ס מ, לנפח את הבלון של הקטטר הרשות הפלסטינית עם יותר מ- 1.5 ס מ3 אוויר כדי לבדוק את האינפלציה. השטחת קצה הבלון כדי להוסיף את הצנתר נדן ההכנסה.
- הכנס את הצנתר הרשות הפלסטינית דרך נדן ההכנסה Fr 9. ברגע הקטטר הרשות הפלסטינית מוכנס לפחות 18 ס מ, לנפח את הבלון עם יותר מ- 1.5 ס מ3 של אוויר.
- לאט לאט לקדם הקטטר הרשות הפלסטינית, בדוק את המוניטור עבור הפרעות בקצב הלב במהלך ההוספה. במקרה של חריגה בפעילות חדרית בלוטת התריס, לנפח, השטחת קצה את הבלון כדי למנוע התקדמות. אם ההכנסה הופכת קשה בדרך כלשהי, הבלון צריך להיות מנוכה המחירים, הקטטר צריך להיות מההצעה והכנסת.
- לבחון את הצג כדי להעריך את המעבר מהפרוזדור הימני (RA) החדר הימני (RV) לרשות הפלסטינית כדי הלחץ טריז עורק הריאה (PWP).
- השטחת קצה הבלון ואשר עקבות הרשות הפלסטינית מחזירה לצג.
הערה: האורך המתאים של הקטטר מהאתר ההכנסה ומוחלף נכון חיצוני על הוא כ 45-55 ס מ. - חבר את הקצה של השרוול סטרילי נדן ההכנסה כדי להבטיח את המיקום של הצנתר בתוך הרשות הפלסטינית
- להתחבר היציאות ההכנסה של הקטטר הרשות היחידה הלכידה כדי להשיג את תפוקת הלב (CO) ורוויה של ורידים חמצן (סקאבו2).
- כיילו את הצנתר הרשות מערכת ניטור. באמצעות אורך הגוף משקל של החיה, התנהגות של כיול ויוו של הקטטר הרשות הפלסטינית ניטור המערכת לבעל החיים. השתמש גזים בדם ורידי כיול נוסף באמצעות רוויית החמצן ורמות המוגלובין.
6. cystostomy צינור השמה
- לבצע חתך בבטן התחתונה של 5 ס מ האמצע באמצעות אזמל להב 10.
- באמצעות electrocautery, לנתח דרך עורית, את linea alba. דמיינו כל שכבה במהלך ניתוח.
- Extracorporealize על שלפוחית השתן.
- עם שני דה-בייקי מלקחיים, לאחוז את שלפוחית השתן על פני השטח הגחון מן הפתחים ureteral.
- באמצעות electrocautery, לעשות חור קטן שלפוחית השתן, חשיפת לומן הפנימי.
- השתמש שאיבה כדי להסיר כל לשתן בתוך לומן שלפוחית השתן. ספוגים כירורגי יכול לשמש עבור כל זליגת בהיסח הדעת של שתן מחוץ לשלפוחית השתן.
- להשתמש בתפר פוליפרופילן 4-0 כדי לבצע סגר התיק הזמני-מחרוזת של שלפוחית השתן.
- המקום של צנתר פולי Fr 18 בתוך שלפוחית השתן לומן ולהשתמש מזרק3 10 ס מ כדי לנפח את הבלון. להתחבר שקית ניקוז השתן הקטטר פולי ואבטח אותו לצד של שולחן הניתוחים.
- לקשור את התפר פוליפרופילן 4-0 כדי לאבטח את צנתר פולי ב לומן שלפוחית השתן.
- להשתמש בתפר ניילון 3-0 כדי לבצע סגר פועל זמנית של העור שמעליה קיר הבטן.
7. מלאה או חלקית בלון אבי העורקים קטטר ההכנסה
- אקראי בעלי חיים כדי לקבל גם את מלאה או חלקית של אבי העורקים סגר קטטרים.
- הכנס של 0.035, 260 ס מ Amplatz Guidewire נוקשה דרך ההוספה Fr 14 נדן בעורק הירך נכון, ומדריך אותו לתוך העורקים supraceliac (Zone 1) באמצעות בדיקת אולטרה סאונד של אבי העורקים בבטן, בית החזה.
- הכנס את הצנתר סגר בלון מעל guidewire 1 אזור של אבי העורקים כדי לבצע את סגר בעקבות דימום.
- לאשר את המיקום הסופי של הקטטר סגר אבי העורקים בלון לתוך אזור 1 של אבי העורקים עם בדיקת אולטרה סאונד.
8. פוסט ניתוחית והמודינמיקה וניטור מעבדה
- ודא את החיבור של קטטרים פולשנית למערכת ניטור באמצעות צינורות, מתמרים, אבובים למסכים בגרימת. מערכות ניטור פולשני צריך להיות 'מאופסים' ברמה של הלב של בעל החיים כדי להבטיח ניטור מדויק.
- נתוני הרשומה הפיזיולוגיות לאורך כל הניסוי, כולל את הפרוקסימלית ואת המפה דיסטלי, קצב הלב (HR), CVP את, הדו חמצני, הלחץ הרשות הפלסטינית, סקאבו2, סוף-גאות CO2ו וטמפרטורת הגוף.
- הקלט משתנים אלה, כל 5 דקות במהלך שטף הדם, בלון האינפלציה שלב, גם כפי שכל 15 דקות במהלך שאר הניסוי.
