Summary

Um método estática auto-direcionado para gerar organoides cerebrais a partir de células-tronco embrionárias humanas

Published: March 04, 2020
doi:

Summary

Esse protocolo foi gerado como um meio de produzir organoides cerebrais de forma simplificada e de baixo custo sem fatores de crescimento exógenos ou matriz de membrana do porão, mantendo a diversidade de tipos de células cerebrais e muitas características da organização celular.

Abstract

Organoides cerebrais humanos diferenciados de células-tronco embrionárias oferecem a oportunidade única de estudar interações complicadas de múltiplos tipos de células em um sistema tridimensional. Aqui apresentamos um método relativamente simples e barato que produz organoides cerebrais. Neste protocolo, as células-tronco pluripotentes humanas são divididas em pequenos aglomerados em vez de células únicas e cultivadas na mídia básica sem uma matriz de membrana de porão heterologous ou fatores de crescimento exógenos, permitindo que as pistas de desenvolvimento intrínsecas modelem o crescimento organoide. Este sistema simples produz uma diversidade de tipos de células cerebrais, incluindo células gliais e microgliais, células-tronco e neurônios do cérebro, cérebro médio e cérebro traseiro. Organoides gerados a partir deste protocolo também exibem marcas de organização temporal e espacial apropriada demonstrada por imagens de campo brilhante, histologia, imunofluorescência e reação quantitativa quantitativa da cadeia de polimerase em tempo real ( qRT-PCR). Como esses organoides contêm tipos de células de várias partes do cérebro, eles podem ser utilizados para estudar uma infinidade de doenças. Por exemplo, em um artigo recente demonstramos o uso de organoides gerados a partir deste protocolo para estudar os efeitos da hipóxia no cérebro humano. Essa abordagem pode ser usada para investigar uma série de condições de estudo difíceis de estudar, como deficiências neurodesenvolvimentista, distúrbios genéticos e doenças neurológicas.

Introduction

Devido a uma miríade de limitações práticas e éticas, houve muita dificuldade em estudar o cérebro humano. Embora estudos que utilizam roedores tenham sido críticos para nossa compreensão do cérebro humano, o cérebro do rato tem muitas diferenças1,2. Curiosamente, os camundongos têm uma densidade neuronal que é pelo menos 7 vezes menor que o cérebro primata3,4. Embora os primatas estejam mais próximos dos humanos do que os roedores do ponto de vista evolutivo, não é prático para a maioria dos pesquisadores trabalhar com eles. O objetivo deste protocolo era recapitular muitas características importantes do cérebro humano usando um método simplificado e menos caro sem a necessidade de uma matriz de membrana de porão heterologous ou fatores de crescimento exógenos, mantendo a diversidade celular cerebral e a organização celular.

O trabalho formativo do laboratório Sasai utilizou a cultura livre de soro do método de corpos embrionários (SFEBq) para gerar tipos de células neuronais bidimensionais bidimensionais de células-tronco sinalizadas (ESCs)5,6. Muitos métodos organoides cerebrais humanos seguiram um caminho relativamente semelhante das ESCs sinalizadas7,8. Em contraste, este protocolo começa com clusters de ESCs humanos destacados (HESCs), semelhantes aos passos iniciais do trabalho seminal dos laboratórios Thomson e Zhang antes das etapas de revestimento9,10, bem como o passo inicial do protocolo organoide cerebral do laboratório Pasca antes da adição de fatores de crescimento exógenos11. Matrizes de membrana do porão (por exemplo, matrigel) têm sido utilizadas em muitos protocolos organoides cerebrais e tem se mostrado um andaime eficaz8. No entanto, as matrizes de membrana do porão mais comumente utilizadas não vêm sem complicações, pois copurificam com quantidades desconhecidas de fatores de crescimento com variabilidade em lote a lote durante a produção12. Além disso, essas matrizes podem complicar a imagem e aumentar o risco de contaminação e custo.