- לאסוף דגימות דם בנקודות זמן 4: בסיסית (BL), שלאחר הלם (PS), לאחר החייאה (PR), ובסופו של דבר (E) של הניסוי. 10 מ"ל של דם נאסף לניתוח פלזמה והן בסרום בכל נקודה בזמן.
- לבצע דיגום גז (אסתי) בדם על ידי איסוף עד 1 מ"ל של דם במזרק אסתי. לבצע דגימה אסתי בכל אחד נקודות הזמן הנ ל, וגם בעת הצורך במהלך הניסוי. השתמש מנתח גז דם לניתוח.
הערה: כל מדגם צריך להיות מנותח בתוך 10 דקות של ציור בדם בגלל עיכובים יותר מ 10 דקות יכול להפחית את היעילות של תוצאות ה-16.
9. דימום
- לחשב את TBV.
TBV ב מ ל = משקל בסול × 0.06 + 0.77 - דימום 35% TBV באמצעות משאבת אוטומטית על פני תקופה של לפחות 20 הסר חצי מעל הראשונה 7 דקות, ואת החצי השני מעל הבא 13 דקות.
- לאסוף את הדם בתוך שקיות איסוף דם רגילה. לאחסן אותם ב 4 ° C, בציפייה עירוי בעתיד.
- אם המפה יורדת מתחת 30 מ מ כספית, לעצור את שטף הדם, לבטל את איזופלוריין, לנהל 50-100 מ"ל בולוסים של NS.
- הפעל מחדש את שטף הדם כאשר המפה חוזר אל 30 מ מ כספית.
10. אבי העורקים בלון סגר קטטר האינפלציה, החייאה דם
- מנפח את הצנתר סגר בלון ותיני עם 9-12 ס מ3 אוויר או עד עוד ירידה הבאות מפה דיסטלי שהאינפלציה בלון נוסף הוא ציין.
- הסר את החוט של הקטטר סגר בלון אבי העורקים חלקית כדי להקל על זרימת אבי העורקים הדיסטלי, תוך השארת אותו על הצנתר סגר מלא בלון אבי העורקים. לאשר את המיקום של הקטטר סגר אבי העורקים בלון 1 אזור באמצעות בדיקת אולטרה סאונד כדי לשלול את הקטטר ההעברה.
- מאובטחים הצנתר על העור באמצעות תפר ניילון של קטע 3-0.
- לאחר 40 דקות של סגר אבי העורקים, להחיות את החיה עם דם שווה בכרך ל- 20% של TBV דרך הקטטר וריד הירך השמאלי במשך 20 דקות באמצעות המשאבה אוטומטית. השתמש דם חם על עירוי, מיקוד יש חום של 40 מעלות צלזיוס.
- לאחר החייאה, השטחת קצה את הבלון מצטבר מעל 5 דקות.
- הסר את הצנתר סגר אבי העורקים בלון מהנדן ההכנסה Fr 14.
- נטר את ספיקת הדם מקרוב במהלך תקופה זו, נתנו את הסיכון לפציעות איסכמיה-פגיעה reperfusion עם תת המשויך הידוע.
11. טיפול קריטיים, התבוננות ושחזור
- להתבונן החיות במשך 4 שעות עם ניטור רציף של פרמטרים פיזיולוגיים והמעבדה שלהם.
- מספקים תחזוקה עירוי נוזלים (עירוי NS-50 מ ל/h).
- המטרה CVP של 6 מ מ כספית על ידי מתן 30 מ"ל/ק"ג בולוסים של NS ואחריו בולוסים 20 מ"ל/ק"ג כאשר CVP יורד מתחת המטרה. להעריך את התגובתיות נוזלים מדי שעה.
- יעד מפה של 60 מ מ כספית באמצעות אינפוזיה של נוראדרנלין (0.024 mg/ml).
- לשמור על הפיזיולוגיות לטמפרטורה של 38-40 ° C באמצעות שמיכת חימום.
- בסוף תקופת 4 שעות, המתת חסד החיות עם זריקת סודיום פנטוברביטל (100 מ ג/ק ג).
12. necropsy
- הסר כל קווים חיוניים וצינורות החיה.
- להכין מיכל עם קרח רגיל והצב אותה ליד שולחן הניתוחים להקפיא את רקמות איברים מיד לאחר הסרת מן הגוף.
- להשתמש באזמל לעשות חתך אנכי ארוך 6 ס מ לאורך הגבול השמאלי בחזה ובצלעות, לנתח דרך העור, הרקמות, השרירים pectoralis, costal הסחוסים. הזן את חלל בית החזה כדי לחשוף את הריאות והלב.
- הסר את קרום הלב מכל הלב על-ידי ביצוע חתך עם האזמל ולתפוס השיא של הלב באמצעות מלקחיים. השימוש באזמל לחתוך קטע 5 x 5 ס מ של הלב-השיא.
- להשתמש במספריים לחתוך קטע 5 x 5 ס מ של הריאה מן הגבול הקדמי של הבסיס של הריאה.
- להרחיב את החתך ניקור חזה לתוך הקו הקדמי האמצעי של הבטן, חשיפת הקרביים של הבטן.
- להשתמש מלקחיים כדי להחזיק את האונה השמאלית של הכבד לגזור מקטע 5 x 5 ס מ.
- חזור על התהליך אותו מקבלים דגימות של הטחול.
- השתמש יד ימין כדי ליצור חלון כדי להזין את מקבץ השמאלי כדי לתפוס את הכליה. לאחר parenchyma כליות היא גייסה, transect של עורק הכליה ווריד, שופכן. הסר את הקפסולה כליות.
- בעדינות לסחוט צואה מן קטע ארוך 5 ס מ של המעי הגס קטן, להשתמש במספריים לחתוך קטע ארוך 5 ס מ של המעי מ מצע המעי.
- השימוש את האזמל לחתוך קטע ארוך 5 ס מ של שריר הארבע ראשי של הירך.
- לעבד את הדוגמיות הללו עוד יותר על ידי חיתוך אותם למקטעים קטנים ניתן להניח צינורות microcentrifuge. הקפאה אלו דגימות רקמה על ידי הנחת הצינורות לתוך קרח יבש או חנקן נוזלי.
- השתמש 50 מ ל צינורות חרוט המכיל פתרון פורמלין כדי לתקן 3 ס מ, סבכות רקמה עבור הערכה היסטולוגית.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
פרמטרי והמודינמיקה ופיזיולוגיים:
המפה ירד מיד לאחר דימום (3A דמויות - 3D). במהלך שלב האינפלציה בלון, חיות בקבוצה סגר מוחלט חוו מפת proximal גבוה יותר לעומת בעלי החיים בקבוצה סגר חלקית (דמויות 3A ו- 3B). המפה דיסטלי הממוצע במהלך האינפלציה הבלון היה גבוה יותר בקבוצה סגר חלקית לעומת הקבוצה סגר מוחלט (מפה דיסטלי הממוצע, שלב האינפלציה בלון; חלקית: 31 ± 2.9 מ מ כספית, מלאה: 16.5 מ מ כספית ± 1.14; p > 0.05), המשקף את חלקי דיסטלי אבי העורקים הזרימה (דמויות 3C ו- 3D). החייאה הבאים, המפות לקרע, גדל בשתי הקבוצות וחזרו לקו הבסיס בעקבות של דפלציה בלון לאורך כל השלב לטיפול נמרץ (דמויות 3A - 3D).
כל בעלי החיים חוו רפלקס טכיקרדיה מיד אחרי שטף הדם, אשר עברה גידול מצטבר במהלך שלב האינפלציה בלון בשתי הקבוצות (איור 4A). בעקבות דפלציה הבלון, שעות היו גבוהות משמעותית לאורך כל השלב לטיפול נמרץ בקבוצה סגר מוחלט לעומת הקבוצה סגר חלקית, למרות ההפרש בין HR לא היה משמעותי סטטיסטית.
בעקבות שטף הדם, CVP ירד בשתי הקבוצות (איור 4B). זה עבר מגמה העולה בעקבות האינפלציה בלון. בעקבות דפלציה הבלון, הקבוצה סגר מוחלט הראו ירידה גדולה יותר ב- CVP לעומת הקבוצה סגר חלקית, אמנם לא שונה סטטיסטית. בעקבות החייאה נוספים בשלב טיפול קריטיים, לשחזר CVP לכיוון הבסיס בשתי הקבוצות. באופן דומה, המפקד ירד בעקבות דימום, גדל במהלך האינפלציה בלון, וחזר לקו הבסיס בעקבות בלון דפלציה של החייאה לשתי הקבוצות (איור 4C).
הזרימה בעורק הראש ירד בשתי הקבוצות מיד אחרי שטף הדם (איור 4D). בעקבות האינפלציה בלון, סגר מוחלט קבוצה והפגינו שיעור הזרימה בעורק הראש גבוה יותר לעומת הקבוצה סגר חלקית. בעקבות החייאה הבלון דפלציה, לשחזר קצב הזרימה בעורק הראש לכיוון הבסיס בשתי הקבוצות. עם זאת, לזרימה העורק היה נמוך בקבוצה סגר מוחלט בהשוואה לקבוצת סגר חלקית.
מעבדה פרמטרים:
אין הבדל ניכר בין רמת ה-pH ו לקטט בסיסית נרשמו בין הקבוצות. בעקבות האינפלציה בלון, החיות בשתי הקבוצות חוו ירידה ב- pH (איור 5A). נקודת השפל pH בקבוצה סגר מוחלט היה בעיקר נמוך מזה בקבוצה סגר חלקית (מלאה: 7.14 ± 0.01, חלקי: 7.32 ± 0.02, p = 0.1). רמת חומצת החלב היה גבוה באופן משמעותי לאורך כל בלון האינפלציה ואת היתרה של השלב לטיפול נמרץ בקבוצה סגר מוחלט (מלאה: 17.5 mmol ± 0.71, חלקי: 6.1 ± 0.28 mmol, p = 0.03) (איור 5B). ההפרש בין לקטט רמות ירד לאט לאט עד הרמות היו דומים בסוף השלב לטיפול נמרץ.
דרישות החייאה:
הדרישה נוזל הכולל חיות בקבוצה סגר מוחלט היה גבוה באופן משמעותי מאשר לבעלי החיים בקבוצה סגר חלקית (סה כ החייאה נוזלים נוספים לבעלי החיים בקבוצה סגר מוחלט: 47.5 ± 3.4 ס מ3/kg, סה כ החייאה נוזלים נוספים לבעלי החיים בקבוצה סגר חלקית: 3.7 ± 0.4 ס מ3/kg, p = 0.003) (איור 6A). באופן דומה, הדרישה נוראדרנלין בקבוצה סגר מוחלט היה גבוה באופן משמעותי מאשר בקבוצה סגר חלקית (מלאה: 289.7 ± 25.4 µg/kg, חלקי: 32 ± 13.8 µg/kg, p = 0.006) (איור 6B).