Embora os organoides cerebrais humanos possam ser usados para responder a muitas perguntas, há certas limitações a ter em mente. Por um ano, a partir de células-tronco embrionárias, os organoides se assemelham mais a cérebros imaturos do que cérebros idosos e, como tal, podem não ser modelos ideais para doenças que ocorrem na velhice, como a doença de Alzheimer. Segundo, enquanto nosso protocolo encontrou marcadores de desenvolvimento cerebral, cérebro médio e hindbrain que são úteis para estudar o efeito de um tratamento ou doença em células de múltiplas regiões cerebrais em concerto, outros protocolos podem ser seguidos para se concentrar em regiões cerebrais específicas13,14. Finalmente, outra limitação dos modelos organoides é a de tamanho, enquanto o comprimento médio de um cérebro humano aproximadamente 167 mm, organoides cerebrais feitos com o uso de agitação crescem até 4 mm8 e os organoides formados por este protocolo crescem para 1-2 mm por 10 semanas. No entanto, este protocolo fornece uma ferramenta importante para estudar o tecido cerebral humano e a interação de múltiplos tipos de células.

Protocol

1. Manutenção de células-tronco Mantenha hESCs em uma camada de fator de crescimento reduzido matriz de membrana do porão (ver a Tabela de Materiais, a partir de agora simplesmente referida como matriz) de acordo com as instruções do fabricante. Para revestir uma placa de 6 poços ou um prato de 10 cm, misture 100 μL de matriz com 5,9 mL de meio Águia modificado de Dulbecco (DMEM)/F12. Enrole as placas em filme de parafina e armazene durante a noite a 4°C. Use-as no dia seguint…

Representative Results

A Figura 1 mostra imagens representativas de campo brilhante de vários pontos de tempo para demonstrar como são as células/organoides ao longo dos diferentes estágios do protocolo. Os hESCs foram removidos da placa de cultura do tecido, quebrados em pequenos pedaços, e colocados em um frasco de fixação ultra-baixo T75 onde formavam esferas. É importante notar que as células parecem brilhantes e semelhantes em tamanho, sem células escuras e moribundas nos centros desses aglomerados….

Discussion

Semelhante a outros modelos organoides, este é um sistema artificial que vem com várias ressalvas. Embora houvesse pouca variação de lote a lote em termos de níveis gerais de expressão, organoides individuais apresentaram diferenças. Por exemplo, a localização das áreas positivas Sox-2 não era idêntica em cada organoide(Figura 3). Embora o qPCR seja adequado para procurar mudanças globais em lotes de células, técnicas adicionais como a RNAseq de célula única serão utilizadas em estudos …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos ao Yale Stem Cell Core (YSCC) e ao Yale Cancer Center (YCC) pela ajuda. Agradecemos ao Dr. Jung Kim por sua revisão da neuropatologia. Este trabalho foi apoiado pelo Connecticut Regenerative Medicine Research Fund, March of Dimes e NHLBI R01HL131793 (S.G.K.), o Yale Cancer Center e o Yale Cancer Biology Training Program NCI CA193200 (E.B.) e um generoso presente irrestrito de Joseph e Lucille Madri.

Materials

Alexa Fluor 488 goat anti-mouse Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA A11029
Alexa Fluor 546 goat anti-rabbit Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA A11035
B27 Supplement Gibco, Waltham, MA, USA 17504-044
bFGF Life Technologies, Carlsbad, CA, USA PHG0263
BSA Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA A9647
BX43 microscope Olympus, Shinjuku, Tokyo, Japan
DAPI stain Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA D1306
Dispase STEMCELL Technologies, Vancouver, Canada 07913
DMEM/F12 Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 11330-032
DPBS Gibco, Waltham, MA, USA 10010023
FluroSave MilliporeSigma, Burlington, MA 345789
GFAP antibody NeuroMab, Davis, CA N206A/8
Growth Factor Reduced Matrigel (Matrix) Corning, Corning, NY, USA 356231
H9 hESCs WiCell, Madison, WI, USA WA09
Heparin Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA 9041-08-1
iQ SYBR Green Supermix Bio-Rad, Hercules, CA, USA 1708880
iScript cDNA Synthesis Kit Bio-Rad, Hercules, CA, USA 1708891
L-glutamine Gibco, Waltham, MA, USA 25030-081
Monothioglycerol Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA M6145
mTESR media STEMCELL Technologies, Vancouver, Canada 85850
N2 NeuroPlex Gemini Bio Products, West Sacramento, CA, USA 400-163
Nanodrop Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA ND-2000
NEAA Gibco, Waltham, MA, USA 11140-050
Normal Donkey Serum (NDS) ImmunoResearch Laboratories Inc., West Grove, PA, USA 017-000-121
OCT Sakura Finetek, Torrance, CA, USA 25608-930
PFA Electron Microscopy Sciences, Hatfield, PA RT15710
qPCR machine Bio-Rad, CFX96, Hercules, CA, USA 1855196
RNeasy kit Qiagen, Hilden, Germany 74104
Sox2 MilliporeSigma, Burlington, MA AB5603
TMS-F microscope Nikon, Melville, NY, USA
Triton X-100 Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA T8787-100ML
Ultra-low attachment T75 flasks Corning, Corning, NY, USA 3814