איור 1: אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים. סגר אבי העורקים חלקית (A) מושגת באמצעות סגר בלון אבי העורקים סלקטיבי של צנתור טראומה (SABOT), בעוד סגר אבי העורקים מלאה מושגת בעזרת הצנתר סגר מלא בלון אבי העורקים. קטטר סגר (ב') הבלון אבי העורקים חלקית היא מערכת דו-בלון המאפשרת זרימת דם אינטרה-luminal של מתן זרם אבי העורקים דיסטלי. סגר אבי העורקים מלאה מסופק באמצעות מערכת יחיד-בלון. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 2: פרוטוקול פציעה. פציעה המורכב דימום נפח הדם הכולל 35% ואחריו תקופת 1 h סגר בלון אבי העורקים. החייאה מבוצע עם דם מלא 20% מעל 20 דקות, לאחר 40 דקות של בלון סגר. החיות מנוטרים בשלב לטיפול נמרץ במשך 4 שעות בעקבות הדפלציה את הבלון. BL = הבסיס; נ. ב = הלם שלאחר; יחסי ציבור = התקופה שלאחר החייאה. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 3: והמודינמיקה בתגובה האינפלציה פציעה ובלון. לוחות אלה מציגות המידות פוסט ניתוחית של (A) pean צינתור עורקי הלחץ (מפה), (B) המפה proximal בתקופת האינפלציה בלון, (ג) את מפה דיסטלי, ואת (D) המפה דיסטלי במהלך הבלון האינפלציה. הנתונים מוצגים כמו הקבוצה מתכוונת ± השגיאה הסטנדרטית (SE). S = תקופת הלם (20 דקות); בלון = האינפלציה בלון (60 דקות); R = את ההחייאה (20 דקות); יחסי ציבור = את החייאה שלאחר תקופת/בלון דפלציה; E = סוף השלב פציעה (סיום תקופת הלם h 5); השלם = שהצנתור סגר מלא בלון אבי העורקים; חלקי = הקטטר סגר בלון אבי העורקים חלקית. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 4: תגובה מערכתית, הפיזיולוגיות הפריסה פציעה ובלון. אלה מראות המידות פוסט ניתוחית של (A) קצב הלב (HR), (B) לחץ ורידי מרכזי (CVP), (ג) הלב פלט (CO), (ד) הזרימה בעורק הראש (CF). הנתונים מוצגים כמו קבוצה זאת אומרת ± SE. S = תקופת הלם (20 דקות); בלון = האינפלציה בלון (60 דקות); R = את ההחייאה (20 דקות); יחסי ציבור = את החייאה שלאחר תקופת/בלון דפלציה; E = סוף השלב פציעה (סיום תקופת הלם h 5); השלם = שהצנתור סגר מלא בלון אבי העורקים; חלקי = הקטטר סגר בלון אבי העורקים חלקית. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 5: מעבדה פרמטרים בתגובה האינפלציה פציעה ובלון. אלה מראות את המידות פוסט ניתוחית של pH (A) ו- (B) לקטאט. הנתונים מוצגים כמו קבוצה זאת אומרת ± SE. הכוכביות מציינות את נקודות זמן זה היו שונים באופן משמעותי (p < 0.05). S = תקופת הלם (20 דקות); בלון = האינפלציה בלון (60 דקות); R = את ההחייאה (20 דקות); יחסי ציבור = את החייאה שלאחר תקופת/בלון דפלציה; E = סוף השלב פציעה (5 שעות לאחר השלמת תקופת הלם). השלם = שהצנתור סגר מלא בלון אבי העורקים; חלקי = הקטטר סגר בלון אבי העורקים חלקית. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
איור 6: החייאה דרישות בתגובה האינפלציה פציעה ובלון. אלה מראות המידות פוסט ניתוחית של נוזלים החייאה נוספים סה כ (א) ו- (B) השימוש נוראדרנלין. הנתונים מוצגים כמו קבוצה זאת אומרת ± SE. הכוכביות מצביעים על הבדלים משמעותיים (p < 0.05). השלם = שהצנתור סגר מלא בלון אבי העורקים; חלקי = הקטטר סגר בלון אבי העורקים חלקית. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
ב פרוטוקול זה, סימנו כמודל הלם hemorrhagic החזירים. מודל זה הוכח להיות גם אמין וגם לשחזור16,17,18,19. יש כבר מועסקים מודלים דומה לזה במספר מחקרים מדעיים חוקרת את ההשפעות של הלם hemorrhagic על פיזיולוגיה של בעלי חיים16,20. יתר על כן, מודל זה שימש גם לבדיקה שני התערבויות טיפול תרופתי וכירורגי הלם hemorrhagic עם הצלחה מסומן12,13,16,19, 21.
מודל זה, כוללת מספר שלבים הדורשים תשומת לב רבה לפרטים. צנרור של חזיר הוא הליך מורכב שכן החיה בעלת חוטם ארוך, כמו מקור. כן, חור צר, ארוך הלוע התחתון. בנוסף, החזירים בדרך כלל יש נטייה גבוהה עוברים עווית בית הקול, לעשות צנרור orotracheal עוד יותר מאתגר22. אינדוקציה המתאים של הרדמה, קידום הרפיה שרירית טובה, צריך להיעשות לפני שתנסה את צנרור. מניסיוננו, יש לי עוזר להשתמש חבלים כותנה כירורגית כדי להרים את הלסת התחתונה ואת הלשון ומדכאים את הלסת העליונה מסייע להקל על פתיחה רחבה יותר של חלל הפה לצנרור קל יותר. אם צנרור הופך קשה, בגלל עווית בית הקול, ספריי כדי להרדים אקטואלי אמור לשמש. אמנם לא מנוצל פרוטוקול זה, חוסם neuromuscular יכול להינתן על מנת לקדם הרפיה בגרון. שימוש חוסם עצב-שריר, לעומת זאת, דורש השגחה צמודה על ידי איש מקצוע מיומן. אנחנו רואים שזה מועיל להחיל ג'ל סיכה על הקצה של הצינור אנדוטרכאליות, כמו גם סיבוב הצינור תוך קידום זה דרך הפתח בגרון. בעקבות צנרור, צריך לאשר את מיקום הצינור אנדוטרכאליות עם סיום-גאות CO2. ובכל זאת, למרות חזירים יכולים לצנר בתפקידים שונים, אנו מוצאים צנרור במצב פרקדן להיות הקלה ביותר, במיוחד אם הפרט מבצע את צנרור יש ניסיון עם צנרור אנושי.
עורק הירך, תעלות הווריד יכול להיות מאתגר מבחינה טכנית. השימוש של הכחשה טוב חשוב, יכולה להיות מושגת באמצעות רטרקטורים שהגנו עצמית. ייתכן שייעשה שימוש של המפשק נוספים, כגון צבאית, במידת הצורך. צריך לקחת תוך כדי לנתח את הצרור נוירו-וסקולריים, מאז העצב הירך, המהווה מבנה רוחבי ביותר הצרור, יש להישמר. הדבר חשוב במיוחד אם החיה צריך לשרוד את הניסוי. בנוסף, תעלות של עורק הירך הנכון הוא שלב קריטי הניסוי. בעקבות תעלות guidewire לתוך הכלי, נדן ההכנסה Fr 14 מוכנס. ביצוע מוצלח של שלב זה דורש הרחבה הראשונית עם מרחיב Fr 10 כדי להגדיל כלי הקיבול. גם רבת חשיבות הוא דחיסת עורק הירך באתר של arteriotomy, בעקבות הסרת מרחיב Fr 10, כדי למזער את אובדן דם. אמנם לא שגרתי שבוצעה במחקרים שנעשו בבעלי חיים, שולטים לקרע, לפני ביצוע את arteriotomy ואת venotomy, כפי שמתואר במחקר זה, יכול לעזור לעצור את הדימום ולאפשר לפתרון בעיות, כדאי מתעוררות בעיות במהלך תעלות.
המיקום המתאים ופריסה של קטטרים סגר אבי העורקים הם קריטיים. צריך להיות מתורגל זהירות תוך קידום הצנתר בתוך העורקים, כמו מניפולציה תוקפניים עלולה לגרום פציעה iatrogenic עורק הירך או העורקים. למרות עשויות להיות ממוקדות במספר מקומות הפריסה של הקטטר, בחרנו למקם את הבלונים סגר 1 אזור אבי העורקים, אשר זה אבי העורקים supraceliac. מיקום הבלון יכול להיות מאושרות על ידי מישוש ידני או fluoroscopy; עם זאת, בדיקת אולטרה סאונד יכול לשמש גם לאשר בקלות את מיקום הבלון, אשר שימש במחקר זה. בעקבות המיקום המתאים, האינפלציה בלון צריך להתנהל בזהירות. באופן כללי, בלונים צריך לנפח לאט עד אין יותר נרשמה ירידה במפת דיסטלי. Overinflation של הבלון עלולה לגרום קרע בלון, אשר עשויים לזרז פגיעה אבי העורקים. תשומת לב המפה לקרע, מסייעת להשגת מידת הרצוי סגר בלון אבי העורקים, אם חלקי או מלא.
מעילי פרווה ההכנסה סגר קטטרים אבי העורקים הפכו קטנים יותר בפרופיל בשנים האחרונות. במחקר זה, השתמשנו נדן ההכנסה Fr 14 לפני לקדם הקטטר סגר חלקית בלון אבי העורקים (קרי, SABOT) לתוך עורק הירך. כיום, קטטר זה הוא בשלב אני ההתפתחות שלה, עם תוכניות עבור גרסה עתידית מעורבים בלונים מתכווננת הזרם אבי העורקים הדיסטלי, וכן מערכת קטנה יותר, פרופיל נמוך. קטטרים Fr 7 קטנים יותר, אולם, צברו פופולריות בשנים האחרונות, ככל שהם קשורים פחות סיבוכים איסכמי. מעילי פרווה קטנים, פרופיל נמוך, אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים עשוי לשמש גם עבור פריסה במודל זה הלם hemorrhagic, עם תוצאות מצוינות.