References

  1. Northcutt, R. G. Understanding vertebrate brain evolution. Integrative and Comparative Biology. 42 (4), 743-756 (2002).
  2. Roth, G. . The Long Evolution of Brains and Minds. , (2013).
  3. Herculano-Houzel, S. The human brain in numbers: a linearly scaled-up primate brain. Frontiers in Human Neuroscience. 3, 31 (2009).
  4. Roth, G., Dicke, U. Evolution of the brain and intelligence. Trends in Cognitive Sciences. 9 (5), 250-257 (2005).
  5. Eiraku, M., et al. Self-organized formation of polarized cortical tissues from ESCs and its active manipulation by extrinsic signals. Cell Stem Cell. 3 (5), 519-532 (2008).
  6. Watanabe, K., et al. Directed differentiation of telencephalic precursors from embryonic stem cells. Nature Neuroscience. 8 (3), 288-296 (2005).
  7. Kadoshima, T., et al. Self-organization of axial polarity, inside-out layer pattern, and species-specific progenitor dynamics in human ES cell-derived neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (50), 20284-20289 (2013).
  8. Lancaster, M. A., et al. Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature. 501 (7467), 373-379 (2013).
  9. Li, X. J., et al. Specification of motoneurons from human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 23 (2), 215-221 (2005).
  10. Zhang, S. C., Wernig, M., Duncan, I. D., Brustle, O., Thomson, J. A. In vitro differentiation of transplantable neural precursors from human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 19 (12), 1129-1133 (2001).
  11. Pasca, A. M., et al. Functional cortical neurons and astrocytes from human pluripotent stem cells in 3D culture. Nat Methods. 12 (7), 671-678 (2015).
  12. Hughes, C. S., Postovit, L. M., Lajoie, G. A. Matrigel: a complex protein mixture required for optimal growth of cell culture. Proteomics. 10 (9), 1886-1890 (2010).
  13. Qian, X., et al. Brain-Region-Specific Organoids Using Mini-bioreactors for Modeling ZIKV Exposure. Cell. 165 (5), 1238-1254 (2016).
  14. Sloan, S. A., Andersen, J., Pasca, A. M., Birey, F., Pasca, S. P. Generation and assembly of human brain region-specific three-dimensional cultures. Nature Protocols. 13 (9), 2062-2085 (2018).
  15. Kelava, I., Lancaster, M. A. Stem Cell Models of Human Brain Development. Cell Stem Cell. 18 (6), 736-748 (2016).
  16. Boisvert, E. M., Means, R. E., Michaud, M., Madri, J. A., Katz, S. G. Minocycline mitigates the effect of neonatal hypoxic insult on human brain organoids. Cell Death and Disease. 10 (4), 325 (2019).
  17. Bergmann, S., et al. Blood-brain-barrier organoids for investigating the permeability of CNS therapeutics. Nature Protocols. 13 (12), 2827-2843 (2018).
  18. Mansour, A. A., et al. An in vivo model of functional and vascularized human brain organoids. Nature Biotechnology. 36 (5), 432-441 (2018).
  19. Pham, M. T., et al. Generation of human vascularized brain organoids. Neuroreport. 29 (7), 588-593 (2018).
  20. Boisvert, E. M., Denton, K., Lei, L., Li, X. J. The specification of telencephalic glutamatergic neurons from human pluripotent stem cells. Journal of Visualized Experiments. (74), (2013).

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Cite This Article
Boisvert, E. M., Means, R. E., Michaud, M., Thomson, J. J., Madri, J. A., Katz, S. G. A Static Self-Directed Method for Generating Brain Organoids from Human Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (157), e60379, doi:10.3791/60379 (2020).

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