מספר מודלים של דימום משמשים כדי לבדוק הלם hemorrhagic חיות גדולות23,24,25. אנו מעסיקים מודל קבוע בנפח של דימום. במודל זה, אמצעי אחסון דימום קבוע מראש, אשר מבוסס על TBV מחושב, נסוגה מן הגוף במשך פרק זמן מוגדר. השתמשנו של % 35 TBV לדימום מעל 20 דקות, המשמש בדרך כלל הלם hemorrhagic בנפח קבוע דגמים26,27,28,29. מודל זה משמש כדי לחקור הנוצרות על-ידי הלם השינויים הפיזיולוגיות, מנגנוני פיצוי, כמו גם תגובות pathophysiologic, בהלם hemorrhagic. למרות ששיטה זו נפוצה מאוד, דרגת ההלם הנגרמת עקב דימום בנפח קבוע משתנה חיה חיה. יתר על כן, כמו היחס דם נפח--גוף-משקל משתנה, חשוב לשלוט על משקל במודל זה על מנת להשיג תוצאות לשחזור. סוגים אחרים דגם בפועל כוללות מודל לחץ קבוע דימום מודל דימום בלתי מבוקרת, מודל דימום עם סמנים איסכמי נקודות הקצה. לכל אחד של מודלים אלה, לעומת זאת, יש קבוצה נפרדת של מגבלות.
דימום מבוקרת מודלים שימשו כדי לבדוק סגר אבי העורקים קטטרים עם הצלחה12. במחקר זה, השתמשנו מערכת סגורה דימום כי סוג זה של דימום המודל יכול להיות מועסק במגוון רחב של ניסויים. המטרה שלנו הייתה לספק לקוראים עם הקרן על שכפול מודל הלם hemorrhagic, לפרוס סגר קטטרים אבי העורקים. עם זאת, כדי ליצור הכי קלינית השוואה רלוונטי ומשמעותי של חלקי נגד שלמה אבי העורקים סגר, הקטטרים האלה צריך בסופו של דבר להיבדק בסביבה של דימום מתמשך דיסטלי. בשילוב עם אחרים עלבונות טראומטי, מודל זה של הלם hemorrhagic יכול להיות אומדן מודל ריאליסטי יותר קליניות של פציעות טראומטיות16,18.
אסטרטגיות החייאה בעקבות פציעות טראומטיות במודלים של בעלי חיים משתנים באופן נרחב. וחלקם חסידי "נוזל תגובתיות"-המנחה דרישות החייאה מתמשך28, אחרים מציעים ספי אובייקטיבית מתן נוזלים בולוסים ו vasopressors21,26. במחקר זה, אנחנו מועסקים ספי כדי לקבוע המינהל בולוס נוזלים ולהשתמש vasopressors שלהם קלות הפארמצבטית. למרות 'נוזל תגובתיות' משכפל הקלינית, סף אובייקטיבית עבור vasopressors ומינהל נוזלים עלולה להגביל השתנות רחב ואת נקודת המבט הסובייקטיבית של החייאה דרישות הלם hemorrhagic דגמים.
במשך שנים, החזירים היו בשימוש במודלים שונים של הלם hemorrhagic שסיפקו הזדמנויות לבחון מגוון רחב של טיפול אסטרטגיות11,12,13,16,17, 19,20,21,30. עם זאת, חשוב להבין כי החזירים אינם בעלי חיים הדגם המושלם, שינויים הפיזיולוגיות לא בדיוק לתרגם לבני אדם. לדוגמה, יש חוקרים עשויים להמליץ על כריתת הטחול לפני הלם hemorrhagic כדי לחקות טוב יותר הפיזיולוגיה האנושית, למרות זאת הוא נושא שנוי במחלוקת31.
לסיכום, פרוטוקול זה מדגים היסוד הבסיסי עבור שכפול מודל הלם hemorrhagic ב החזירים ואת הפריסה של אבי העורקים סגר קטטרים. ממצאי מחקר זה משמש מודל דומה של הלם hemorrhagic נמצאים כיום בשימוש בניסויים קליניים בשלב II חוקרים את התפקיד של חומצה ולפרואית (VPA) פציעות טראומטיות16,19,32, 33 , 34. בנוסף, שיירשמו זה את חשיבות התפקיד של אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים בעידן הנוכחי. אבי העורקים סגר קטטרים וזונדים לא רק מצאו יישום של הלם hemorrhagic, הם גם בשימוש ניתוחי לב וכלי, כמו גם ניתוחים בחירה בסיכון גבוה איפה שימושי בשאר פקד הזרימה של אבי העורקים נסיבות הרסנית. בסך הכל, אנו חשים כי הדגם החזירים של הלם hemorrhagic תיאר סגר את בלון ותיני רלוונטיות מאוד, יכול להיות מועסק בשפע של מחקרים ניסיוניים.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
עבודה זו נתמכת על ידי הצבא לנו מחקר רפואי פיקוד תחת חוזה מס W81XWH-16-C-0102. נוף, חוות דעת ו/או ממצאים הכלולים בדו ח זה הם אלה של והמלצה, לא יפורש כמו מחלקת הרשמי של עמדת הצבא, מדיניות, או ההחלטה אלא אם כן מטמאים על-ידי תיעוד אחר.
Acknowledgments
ברצוננו להודות רחל או'קונל, ולי ג'סיקה לסיוע שלהם עם המחקרים בבעלי חיים. אנחנו גם רוצים להכיר האלוף הרולד Timboe, MD, MPH, צבא ארה ב (מיל'), מי שהיה יועץ ומורה עבור פרוייקט זה.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Yorkshire-Landrace Swine | Michigan State University Veterinary Farm | ||
| Anesthesia: Telazol | Pfizer | Dose: 2-8 mg/kg; IM | |
| Anti-cholinergic: Atropine | Pfizer | Dose: 1mg, IM | |
| Anesthesia: Isoflurane | Baxter | Dose: 1-5%, INH | |
| Betadine | Humco | ||
| Alcohol 70% | Humco | NDC 0395-4202-28 | |
| Datex-Aespire Anesthesia Machine | GE Healthcare | 7900 | |
| Endotracheal tube | DEE Veterinary | 20170518 | Appropriate size for animal (6.5 or 7.0F) |
| Laryngoscope | Miller | 85-0045 | |
| Stylet | Hudson RCI | 5-151--1 | |
| Jelco 20G IV Catheter | Smiths Medical | 4054 | |
| Operating Room Monitor (Vital Signs Monitor) | SurgiVet Advisor | V9201 | May require at least 2 |
| Surgical Gowns | Kimberly Clark | 90142 | Use appropriate size for surgeon. |
| Sterile surgical gloves | Cardinal Health (Allegiance) | 22537-570 | Use appropriate size for surgeon. |
| Cautery Pencil | Medline | ESPB 2000 | |
| Suction tubing | Medline | DYND50251 | |
| Sunction tip: Yankauer | Medline | DYND50130 | |
| Bovie Aaron 1250 Electrocautery Unit | Bovie Medical Co. FL | BOV-A1250U | |
| Salpel Blade - Size #10 | Cardinal Health (Allegiance) | 32295-010 | |
| Scalpel Handle | Martin | 10-295-11 | |
| Debakey Forceps | Roboz | RS-7562 | |
| Weitlander Retractor | Roboz | RS-8612 | |
| Mayo Scissors | Roboz | RS-76870SC | |
| Army-navy Retractor | Teleflex | 164715 | |
| Mixter Right-angle Forceps | Teleflex | 175073 | |
| 5F (1.7 mm) 11 cm Insertion Sheath with 0.35" Guidewire | Boston Scientific | 16035-05B | |
| 8F (2.7 mm) 11 cm Insertion Sheath with 0.35'' Guidewire | Boston Scientific | 16035-08B | |
| 20G angled Introducer Needle | Arrow | AK-09903-S | |
| 14F (4.78 mm) 13 cm Insertion Sheath with 10F dilator | Cook Medical | G08024 | |
| 2-0 Silk 18'' 45 cm | Ethicon | A185H | |
| 3-0 Vicryl 36'' 90 cm | Ethicon | J344H | |
| 3-0 Nylon 18'' 45 cm | Ethicon | 663G | |
| 4-0 Prolene 30'' 75 cm | Ethicon | 8831H | |
| 20 ml syringe | Metronic/Covidien | 8881512878 | |
| 3 mL syringe | Metronic/Covidien | 1180300555 | |
| 6 mL syringe | Metronic/Covidien | 1180600777 | |
| 1000ml 0.9% Saline | Baxter | 2B1324X | |
| Foley Catheter (18F 30 cc) | Bard | 0166V18S | |
| Urinary Drainage Bag | Bard | 154002 | |
| 9F 10 cm Insertion Sheath | Arrow | AK-09903-S | |
| Swan-Ganz pulmonary artery catheter (8F) | Edwards Lifesciences co. CA | 746F8 | |
| Carotid Flow Probe System | Transonic, Ithaca, NY | 3, 4, or 6 mm probes | |
| SABOT catheter | Hayes Inc. | ||
| CODA balloon catheter | Cook Medical | 8379144 | |
| Ultrasound, M-Turbo | SonoSite | ||
| Amplatz Stiff Guidewire (0.035 inch, 260 cm) | Cook Medical | G03460 | |
| Arterial Blood Gas Syringes | Smiths Medical | 4041-2 | |
| Arterial Blood Gas Analyzer | Nova Biochemical | ABL800 | |
| Masterflex Pump | Cole Palmer | HV-77921-75 | |
| Blood Collection Bags | Terumo | 1BBD606A | |
| Macro IV drip set | Hospira | 12672-28 | |
| Pentobarbital | Pfizer | Dose: 100 mg/kg; IV | |
| Eppendorf Tubes | Sorenson | 11590 | |
| 50 cc conical tubes | Falcon | 352097 | |
| Formalin | Fisherbrand | 431121 | |
| Bair Hugger Normothermia System | Arizant Healthcare, Inc. |
References
- Kauvar, D. S., Lefering, R., Wade, C. E. Impact of hemorrhage on trauma outcome: an overview of epidemiology, clinical presentations, and therapeutic considerations. The Journal of Trauma: Injury, Infection and Critical. 60, S3-S11 (2006).
- Kauvar, D. S., Wade, C. E. The epidemiology and modern management of traumatic hemorrhage: US and international perspectives. Critical Care. 9, S1-S9 (2005).
- Mattox, K. L., Allen, M. K., Feliciano, D. V. Laparotomy in the emergency department. Journal of the American College of Emergency Physicians. 8 (5), 180-183 (1979).
- Pust, G. D., Namias, N. Resuscitative thoracotomy. International Journal of Surgery. 33 (Pt B), 202-208 (2016).
- Burlew, C. C., et al. Trauma Association critical decisions in trauma: resuscitative thoracotomy. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 73 (6), 1359-1363 (2012).
- DuBose, J. J., et al. The AAST prospective Aortic Occlusion for Resuscitation in Trauma and Acute Care Surgery (AORTA) registry: Data on contemporary utilization and outcomes of aortic occlusion and resuscitative balloon occlusion of the aorta (REBOA). Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (3), 409-419 (2016).
- Biffl, W. L., Fox, C. J., Moore, E. E. The role of REBOA in the control of exsanguinating torso hemorrhage. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 78 (5), 1054-1058 (2015).
- Manzano Nunez, R., et al. A meta-analysis of resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta (REBOA) or open aortic cross-clamping by resuscitative thoracotomy in non-compressible torso hemorrhage patients. World Journal of Emergency Surgery. 12, 30 (2017).
- Gupta, B. K., et al. The role of intra-aortic balloon occlusion in penetrating abdominal trauma. Journal of Trauma. 29 (6), 861-865 (1989).
- Inoue, J., et al. Resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta might be dangerous in patients with severe torso trauma: A propensity score analysis. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 80 (4), discussion 378-380 559-566 (2016).
- Russo, R. M., et al. Extending the golden hour: Partial resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta in a highly lethal swine liver injury model. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 80 (3), 378-380 (2016).
- Russo, R. M., et al. Partial Resuscitative Endovascular Balloon Occlusion of the Aorta in Swine Model of Hemorrhagic Shock. Journal of the American College of Surgeons. 223 (2), 359-368 (2016).
- Williams, T. K., et al. Extending resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta: Endovascular variable aortic control in a lethal model of hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (2), 294-301 (2016).
- Hannon, J. P. Hemorrhage and hemorrhagic-shock in swine: A review. Swine as Models in Biomedical Research. Swindle, M. M. , Iowa State University Press. Ames, IA. 197-245 (1992).
- Garry, B. P., Bivens, H. E. The Seldinger technique. Journal of Cardiothorac Anesthesia. 2 (3), 403 (1988).
- Halaweish, I., et al. Addition of low-dose valproic acid to saline resuscitation provides neuroprotection and improves long-term outcomes in a large animal model of combined traumatic brain injury and hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 79 (6), 911-919 (2015).
- Alam, H. B., et al. Surviving blood loss without blood transfusion in a swine poly-trauma model. Surgery. 146 (2), 325-333 (2009).
- Jin, G., et al. Traumatic brain injury and hemorrhagic shock: evaluation of different resuscitation strategies in a large animal model of combined insults. Shock. 38 (1), Augusta, GA. 49-56 (2012).
- Nikolian, V. C., et al. Valproic acid decreases brain lesion size and improves neurologic recovery in swine subjected to traumatic brain injury, hemorrhagic shock, and polytrauma. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 83 (6), 1066-1073 (2017).
- Langeland, H., Lyng, O., Aadahl, P., Skjaervold, N. K. The coherence of macrocirculation, microcirculation, and tissue metabolic response during nontraumatic hemorrhagic shock in swine. Physiological Reports. 5 (7), (2017).
- Johnson, M. A., et al. The effect of resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta, partial aortic occlusion and aggressive blood transfusion on traumatic brain injury in a swine multiple injuries model. Journal of Trauma Acute Care Surgery. 83 (1), 61-70 (2017).
- Theisen, M. M., et al. Ventral recumbency is crucial for fast and safe orotracheal intubation in laboratory swine. Laboratory Animals. 43 (1), 96-101 (2009).
- Li, Y., Alam, H. B. Modulation of acetylation: creating a pro-survival and anti-inflammatory phenotype in lethal hemorrhagic and septic shock. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 523481 (2011).
- Nikolian, V. C., et al. Valproic acid decreases brain lesion size and improves neurologic recovery in swine subjected to traumatic brain injury, hemorrhagic shock, and polytrauma. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 83 (6), 1066-1073 (2017).
- Dekker, S. E., et al. Normal saline influences coagulation and endothelial function after traumatic brain injury and hemorrhagic shock in pigs. Surgery. 156 (3), 556-563 (2014).
- Causey, M. W., McVay, D. P., Miller, S., Beekley, A., Martin, M. The efficacy of Combat Gauze in extreme physiologic conditions. The Journal of Surgical Research. 177 (2), 301-305 (2012).
- Frankel, D. A., et al. Physiologic response to hemorrhagic shock depends on rate and means of hemorrhage. The Journal of Surgical Research. 143 (2), 276-280 (2007).
- Morrison, J. J., et al. The inflammatory sequelae of aortic balloon occlusion in hemorrhagic shock. The Journal of Surgical Research. 191 (2), 423-431 (2014).
- White, J. M., et al. A porcine model for evaluating the management of noncompressible torso hemorrhage. Journal of Trauma. 71, S131-S138 (2011).
- Alam, H. B., et al. Putting life on hold-for how long? Profound hypothermic cardiopulmonary bypass in a Swine model of complex vascular injuries. Journal of Trauma. 64 (4), 912-922 (2008).
- Bebarta, V. S., Daheshia, M., Ross, J. D. The significance of splenectomy in experimental swine models of controlled hemorrhagic shock. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 75 (5), 920 (2013).
- Georgoff, P. E., et al. Alterations in the human proteome following administration of valproic acid. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 81 (6), 1020-1027 (2016).
- Dekker, S. E., et al. Different resuscitation strategies and novel pharmacologic treatment with valproic acid in traumatic brain injury. Journal of Neuroscience Research. 96 (4), 711-719 (2017).
- Georgoff, P. E., et al. Safety and Tolerability of Intravenous Valproic Acid in Healthy Subjects: A Phase I Dose-Escalation Trial. Clinical Pharmacokinetics. 57 (2), 209-219 (2017).
